Lo studio è stato approvato dal Comitato Etico dell'Ospedale Affiliato dell'Università Medica di Xuzhou (numero di approvazione: XYFY2024-KL238-01) ed è stato esentato dall'obbligo di ottenere un consenso informato aggiuntivo dai pazienti. I reagenti e le attrezzature utilizzate sono elencati nella Tabella dei Materiali.
Pazienti e campioni
Questo studio è stato uno studio di coorte retrospettivo. Da novembre 2020 a dicembre 2023, un totale di 270 pazienti sottoposti a intervento di ACI presso l'Ospedale affiliato dell'Università Medica di Xuzhou sono stati reclutati consecutivamente. Il processo di selezione dei pazienti è riassunto nella Figura Supplementare 1. I pazienti idonei sono stati identificati mediante screening giornaliero di tutti i nuovi ricoveri nell'unità ictus. L'insorgenza dei sintomi entro 72 ore prima del ricovero è stata verificata esaminando le cartelle cliniche del servizio di emergenza e confermata da un neurologo certificato tramite anamnesi del paziente e colloquio con i familiari. La dimensione del campione è stata calcolata in base alla capacità di rilevare una differenza significativa nei livelli di miR-486-3p tra i gruppi. Assumendo una dimensione dell'effetto (effect size) di 0,5, un livello di significatività bilaterale (α) di 0,05 e una potenza statistica (1-β) dello 0,80, era richiesto un minimo di 64 pazienti per gruppo. Le dimensioni finali dei gruppi riflettono il reclutamento effettivo e la maggiore prevalenza di OSAS nella popolazione ictus, piuttosto che un'assegnazione predeterminata. I pazienti con ACI associato a OSAS sono stati sottoposti a follow-up prognostico per un periodo di 1 anno.
I criteri di inclusione erano: (1) Ictus ischemico acuto con insorgenza dei sintomi entro 72 ore prima del ricovero, confermato mediante risonanza magnetica. (2) Capacità di comprendere e completare i questionari dello studio e le valutazioni neurologiche. (3) La gravità dell'ictus è stata valutata mediante la scala del National Institutes of Health per l'ictus (NIHSS) al momento del ricovero. Quando il punteggio NIHSS è <5, viene classificato come ictus lieve; quando il punteggio NIHSS è compreso tra 5 e 20, viene considerato un ictus di gravità moderata. I principali criteri di esclusione includevano anamnesi di tumori maligni, grave disabilità fisica preesistente o disturbi psichiatrici, insufficienza cardiaca, polmonare o renale grave, interventi chirurgici maggiori o traumi nei 3 mesi precedenti, infezioni in atto o malattie autoimmuni; ictus precedente nei 6 mesi; terapia immunosoppressiva; e diagnosi o trattamento pregresso di OSAS (inclusa la terapia con pressione positiva continua delle vie aeree).
Per la conferma mediante risonanza magnetica, tutti i pazienti sono stati sottoposti a una risonanza magnetica cerebrale standard su sistema da 3,0 T, comprendente le seguenti sequenze: pesata in T1, pesata in T2, recupero dell'inversione con soppressione del liquido (FLAIR), imaging pesato in diffusione (DWI) e mappatura del coefficiente di diffusione apparente (ADC). Un'infarto acuto è stato definito dalla presenza di un segnale iperintenso in DWI con corrispondente segnale ipointenso in ADC. Tutte le risonanze magnetiche sono state interpretate da due neuroradiologi esperti, in cieco rispetto ai dati clinici, con le divergenze risolte per consenso. Il punteggio NIHSS è stato attribuito all'ammissione da neurologi certificati, prima di qualsiasi trattamento trombolitico o endovascolare.
