Caratteristiche immunitarie dei geni bersaglio dei farmaci legati all'anestesia perioperatoria nelle analisi trascrittomiche spaziali e a singola cellula
È stato utilizzato SCTransform per correggere la profondità di sequenziamento e implementare le procedure, identificando infine 11 diversi tipi cellulari. Per valutare l'importanza dei geni bersaglio dei farmaci anestetici perioperatori (PARDTGs) in ciascuna sottopopolazione cellulare, abbiamo utilizzato il pacchetto R AUCell per determinare le attività associate ai PARDTGs in ogni sottopopolazione cellulare (Figura 1A,B). Successivamente, abbiamo calcolato la correlazione tra abbondanza cellulare e attività associate ai PARDTGs in tutti i loci mediante il coefficiente di correlazione di Spearman. In particolare, le attività associate ai PARDTGs erano negativamente correlate con le cellule tumorali (Figura 1C). Abbiamo ottenuto dati di sequenziamento dell'RNA a singola cellula da 5 pazienti con carcinoma ovarico (OV), contenenti complessivamente 41.367 cellule. Sulla base dell'espressione dei geni marcatore, le cellule sono state suddivise in 11 principali cluster (Figura 1D). Le reti di interazione e le relative intensità per il tipo cellulare sono mostrate nella Figura 1E. Abbiamo valutato l'attività dei PARDTGs in tutte le singole cellule assegnando un punteggio all'espressione di 120 PARDTGs mediante ssGSEA in Seurat (Figura 1F). In modo particolarmente evidente, le cellule tumorali hanno mostrato un'attività notevolmente inferiore rispetto a tutti gli altri tipi cellulari (Figura 1G).
Identificazione e caratterizzazione molecolare di geni bersaglio dei farmaci anestetici perioperatori nel cancro ovarico
Dal database TCGA, abbiamo identificato 68 PARDTG espressi in modo differenziale, mostrati in Figura 2A (vedi anche Tabella Supplementare S3). La Figura 2B descrive l'espressione di questi 68 DEG associati all'anestesia perioperatoria nel gruppo TCGA-OV. Successivamente, abbiamo costruito una rete PPI per chiarire le relazioni complesse tra le proteine associate ai DEG. Abbiamo identificato cinque geni hub potenziali—SLC6A4, CHRNA4, DRD2, SLC6A3, e GRIN2A—che potrebbero avere effetti importanti nella patogenesi del cancro ovarico (Figura 2C). Inoltre, abbiamo analizzato il profilo di alterazione molecolare di 120 PARDTG nel cancro ovarico, con mutazioni nonsense come tipo di variante più comune (Figura 2D). I geni più frequentemente mutati erano SCN10A, DNMT1, GRIN2A, LTF, e SCN11A. Abbiamo esaminato la prevalenza di mutazioni nella variazione del numero di copie (CNV), e i risultati hanno mostrato che i primi 20 PARDTG con mutazioni presentavano alterazioni significative di CNV (Figura 2E). L'arricchimento GO e KEGG ha indicato che i PARDTG sono associati alla segnalazione di ligandi neuroattivi, vie di segnalazione del calcio, segnalazione ormonale, dipendenza da anfetamina, dipendenza da cocaina e interazioni tra ligandi neuroattivi e recettori (Figura 2F,G).
Costruzione e validazione di un modello prognostico basato su geni bersaglio di farmaci legati all'anestesia perioperatoria
Per ridurre al minimo la complessità del modello, è stato utilizzato StepAIC per ridurre il set genico, e alla fine sono stati selezionati 17 PARDTG per costruire il modello prognostico (Tabella S4 Supplementare). Il test globale dei residui di Schoenfeld non ha evidenziato deviazioni significative dall'assunzione di proporzionalità dei rischi (p = 0,265), confermando l'affidabilità del modello prognostico basato su 17 geni. Il punteggio di rischio è stato calcolato mediante la seguente equazione: punteggio di rischio = ADRA1D*(0,4452) + ADRB1*(-0,5347) + CHRNA4*(0,3495) + DBH*(-0,5765) + EPHA4*(0,2827) + EPHA7*(-0,5707) + EPHA8*(0,8765) + GABRB2*(0,5979) + GRIN2A*(-0,1750) + GRIN2D*(0,2746) + KCNA1*(2,2753) + KRT81*(0,1101) + OPRD1*(-3,2372) + SLC6A2*(1,4901) + SLC18A1*(4,2170) + SLC18A2*(-1,4600) + CHRNA1*(-0,1723). I pazienti sono stati successivamente suddivisi in categorie a basso e alto rischio in base ai loro punteggi di rischio, con il gruppo a basso rischio che ha mostrato un OS significativamente migliore rispetto al gruppo ad alto rischio nei cohort TCGA-OV (Figura 3A, p < 0,0001), GSE26193 (Figura 3B, p = 0,00021), GSE30161 (Figura 3C, p = 0,0017) e GSE63885 (Figura 3D, p = 0,0041). Inoltre, Figure 3E–H illustrano le distribuzioni dello stato di sopravvivenza e dei punteggi di rischio nei cohort TCGA-OV, GSE26193, GSE30161 e GSE63885, fornendo ulteriore evidenza dell'affidabilità predittiva e della stabilità del modello prognostico nel carcinoma ovarico (OV).
