Selezione di biomarcatori diagnostici candidati per il cheloide mediante un algoritmo di apprendimento automatico
In questo studio sono stati inclusi un totale di 283 geni associati al metabolismo dell'eme. L'analisi dell'espressione differenziale del dataset GSE44270, che confronta tessuti di cicatrice cheloide e tessuti cutanei normali, ha identificato 25 geni espressi in modo significativamente differente (Figura 1A e Tabella Supplementare S3). Per effettuare un'ulteriore selezione di biomarcatori associati alla malattia, la regressione LASSO ha identificato 9 geni candidati (Figura 1B,C e Tabella Supplementare S3), mentre l'algoritmo random forest (RF) ha selezionato 11 geni con elevata importanza predittiva (Figura 1D e Tabella Supplementare S3). L'intersezione tra i risultati di LASSO e RF è stata visualizzata mediante un diagramma di Venn, che ha evidenziato sei biomarcatori principali, ovvero FLVCR1, TMCC2, EIF2AK1, XK, HPX e KEL (Figura 1E e Tabella Supplementare S3). L'analisi della curva ROC (receiver operating characteristic) nella coorte GSE44270 ha dimostrato un'adeguata capacità diagnostica per tutti e sei i biomarcatori, con valori di AUC pari a 0,8016 per FLVCR1, 0,7063 per TMCC2, 0,7817 per EIF2AK1, 0,7460 per XK, 0,7500 per HPX e 0,7857 per KEL (Figura 1F). Sulla base di questi sei biomarcatori, è stato successivamente costruito un nomogramma diagnostico per il cheloide utilizzando il pacchetto rms in R (Figura 1G).

Figura 1: Identificazione di geni candidati associati al metabolismo dell'eme e correlati ai cheloide mediante l'uso di algoritmi di apprendimento automatico. (A) Diagramma a scatola (box plot) che illustra l'espressione differenziale dei geni correlati al metabolismo dell'eme tra tessuti cheloidei e tessuti normali. (B,C) Analisi di regressione logistica LASSO per la selezione di marcatori diagnostici candidati. (D) Biomarcatori candidati selezionati dall'algoritmo RF. (E) Diagramma di Venn che mostra i geni sovrapposti identificati dai due algoritmi di apprendimento automatico. (F) Analisi della curva ROC per valutare le prestazioni diagnostiche dei biomarcatori candidati. (G) Nomogramma per la previsione del cheloide basato sulla firma genica a sei geni. Abbreviazioni: LASSO, operatore di riduzione e selezione assoluta minima; RF, foresta casuale; ROC, caratteristica operativa del ricevitore. Significatività statistica: ns, P > 0,05; *, P < 0,05; **, P < 0,01; ***, P < 0,001; e ****, P < 0,0001. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Le prestazioni predittive del nomogramma diagnostico sono state valutate sia nel gruppo di addestramento (GSE44270) che nel gruppo di validazione (GSE7890). Il modello ha dimostrato un'elevata accuratezza diagnostica, raggiungendo valori di AUC pari a 0,984 (IC 95%: 0,950–1,000) e 0,922 (IC 95%: 0,806–1,000), rispettivamente (Figura 2A,D). Per ulteriormente valutare la robustezza e il potenziale overfitting della firma diagnostica basata su sei geni, sono state effettuate ulteriori analisi di validazione interna nel gruppo di scoperta (GSE44270). La validazione incrociata a cinque ripetizioni ha dimostrato prestazioni discriminative costanti tra i sottoinsiemi, con un valore medio di AUC pari a 0,925, indicando che il modello ha mantenuto prestazioni stabili di classificazione nonostante le variazioni nei campioni di addestramento. Inoltre, la validazione con metodo bootstrap, effettuata su 1.000 iterazioni di ricampionamento, ha prodotto un valore medio di AUC pari a 0,930 (IC 95%: 0,794–1,000). Dopo la correzione per l'eventuale ottimismo derivante dalla dimensione limitata del campione, l'AUC corretta per l'ottimismo è rimasta pari a 0,930, suggerendo che le prestazioni diagnostiche della firma basata su sei geni erano relativamente stabili dopo la validazione interna. Inoltre, l'analisi della curva decisionale (DCA) ha indicato che il nomogramma presentava un beneficio netto potenziale superiore rispetto ad altre strategie diagnostiche in un ampio intervallo di probabilità soglia, anche se questi risultati devono essere interpretati con cautela a causa della limitata dimensione del campione (Figura 2B,E). Inoltre, i campioni di cheloide hanno mostrato punteggi di rischio significativamente più elevati rispetto ai controlli sani sia nel gruppo di addestramento che in quello di validazione (Figura 2C,F), confermando ulteriormente la stabilità e l'affidabilità del modello diagnostico.

