Gli esperimenti sugli animali sono stati approvati dal Comitato Etico per la Sperimentazione Animale dell'Università di Medicina Cinese di Henan (numero di approvazione: DWLLGZR202200023). Tutte le procedure sono state eseguite in conformità con le linee guida istituzionali e nazionali per il benessere degli animali e hanno rispettato le linee guida ARRIVE. Ratti maschi Sprague–Dawley (SD) sono stati ottenuti da un fornitore autorizzato di animali da laboratorio. Gli animali sono stati allevati in condizioni controllate di temperatura e umidità, con un ciclo luce/buio di 12 ore, e hanno ricevuto cibo standard e acqua ad libitum.
Identificazione dei componenti di MXYS presenti nel tessuto cerebrale
Preparazione della polvere liofilizzata di MXYS:
Gli 11 ingredienti vegetali di MXYS sono stati macerati in 10 volumi di acqua distillata per 2 h e successivamente bolliti per 40 min. La menta è stata aggiunta negli ultimi 5 min della decottura. Una seconda decottura è stata preparata nello stesso modo utilizzando 8 volumi di acqua distillata. Le due decotture sono state unite, filtrate attraverso garza, concentrate sotto pressione ridotta fino a una concentrazione di 1 g/mL (equivalente di droga grezza) e liofilizzate sotto vuoto per 48 h per ottenere la polvere liofilizzata di MXYS. La resa di estrazione è stata del 21,7% (p/p)25,29,31.
Animali e somministrazione di MXYS:
Dodici ratti maschi SD sono stati assegnati casualmente a due gruppi e trattati due volte al giorno per gavaggio orale con MXYS o acqua purificata. Le due somministrazioni giornaliere sono state effettuate alle 8:00 e alle 20:00 (intervallo di 12 ore). La polvere di MXYS è stata sciolta in acqua purificata e somministrata alla dose di 24,4 g/kg (circa il doppio della dose clinica per i ratti)25. Il gruppo di controllo ha ricevuto acqua purificata in volume equivalente (10 mL/kg).
Preparazione del tessuto cerebrale contenente MXYS:
Dopo 14 giorni, tutti i ratti sono stati anestetizzati con pentobarbital sodico (40 mg/kg, per via intraperitoneale) 2 ore dopo l'amministrazione finale di MXYS. I tessuti cerebrali sono stati raccolti dopo perfusione transcardiaca con soluzione fisiologica. I cervelli interi sono stati immediatamente escissi e posti sul ghiaccio per ottenere campioni di tessuto cerebrale di controllo e di tessuto cerebrale trattato con MXYS.
Condizioni cromatografiche/spettrometriche di massa e database:
La polvere liofilizzata di MXYS, tessuto cerebrale privo di analita aggiunto con polvere di MXYS, tessuto cerebrale privo di analita e estratti di tessuto cerebrale contenenti MXYS sono stati analizzati utilizzando un sistema di cromatografia liquida ad alte prestazioni dotato di una colonna HSS-T3 (100 × 2,1 mm, 1,8 μm) mantenuta a 35 °C. Le fasi mobili consistevano in acqua contenente acido formico allo 0,1% (fase mobile A) e acetonitrile contenente acido formico allo 0,1% (fase mobile B). I campioni sono stati separati a una portata di 0,3 mL/min utilizzando un gradiente di 5% di B per 1 min, aumentando fino a 98% di B in 16 min, ritornando a 5% di B in 0,5 min e mantenendo al 5% di B per 2,5 min.
Gli spettri di massa sono stati acquisiti in modalità di ionizzazione elettrospray positiva e negativa utilizzando un'acquisizione dipendente dai dati su un intervallo di m/z compreso tra 90 e 1.300. Gli spettri MS/MS sono stati generati a partire dai 10 ioni precursori più intensi, utilizzando energie di dissociazione collisionale ad alta energia a gradino di 20, 40 e 60 eV. La temperatura del capillare è stata mantenuta a 320°C, mentre la temperatura del riscaldatore della sonda è stata impostata a 350°C.
L'annotazione dei composti è stata eseguita confrontando la massa esatta, la distribuzione isotopica e gli spettri MS/MS con un database interno di medicina tradizionale cinese e con i database pubblici GNPS32, ReSpect33 e MassBank34. Sono stati mantenuti i composti con un confronto affidabile degli spettri MS/MS e forme cromatografiche di picco coerenti. L'elenco completo dei composti identificati in via preliminare è riportato nella Tabella Supplementare 1.
