Preelaborazione dei dati transcriptomici pubblici e identificazione dei geni differenzialmente espressi
L'integrazione e la correzione con ComBat dei dataset GSE22356, GSE33463 e GSE48149 hanno ridotto le differenze sistematiche tra i set di dati. I boxplot hanno mostrato che le distribuzioni dell'espressione campionaria sono diventate più coerenti dopo la correzione. L'analisi delle componenti principali ha indicato che i campioni si raggruppavano principalmente in base alla fonte del dataset prima della correzione, ma sono risultati più mescolati dopo la correzione, indicando una efficace riduzione degli effetti di batch (Figura 1).
Utilizzando soglie di un valore assoluto del log2 di fold change >0,585 e un valore di P corretto < 0,05, sono stati identificati 78 geni espressi in modo differenziale, compresi 44 geni sovaregolati e 34 geni sottoregolati (Figura 2A). La mappa termica ha mostrato che i geni associati all'interferone, tra cui XAF1, MX1, IFI44L, EPSTI1, PARP9, IFIH1, CXCL10, GBP1, STAT1, SAMHD1, TNFSF10 e TLR7, erano generalmente sovaregolati nei campioni correlati alla PH. Al contrario, i geni associati all'eritroide, tra cui HBG1, HBD, ALAS2, CA1 e SLC4A1, tendevano a essere sottoregolati (Figura 2B).

Figura 1: Correzione dell'effetto batch. (A) Boxplot della matrice di espressione unita prima e dopo la correzione con ComBat. (B) Grafici dell'analisi delle componenti principali che mostrano la distribuzione dei campioni prima e dopo la correzione dell'effetto batch. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 2: Geni espressi in modo differenziale. (A) Grafico a vulcano che mostra i geni upregolati e downregolati nei campioni associati alla PH. (B) Mappa termica che mostra i geni espressi in modo differenziale tra i gruppi di controllo e quelli malati. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Costruzione della rete di co-espressione genica pesata e arricchimento funzionale
Il clustering del campione ha mostrato un raggruppamento complessivo stabile, senza outlier evidenti (Figura 3A). L'indice di adattamento alla topologia priva di scala si è avvicinato a 0,8 con un esponente pari a 9, e pertanto è stato scelto β = 9 per la costruzione della rete (Figura 3B). Il clustering genico e l'identificazione dinamica dei moduli hanno prodotto diversi moduli di co-espressione (Figura 3C). Il modulo blu ha mostrato la correlazione più forte con lo stato di ipertensione polmonare (r = 0,55, P = 1 × 10−19), mentre anche i moduli turchese e grigio hanno mostrato correlazioni con l'ipertensione polmonare (Figura 3D).
I geni di consenso ottenuti intersecando i geni chiave del modulo dell'analisi della rete di co-espressione genica pesata con i geni differenzialmente espressi sono risultati arricchiti in difesa immunitaria antivirale, regolazione di NF-κB e JAK-STAT, risposte ai fattori infiammatori, legame ai recettori di citochine e chemochine, e regolazione trascrizionale (Figura 4A). L'analisi di arricchimento del Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes ha identificato l'interazione citochina-recettore di citochina, il segnale delle chemochine, il segnale dei recettori di tipo NOD, il segnale dei recettori di tipo Toll, il segnale del fattore di necrosi tumorale e il segnale dell'interleuchina-17 (Figura 4B), sostenendo un'alterazione immuno-infiammatoria come base molecolare del rimodellamento vascolare polmonare.

Figura 3: Analisi della rete di co-espressione genica pesata. (A) Albero di raggruppamento dei campioni e mappa termica dei tratti. (B) Grafico della selezione della soglia morbida. (C) Dendrogramma genico e colori dei moduli. (D) Mappa termica delle relazioni tra moduli e tratti. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 4: Analisi funzionale di arricchimento. (A) Risultati dell'arricchimento dell'ontologia genica per i geni consenso. (B) Risultati dell'arricchimento del percorso dell'Enciclopedia di Kyoto dei Geni e dei Genomi per i geni consenso. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Rete di interazione proteina-proteina e screening dei geni hub
La rete di interazioni proteina-proteina STRING costruita a partire dai geni in comune ha rivelato una rete immunitaria-infiammatoria interconnessa (Figura 5A). Il ranking basato sul grado effettuato con CytoHubba ha mostrato che FN1, CD44, JUN, TGFB1, CXCL8 e BCL2 presentavano un'elevata connettività (Figura 5B). Questi geni centrali potrebbero partecipare alla segnalazione infiammatoria, all'adesione cellulare, al rimodellamento della matrice extracellulare e al rimodellamento strutturale del vaso polmonare.