Figura 2: Convalida del nomogramma per la previsione dei cheloidi. (A) Curva ROC per la valutazione delle prestazioni predittive del nomogramma nel dataset GSE44270. (B) DCA per la valutazione dell'utilità clinica del nomogramma in GSE44270. (C) Distribuzione del punteggio di rischio nel confronto tra campioni cheloidei e sani in GSE44270. (D) Curva ROC per la valutazione delle prestazioni predittive del nomogramma nel dataset indipendente GSE7890. (E) DCA per la valutazione dell'utilità clinica del nomogramma in GSE7890. (F) Distribuzione del punteggio di rischio nel confronto tra campioni cheloidei e sani in GSE7890. Abbreviazioni: ROC = caratteristica operativa del ricevitore; DCA = analisi della curva decisionale. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
I biomarcatori diagnostici sono associati alle caratteristiche immunitarie del cheloide
Per esplorare la relazione tra i sei biomarcatori diagnostici e il microambiente immunitario, è stata effettuata un'analisi di correlazione per valutare le associazioni tra l'espressione dei biomarcatori e l'infiltrazione delle cellule immunitarie. I risultati hanno rivelato che tutti e sei i biomarcatori erano significativamente associati a diverse popolazioni di cellule immunitarie infiltranti (Figura 3A). In particolare, l'espressione di FLVCR1 era negativamente associata alle cellule T helper follicolari (Figura 3B). TMCC2 mostrava correlazioni positive con le cellule natural killer e le cellule dendritiche attivate, mentre era negativamente correlato alle cellule dendritiche immature e alle cellule B immature (Figura 3C–F). Inoltre, l'espressione di EIF2AK1 era negativamente associata alle cellule natural killer CD56dim (Figura 3G), mentre XK era negativamente associato agli eosinofili (Figura 3H).

Figura 3: Correlazione tra geni candidati coinvolti nel metabolismo dell'eme e l'infiltrazione di cellule immunitarie. (AMappa termica che mostra le correlazioni tra i geni candidati e le popolazioni di cellule immunitarie. Il rosso indica correlazioni positive, mentre il blu indica correlazioni negative.B). Correlazione tra FLVCR1 espressione e cellule T follicolari helper.C-F) Correlazioni tra TMCC2 espressione e cellule natural killer, cellule dendritiche attivate, cellule dendritiche immature e cellule B immature, rispettivamente. (G) Correlazione tra EIF2AK1 espressione e cellule natural killer CD56dim. (H). Correlazione tra XK espressione e eosinofili. Abbreviazioni: FLVCR1 = recettore per il virus della leucemia felina sottogruppo C 1; TMCC2 = domini transmembrana e a coil-coil 2; EIF2AK1 = chinasi alfa del fattore di inizio della traduzione eucariotica 2; CD56dim = cluster di differenziazione 56 debole Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Analisi dei dati del trascrittoma a singola cellula
Per caratterizzare i modelli di espressione dei biomarcatori diagnostici identificati all'interno del microambiente del cheloide, abbiamo analizzato il dataset di sequenziamento dell'RNA a singola cellula GSE163973. Dopo il controllo di qualità e l'integrazione dei dati, sono state mantenute 21.488 cellule di alta qualità per le analisi successive. Sono state escluse le cellule con meno di 200 o più di 6.000 conteggi totali di identificatori molecolari unici (UMI) e i potenziali doppietti sono stati identificati ed eliminati utilizzando il pacchetto DoubletDetection. Sono stati selezionati i 2.000 geni che mostravano la maggiore variabilità di espressione, seguiti da riduzione della dimensionalità e visualizzazione mediante Uniform Manifold Approximation and Projection (UMAP). Sono state identificate complessivamente 10 principali popolazioni cellulari, incluse cellule endoteliali, fibroblasti, fibre muscolari, cheratinociti, cellule immunitarie, cellule endoteliali linfatiche, cellule ghiandolari, cellule neurali, melanociti e una popolazione cellulare non classificata (Figura 4A,B). Il profilo di espressione ha rivelato distinti modelli di distribuzione specifici per tipo cellulare dei biomarcatori diagnostici. FLVCR1 era prevalentemente espresso nelle cellule endoteliali e nei melanociti, mentre EIF2AK1 mostrava un'espressione relativamente elevata nelle cellule neurali, nelle cellule ghiandolari e nei fibroblasti. HPX era principalmente arricchito nei melanociti, mentre KEL mostrava un'espressione predominante nelle cellule ghiandolari (Figura 4C,D).