Sangue venoso a digiuno è stato prelevato tra 24 e 48 ore dall'insorgenza dell'ictus, dopo un digiuno notturno di almeno 8 ore. I prelievi di sangue sono stati eseguiti tra le 6:00 e le 8:00 per ridurre al minimo le variazioni circadiane. Sono stati raccolti complessivamente 5 mL di sangue venoso periferico in provette sottovuoto rivestite con EDTA. Entro 2 ore dal prelievo, i campioni di sangue sono stati centrifugati a 1.500 × g per 15 minuti a 4 °C mediante una centrifuga refrigerata. Il sopranatante sierico è stato accuratamente frazionato in provette microcentrifuga da 1,5 mL prive di RNasi e immediatamente conservato a −80 °C fino all'estrazione dell'RNA. Sono stati rigorosamente evitati cicli ripetuti di congelamento-scongelamento; tutti i campioni sono stati sottoposti al massimo a un solo ciclo di congelamento-scongelamento prima dell'analisi.
Raggruppamento dei pazienti
I partecipanti sono stati raggruppati in base ai loro punteggi di AHI ottenuti dalla polisonnografia. Tutte le registrazioni sono state effettuate nel laboratorio del sonno dell'ospedale tra le 22:00 e le 6:00, per una durata minima di 7 h. I canali fisiologici monitorati includevano: elettroencefalografia (EEG; sei canali), elettrooculografia (EOG; due canali), elettromiografia (EMG; mento e tibiali anteriori bilaterali), elettrocardiografia (ECG; un derivazione singola), flusso aereo nasale (termistore e trasduttore di pressione), sforzo respiratorio toracico e addominale (plestimografia induttiva respiratoria) e pulsossimetria (SpO2). Il tecnico specializzato in studi del sonno ha calcolato l'AHI. La classificazione delle fasi del sonno e degli eventi respiratori è stata eseguita manualmente da un tecnico del sonno certificato secondo il manuale di scoring dell'American Academy of Sleep Medicine (AASM) del 2012, utilizzando il software Somnolyzer 24×7. Secondo i criteri diagnostici ampiamente accettati dell'American Academy of Sleep Medicine, un AHI di 5 o più eventi per ora rappresenta la soglia standard per la diagnosi di OSA. Pertanto, i partecipanti con un AHI < 5 sono stati classificati nel gruppo ACI (n = 100), mentre coloro con un AHI ≥ 5 sono stati classificati nel gruppo ACI combinato con OSAS (n = 170). Tra coloro con AHI ≥ 5 (gruppo ACI combinato con OSAS, n = 170), i pazienti sono stati ulteriormente stratificati in tre sottogruppi di gravità basati su criteri stabiliti: OSAS lieve (5 ≤ AHI < 15, n = 60), OSAS moderata (15 ≤ AHI < 30, n = 75) e OSAS grave (AHI ≥ 30, n = 35). Questa stratificazione ha permesso di valutare la relazione dose-dipendente tra carico ipossico, espressione di miR-486-3p e marcatori infiammatori. I pazienti con trattamento pregresso per OSAS (ad esempio CPAP) non sono stati inclusi nello studio per evitare interferenze con la misurazione basale dell'AHI.
Valutazione della prognosi
Il punto temporale a 1 anno permette la risoluzione degli effetti acuti e la manifestazione del carico ipossico cumulativo dell'OSAS, fornendo una finestra robusta per valutarne l'impatto prognostico. La prognosi clinica dei pazienti con ACI associato a OSAS è stata valutata mediante la scala di Rankin modificata (mRS) dopo l'esordio della malattia. Tutte le valutazioni mRS sono state effettuate da neurologi certificati, precedentemente sottoposti a un training standardizzato, utilizzando un modulo strutturato per l'intervista mRS. L'affidabilità tra valutatori è stata verificata con un coefficiente kappa >0,85. La valutazione al follow-up è stata condotta mediante una visita programmata in ambulatorio. Per i pazienti impossibilitati a presentarsi di persona, è stata effettuata un'intervista telefonica strutturata da un'infermiera di ricerca esperta, utilizzando un copione standardizzato. Tutti i valutatori erano a conoscenza cieca dei livelli di miR-486-3p e dello stato di OSAS dei pazienti. Per mantenere la coerenza tra le valutazioni ambulatoriali e telefoniche, entrambi i formati hanno utilizzato lo stesso questionario strutturato e tutti i valutatori hanno completato un'esercitazione di calibrazione prima dello studio. I pazienti con punteggi da 0 a 2 sono stati assegnati al gruppo con buona prognosi, mentre quelli con punteggi da 3 a 6 al gruppo con prognosi sfavorevole. Nessun paziente è andato perso al follow-up. SAQLI, ESS, TNF-α e HIF-1α sono stati valutati come variabili prognostiche, piuttosto che utilizzati per definire i gruppi prognostici. NIHSS, SAQLI ed ESS sono stati somministrati da personale di ricerca addestrato. SAQLI ed ESS sono stati somministrati come questionari compilati dall'intervistatore in una stanza tranquilla.
