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Articolo di ricerca

Laser al Tulio, all'Erbbio e al Diodo per la Decontaminazione Intracanale: Attività Anti-Enterococcus faecalis e Sicurezza Termica in Esperimenti Ex Vivo

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11 settembre 2026

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In questo articolo

Sommario

Questo protocollo confronta i laser a diodo, al tulio e all'erbio per la disinfezione intracanale in un modello es vivo di canale radicolare con Enterococcus faecalis, valutando l'efficacia antibatterica e la temperatura sulla superficie esterna della radice al fine di identificare parametri di irradiazione sicuri ed efficaci.

Abstract

L'irrigazione assistita da laser si è affermata come un promettente approccio adiuvante per la disinfezione dei canali radicolari; tuttavia, le evidenze che confrontano direttamente diversi sistemi laser in condizioni sperimentali standardizzate rimangono limitate. Questo studio ex vivo ha confrontato l'efficacia antibatterica e la sicurezza termica di un laser a diodo a 808 nm, di un laser al tulio a 1940 nm e di un laser all'erbio a 2940 nm per la decontaminazione intracanalare contro Enterococcus faecalis. Campioni standardizzati di canali radicolari umani infetti sono stati trattati utilizzando parametri di irradiazione clinicamente rilevanti. L'efficacia antibatterica è stata valutata mediante analisi della riduzione delle unità formanti colonie (CFU) e delle curve di crescita batterica, mentre la sicurezza termica è stata valutata misurando le variazioni di temperatura sulla superficie esterna della radice durante l'irradiazione laser. Tutti e tre i sistemi laser hanno mostrato un'attività antibatterica maggiore rispetto ai controlli trattati con soluzione fisiologica. Il laser all'erbio ha ottenuto la percentuale media di inibizione più elevata (99,0%) a 30 mJ per 30 s, mantenendo l'aumento di temperatura sulla superficie esterna della radice al di sotto della soglia di sicurezza termica accettata di 10 °C. Il laser al tulio ha prodotto un'attività antibatterica comparabile, ma ha superato la soglia di sicurezza termica ai suoi parametri di irradiazione più elevati. Il laser a diodo ha mostrato un'efficacia antibatterica inferiore e aumenti di temperatura maggiori rispetto ai laser al tulio e all'erbio nelle condizioni testate. Entro i limiti di questo modello ex vivo, il laser all'erbio a 2940 nm ha dimostrato il rapporto più favorevole tra efficacia antibatterica e sicurezza termica, rappresentando un approccio adiuvante promettente per la disinfezione intracanalare.

Introduzione

La causa principale della pulpiti e della parodontite apicale è l'infezione batterica del sistema dei canali radicolari1. Secondo uno studio, Enterococcus faecalis è stato identificato come l'isolato batterico predominante nei pazienti con infezione cronica o ricorrente dopo un trattamento endodontico2,3. Questo batterio possiede numerosi fattori di virulenza, tra cui la formazione di biofilm; può penetrare nei tubuli dentinali fino a profondità di 800 µm e sopravvivere in condizioni di limitata disponibilità di nutrienti2,3. Queste proprietà contribuiscono alla sua resistenza ai comuni disinfettanti intracanalari utilizzati durante la terapia canalare, nonché ai meccanismi di difesa naturali dell'organismo. Pertanto, l'incapacità di eliminare completamente tutti i residui di E. faecalis dal sistema dei canali radicolari rappresenta una causa significativa di insuccesso del trattamento endodontico4.

L'attuale trattamento canalare combina il debridamento meccanico mediante strumentazione con un'irrigazione chimica che aiuta a eliminare i microrganismi dal sistema del canale radicolare5. Sebbene la strumentazione meccanica sia altamente efficace nel ridurre le popolazioni batteriche, molte aree all'interno della complessa anatomia del canale radicolare rimangono inaccessibili alla sola strumentazione5. Pertanto, gli irriganti chimici svolgono un ruolo importante nella disinfezione del sistema del canale radicolare. Studi hanno tuttavia dimostrato che anche gli agenti chimici più potenti non riescono a eliminare completamente i biofilm batterici6. Inoltre, alcuni agenti chimici utilizzati durante il trattamento endodontico possono compromettere l'integrità strutturale della dentina6,7. Per migliorare l'efficacia della disinfezione e ottenere una rimozione più completa dei biofilm batterici dal sistema del canale radicolare, sono stati esplorati diversi metodi di attivazione degli irriganti chimici. Tra questi, l'irrigazione attivata con laser si è rivelata una delle alternative più promettenti8. I laser a diodo, al tulio e all'erbio sono stati inoltre valutati per il loro potenziale nel produrre effetti fototermici e fotomeccanici in grado di alterare le pareti cellulari batteriche e i biofilm9.