Figura 4: Distribuzione dei biomarcatori diagnostici legati al metabolismo dell'eme nel trascrittoma singola-cellula del cheloide. (A) Grafico UMAP che mostra 21 cluster cellulari composti da 21.488 cellule provenienti da campioni di cheloide. (B) Annotazioni dei tipi cellulari basate sulle annotazioni riportate nello studio originale. (C) Grafici delle caratteristiche che mostrano l'espressione dei biomarcatori diagnostici legati al metabolismo dell'eme in diversi tipi cellulari. (D) Grafico a bolle che mostra i livelli medi di espressione e le percentuali di cellule che esprimono i biomarcatori diagnostici legati al metabolismo dell'eme in diversi tipi cellulari. Abbreviazione: UMAP = uniform manifold approximation and projection. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Identificazione e analisi della rete di interazione di biomarcatori diagnostici candidati
Per esplorare i meccanismi regolatori alla base dei biomarcatori diagnostici candidati, è stata costruita una rete regolatoria miRNA-mRNA. Per migliorare l'affidabilità delle interazioni predette, sono stati identificati i miRNA sovrapposti che bersagliano i biomarcatori candidati. Sono stati ottenuti complessivamente 282 miRNA che interagiscono con i sei biomarcatori diagnostici, e la rete regolatoria risultante è mostrata in Figura 5. In particolare, si prevede che hsa-miR-34a-5p, hsa-let-7a-5p, hsa-let-7d-5p, hsa-let-7e-5p e hsa-miR-26b-5p regolino contemporaneamente tutti e sei i biomarcatori candidati.

Figura 5: Rete regolatoria di miRNA dei biomarcatori diagnostici associati al metabolismo dell'eme. La rete illustra le relazioni regolatorie tra i sei geni biomarcatori diagnostici (FLVCR1, HPX, TMCC2, KEL, XK e EIF2AK1) e i rispettivi miRNA associati. I nodi genici rappresentano i biomarcatori diagnostici, mentre i nodi circostanti rappresentano i miRNA. I collegamenti indicano interazioni miRNA–mRNA supportate sperimentalmente. Abbreviazioni: FLVCR1 = recettore 1 del virus della leucemia felina del sottogruppo C; HPX = emopesina; TMCC2 = domini transmembrana e a coil-coil 2; KEL = metallo-endopeptidasi Kell; XK = gruppo sanguigno X-linked Kx; EIF2AK1 = chinasi 1 del fattore di inizio della traduzione eucariotica 2 alfa; miRNA = microRNA; mRNA = RNA messaggero. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Convalida sperimentale dell'espressione di FLVCR1 e analisi di docking molecolare di potenziali composti terapeutici
Per convalidare i risultati bioinformatici e confermare la rilevanza funzionale del gene centrale identificato, abbiamo valutato sperimentalmente l'espressione di FLVCR1 in PKF e NHDF. Analisi di qRT-PCR e immunoblotting hanno dimostrato in modo coerente che FLVCR1 era significativamente sovraespresso nei fibroblasti cheloidei rispetto ai controlli normali (Figura 6A–C, Figura Supplementare S1 e Tabella Supplementare S4). Questa espressione cellulare elevata supporta il possibile coinvolgimento di una disregolazione metabolica dell'eme associata a FLVCR1 nella patogenesi del cheloide.