Figura 5: Rete di interazione proteina-proteina e geni hub. (A) Rete di interazione proteina-proteina di STRING relativa ai geni in consenso. (B) Geni hub identificati mediante CytoHubba, ordinati per grado di connettività. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Selezione delle caratteristiche basata sull'apprendimento automatico e prestazioni diagnostiche
La regressione con operatore di riduzione e selezione della minima deviazione assoluta ha identificato sei geni candidati con coefficienti diversi da zero dopo la validazione incrociata (Figura 6A, B). La macchina a vettori di supporto con eliminazione ricorsiva delle caratteristiche ha mantenuto otto geni, ottenendo un'accuratezza nella validazione incrociata di 0,883 e un errore di 0,117 (Figura 7A). L'errore "out-of-bag" della foresta casuale si è stabilizzato quando il numero di alberi era ≥100, e IFIH1, JUN e TLR7 si sono posizionati tra i geni più importanti in base al punteggio di rilevanza (Figura 7B).
L'intersezione tra i risultati ottenuti con l'operatore di shrinkage e selezione con norma L1 (least absolute shrinkage and selection operator), la macchina a vettori di supporto con eliminazione ricorsiva delle caratteristiche (support vector machine-recursive feature elimination) e la foresta casuale ha identificato cinque geni fondamentali: CXCL10, JUN, IFIH1, MX1 e TLR7 (Figura 8A). L'analisi della curva operativa del ricevitore per singolo gene ha mostrato una discriminazione diagnostica da moderata a buona, con valori dell'area sotto la curva (AUC) pari a 0,842 per IFIH1, 0,833 per JUN, 0,827 per TLR7, 0,814 per CXCL10 e 0,759 per MX1 (Figura 8B).

Figura 6: Analisi di regressione con operatore di riduzione e selezione a minimo valore assoluto. (A) Percorso dei coefficienti generato dalla regressione con operatore di riduzione e selezione a minimo valore assoluto. (B) Grafico dell'errore di validazione incrociata. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 7: Analisi con macchina a vettori di supporto - eliminazione ricorsiva delle caratteristiche e foresta casuale. (A) Grafico di selezione delle caratteristiche mediante eliminazione ricorsiva delle caratteristiche con macchina a vettori di supporto. (B) Modello di foresta casuale e classificazione dei geni per importanza. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 8: Sintesi dell'apprendimento automatico. (A) Diagramma di Venn che mostra l'intersezione dei tre algoritmi di selezione delle caratteristiche. (B) Curve caratteristiche operative del ricevitore per i cinque geni fondamentali. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Validazione esterna in GSE117261
GSE117261 è stato utilizzato come coorte indipendente di validazione su tessuto polmonare ed è stato escluso dalla selezione differenziale dell'espressione, dalla costruzione della rete di co-espressione genica pesata e dalla selezione delle caratteristiche mediante apprendimento automatico (Tabella 3). I risultati completati della validazione hanno mostrato una replicazione eterogenea tra i cinque geni (Tabella 4). CXCL10 era aumentato (variazione del log₂ = 0,677; P = 0,0410; FDR = 0,144) e ha prodotto un AUC di 0,639 (IC 95%, 0,491–0,786), con una soglia di 6,245, una sensibilità di 0,724 e una specificità di 0,600. JUN era aumentato (variazione del log₂ = 0,463; P = 0,00248; FDR = 0,0194) e ha prodotto un AUC di 0,714 (IC 95%, 0,593–0,835), con una soglia di 8,708, una sensibilità di 0,707 e una specificità di 0,720.