Bioinformatica
Selezione e pre-elaborazione dei set di dati dal database GEO:
Il possibile coinvolgimento della necroptosi nella patologia della depressione è stato indagato effettuando una ricerca nel database GEO utilizzando la parola chiave "depressione". Sulla base dei criteri di selezione, sono stati identificati tre set di dati (GSE54566, GSE54565 e GSE54568) per ulteriori analisi. I set di dati derivavano da diverse regioni cerebrali: GSE54565 (corteccia cingolata anteriore), GSE54566 (amigdala) e GSE54568 (corteccia prefrontale dorsolaterale, BA9). Tutti i set di dati sono stati generati utilizzando la piattaforma Affymetrix Human Genome U133 Plus 2.0 Array (GPL570) e comprendevano campioni di tessuto cerebrale post-mortem provenienti da pazienti affetti da disturbo depressivo maggiore (MDD) e da controlli non psichiatrici. Le caratteristiche dettagliate dei campioni per ciascun set di dati sono riassunte nella Tabella Supplementare 2. Questi set di dati comprendevano dati trascrittomici provenienti da tre regioni cerebrali coinvolte nella depressione. È stata eseguita un'analisi dell'espressione genica differenziale tra i gruppi MDD e controllo per ciascun set di dati, e i geni costantemente sovraespressi e sottoregolati sono stati integrati utilizzando il pacchetto R Robust Rank Aggregation (RRA).
Tutti i set di dati sono stati preelaborati utilizzando l'algoritmo robust multi-array average (RMA) per la correzione del fondo e la normalizzazione. Dopo la normalizzazione RMA, l'algoritmo ComBat implementato nel pacchetto R sva è stato applicato per correggere gli effetti di lotto tra i set di dati, considerando l'origine del set di dati come covariata di lotto. Questa procedura ha ridotto la variabilità tecnica tra i set di dati e migliorato la comparabilità per le analisi successive.
Le analisi bioinformatiche sono state eseguite utilizzando il software R (versione 4.2.1). I principali pacchetti R inclusi erano ClusterProfiler (versione 4.8.2) per le analisi di arricchimento dell'ontologia genica (GO) e della Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG), WGCNA (versione 1.72) per l'analisi della rete di co-espressione genica pesata, RRA per l'integrazione dei geni differenzialmente espressi e sva (versione 3.48.0) per la correzione batch con ComBat. Il flusso di lavoro analitico comprendeva l'acquisizione dei dati, la normalizzazione RMA, la correzione batch con ComBat, l'analisi dell'espressione differenziale con integrazione RRA, la costruzione del modulo WGCNA, le analisi di arricchimento GO e KEGG con una false discovery rate (FDR) < 0,05 e la previsione dei bersagli mediante analisi della rete di interazione proteina-proteina (PPI).
Utilizzo di WGCNA per la costruzione di reti geniche di co-espressione e identificazione di moduli significativamente associati alla depressione e alla necroptosi:
WGCNA costruisce reti di co-espressione genica pesate applicando una potenza di soglia morbida (valore β) per approssimare una topologia senza scala. Il valore β è stato scelto quando il coefficiente di correlazione tra log(k) e log(p(k)) ha raggiunto almeno 0,9. Dopo aver selezionato il valore β, i moduli genici sono stati identificati utilizzando il metodo di taglio dinamico dell’albero. I parametri aggiuntivi sono stati impostati come segue: minModuleSize = 30, cutHeight = 0,25 e deepSplit = 2. Il valore β è stato selezionato quando il coefficiente di correlazione tra log(k) e log(p(k)) ha raggiunto almeno 0,9. È stata utilizzata una potenza di soglia morbida di β = 7 per la costruzione della rete. L’Eigen gene del modulo (ME) è stato calcolato per ciascun modulo per riassumere i modelli di espressione genica e valutare le associazioni con i tratti biologici. Successivamente sono stati calcolati il Significato del Gene (GS) e l’Appartenenza al Modulo (MM), e le relazioni tra modulo e tratto sono state valutate utilizzando il coefficiente di correlazione (cor) e il corrispondente valore p. Coefficienti di correlazione più elevati e valori p più bassi indicavano associazioni più forti tra i moduli genici e i tratti biologici.
Analisi di arricchimento funzionale e costruzione della rete PPI:
ClusterProfiler è stato utilizzato per eseguire l'analisi di arricchimento dei percorsi KEGG. Per la correzione della multipla verifica è stato applicato il metodo FDR di Benjamini–Hochberg, e un valore p corretto (FDR) < 0,05 è stato considerato statisticamente significativo. Dopo aver identificato il modulo bersaglio, i geni chiave all'interno del modulo sono stati incrociati con i geni associati a MXYS e necroptosi. Successivamente, una rete PPI è stata costruita utilizzando il database STRING.