Indice di punteggio
NIHSS è una scala quantitativa per l'ictus11, in cui punteggi più elevati indicano una maggiore gravità dell'ACI. SAQLI è un questionario sulla qualità della vita in pazienti con OSA su una scala da 1 a 7, in cui punteggi più alti indicano una qualità della vita peggiore, che comprende attività quotidiane, interazioni sociali, stati emotivi, sintomi e sintomi correlati al trattamento12. ESS viene utilizzato per valutare la sonnolenza diurna auto-riferita dai pazienti, con un intervallo di punteggio compreso tra 0 e 24; un punteggio > 10 indica sonnolenza diurna13.
Estrazione dell'RNA e trascrizione inversa
L'RNA totale è stato estratto da 200 µL di siero utilizzando il reagente TRIzol. In breve, i campioni di siero sono stati mescolati con 800 µL di TRIzol, incubati a temperatura ambiente per 5 min e centrifugati a 12.000 × g per 15 min a 4 °C. Sono stati aggiunti 200 µL di cloroformio, la miscela è stata agitata vigorosamente per 15 s, incubata per 3 min e centrifugata nuovamente a 12.000 × g per 15 min a 4 °C. La fase acquosa è stata trasferita in una provetta nuova e l'RNA è stato precipitato con 500 µL di isopropanolo, incubato a −20 °C per 1 h e centrifugato a 12.000 × g per 10 min a 4 °C. Il pellet di RNA è stato lavato con etanolo al 75%, essiccato all'aria e risolubilizzato in 20 µL di acqua priva di RNasi. La concentrazione e la purezza dell'RNA sono state valutate mediante uno spettrofotometro a microvolume, accettando un rapporto A260/A280 compreso tra 1,8 e 2,0 per le analisi successive. L'integrità dell'RNA è stata verificata mediante elettroforesi su gel di agarosio.
La trascrizione inversa è stata eseguita utilizzando 500 ng di RNA totale con il Reverse Transcription Kit in un volume di reazione totale di 20 µL, usando primer esameri casuali secondo il protocollo del produttore. La reazione di trascrizione inversa è stata effettuata a 25 °C per 10 min, 42 °C per 60 min e 70 °C per 5 min. Il cDNA risultante è stato conservato a −20 °C fino all'uso.
RT-qPCR
L'espressione di miR-486-3p è stata rilevata utilizzando un kit per PCR in tempo reale basato sul SYBR Green per la quantificazione di microRNA su un sistema di PCR quantitativa in tempo reale (qPCR). La miscela di reazione conteneva 10 µL di Master Mix 2× SYBR Green, 2 µL di stampo cDNA (diluito 1:5), 1 µL di ciascun primer (10 µM) e acqua priva di nucleasi fino a un volume finale di 20 µL. Le sequenze dei primer sono le seguenti (da 5'-3'): miR-486-3p-forward: TCGGCAGCGGGGCAGCUCAGU, reverse: CTCAACTGGTGTCGTGGA; e U6-forward: CTCGCTTCGGCAGCACA, reverse: AACGCTTCACGAATTTGCGT. Le condizioni di amplificazione in qPCR erano: 95 °C per 2 min, seguiti da 40 cicli di 95 °C per 30 s, 60 °C per 30 s e 72 °C per 60 s. Ogni campione è stato analizzato in triplicato e in ogni corsa è stato incluso un controllo senza stampo. La specificità dell'amplificazione è stata confermata mediante analisi della curva di denaturazione da 60 °C a 95 °C. La soglia del ciclo (Ct) è stata determinata automaticamente dal software QuantStudio 6 Pro (v1.5) utilizzando l'impostazione della soglia predefinita. Il livello di miR-486-3p è stato calcolato con il metodo 2-ΔΔCT e normalizzato rispetto a U6. U6 è stato convalidato come gene di riferimento stabile nei nostri campioni di siero mediante l'algoritmo NormFinder per garantire coerenza tra i gruppi. I coefficienti di variazione inter-assay e intra-assay erano <5%.