L'interazione tra ciascuno di questi tipi di laser e i tessuti con cui entrano in contatto varia notevolmente in base alla lunghezza d'onda. I laser a diodo, che emettono tipicamente luce a lunghezze d'onda comprese tra 808 e 980 nm, vengono assorbiti dai cromofori nei tessuti biologici, provocando una reazione fototermica in cui le proteine vengono denaturate e i batteri uccisi10. I laser al tulio operano a 1940 nm e mostrano un elevato assorbimento da parte dell'acqua. Pertanto, si è dimostrato che i laser al tulio sono particolarmente adatti per ambienti umidi, inclusi i canali radicolari riempiti con soluzione irrigante11. A causa del loro elevato assorbimento dell'acqua, i laser al tulio possono riscaldare e vaporizzare rapidamente il liquido quando utilizzati in canali radicolari irrigati. La vaporizzazione genera onde d'urto che potrebbero contribuire a interrompere i biofilm batterici. I laser all'erbio, in particolare quelli che operano a 2940 nm, presentano il coefficiente di assorbimento per l'acqua più alto tra i laser odontoiatrici12. Nei canali irrigati, questa proprietà può generare una vaporizzazione esplosiva e onde d'urto che staccano meccanicamente e uccidono i batteri, limitando al contempo il trasferimento di calore alla dentina circostante13.

Sebbene l'interesse per la tecnologia laser nell'ambito dell'endodonzia continui a crescere, molto rimane ancora sconosciuto riguardo ai parametri clinici ottimali per diversi sistemi laser. I metodi attuali per l'uso clinico si basano tipicamente su esperienze empiriche o su linee guida raccomandate dai produttori, con un supporto limitato da evidenze scientifiche14. Inoltre, la maggior parte degli studi finora condotti ha valutato gli effetti antimicrobici dei laser; tuttavia, un aspetto importante della terapia laseristica ha ricevuto relativamente meno attenzione: il rischio di lesioni termiche ai tessuti parodontali. È generalmente accettato che un aumento della temperatura della superficie esterna della radice superiore a 10°C possa provocare danni permanenti al legamento parodontale e all'osso circostante15. Sembra non esistere alcun confronto diretto pubblicato tra diversi sistemi laser che valuti sistematicamente sia l'efficacia antimicrobica sia la sicurezza termica in condizioni sperimentali controllate.

Lo scopo principale di questo studio ex vivo era indagare e confrontare l'efficacia antimicrobica e la sicurezza termica di tre sistemi a laser — un laser a diodo a 808 nm, un laser al tulio a 1940 nm e un laser all'erbio a 2940 nm — per l'eliminazione del biofilm di E. faecalis dalle pareti dei canali radicolari. Per identificare combinazioni di parametri in grado di ottenere un'efficace eliminazione batterica mantenendo la sicurezza termica, lo studio ha valutato parametri di irradiazione clinicamente rilevanti. Si prevede che questi risultati aiuteranno i clinici a selezionare approcci sicuri ed efficaci assistiti da laser per la disinfezione endodontica.

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Protocollo

Lo studio è stato condotto in conformità con i requisiti etici dell'Ospedale Popolare di Shanghai Quarto, Scuola di Medicina, Università di Tongji, ed è stato approvato dal Comitato per la Revisione Istituzionale (Numero di approvazione: 2026013-001). I denti umani estratti utilizzati nello studio sono stati raccolti da pazienti sottoposti a estrazione dentale per motivi ortodontici o parodontali. A tutti i partecipanti è stato richiesto un consenso informato scritto prima della raccolta dei campioni. Per la realizzazione dello studio non è stata effettuata alcuna ulteriore procedura clinica. Lo studio è stato condotto nel rispetto dei requisiti istituzionali per l'utilizzo di denti umani estratti.