IFIH1 (variazione del log2 = 0,107; P = 0,371; FDR = 0,591; AUC = 0,543, IC 95%, 0,398–0,687), MX1 (variazione del log2 = 0,109; P = 0,488; FDR = 0,690; AUC = 0,475, IC 95%, 0,337–0,614) e TLR7 (variazione del log2 = -0,050; P = 0,543; FDR = 0,733; AUC = 0,546, IC 95%, 0,414–0,679) non hanno soddisfatto i criteri prespecificati di supporto esterno. TLR7 ha mostrato anche una direzione opposta rispetto al risultato ottenuto con qRT-PCR. Il modello esplorativo basato su cinque geni, adattato e valutato all'interno di GSE117261, ha prodotto un AUC apparente di 0,740, mentre la validazione incrociata nidificata ripetuta ha fornito un AUC di 0,656. Pertanto, JUN ha ricevuto il supporto indipendente più forte, CXCL10 ha mostrato evidenze limitate ma coerenti nella direzione, mentre la replicazione di IFIH1, MX1 e TLR7 è risultata debole o discordante.
| Elemento | Descrizione |
| Accesso al dataset | GSE117261 |
| Fonte dei dati | Gene Expression Omnibus (GEO) |
| Tipo di campione | Dati microarray trascrittomici da tessuto polmonare umano |
| Dimensione del campione | 58 campioni di ipertensione arteriosa polmonare (PAH) e 25 campioni di controllo da donatori deceduti |
| Piattaforma | GPL6244 / Affymetrix Human Gene 1.0 ST Array |
| Obiettivo della validazione | Differenze di espressione, analisi ROC per singolo gene e modellizzazione ROC esplorativa combinata per cinque geni: CXCL10, JUN, IFIH1, MX1 e TLR7 |
| Ruolo nello studio | Dataset di validazione esterna indipendente; non incluso nelle analisi originali di training, WGCNA o selezione delle caratteristiche |
Tabella 3: Informazioni di base per il dataset esterno di validazione indipendente GSE117261. La tabella riassume la fonte del dataset, il tipo di campione, la dimensione del campione, la piattaforma, gli obiettivi di validazione e il ruolo di GSE117261 nello studio.
| Gene/modello | PAH n | Controllo n | log2 fold change | Valore P | FDR | AUC | IC 95% AUC | Limite di Youden | Sensibilità | Specificità |
| CXCL10 | 58 | 25 | 0.677 | 0.041 | 0.144 | 0.639 | 0.491–0.786 | 6.245 | 0.724 | 0.6 |
| JUN | 58 | 25 | 0.463 | 0.00248 | 0.019 | 0.714 | 0.593–0.835 | 8.708 | 0.707 | 0.72 |
| IFIH1 | 58 | 25 | 0.107 | 0.371 | 0.591 | 0.543 | 0.398–0.687 | 5.3 | 0.759 | 0.44 |
| MX1 | 58 | 25 | 0.109 | 0.488 | 0.69 | 0.475 | 0.337–0.614 | 6.833 | 0.724 | 0.4 |
| TLR7 | 58 | 25 | -0.05 | 0.543 | 0.733 | 0.546 | 0.414–0.679 | 4.065 | 0.138 | 1 |
| Modello a cinque geni (apparente/in-sample) | 58 | 25 | / | / | / | 0.74 | 0.621–0.859 | 0.613 | 0.845 | 0.6 |
| Modello a cinque geni (CV nidificato ripetuto) | 58 | 25 | / | / | / | 0.656 | 0.517–0.795 | 0.655 | 0.845 | 0.52 |
Tabella 4: Risultati effettivi delle differenze di espressione e della validazione ROC per GSE117261. La tabella riporta le dimensioni campionarie di PAH e controllo, i cambiamenti del log₂ fold, valori di P, valori aggiustati per il tasso di falsa scoperta, AUC, intervalli di confidenza al 95%, cutoff dell'indice di Youden, sensibilità, specificità e interpretazioni per i cinque geni e i modelli combinati esplorativi.
Validazione mediante PCR quantitativa a trascrizione inversa
La validazione mediante PCR quantitativa con trascrizione inversa ha incluso 20 campioni biologicamente indipendenti di tessuto polmonare da pazienti con ipertensione arteriosa polmonare (PAH) e 20 campioni di controllo biologicamente indipendenti, con tre replicati tecnici mediati per ciascun campione biologico. CXCL10, JUN, IFIH1, MX1 e TLR7 erano significativamente sovraespressi nella PAH (Tabella 5; Figura 9A). I valori medi di espressione relativa erano approssimativamente 3,470 per CXCL10, 2,560 per JUN, 2,760 per IFIH1, 2,650 per MX1 e 2,580 per TLR7. I corrispondenti valori di P/valori FDR erano rispettivamente 1,43 × 10⁻7/7,15 × 10⁻7, 4,17 × 10⁻5/4,17 × 10⁻5, 1,10 × 10⁻5/1,38 × 10⁻5, 1,58 × 10⁻6/2,63 × 10⁻6 e 1,37 × 10⁻6/2,63 × 10⁻6.