Creazione e valutazione di un modello prognostico basato su nomogramma
Sia le analisi di regressione di Cox univariata che multivariata hanno dimostrato che il punteggio di rischio fungeva da predittore indipendente della prognosi nei pazienti con cancro ovarico (Figura 4A,B). La distribuzione dell'espressione genica del modello, dei corrispondenti punteggi di rischio e delle caratteristiche clinicopatologiche nella coorte TCGA-OV è illustrata nella Figura 4C. Per migliorare l'applicabilità clinica, è stato sviluppato un nomogramma prognostico che integra il punteggio di rischio insieme all'età, allo stadio tumorale e al grado, al fine di stimare la sopravvivenza globale (OS) (Figura 4D). Rispetto alla sola firma genica, il nomogramma integrato ha ottenuto prestazioni predittive superiori. L'analisi della sopravvivenza ha ulteriormente mostrato una OS significativamente più lunga nel gruppo a basso rischio rispetto al gruppo ad alto rischio (Figura 4E; P < 0,0001). Il modello combinato ha prodotto valori di AUC dipendenti dal tempo pari a 0,769, 0,690 e 0,728 per la previsione della OS (Figura 4F). L'analisi della curva decisionale ha sostenuto l'utilità clinica potenziale del nomogramma, dimostrando un beneficio netto maggiore in un intervallo di probabilità soglia (Figura 4G). Inoltre, i grafici di calibrazione hanno indicato un accordo stretto tra le probabilità di sopravvivenza previste e quelle osservate, suggerendo una buona calibrazione del modello (Figura 4H). Nel complesso, questi risultati indicano che il nomogramma proposto possiede una forte capacità predittiva per la valutazione della prognosi dei pazienti con OV.
Associazione del modello prognostico basato su PARDTG con l'infiltrazione immunitaria e il microambiente immunitario tumorale
Per caratterizzare l'infiltrazione immunitaria, l'abbondanza delle cellule immunitarie è stata quantificata nei campioni. Sono stati identificati diciassette geni significativamente associati alle cellule immunitarie infiltranti il tumore, tra cui ADRA1D, KCNA1 e SLC18A2, che hanno mostrato correlazioni positive con i macrofagi M2 (Figura 5A). Successivamente, abbiamo analizzato i modelli di localizzazione cellulare di questi geni. L'analisi del dot plot ha rivelato che KRT81 era prevalentemente espresso nelle cellule CD8Tex e Tprolif, mentre l'espressione di EPHA4 era principalmente arricchita nelle cellule endoteliali e nei fibroblasti, suggerendo un loro potenziale coinvolgimento in compartimenti cellulari distinti all'interno del microambiente tumorale (Figura 5B). Inoltre, abbiamo valutato i punteggi TIDE dei pazienti, osservando che il sottogruppo ad alto rischio presentava punteggi TIDE più elevati e una correlazione positiva (Figura 5C). Inoltre, i punteggi di arricchimento della staminaleggiatura erano significativamente più alti nel gruppo ad alto rischio rispetto al gruppo a basso rischio (Figura 5D). L'analisi delle mutazioni somatiche ha rivelato una frequenza complessiva di mutazioni elevata in entrambi i gruppi a rischio (Figura 5E,F). Tra queste, le frequenze di mutazione di CSMD3 e MUC16 erano più elevate nei campioni ad alto rischio.
L'analisi GSEA ha rivelato che i percorsi legati al sistema immunitario, tra cui il processamento e la presentazione dell'antigene e il rigetto dell'allografto, erano significativamente arricchiti nel gruppo a basso rischio, mentre i percorsi associati all'invasione tumorale e alla motilità, come la regolazione dello scheletro di actina, i proteoglicani nel cancro e le proteine motrici, erano prevalentemente arricchiti nel gruppo ad alto rischio (Figura 5G,H). Questi risultati suggeriscono che i pazienti appartenenti al gruppo ad alto rischio potrebbero mostrare una risposta limitata all'immunoterapia.