Data la possibile implicazione di FLVCR1 nei cambiamenti immunitari associati al metabolismo dell'eme, abbiamo successivamente cercato di identificare potenziali composti terapeutici in grado di agire direttamente su FLVCR1 per interrompere questo asse patogenetico. È stata effettuata una selezione virtuale ad alto rendimento utilizzando una libreria di composti della medicina tradizionale cinese (TCM) e la struttura proteica preparata. I 20 composti con i punteggi di docking più favorevoli sono stati selezionati per ulteriori valutazioni (Tabella Supplementare S5). In generale, un'energia di legame più bassa indica un'affinità di legame più elevata, e valori di energia di docking inferiori a −5 kcal/mol sono considerati indicativi di interazioni stabili tra ligando e proteina. Tra i composti analizzati, (+)-Gallocatechina, (−)-Epicatechina, (−)-Gallocatechina e Cianidina (cloruro) hanno mostrato affinità di legame favorevoli verso FLVCR1. In particolare, la (+)-Gallocatechina ha mostrato l'interazione più forte con FLVCR1, formando quattro legami a idrogeno con GLU214, ASN245, GLN246 e GLN471, suggerendo una modalità di legame ligando-proteina stabile (Figura 6D–G). Questi risultati indicano la (+)-gallocatechina come un candidato promettente per interventi terapeutici basati su meccanismi mirati a FLVCR1.

Figura 6: Convalida sperimentale dell'espressione di FLVCR1 e docking molecolare di composti potenziali che bersagliano FLVCR1. (A) Immagini rappresentative di immunoblotting a western che mostrano l'espressione proteica di FLVCR1 in CON e cheloide. GAPDH è stato utilizzato come controllo di caricamento. (B) Quantificazione dei livelli proteici di FLVCR1 normalizzati rispetto a GAPDH. (C) I livelli relativi di espressione dell'mRNA di FLVCR1 in fibroblasti CON e cheloidi sono stati determinati mediante qRT-PCR. GAPDH è stato utilizzato come riferimento interno. (D–G) Rappresentazioni tridimensionali delle modalità di legame previste tra FLVCR1 e composti selezionati di piccole molecole: (D) (+)-Gallocatechina. (E) (-)-Epicatechina. (F) (-)-Gallocatechina. (G) Cianidina (Cloruro). Abbreviazioni: FLVCR1 = recettore 1 del virus della leucosi felina sottogruppo C; CON, controllo; GAPDH, gliceraldeide-3-fosfato deidrogenasi; qRT-PCR, reazione a catena della polimerasi con trascrizione inversa quantitativa; SD, deviazione standard. I dati sono riportati come media ± SD. Significatività statistica: ns, P > 0,05; *, P < 0,05; **, P < 0,01; ***, P < 0,001; e ****, P < 0,0001. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Conferma della stabilità del complesso FLVCR1–(+)-Gallocatechina mediante simulazione di dinamica molecolare
Per esaminare l'affidabilità della modalità di legame ligando-proteina predetta, è stata effettuata una simulazione di dinamica molecolare (MD) per il complesso FLVCR1–(+)-gallocatechina. L'analisi si è concentrata sulla stabilità strutturale del complesso nel tempo e su eventuali alterazioni del comportamento conformazionale della proteina indotte dal legame del ligando, utilizzando RMSD, RMSF, raggio di girazione (Rg), SASA, analisi dei legami idrogeno e calcoli MM/GBSA. L'analisi dell'RMSD (Figura 7A) ha mostrato che sia la proteina aplo che il complesso legato al ligando hanno subito fluttuazioni iniziali nei primi 20 ns, seguite da una graduale stabilizzazione, indicando che i sistemi hanno raggiunto l'equilibrio durante la simulazione. Dopo l'equilibrazione, il valore di RMSD del complesso FLVCR1–(+)-gallocatechina è rimasto al di sotto di 0,2 nm, suggerendo che il legame del ligando abbia contribuito al mantenimento della stabilità strutturale di FLVCR1. L'analisi dell'RMSF (Figura 7B) ha dimostrato che la maggior parte dei residui ha mostrato fluttuazioni limitate per tutta la durata della simulazione, indicando il mantenimento dell'integrità complessiva della proteina, mentre alcune regioni flessibili potrebbero corrispondere a loop coinvolti nell'accomodamento del ligando. Inoltre, i