L'analisi ROC basata sull'espressione tramite qRT-PCR per singolo gene ha mostrato AUC pari a 0,988 per CXCL10 (IC 95%, 0,961–1,000), 0,880 per JUN (IC 95%, 0,758–1,000), 0,908 per IFIH1 (IC 95%, 0,820–0,995), 0,945 per MX1 (IC 95%, 0,874–1,000) e 0,948 per TLR7 (IC 95%, 0,886–1,000) (Figura 9B; Tabella 5). Il modello di regressione logistica basato su cinque geni ha raggiunto un AUC apparente di 1,000 (IC 95% DeLong: 1,000–1,000), con sensibilità e specificità pari a 1,000 (Figura 9C). La coerenza della direzione dell'espressione tra la validazione tramite PCR quantitativa di trascrizione inversa e GSE117261 è stata visualizzata mediante una mappa termica (Figura 9D). Poiché gli stessi 40 campioni sono stati utilizzati sia per l'adattamento del modello che per la valutazione, questi risultati riflettono le prestazioni apparenti all'interno del campione. In 100 ripetizioni di una cross-validation stratificata a cinque fold, utilizzando un modello di regressione logistica regolarizzato L2, l'AUC aggregato al di fuori dei fold è rimasto pari a 1,000 (IC 95%, 1,000–1,000), e ogni ripetizione ha prodotto un AUC di 1,000. Nonostante questa stabilità interna, la coorte era di piccole dimensioni e rimane necessaria una validazione prospettica indipendente. Il confronto direzionale con GSE117261 ha mostrato aumenti concordanti per CXCL10, JUN, IFIH1 e MX1, ma una direzione discordante per TLR7 (Figura 9D).

Figura 9: Convalida mediante PCR quantitativa a retrotrascrizione. (A) Grafici a scatola che mostrano l'espressione relativa di CXCL10, JUN, IFIH1, MX1 e TLR7 in 20 campioni biologicamente indipendenti di tessuto polmonare PAH e in 20 campioni di controllo biologicamente indipendenti. Ogni campione biologico è stato misurato in tre replicati tecnici, e il valore medio di Ct è stato utilizzato per l'analisi. Per ogni grafico a scatola, la linea centrale rappresenta la mediana, la scatola rappresenta l'intervallo interquartile, i baffi si estendono fino a 1,5 volte l'intervallo interquartile, e i singoli punti al di fuori dei baffi rappresentano valori anomali. (B) Curve ROC per singolo gene basate sui valori di espressione ottenuti con qRT-PCR; sono riportate le AUC e gli intervalli di confidenza al 95% di DeLong. (C) Curve ROC per il modello di regressione logistica a cinque geni, che mostrano sia le prestazioni apparenti/all'interno del campione sia le prestazioni complessive fuori dal fold ottenute da 100 analisi ripetute di cross-validation stratificata a cinque fold. (D) Mappa termica che mostra la coerenza della direzione di espressione tra qRT-PCR e GSE117261; CXCL10, JUN, IFIH1 e MX1 sono risultati concordemente aumentati, mentre TLR7 è risultato discordante. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
| Gene/modello | PAH n | Controllo n | Controllo 2^-ΔΔCt, media ± DS | PAH 2^-ΔΔCt, media ± DS | Direzione | Valore P | FDR | AUC | IC 95% AUC | Limite di Youden | Sensi-
bilità | Specifi-
cità | Tipo di validazione |
| CXCL10 | 20 | 20 | 1.099 ± 0.502 | 3.470 ± 1.043 | Sovraespresso | 1.43E-07 | 7.15E-07 | 0.987 | 0.961–1.000 | 2.028 | 1 | 0.95 | Analisi qRT-PCR singolo gene |
| JUN | 20 | 20 | 1.158 ± 0.738 | 2.560 ± 1.609 | Sovraespresso | 4.17E-05 | 4.17E-05 | 0.88 | 0.758–1.000 | 1.423 | 0.85 | 0.9 | Analisi qRT-PCR singolo gene |