Preparazione del campione e criteri di selezione
Un totale di 141 denti permanenti monoradicolati (incisivi mandibolari e premolari) recentemente estratti è stato ricevuto dal Dipartimento di Stomatologia, affiliato all'Università Tongji presso lo Shanghai Fourth People’s Hospital. Tutti i denti erano stati rimossi per motivi ortodontici o parodontali. Il consenso informato è stato ottenuto da ciascun paziente. Sono stati inclusi nello studio i denti con radici di almeno dieci millimetri, misurate mediante sonda parodontale, denti integri senza lesioni cariose o fratture, formazione radicolare completa e curvatura radicolare inferiore ai dieci gradi secondo il metodo di Schneider. Sono stati esclusi i denti con canali multipli, calcificazione canalare, riassorbimento interno o trattamento endodontico pregresso. Dopo l'estrazione, tutti i residui visibili di tartaro e tessuto molle sono stati rimossi mediante un curetto parodontale. I denti sono quindi stati conservati in soluzione salina allo 0,9% a 4°C fino all'uso, per prevenire la disidratazione, e tutti gli esperimenti sono stati eseguiti entro tre mesi dall'estrazione. I campioni sono stati assegnati ai gruppi sperimentali secondo una sequenza predeterminata di allocazione alternata. In particolare, i campioni sono stati assegnati sequenzialmente a ciascun gruppo in maniera alternata finché non è stata raggiunta la dimensione campionaria richiesta per ogni gruppo. Non è stata effettuata alcuna formale calcolazione statistica a priori della potenza. La dimensione campionaria è stata scelta sulla base di precedenti studi ex vivo comparabili, del numero di combinazioni di parametri di irradiazione valutate e della disponibilità di denti estratti idonei.

Preparazione e sterilizzazione del canale radicolare
La corona di ogni dente è stata rimossa a livello della giunzione amelo-cementizia utilizzando una sega diamantata a bassa velocità con raffreddamento continuo ad acqua, al fine di ottenere un segmento radicolare standardizzato di 10 mm. La lunghezza lavorativa è stata determinata posizionando un file K di dimensione 10 a 1 mm dal forame apicale. I canali radicolari sono stati preparati utilizzando il sistema rotante in nichel-titanio ProTaper Universal seguendo le istruzioni del produttore, con la sequenza S1, S2, F1, F2 e F3, fino al raggiungimento della dimensione apicale F3. Durante l'atto strumentale, i canali sono stati irrorati con circa 2 mL di ipoclorito di sodio al 5,25% dopo l'utilizzo di ogni file rotante, per un volume totale di irrigazione di circa 10 mL per canale. Un'irrigazione finale è stata eseguita con 5 mL di EDTA al 17% per 1 minuto, seguita da 5 mL di soluzione salina sterile. Il forame apicale è stato sigillato con un composito fluido in resina per creare un sistema canalare chiuso. Le radici preparate sono state sterilizzate mediante autoclave a 121°C per 20 minuti, conservate in soluzione salina tamponata al fosfato sterile (PBS) a 4°C ed inoculate con batteri entro 24 ore dalla sterilizzazione.

Stirpe batterica e condizioni di coltura
E. faecalis ATCC 29212 è stato utilizzato per stabilire il modello di canale radicolare infetto. La stirpe è stata coltivata su agar brain heart infusion (BHI) a 37°C per 24 h in condizioni aerobiche. Una singola colonia è stata trasferita nel brodo BHI e incubata a 37°C per 18–24 h. La sospensione batterica è stata aggiustata a circa 1,5 × 108 UFC/mL, equivalente a uno standard McFarland 0,5, utilizzando un valore di densità ottica a 600 nm (OD600) compreso tra 0,08 e 0,10.