Identificazione e analisi di rete dei PARDTGs prognostici nel cancro ovarico
Per chiarire il meccanismo, abbiamo identificato 490 miRNA e 17 potenziali reti regolatorie di biomarcatori (Figura 6A). Tra questi, hsa-miR-27a-3p, hsa-miR-34a-5p, hsa-miR-106b-5p e hsa-miR-20b-5p hanno la capacità di regolare la maggior parte dei geni. Alla fine, i risultati della nostra ricerca hanno identificato 37 fattori di trascrizione che regolano i geni candidati alla diagnosi (Figura 6B). Inoltre, è stato scoperto che FOXC1 possiede anche numerose funzioni regolatorie.
Analisi pan-cancro dell'espressione di KRT81
I dati di RNA-seq provenienti dal TCGA sono stati ottenuti per valutare KRT81 espressione. I risultati hanno suggerito che era altamente espressa nella maggior parte dei tumori, ma espressa a livelli bassi in GBM, LGG, SKCM, TGCT e THCA (Figura 7A). Per verificare il risultato che KRT81 è altamente espresso nel cancro ovarico, come determinato dall'analisi bioinformatica, abbiamo condotto un esperimento di western blot. I risultati hanno indicato che KRT81 l'espressione era significativamente aumentata nei tessuti tumorali rispetto ai tessuti normali ed era in larga misura coerente con i dati trascrittomici del TCGA (Figura 7B, Supplementare Figura S1, e Tabella Supplementare S5). Per illustrare le relazioni tra KRT81 e cancro, abbiamo esaminato l'espressione genica e l'infiltrazione di cellule immunitarie (Figura 7C). L'analisi ha rivelato che KRT81 l'espressione era positivamente correlata all'infiltrazione di cellule T, Treg e macrofagi M2 nella maggior parte dei tumori. Inoltre, l'espressione di KRT81 era positivamente associata ai punteggi stromali e immunitari nella maggior parte dei tumori (Figura 7D). Inoltre, abbiamo analizzato la correlazione tra KRT81 espressione e Punteggio di Aneuploidia, e il grafico a ragnatela ha mostrato che KRT81 era correlato con il Punteggio di Aneuploidia in UCEC, SARC, LUAD, LIHC e KIRP (Figura 7E). Abbiamo quindi analizzato la correlazione tra KRT81 e Ploidia del Tumore, e il grafico a ragnatela ha mostrato che KRT81 è stata correlata con la Ploidia del Tumore in THCA, TGCT, SARC, MESO, LIHC e CESC (Figura 7F). Successivamente, il grafico a raggio ha mostrato che KRT81 era correlato con neoantigeni SNV in UCEC, THYM, LUAD, LIHC, GBM e BRCA (Figura 7G). Inoltre, l'analisi online tramite cBioPortal ha rivelato che la massima frequenza di KRT81 la mutazione genica era in UCEC, di cui la maggior parte dei tipi era "mutazione" e "amplificazione" (Figura 7H, I). Mediante analisi di regressione univariata di Cox per i rischi proporzionali, abbiamo identificato che KRT81 è un predittore per la sopravvivenza globale (OS) in KIRC, LUAD e STAD (Figura 7J).
Disponibilità dei dati:
I set di dati disponibili pubblicamente analizzati in questo studio sono reperibili presso TCGA, UCSC Xena e GEO. Le immagini originali dei western blot e i corrispondenti dati quantitativi generati durante questo studio sono forniti nei Materiali Supplementari (Supplementary Figure S1 e Supplementary Table S5).

Figura 1. Caratteristiche associate a PARDTG nell'analisi spaziale e nella scRNA-seq. (A,B) Mappatura spaziale dell'intensità di espressione di PARDTG (C), correlazione di Spearman dell'attività associata a PARDTG. (D) Analisi dei tipi cellulari. (E) Analisi del numero e della forza delle interazioni tra i tipi cellulari. (F) Valore di arricchimento di PARDTG nelle cellule. (G) Distribuzione di PARDTG. Abbreviazioni: PARDTG = geni bersaglio dei farmaci legati all'anestesia perioperatoria; scRNA-seq = sequenziamento dell'RNA a singola cellula. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 2. Panorama delle alterazioni genetiche dei PARDTG nei pazienti con carcinoma ovarico (OV). (A) Rappresentazione a vulcano dei geni differenzialmente espressi (DEG) nel carcinoma ovarico (blu: DEG down-regolati; rosso: DEG up-regolati; grigio: geni stabili), FDR< 0,05 e |log2FC| > 1. (B) Mappa termica che illustra le caratteristiche differenzialmente espresse tra i gruppi OV e normali. Il blu rappresenta il gruppo normale, il rosso il gruppo OV; il quadrato blu indica bassa espressione, il quadrato giallo indica alta espressione. (C) Rete di interazione proteina-proteina (PPI) dei DEG correlati all'anestesia perioperatoria, ottenuta dal sito web String. (D) I primi 20 PARDTG nel coorte TCGA. (E) Frequenze di guadagno di CNV, perdita di CNV e non-CNV tra i primi 20 PARDTG. (F) Grafico a punti (dotplot) dei termini GO arricchiti. (G) Grafico a barre dei percorsi KEGG arricchiti. OV = carcinoma ovarico; GO = Gene Ontology; KEGG = Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes; PPI = interazione proteina-proteina. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 3. Costruzione e validazione di una firma prognostica basata su PARDTG per il cancro ovarico. (A-D). Sopravvivenza globale (OS) nei pazienti a basso e alto rischio in (A) TCGA-OV, (B) GSE26193, (C) GSE30161, (D) GSE63885. (E-H) Distribuzione del punteggio di rischio associato a PARDTG in base allo stato di sopravvivenza e al tempo in (E) TCGA-OV, (F) GSE26193, (G) GSE30161, (H) GSE63885. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 4. Costruzione e validazione di un nomogramma prognostico basato sulla firma di rischio derivata da PARDTG. (A,B) Caratteristiche clinicopatologiche e punteggi di rischio nel coorte TCGA-OV. (C) Distribuzione delle caratteristiche cliniche e l'espressione dei geni del modello in base al punteggio di rischio. (D) Un nomogramma per la previsione della prognosi nei pazienti con OV. (E) Analisi di Kaplan-Meier per due gruppi di pazienti con OV. (F) Analisi della curva ROC nel coorte TCGA-OV. (G) L'analisi della curva decisionale (DCA) mostra i benefici netti del nomogramma e di altre caratteristiche cliniche. (H) I grafici di calibrazione mostrano la sopravvivenza globale (OS) nel coorte TCGA-OV. Abbreviazioni: ROC = caratteristica operativa del ricevitore; DCA = analisi della curva decisionale. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 5. Analisi del microambiente tumorale in pazienti a basso e alto rischio. (A) Correlazione tra cellule immunitarie infiltranti il tumore e geni nel modello prognostico correlato al PA. (B) Grafico a bolle che mostra l'espressione media e la proporzione di biomarcatori prognostici tra diversi sottotipi cellulari. (C) Grafico a violino dei punteggi TIDE. (D) Grafico a violino dei punteggi di arricchimento della staminalità tumorale. (E,F) Grafico a cascata che illustra le caratteristiche delle mutazioni somatiche nei gruppi con punteggio a (E) basso rischio e (F) alto rischio. (G,H) Risultati della GSEA dei percorsi KEGG nel sottogruppo a (G) basso rischio e (H) alto rischio. Abbreviazioni: TIDE = Tumor Immune Dysfunction and Exclusion; GSEA = Gene Set Enrichment Analysis. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 6. Analisi della rete di interazione dei marcatori prognostici. (A) Rete coregolatoria tra miRNA e marcatori prognostici. (B) Rete coregolatoria tra fattori di trascrizione e marcatori prognostici. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 7. Livello di espressione, caratteristiche immunitarie e alterazioni genetiche di KRT81 nei tumori umani. (A) Espressione di KRT81 nei tumori TCGA e nei tessuti adiacenti. (B) Analisi mediante Western blot dell'espressione proteica di KRT81 in tessuti normali adiacenti e tumorali appaiati provenienti da sei pazienti con cancro ovarico (n = 6). Le intensità relative delle bande sono state normalizzate rispetto a GAPDH e i dati sono stati analizzati mediante test t appaiato. I dati sono presentati come media ± DS. (C) Correlazione tra KRT81 e il rapporto tra cellule immunitarie, mostrata tramite mappa termica. (D) Correlazione tra KRT81 e i punteggi immunitario, stromale ed ESTIMATE, mostrata tramite mappa termica. (E-G) Correlazione tra l'espressione di KRT81 e (E) Punteggio di aneuploidia, (F) Ploidia del tumore, (G) Neoantigeni SNV nei database TCGA. (H) Mutazioni di KRT81 in diversi tipi di cancro provenienti dal database cBioPortal. (I) Distribuzione dei siti di mutazione di KRT81 nel pan-cancro. (J) Analisi di regressione di Cox pan-cancro di KRT81 nei tumori TCGA. *p < 0,05; ***p < 0,001; ****p < 0,0001. Abbreviazioni: SNV = Variante nucleotidica singola; N = normale; T = tumore. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Tabella supplementare S1: Geni bersaglio dei farmaci legati all'anestesia perioperatoria. Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S2: Descrizione del flusso del campione.Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S3: Geni bersaglio di farmaci anestetici espressi in modo differenziale nel periodo perioperatorio. Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S4: Geni bersaglio di farmaci anestetici perioperatori con valore prognostico.Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S5: Dati originali del Western blot.Cliccare qui per scaricare il file.
Figura supplementare S1: Dati originali del western blotting.Clicca qui per scaricare questo file.