| IFIH1 | 20 | 20 | 1.091 ± 0.440 | 2.760 ± 1.398 | Sovraespresso | 1.10E-05 | 1.38E-05 | 0.908 | 0.820–0.995 | 1.579 | 0.8 | 0.85 | Analisi qRT-PCR singolo gene |
| MX1 | 20 | 20 | 1.132 ± 0.582 | 2.650 ± 1.085 | Sovraespresso | 1.58E-06 | 2.63E-06 | 0.945 | 0.874–1.000 | 1.779 | 0.9 | 0.9 | Analisi qRT-PCR singolo gene |
| TLR7 | 20 | 20 | 1.080 ± 0.444 | 2.580 ± 1.284 | Sovraespresso | 1.37E-06 | 2.63E-06 | 0.947 | 0.886–1.000 | 1.764 | 0.85 | 0.9 | Analisi qRT-PCR singolo gene |
| Modello a cinque geni (apparente/in-sample) | 20 | 20 | Non appli-
cabile | Non appli-
cabile | Non applicabile | / | / | 1 | 1.000–1.000 | 0.998 | 1 | 1 | Stessi 40 campioni biologici utilizzati per l'adattamento e la valutazione del modello |
| Modello a cinque geni (CV ripetuta 100× a 5 pieghe) | 20 | 20 | Non appli-
cabile | Non appli-
cabile | Non applicabile | / | / | 1 | 1.000–1.000 | 0.716 | 1 | 1 | Cross-validation interna mediante regressione logistica con regolarizzazione L2 |
Tabella 5: Risultati completi di espressione tramite qRT-PCR e analisi ROC per CXCL10, JUN, IFIH1, MX1 e TLR7, inclusi i risultati dei modelli combinati con i cinque geni. La tabella riporta le dimensioni del campione per PAH e controlli, i valori di espressione relativi, le direzioni dell'espressione, i valori P, i valori aggiustati per il tasso di falsa scoperta, le AUC, gli intervalli di confidenza al 95%, le soglie individuate tramite indice di Youden, le sensibilità, le specificità e i tipi di validazione per i singoli geni e per i modelli combinati.
Convalida trascrittomica a singola cellula in GSE210248
GSE210248 ha fornito un supporto meccanicistico a livello cellulare dimostrando che il rimodellamento delle arterie polmonari nella PAH era accompagnato da una modificata comunicazione tra cellule immunitarie e cellule strutturali vascolari. Questa osservazione era coerente con l'arricchimento transcriptomico globale delle risposte infiammatorie, della segnalazione dei chemochine, della segnalazione dei recettori Toll-simili e della segnalazione del fattore di necrosi tumorale.
Le evidenze a livello di singola cellula hanno suggerito che la rete di segnalazione dell'arteria polmonare associata alla PAH si è spostata verso le cellule strutturali, inclusi i cellule muscolari lisce e i fibroblasti. Le cellule muscolari lisce hanno mostrato diversi stati, tra cui pericito-simili/sensibili all'ossigeno, contrattili, sintetici e simili ai fibroblasti. Questi risultati supportano un modello di malattia in cui l'attivazione immunitario-infiammatoria e il rimodellamento delle cellule strutturali vascolari concorrono insieme alla progressione dell'IP/PAH.
Screening dei composti candidati e docking molecolare
La schermata della mappa di connettività ha identificato BRD-K91900765 come il composto candidato con il punteggio più alto tra i primi 10 risultati, con un punteggio Logit di 10,13 e una probabilità prevista di 0,085 (Figura 10). La cura del composto ha mostrato che BRD-K91900765 corrisponde a VX-745/neflamapimod, un inibitore selettivo di p38α/MAPK14 con un identificatore del composto PubChem di 3038525 e una massa molecolare di 436,27 g/mol (Tabella 6).