ELISA
Le concentrazioni sieriche di proteina C reattiva (CRP), TNF-α e HIF-1α sono state determinate utilizzando un kit ELISA. Le procedure sperimentali sono state eseguite secondo le istruzioni del produttore. In breve, i campioni sierici sono stati scongelati sul ghiaccio e diluiti 1:2 con il tampone di diluizione fornito. I campioni e gli standard sono stati aggiunti a piastre pre-ricoperte a 96 pozzetti (100 µL/pozzetto) e incubati per 2 h a 37°C. Dopo aver lavato quattro volte con 300 µL di tampone di lavaggio, sono stati aggiunti 100 µL di anticorpo di rilevamento biotinilato e incubati per 1 h a 37°C. Dopo un ulteriore lavaggio, sono stati aggiunti 100 µL di streptavidina coniugata con perossidasi di rafano (HRP) e incubati per 30 min a 37°C al buio. È stato quindi aggiunto il substrato cromogeno (tetrametilbenzidina, 100 µL) e incubato per 15 min a 37°C al riparo dalla luce. La reazione è stata arrestata con 50 µL di soluzione di arresto e l'assorbanza è stata misurata a 450 nm utilizzando un lettore per micropiastre. Le concentrazioni sono state calcolate a partire dalle curve standard ottenute con concentrazioni note di proteine ricombinanti. Ogni campione è stato misurato in duplicato e il valore medio è stato utilizzato per l'analisi. In ogni piastra sono stati inclusi campioni di controllo qualità forniti dal produttore; i risultati sono stati accettati solo se i valori del controllo qualità rientravano nell'intervallo specificato dal produttore.
Controllo di qualità e riproducibilità
Tutti i saggi di laboratorio sono stati eseguiti in conformità con le linee guida MIQE (Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments) per la RT-qPCR e con gli standard di reporting appropriati per il saggio ELISA. I principali strumenti sono stati calibrati secondo le tempistiche indicate dai produttori. In ogni serie di prove di RT-qPCR e di ELISA sono stati inclusi campioni di controllo positivo e negativo al fine di monitorare la variabilità tra piastre. Tutti i dati sono stati registrati e gestiti utilizzando Microsoft Excel, e l'autore corrispondente fornirà i protocolli sperimentali dettagliati e i dati grezzi su richiesta ragionevole.
Analisi statistica
I dati sono stati analizzati utilizzando SPSS 23.0 e un software statistico e di grafica. La distribuzione normale è stata valutata mediante il test di Shapiro–Wilk. Le variabili continue sono riportate come media ± DS o mediana (IQR) e sono state confrontate con il test t o il test di Mann–Whitney U, a seconda delle circostanze. Le variabili categoriche sono state confrontate con il test χ2. Le correlazioni sono state esaminate mediante analisi di Pearson o di Spearman, in base alla distribuzione dei dati. Il valore predittivo è stato determinato utilizzando la curva ROC e verificato con una validazione incrociata a 5 ripiegamenti. Il valore soglia ottimale per miR-486-3p è stato determinato massimizzando l'indice di Youden. Sono state utilizzate analisi di correlazione di Pearson e di Spearman per valutare le correlazioni. Per l'analisi prognostica, i pazienti sono stati stratificati in base all'espressione mediana di miR‑486‑3p; le curve di Kaplan–Meier con il test del log-rank sono state utilizzate per confrontare gli esiti di sopravvivenza tra i gruppi. Le variabili con P < 0,1 nella regressione univariata di Cox sono state inserite nel modello multivariato di Cox. Un valore di P < 0,05 è stato considerato statisticamente significativo.