profili stabili di Rg e SASA (Figura 7C,D) hanno indicato che il complesso ha mantenuto una conformazione compatta, senza evidenti espansioni strutturali o variazioni nell'esposizione al solvente. L'analisi dei legami idrogeno (Figura 7E) ha rivelato che il complesso FLVCR1–(+)-gallocatechina ha mantenuto interazioni intermolecolari persistenti, con la formazione di circa 3–4 legami idrogeno durante la simulazione, sostenendo la stabilità dell'associazione ligando-proteina. L'analisi MM/GBSA ha inoltre mostrato che il complesso FLVCR1–(+)-gallocatechina presentava un'energia libera di legame favorevole (ΔGtotal = −34,87 ± 4,13 kcal/mol) (Tabella Supplementare S6). L'analisi della decomposizione energetica ha indicato che le interazioni di van der Waals (ΔVDWAALS = −46,34 ± 2,16 kcal/mol) e le interazioni elettrostatiche (ΔEelec = −14,09 ± 3,45 kcal/mol) sono stati i principali contributi favorevoli al legame, nonostante il contributo sfavorevole dell'energia di solvatazione polare (ΔGsolvation = 25,55 ± 0,74 kcal/mol) (Tabella Supplementare S6). Nel complesso, questi risultati della simulazione di dinamica molecolare hanno dimostrato che la (+)-gallocatechina forma un complesso stabile con FLVCR1 e hanno ulteriormente confermato l'affidabilità della modalità di legame predetta dal docking.

Figura 7: Analisi della simulazione di dinamica molecolare del complesso FLVCR1–(+)-Gallocatechina. (A) Profili RMSD di FLVCR1 in forma aplo e del complesso FLVCR1–(+)-Gallocatechina durante la simulazione di dinamica molecolare di 100 ns. (B) Profilo RMSF che mostra le fluttuazioni a livello di residuo di FLVCR1 durante la simulazione. (C) Profilo SASA che mostra le variazioni dell'area superficiale accessibile al solvente del complesso FLVCR1–(+)-Gallocatechina. (D) Profilo Rg per valutare la compattezza del complesso FLVCR1–(+)-Gallocatechina durante la simulazione. (E) Analisi dei legami a idrogeno che mostra le interazioni intermolecolari dinamiche tra FLVCR1 e (+)-Gallocatechina durante tutta la simulazione. Abbreviazioni: FLVCR1 = recettore 1 del virus della leucemia felina del sottogruppo C; RMSD = deviazione quadratica media; RMSF = fluttuazione quadratica media; SASA = area superficiale accessibile al solvente; Rg = raggio di girazione. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Disponibilità dei dati:
I set di dati trascrittomici disponibili pubblicamente analizzati in questo studio possono essere consultati tramite il Gene Expression Omnibus (GEO) utilizzando i numeri di accessione GSE44270, GSE7890 e GSE163973. I dati originali generati in questo studio e alla base della validazione sperimentale, inclusi i risultati di qRT-PCR, le immagini originali dei western blot e i dati di quantificazione dei western blot, sono forniti come Figura Supplementare S1, Tabella Supplementare S1, Tabella Supplementare S2, Tabella Supplementare S3 e Tabella Supplementare S4. I risultati del docking molecolare e i dati dell'energia libera di legame calcolati con MM/GBSA sono inoltre disponibili nella Tabella Supplementare S5 e nella Tabella Supplementare S6.
Figura supplementare S1: Dati originali del western blotting.Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S1: Geni associati al metabolismo dell'emina.Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S2: Sequenze dei primer dei geni selezionati. Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S3: Approcci di apprendimento automatico per l'identificazione di potenziali biomarcatori diagnostici nel cheloide. Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S4: Dati grezzi a supporto della validazione sperimentale dell'espressione di FLVCR1. Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S5: I 20 principali composti candidati identificati mediante docking molecolare con FLVCR1.Cliccare qui per scaricare il file.
Tabella supplementare S6: Analisi dell'energia libera di legame MM/GBSA del complesso FLVCR1–(+)-Gallocatechina.Cliccare qui per scaricare il file.