Il docking esplorativo di BRD-K91900765/VX-745 con le cinque proteine associate ai biomarcatori ha prodotto punteggi Vina massimi di -7,5 kcal/mol per CXCL10, -7,6 kcal/mol per JUN, -7,5 kcal/mol per IFIH1, -8,7 kcal/mol per MX1 e -8,1 kcal/mol per TLR7 (Tabelle 7–11; Figura 11A–E). Questi risultati indicavano una compatibilità strutturale prevista, ma non stabilivano le cinque proteine come bersagli farmacologici diretti. Le previsioni preliminari di assorbimento, distribuzione, metabolismo, escrezione e tossicità suggerivano che il composto possedesse diverse proprietà simili a quelle di un farmaco, sebbene il valore relativamente alto di cLogP calcolato richieda ulteriori valutazioni (Tabella 12). È stato incluso un docking contro il target noto di VX-745, MAPK14/p38α (PDB ID: 1OUK), come analisi di riferimento positiva. La cavità principale di MAPK14, C1, ha prodotto un punteggio Vina di -7,9 kcal/mol, un volume della cavità di 3560 Å3, un centro della scatola di docking di (2, 22, 34) e dimensioni di (22, 31, 31) (Tabella 13; Figura 11F).

Figura 10: Classificazione dei composti candidati tramite Connectivity Map. Classificazione dei composti candidati identificati mediante screening della Connectivity Map. BRD-K91900765 è il composto con il punteggio più alto, con un punteggio Logit di 10,13 e una probabilità predetta di 0,085. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 11: Diagrammi tridimensionali di docking molecolare per BRD-K91900765/VX-745. (A) Docking esplorativo con CXCL10. (B) Docking esplorativo con JUN. (C) Docking esplorativo con IFIH1. (D) Docking esplorativo con MX1. (E) Docking esplorativo con TLR7. (F) Docking di riferimento positivo con la nota proteina farmacologica bersaglio MAPK14/p38α (PDB ID: 1OUK). I pannelli A–E indicano una compatibilità strutturale prevista e non dimostrano un targeting farmacologico diretto. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
| Elemento | Descrizione |
| CMap/Broad ID | BRD-K91900765 (formato comune del lotto: BRD-K91900765-001-xx-x) |
| Nome comune/alias | VX-745; neflamapimod; VRT-031745; VD-31745 |
| Nome chimico | 5-(2,6-diclorofenil)-2-(2,4-difluorofenil)tiopirimidino[1,6-b]piridazin-6-one |
| PubChem CID | 3038525 |
| Numero CAS | 209410-46-8 |
| Formula molecolare / massa molecolare relativa | C19H9Cl2F2N3OS; 436.27 g/mol |
| SMILES canonico | C1=CC(=C(C(=C1)Cl)C2=C3C=CC(=NN3C=NC2=O)SC4=C(C=C(C=C4)F)F)Cl |
| InChIKey | VEPKQEUBKLEPRA-UHFFFAOYSA-N |
| Principale bersaglio farmacologico noto | MAPK14/p38α; è stata inoltre riportata l'inibizione di p38β con selettività inferiore rispetto a p38α |
Tabella 6: Informazioni chimiche e farmacologiche per BRD-K91900765/VX-745. La tabella riassume gli identificatori del composto, gli alias, il nome chimico, la formula molecolare, la massa molecolare, i descrittori strutturali e il target farmacologico stabilito di BRD-K91900765/VX-745.
| CurPocket ID | Punteggio Vina (kcal/mol) | Volume della cavità (ų) | Centro (x, y, z) | Dimensione del docking (x, y, z) |
| C1 | -7.5 | 7568 | 49, 15, 4 | 34, 33, 35 |
| C4 | -7 | 160 | 46, 0, 4 | 22, 22, 22 |
| C3 | -6 | 208 | 34, 15, 9 | 22, 22, 22 |
| C2 | -5.8 | 465 | 45, -6, 19 | 22, 22, 22 |
| C5 | -5.1 | 150 | 63, 0, 20 | 22, 22, 22 |
Tabella 7: Tasche di docking previste per BRD-K91900765/VX-745 con CXCL10 (PDB ID: 1LV9). La tabella riporta gli identificatori delle cavità in ordine di classifica, i punteggi di Vina, i volumi delle cavità, i centri delle scatole di docking e le dimensioni delle scatole di docking generati da CB-Dock2.