Stabilimento di E. faecalis Modello di canale radicolare infetto
Per creare un modello di biofilm in canale radicolare infetto, la superficie esterna di ogni radice sterilizzata è stata ricoperta con due strati di smalto trasparente per unghie al fine di prevenire la penetrazione batterica attraverso il cemento. La regione apicale è stata ricoperta dopo aver sigillato il forame apicale con un composito resinoso fluido, mentre l'orifizio del canale è stato lasciato scoperto per consentire l'inoculazione batterica. Utilizzando una micropipetta sterile, 10 µL del E. faecalis la sospensione è stata trasferita in ciascun canale radicolare singolarmente per riempire l'intera lunghezza del canale senza fuoriuscire. I campioni inoculati sono stati quindi posizionati singolarmente in piastre da coltura sterili a 24 pozzetti, aggiungendo 1,5 mL di brodo BHI in ogni pozzetto. I campioni sono stati coltivati a 37°C in condizioni aerobiche per 21 giorni. Il terreno di coltura è stato rimosso e sostituito con brodo BHI sterile fresco ogni 2 giorni per fornire nutrienti necessari alla crescita batterica continuata e per rimuovere i detriti cellulari accumulati. Nessuna ulteriore inoculazione con E. faecalis è stata effettuata durante il cambio del terreno. Al termine del periodo di incubazione, tutti i campioni vitali sono stati lavati una volta con PBS per rimuovere i batteri planctonici debolmente aderenti prima dei test sperimentali. Due campioni selezionati casualmente sono stati utilizzati per visualizzare la formazione di biofilm maturo e la penetrazione batterica nei tubuli dentinali mediante microscopia elettronica a scansione (SEM). I campioni sono stati fissati in glutaraldeide al 2,5% a 4°C per 24 h, lavati tre volte con PBS, disidratati mediante una serie crescente di etanolo (30%, 50%, 70%, 80%, 90% e 100%), con ogni passaggio della durata di 10 minuti, quindi divisi longitudinalmente, essiccati all'aria, montati su supporti di alluminio, rivestiti con oro mediante sputtering e analizzati al microscopio elettronico a scansione (SEM).

Gruppi sperimentali e protocolli di irradiazione laser
I 135 campioni di radice infetti sono stati suddivisi in tre gruppi sperimentali principali in base al sistema laser utilizzato: il Gruppo Laser a Diodo a 808 nm, il Gruppo Laser al Tulio a 1940 nm e il Gruppo Laser all'Erbio a 2940 nm. Ogni gruppo laser comprendeva 45 campioni, ulteriormente suddivisi in base ai parametri di irradiazione. Il laser a diodo è stato utilizzato con potenze medie di 1,0, 1,5 o 2,0 W, e ciascun livello di potenza è stato applicato per 10, 20 o 30 s, ottenendo nove sottogruppi con tre campioni per ciascun sottogruppo. Il laser al tulio è stato utilizzato con potenze medie di 1,5, 2,5 o 3,5 W, e ciascun livello di potenza è stato applicato per 10, 20 o 30 s, ottenendo anch'esso nove sottogruppi con tre campioni per ciascun sottogruppo. Il laser all'erbio è stato utilizzato in modalità impulso superbreve a una frequenza fissa di 15 Hz. Sono state applicate energie d'impulso di 10, 20 o 30 mJ per 10, 20 o 30 s, generando nove sottogruppi con tre campioni per ciascun sottogruppo. Sia il laser a diodo a 808 nm sia il laser al tulio a 1940 nm sono stati utilizzati in modalità continua.

In totale, sono stati inclusi sei campioni aggiuntivi, con tre campioni assegnati ciascuno ai gruppi di controllo negativo e positivo. Il gruppo di controllo negativo è stato trattato con soluzione salina sterile, mentre il gruppo di controllo positivo è stato trattato con ipoclorito di sodio al 5,25% (NaOCl) per 30 s.

Per i gruppi trattati con laser, è stato seguito un protocollo di irradiazione standardizzato. La fibra ottica è stata inserita nel canale radicolare fino alla lunghezza di lavoro ed è stata spostata con un movimento lento e continuo a spirale dalla direzione apicale a quella coronale per tutta la durata dell'irradiazione. Sono state utilizzate fibre o punte specifiche per ciascun laser, anziché una singola fibra intercambiabile. Il laser a diodo a 808 nm è stato applicato tramite una fibra terminale da 200 µm, il laser al tulio a 1940 nm tramite una fibra terminale da 200 µm e il laser all'erbio a 2940 nm tramite una punta radiale da 400 µm. La fibra o la punta di consegna è stata ritirata a una velocità approssimativa di 1 mm/s. Dopo aver raggiunto l'orifizio del canale, è stata riportata alla lunghezza di lavoro e il movimento a spirale da apicale a coronale è stato ripetuto fino al completamento della durata di irradiazione assegnata.