Previsione dei bersagli per i composti rilevati nel tessuto cerebrale:
I 143 composti identificati in via preliminare nel tessuto cerebrale di ratto dopo la somministrazione di MXYS sono stati utilizzati per la previsione dei bersagli. Per ciascun composto, i potenziali bersagli sono stati recuperati dal database GeneCards mediante la funzione "Related Targets" con un punteggio di rilevanza > 5. I bersagli duplicati sono stati uniti e sono stati mantenuti solo i geni umani con simboli ufficiali, ottenendo 3.164 bersagli unici. Questi bersagli sono stati sottoposti ad analisi di arricchimento GO e KEGG utilizzando il pacchetto R ClusterProfiler, considerando statisticamente significativi i valori di FDR < 0,05. L'insieme genico di riferimento comprendeva tutti i geni umani codificanti proteine annotati nel database KEGG.
Verifica sperimentale
Coltura cellulare:
Le cellule HT-22 sono state ottenute da Procell Life Science & Technology Co., Ltd. (CL-0697, RRID: CVCL_0321) e coltivate in mezzo di crescita integrato con siero fetale bovino (FBS) al 10% e penicillina/streptomicina 100 U/mL. Le cellule sono state mantenute a 37°C in un incubatore umidificato con 5% di CO₂.
Attività anti-necroptotica di MXYS:
La polvere liofilizzata di MXYS è stata ricostituita nel mezzo di crescita cellulare fino a una concentrazione di 1,0 g/mL, sterilizzata mediante un filtro a membrana da 0,22 μm e conservata a −20°C fino all'uso. Le cellule HT-22 sono state seminate a una densità di 8.000 cellule per pozzetto in piastre a 96 pozzetti, con tre pozzetti per gruppo. MXYS è stato diluito nel mezzo di crescita fino a concentrazioni finali di 2, 4 e 6 mg/mL. Dopo un'incubazione di 12 h, le cellule sono state trattate con cloridrato di SM-164 (10 nM) e l'inibitore delle caspasi z-VAD-fmk (20 μM) per 30 minuti, seguita da stimolazione con fattore di necrosi tumorale-α umano (h-TNF-α; 20 ng/mL) per ulteriori 12 h. La vitalità cellulare è stata valutata mediante un saggio di vitalità cellulare luminescente secondo le istruzioni del produttore. La luminescenza è stata misurata utilizzando un lettore per micropiastre. La morfologia cellulare è stata esaminata al microscopio invertito, e sono state acquisite immagini rappresentative per l'analisi.
Animali:
Gli esperimenti sugli animali sono stati approvati dal Comitato Etico per l'uso degli Animali dell'Università di Medicina Cinese di Henan (numero di approvazione DWLLGZR202200023). Tutte le procedure sono state eseguite in conformità con le linee guida istituzionali e nazionali per il benessere degli animali e hanno rispettato le linee guida ARRIVE. Sono stati utilizzati esclusivamente topi maschi BALB/c di età compresa tra 6 e 8 settimane per la creazione del modello CUMS. Gli animali sono stati allevati in condizioni controllate di temperatura e umidità, con un ciclo luce/buio di 12 ore, e hanno ricevuto cibo standard e acqua ad libitum.
Modello di Depressione Indotta da CUMS:
I topi sono stati assegnati casualmente a un gruppo di controllo o a un gruppo CUMS. Dopo una settimana di ambientamento, i topi del gruppo CUMS sono stati sottoposti a stress leggeri intermittenti e imprevedibili, mentre i topi di controllo sono rimasti indisturbati. Il paradigma di stress comprendeva 13 diversi stressori, tra cui inclinazione della gabbia, scuotimento della gabbia, cambio della gabbia, lettiera bagnata, privazione d'acqua, illuminazione stroboscopica, esposizione al rumore, luce continua, buio continuo, illuminazione intermittente, nuoto in acqua fredda (4°C), nuoto in acqua calda (40°C), stress da immobilizzazione e altri stress leggeri. Ogni stressore è stato applicato per 2–6 h per sessione in una sequenza randomizzata per mantenere l'imprevedibilità. I topi sono stati esposti ogni giorno a uno o due stressori diversi secondo un programma randomizzato.