| ID di CurPocket | Punteggio Vina (kcal/mol) | Volume della cavità (ų) | Centro (x, y, z) | Dimensioni docking (x, y, z) |
| C3 | -7.6 | 1593 | 26, 35, 70 | 22, 22, 22 |
| C2 | -7.5 | 1927 | 25, 21, 60 | 35, 22, 22 |
| C1 | -7.4 | 5420 | 32, 37, 48 | 35, 22, 31 |
| C5 | -6 | 464 | 26, 5, 48 | 22, 22, 22 |
| C4 | -5.3 | 683 | 59, 32, 39 | 22, 22, 22 |
Tabella 8: Tasche di docking predette per BRD-K91900765/VX-745 con JUN (ID PDB: 1JUN). La tabella riporta gli identificatori delle cavità in ordine di rango, i punteggi di Vina, i volumi delle cavità, i centri delle box di docking e le dimensioni delle box di docking generati da CB-Dock2.
| ID CurPocket | Punteggio Vina (kcal/mol) | Volume della cavità (ų) | Centro (x, y, z) | Dimensioni docking (x, y, z) |
| C1 | -7.5 | 583 | 15, 4, 17 | 22, 22, 22 |
| C3 | -7.2 | 146 | 19, 21, 24 | 22, 22, 22 |
| C4 | -6.6 | 141 | 31, 19, 15 | 22, 22, 22 |
| C2 | -6.2 | 273 | 38, 9, 24 | 22, 22, 22 |
| C5 | -6.2 | 125 | 27, -7, 10 | 22, 22, 22 |
Tabella 9: Tasche di docking previste per BRD-K91900765/VX-745 con IFIH1 (PDB ID: 3B6E). La tabella riporta gli identificativi delle cavità ordinati per rango, i punteggi di Vina, i volumi delle cavità, i centri delle box di docking e le dimensioni delle box di docking generati da CB-Dock2.
| ID CurPocket | Punteggio Vina (kcal/mol) | Volume della cavità (ų) | Centro (x, y, z) | Dimensioni del docking (x, y, z) |
| C1 | -8.7 | 523 | -18, -14, -5 | 22, 22, 22 |
| C4 | -7.3 | 262 | -13, -6, -9 | 22, 22, 22 |
| C3 | -7 | 306 | 12, 12, -7 | 22, 22, 22 |
| C2 | -6.9 | 408 | -3, 1, -12 | 22, 22, 22 |
| C5 | -6.2 | 179 | 24, 25, 13 | 22, 22, 22 |
Tabella 10: Tasche di docking previste per BRD-K91900765/VX-745 con MX1 (PDB ID: 5GTM). La tabella riporta gli identificatori delle cavità in ordine di classifica, i punteggi di Vina, i volumi delle cavità, i centri delle scatole di docking e le dimensioni delle scatole di docking generati da CB-Dock2.
| ID CurPocket | Punteggio Vina (kcal/mol) | Volume della cavità (ų) | Centro (x, y, z) | Dimensioni docking (x, y, z) |
| C2 | -8.1 | 7347 | 112, 137, 148 | 33, 28, 35 |
| C3 | -8.1 | 2604 | 124, 124, 176 | 30, 22, 22 |
| C1 | -8 | 7676 | 137, 112, 148 | 34, 29, 35 |
| C5 | -6.9 | 1976 | 117, 157, 88 | 22, 22, 22 |
| C4 | -6.6 | 2040 | 132, 92, 91 | 22, 22, 22 |
Tabella 11: Tasche di docking previste per BRD-K91900765/VX-745 con TLR7 (PDB ID: 7CYN). La tabella riporta gli identificatori delle cavità in ordine di classifica, i punteggi di Vina, i volumi delle cavità, i centri delle scatole di docking e le dimensioni delle scatole di docking generati da CB-Dock2.