Per i laser al tulio e all'iterbio, i canali sono stati mantenuti riempiti con soluzione salina sterile durante l'irradiazione, al fine di simulare un'attivazione laser assistita dall'acqua. Circa 10 µL di soluzione salina sterile sono stati introdotti in ciascun canale per riempirlo fino al livello dell'orifizio canicolare prima dell'irradiazione. La soluzione salina è stata reintegrata prima di ogni ciclo di irradiazione, se necessario, per mantenere il canale pieno di liquido per tutta la durata del trattamento. Per il gruppo trattato con il laser a diodo, i canali sono stati asciugati con puntine di carta sterile prima dell'irradiazione, poiché il laser a diodo a 808 nm ha un'assorbimento relativamente basso nell'acqua ed è stato utilizzato per produrre un effetto fototermico antibatterico diretto all'interno del canale. Al contrario, i laser al tulio a 1940 nm e all'iterbio a 2940 nm presentano un assorbimento nell'acqua notevolmente maggiore e sono stati pertanto applicati in canali riempiti di soluzione salina per facilitare effetti fototermici e fotomeccanici mediati dall'acqua. Il trattamento laser è stato ripetuto una volta al giorno per tre giorni consecutivi.

Misurazione della Temperatura della Superficie Radicolare Esterna
Le variazioni di temperatura in tempo reale sulla superficie radicolare esterna sono state misurate durante il primo giorno di irradiazione laser. Ogni campione radicolare è stato fissato verticalmente su un treppiede a temperatura ambiente (22°C ± 1°C). Una termocoppia di tipo K collegata a un termometro digitale è stata posizionata a stretto contatto con il terzo medio della superficie radicolare esterna, perpendicolarmente all’asse longitudinale della radice. La sonda della termocoppia è stata posizionata mediante una pinza regolabile ed è stata fissata alla superficie radicolare con nastro adesivo resistente al calore per mantenere un contatto costante e stabile durante tutta la misurazione. La sonda della termocoppia è stata tarata prima di ogni sessione di misurazione utilizzando acqua bollente (100°C) e una miscela di ghiaccio e acqua (0°C). Le letture della temperatura sono state registrate a intervalli di 50 ms per tutta la durata dell’irradiazione (10, 20 o 30 s). Per ogni campione sono state misurate sia la temperatura di base sia la temperatura massima registrata durante o immediatamente dopo l’irradiazione laser. L’aumento di temperatura dalla temperatura di base alla temperatura di picco è stato calcolato come ΔT. Un valore di ΔT superiore a 10°C è stato considerato la soglia per possibili danni ai tessuti parodontali.

Valutazione microbiologica: conteggio delle colonie e tasso di inibizione
Per determinare l'effetto antibatterico dei trattamenti laser, sono stati prelevati campioni dopo ciascun trattamento laser. Il canale è stato asciugato con puntine di carta sterili. Per ogni campione è stato utilizzato un nuovo file sterile Hedström di dimensione 40 per ottenere scaglie di dentina dalle pareti del canale, prevenendo così la contaminazione incrociata tra i campioni. Ogni scaglia di dentina è stata trasferita in una provetta microcentrifuga separata contenente 1 mL di PBS sterile. Le provette sono state sottoposte a vortex energeticamente per 30 s per liberare i batteri dalle scaglie di dentina. Sono state preparate diluizioni seriali decrescenti da 10−1 a 10−6 trasferendo 100 µL della sospensione batterica in 900 µL di PBS sterile a ogni passaggio di diluizione. Aliquote (30 µL) di ciascuna diluizione sono state distribuite su piastre separate di agar brain heart infusion, che sono state incubate a 37°C per 24 h. Le colonie sono state contate e registrate come unità formanti colonie (CFU). Ogni diluizione è stata seminata in triplice replicazione e il valore medio del conteggio delle colonie ottenuto dalle tre piastre è stato utilizzato per l'analisi. Le piastre sono state codificate prima del conteggio e l'investigatore che ha effettuato il conteggio delle colonie era in cieco rispetto all'assegnazione dei trattamenti.

Formula del tasso di inibizione: (C-T)/C×100, concetto matematico, calcolo scientifico.