Gruppi e trattamento farmacologico:
Dopo sei settimane di esposizione al CUMS, i topi sono stati assegnati casualmente ai gruppi di trattamento CUMS, MXYS, paroxetina o Nec-1. Il gruppo MXYS ha ricevuto polvere liofilizzata di MXYS per somministrazione orale a 35,2 g/kg/giorno. Il gruppo paroxetina ha ricevuto paroxetina (20 mg/kg) per via orale, mentre il gruppo Nec-1 ha ricevuto Nec-1 (10 mg/kg) mediante iniezione intraperitoneale per quattro settimane consecutive. Nello stesso periodo, ai gruppi controllo e CUMS è stata somministrata una quantità equivalente di soluzione salina fisiologica per via orale.
Esperimenti Comportamentali:
I topi sono stati assegnati casualmente ai gruppi sperimentali utilizzando una sequenza di numeri casuali generata al computer prima dell'inizio della somministrazione del farmaco. La sequenza di randomizzazione è stata generata da un ricercatore indipendente che non ha partecipato ai successivi esperimenti né all'analisi dei dati.
I test comportamentali sono stati condotti da un ricercatore in cecità rispetto ai gruppi di trattamento. Lo stesso ricercatore ha effettuato la valutazione comportamentale basata su video (tempo di immobilità, distanza percorsa e tempo trascorso al centro) utilizzando un software automatizzato di tracciamento per ridurre al minimo i bias soggettivi. Il ricercatore in cecità non ha avuto accesso ai codici di assegnazione dei gruppi fino a quando tutti i dati comportamentali non sono stati raccolti e registrati.
Le analisi di immunofluorescenza sono state eseguite da un ricercatore indipendente, anch'egli a conoscenza cieca dei gruppi sperimentali. I campioni sono stati etichettati mediante identificatori codificati e l'assegnazione ai gruppi è stata rivelata solo dopo il completamento delle misurazioni densitometriche o dell'intensità di fluorescenza. Le analisi statistiche sono state effettuate da un terzo ricercatore, a conoscenza cieca sia dell'assegnazione ai gruppi che dei corrispondenti risultati sperimentali, fino a quando tutti i dati quantitativi non sono stati raccolti.
Test di Preferenza per il Saccarosio (SPT): Il test comportamentale è stato eseguito dopo l'ultima somministrazione del farmaco. Prima del test, i topi sono stati abituati a una soluzione di saccarosio all'1% fornendo loro due bottiglie contenenti soluzione di saccarosio all'1% per 12 h, seguite da una bottiglia contenente soluzione di saccarosio all'1% e una bottiglia contenente acqua potabile per ulteriori 12 h. Successivamente, i topi sono stati privati di cibo e acqua per 12 h prima del test formale. Durante il test, a ciascun topo è stata fornita una bottiglia contenente soluzione di saccarosio all'1% e una bottiglia contenente acqua potabile. Dopo 12 h, il volume consumato da ciascuna bottiglia è stato misurato. La preferenza per il saccarosio è stata calcolata come:

Test di sospensione per la coda (TST): La coda di ciascun topo veniva fissata alla sommità dell'apparato sperimentale utilizzando nastro adesivo. Il comportamento del topo veniva registrato per 6 minuti mediante software di registrazione e analisi video del comportamento. La durata dell'immobilità durante gli ultimi 4 minuti del test veniva quantificata.
Test del campo aperto (OFT): Ogni topo è stato posizionato singolarmente al centro dell'apparato del campo aperto. L'attività comportamentale è stata registrata e analizzata per 5 minuti mediante un software di tracciamento comportamentale, inclusi la distanza percorsa e l'attività motoria. Al termine di ogni test, l'apparato è stato pulito con etanolo al 75%.
Raccolta dei campioni:
I topi deceduti durante la procedura CUMS o che mostravano segni di malattia grave (ad esempio, perdita di peso corporeo >20%, infezione visibile o incapacità di muoversi) sono stati esclusi dallo studio. L'eutanasia è stata eseguita da personale certificato mediante somministrazione di overdose di pentobarbital sodico (150 mg/kg, per via intraperitoneale). Dopo la perdita di coscienza, è stata effettuata una dislocazione cervicale come metodo secondario per garantire la morte. Per le analisi con colorazione di Nissl e immunofluorescenza, sono stati selezionati casualmente tre topi da ciascun gruppo. I tessuti ippocampali destinati all'analisi mediante western blot sono stati dissecati immediatamente su ghiaccio e congelati rapidamente in azoto liquido.