| Proprietà fisico-chimica | Parametro | Risultato | Interpretazione |
| Proprietà fisico-chimica | Peso molecolare | 436,27 g/mol | Inferiore a 500 Da, soddisfa la soglia del peso molecolare di Lipinski |
| Proprietà fisico-chimica | cLogP | Circa 5,49 | Leggermente superiore a 5, suggerisce un'elevata lipofilicità e la necessità di considerare solubilità e legame non specifico |
| Proprietà fisico-chimica | TPSA | Circa 47,26 Ų | Bassa area superficiale polare, coerente con una permeabilità di membrana potenzialmente favorevole |
| Somiglianza a farmaco | Accettori/donatori di legami a idrogeno (HBA/HBD) | 0/5 | Soddisfa le soglie di Lipinski per accettori e donatori di legami a idrogeno |
| Somiglianza a farmaco | Legami rotazionali | 3 | Bassa flessibilità conformazionale, favorevole per conformazioni di legame stabili |
| Avvisi strutturali | Avvisi PAINS/Brenk | Non rilevati | Nessun avviso strutturale comune di interferenza in svariati saggi o reattività rilevato |
| Previsione di tossicità | Mutagenicità di Ames | Previsione di non tossicità per Ames | Suggerisce un rischio mutageno previsto basso; è comunque richiesta una validazione sperimentale |
| Previsione di tossicità | Cancerogenicità | Previsione di non cancerogenicità | Suggerisce un rischio cancerogeno a lungo termine relativamente basso; è comunque richiesta una validazione sperimentale |
| Note farmacocinetiche | Disponibilità orale/penetrazione cerebrale | Letteratura e basi dati indicano una molecola di piccole dimensioni disponibile per via orale e in grado di attraversare la barriera ematoencefalica | Coerente con il suo background di sviluppo come inibitore di p38α; è comunque necessaria una rivalutazione per indicazioni PH |
Tabella 12: Previsioni preliminari di proprietà fisico-chimiche, farmaco-similitudine, ADMET e tossicità per BRD-K91900765/VX-745. La tabella riassume le proprietà fisico-chimiche previste, parametri di farmaco-similitudine, allarmi strutturali, endpoint tossicologici e caratteristiche farmacocinetiche. Queste previsioni computazionali sono preliminari e non sostituiscono la validazione sperimentale di dati farmacocinetici o tossicologici.
| ID CurPocket | Punteggio Vina (kcal/mol) | Volume della cavità (ų) | Centro (x, y, z) | Dimensioni del docking (x, y, z) |
| C1 | -7.9 | 3560 | 2, 22, 34 | 22, 31, 31 |
| C5 | -7.5 | 254 | -9, 28, 60 | 22, 22, 22 |
| C3 | -7.4 | 351 | 12, 7, 37 | 22, 22, 22 |
| C2 | -6.3 | 827 | 18, 5, 28 | 22, 22, 22 |
| C4 | -6.3 | 334 | -16, 17, 38 | 22, 22, 22 |
Tabella 13: Tasche di docking previste per BRD-K91900765/VX-745 con il suo target farmacologico accertato MAPK14/p38α (PDB ID: 1OUK), inclusa come analisi di riferimento positivo. La tabella riporta gli identificatori delle cavità in ordine di classifica, i punteggi di Vina, i volumi delle cavità, i centri delle box di docking e le dimensioni delle box di docking generati utilizzando lo stesso flusso di lavoro di docking applicato alle cinque proteine associate ai biomarcatori.
Nel complesso, le analisi di scoperta e i risultati della qRT-PCR supportano CXCL10, JUN, IFIH1, MX1 e TLR7 come biomarcatori candidati per l'ipertensione polmonare/ipertensione arteriosa polmonare associati a una disregolazione immuno-infiammatoria e a un rimodellamento vascolare polmonare, sebbene la replica indipendente su GSE117261 sia stata più forte per JUN e variabile per gli altri geni. BRD-K91900765/VX-745 è un candidato identificato mediante analisi computazionale per il riposizionamento farmacologico, con un meccanismo plausibile di inibizione di MAPK14/p38α; sono necessarie validazioni riguardo al legame con il bersaglio, agli effetti cellulari, alla farmacocinetica, alla tossicità e ai modelli animali prima di poterne trarre interpretazioni terapeutiche.
DISPONIBILITÀ DEI DATI:
Tutti i set di dati trascrittomici pubblici utilizzati in questo studio sono disponibili nel database Gene Expression Omnibus con i numeri di accessione GSE22356, GSE33463, GSE48149, GSE117261 e GSE210248. Tutti i file di codice, i set di dati elaborati, i dati grezzi e analizzati di qRT-PCR de-identificati, gli output del modello e i file di input/output per il docking molecolare sono stati raccolti in un archivio strutturato su Zenodo. L'archivio include un file README che descrive ogni file, le versioni di software e pacchetti, l'ordine di esecuzione degli script e tutti i passaggi necessari per riprodurre completamente il lavoro - https://zenodo.org/records/21682282