In questo caso, C è il conteggio medio di UFC del gruppo di controllo negativo (soluzione fisiologica) e T è il conteggio medio di UFC del gruppo sperimentale.

Analisi della curva di crescita batterica
L'effetto di vari trattamenti laser sulla cinetica della crescita batterica è stato studiato tracciando curve di crescita. Al terzo giorno dopo l'ultimo trattamento laser, i canali sono stati lavati con 5 mL di soluzione salina sterile. Il contenuto dei canali è stato raccolto mediante puntine di carta sterili, che sono state successivamente trasferite in una provetta da centrifuga contenente 5 mL di brodo BHI. La provetta è stata vortexata per sospendere i batteri nel brodo. La sospensione batterica è stata aggiustata a 1 × 106 CFU/mL. La concentrazione batterica è stata aggiustata in base all'OD600 misurazioni utilizzando una curva di calibrazione precedentemente stabilita per E. faecalis ATCC 29212 e successivamente verificata mediante conteggio delle colonie vitali. Un'aliquote di 200 µL di sospensione è stato aggiunto a ogni pozzetto di una micropiattaforma sterile da 96 pozzetti. Inoltre, 20 µL è stato aggiunto olio minerale sterile in ogni pozzetto per ridurre al minimo l'evaporazione. La micropiattaforma è stata posta in un spettrofotometro/incubatrice mantenuto a 37°Ce OD600 è stata misurata ogni ora per 24 h. Prima di ogni lettura dell'OD600, la piastra micropiastre è stata sottoposta a agitazione orbitale a circa 300 giri/min per 10 s per garantire una sospensione batterica omogenea. Ogni campione è stato analizzato in cinque pozzetti replicati.

Analisi statistica
Tutti i dati numerici sono riportati come media ± deviazione standard (SD). Le analisi statistiche sono state eseguite utilizzando SPSS Versione 26.0. La distribuzione dei dati è stata valutata mediante il test di Shapiro–Wilk. L'analisi della varianza (ANOVA) è stata utilizzata per confrontare più di due gruppi, seguita dal test di Tukey per la differenza significativa onesta (HSD) per i confronti a coppie. I confronti tra due gruppi sono stati effettuati utilizzando un test t per campioni indipendenti. L'omogeneità della varianza è stata verificata mediante il test di Levene prima dell'applicazione dei test parametrici. Quando l'assunzione di omogeneità della varianza non era rispettata, è stata applicata la correzione di Welch, ove appropriato. L'importanza statistica è stata definita come P < 0,05. I grafici sono stati realizzati utilizzando GraphPad Prism Versione 9.0.

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Risultati

Attività antibatterica di diversi trattamenti laser contro E. faecalis
L'efficacia antibatterica dei tre sistemi laser contro E. faecalis è stata valutata determinando il numero di UFC dopo tre trattamenti consecutivi. I risultati sono mostrati in Figura 1 e Figura supplementare 1. Il gruppo di controllo negativo con soluzione salina sterile ha mostrato una crescita batterica consistente, con un valore medio di intensità grigia delle co...

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Discussione

Lo studio ex vivo attuale ha confrontato l'efficacia antibatterica e la sicurezza termica dei laser a diodo a 808 nm, allo thulio a 1940 nm e all'erbio a 2940 nm per l'eliminazione di E. faecalis biofilm provenienti da canali radicolari infetti. Tutti e tre i sistemi laser hanno dimostrato un'inibizione batterica maggiore rispetto al NaOCl al 5,25%; tuttavia, la loro efficacia antibatterica e i profili termici differivano sostanzialmente. Il laser all'erbio a 2940 nm ha ottenuto il bilancio complessivo più favor...

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Dichiarazioni

Conflitto di interessi:

Gli autori dichiarano di non avere interessi contrastanti relativi a questo studio. Non esistono conflitti di interessi di natura finanziaria o non finanziaria, inclusi impiego, consulenze, possesso di azioni, compensi o testimonianze esperte retribuite.