Colorazione di Nissl:
Per le analisi di colorazione di Nissl e immunofluorescenza, i topi sono stati profondamente anestetizzati con pentobarbital sodico (150 mg/kg, per via intraperitoneale) e decapitati senza perfusione transcardiale. I cervelli sono stati rapidamente rimossi e fissati in paraformaldeide al 4% per 24–48 h prima dell'inclusione in paraffina. Le sezioni in paraffina sono state tagliate con uno spessore di 3 μm. Le sezioni in paraffina sono state deparaffinizzate mediante incubazione sequenziale in soluzione disincrostante, etanolo assoluto ed etanolo al 75%, prima del risciacquo con acqua corrente. Le sezioni congelate, quando applicabile, sono state portate a temperatura ambiente, fissate con fissativo per tessuti per 15 min e risciacquate con acqua corrente. Le sezioni di tessuto sono state colorate con soluzione di colorazione di Nissl per 2–5 min, risciacquate con acqua, differenziate con acido acetico glaciale allo 0,1%, lavate per interrompere la reazione, monitorate al microscopio per controllare la differenziazione, essiccate, chiarificate in xilene per 10 min e montate con mezzo di montaggio neutro.
Immunofluorescenza:
Le procedure di immunofluorescenza sono state eseguite utilizzando metodi standard. Il tessuto cerebrale è stato fissato in paraformaldeide al 4% e incluso in paraffina per la colorazione mediante immunofluorescenza. Le sezioni di tessuto sono state incubate tutta la notte a 4°C con anticorpi primari contro NeuN (1:200), MLKL (1:300), ATF4 (1:5000) e CREB (1:1000). Dopo l'incubazione con gli anticorpi primari, le sezioni sono state lavate quattro volte con PBS e incubate per 1 h al buio con i corrispondenti anticorpi secondari fluorofori: IgG caprina anti-topo coniugata a CY3 (1:300, Servicebio, GB21301) per l'anti-ATF4 di topo; IgG caprina anti-topo coniugata ad Alexa Fluor 488 (1:400, Servicebio, GB25301) per l'anti-MLKL di topo; IgG caprina anti-coniglio coniugata a CY3 (1:300, Servicebio, GB21303) per l'anti-NeuN di coniglio; e IgG caprina anti-coniglio coniugata ad Alexa Fluor 488 (1:400, Servicebio, GB25303) per l'anti-CREB di coniglio. Successivamente, le sezioni sono state colorate con DAPI per 10 min a temperatura ambiente, lavate con PBS, montate con un mezzo di montaggio antifade e le immagini di fluorescenza sono state acquisite mediante microscopia confocale.
Western Blot:
I tessuti cerebrali sono stati omogeneizzati in tampone di lisi RIPA (radioimmunoprecipitation assay). Le concentrazioni proteiche sono state determinate e 20 μg di proteina totale per corsia sono stati separati mediante elettroforesi su gel di poliacrilammide contenente dodecilsolfato di sodio al 10% (SDS-PAGE), quindi trasferiti su membrane di fluoruro di polivinilidene (PVDF). Dopo il blocco, le membrane sono state incubate tutta la notte a 4°C con anticorpi primari (1:1000), seguiti da incubazione con anticorpi secondari coniugati con perossidasi di rafano (HRP) per 1 h. Le bande proteiche sono state visualizzate mediante un sistema di imaging chemiluminescente e le intensità delle bande sono state quantificate utilizzando il software ImageJ. Per l’analisi del western blot dei tessuti ippocampali, sono stati analizzati due topi per gruppo e sono mostrati immunoblot rappresentativi. Per gli esperimenti sulle cellule HT-22, l’analisi del western blot è stata eseguita una volta come esperimento rappresentativo. Questi dati sono presentati come osservazioni qualitative delle tendenze piuttosto che come risultati quantificati statisticamente.
Analisi statistica:
Le differenze tra i gruppi sono state analizzate mediante analisi della varianza unidirezionale (ANOVA) seguita dal test di confronto multiplo di Tukey. I dati sono espressi come media ± deviazione standard (SD). Un valore di p < 0,05 è stato considerato statisticamente significativo.
Disponibilità dei dati:
I set di dati generati e analizzati durante questo studio sono inclusi in questo articolo pubblicato e nei materiali supplementari. I risultati dell'identificazione dei composti mediante UHPLC-HRMS sono forniti nella Tabella Supplementare 1, mentre le caratteristiche dei set di dati GEO utilizzati per le analisi bioinformatiche sono riassunte nella Tabella Supplementare 2. Ulteriori dati di supporto, inclusa l'immunofluorescenza per GFAP (Figura Supplementare 1), la colorazione immunofluorescente di p-RIPK3 e p-MLKL (Figura Supplementare 2), il disegno sperimentale e la tempistica di assegnazione degli animali (Figura Supplementare 3) e le immagini originali non ritagliate dei western blot (Figura Supplementare 4), sono disponibili nei materiali supplementari.