Ringraziamenti

Questo studio è stato sostenuto dal programma di ricerca medica della Commissione Sanitaria del Distretto di Hongkou.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Soluzione salina 0,9%BeyotimeST341-500mlConservazione, irrigazione e controllo negativo dei denti
Provette microcentrifuga da 1,5 mLAxygenMCT-150-CRaccolta del campione e diluizione seriale
Piastra colturale a 24 pozzettiCorning3524Incubazione del biofilm
Piastra microtitolazione a 96 pozzettiCorning3599Saggio della curva di crescita batterica
AutoclaveTuttnauer2540ESterilizzazione delle radici preparate
Agar Brain heart infusion (BHI)BD Biosciences211065Coltura batterica e conteggio delle UFC
Brodo Brain heart infusion (BHI)BD Biosciences237500Coltura batterica e analisi della curva di crescita
Smalto trasparente per unghieBeyotimeC0187Sigillatura della superficie esterna della radice
Sega diamantata (bassa velocità)BuehlerIsoMet Low Speed SawSezionamento della corona
Termometro digitale (compatibile con termocoppia di tipo K)OMEGA EngineeringHH802UMisurazione della temperatura della superficie esterna della radice
Enterococcus faecalis ATCC 29212American Type Culture Collection (ATCC)ATCC 29212Stirpe batterica
Acido etilendiamminotetracetico (EDTA), 17%Sigma-AldrichE9884Risciacquo finale del canale
Composito resinoso fluido3M ESPE6031A2Sigillatura del forame apicale
GraphPad PrismGraphPad SoftwareVersion 9.0 • RRID: SCR_002798Generazione di grafici
File Hedström, misura 40Dentsply Maillefer80603010042Raccolta di frammenti di dentina
File K, misura 10Dentsply Maillefer800-0210Determinazione della lunghezza di lavoro
Sistema laser a fibra drogata al tulio, 1940 nmMenovex Medical Technology (Shenzhen) Co., Ltd. (Arpadent)TN20Irradiazione laser
Sistema laser Er:YAG, 2940 nmPointNix Co., Ltd.Modular-beamIrradiazione laser
Sistema laser a diodo, 808 nmelexxion AGClaros NanoIrradiazione laser
MicropipettaEppendorf3123000063Inoculazione del campione
Olio minerale (sterile)Sigma-AldrichM5904Prevenzione dell'evaporazione durante il saggio della curva di crescita batterica
Sistema di file rotanti al nichel-titanio (preparazione F3)Dentsply SironaProTaper GoldPreparazione del canale radicolare
Fibra ottica per laser a fibra drogata al tulio, 1940 nmMenovex Medical Technology (Shenzhen) Co., Ltd. (Arpadent)diametro 400 µmIrradiazione laser
Fibra ottica per laser Er:YAG, 2940 nmPointNix Co., Ltd.diametro 600 µmIrradiazione laser
Fibra ottica per laser a diodo, 808 nmelexxion AGelexxion longlife 200, 200 µm (Art. No. 10063)Irradiazione laser
Proiettore parodontaleHu-FriedyPCPUNC156Misurazione della lunghezza della radice
Scaler parodontaleHu-FriedySJ34-35Rimozione del tartaro e dei tessuti molli
Soluzione salina tamponata al fosfato (PBS)Gibco / Thermo Fisher Scientific10010023Lavaggio e diluizione batterica
Punte per pipetta (10 µL, 200 µL, 1000 µL)AxygenT-300 / T-200-Y / T-1000-BManeggiamento dei liquidi
Stativo per provetteBiosharpBS-IT-01Fissazione del campione radicolare
Microscopio elettronico a scansione (SEM)Hitachi High-TechnologiesTM4000PlusAcquisizione di immagini del biofilm
Incubatore agitatoreThermo Fisher ScientificMaxQ 4000Incubazione delle colture in brodo
Ipooclorito di sodio (NaOCl), 5,25%Sigma-Aldrich425044Irrigazione del canale e controllo positivo
Spettrofotometro/incubatore (lettore di micropiastre)BioTek / Agilent TechnologiesEpoch 2Misurazioni della densità ottica a 600 nm (OD600)
SPSSIBMVersion 26.0 • RRID: SCR_002865Analisi statistica
Punte di carta steriliDentsply MailleferAbsorbent Paper Points, ISO 20, conicità 0,02, 28 mmAsciugatura del canale e campionamento batterico
Termocoppia (tipo K)OMEGA Engineering88000Misurazione della temperatura
Mixer a vorticeScientific IndustriesVortex-Genie 2Mescolamento delle sospensioni batteriche

Riferimenti

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