La trascrittomica di scoperta identifica un ampio programma di espressione associato alle ulcere del piede diabetico
GSE199939 ha funto da coorte di scoperta ed includeva 10 campioni di DFU e 11 campioni di controllo (Figura 1A). L'analisi delle componenti principali dell'espressione normalizzata con VST ha mostrato una chiara separazione tra i gruppi; le componenti principali 1 e 2 spiegavano rispettivamente il 34,8% e il 15,1% della varianza totale (Figura 1B).
Utilizzando un valore |log2 fold change| > 1 e un valore di p corretto con il metodo BH < 0,05, l'analisi dell'espressione differenziale ha identificato 3.691 geni differenzialmente espressi (DEG), compresi 1.247 geni upregolati nel DFU e 2.444 geni downregolati nel DFU (Figura 1C). I 50 DEG più significativi hanno formato un pattern di espressione fortemente strutturato per gruppi (Figura 1D). Tra i sei geni selezionati successivamente, MMP1 ha mostrato la variazione maggiore nella coorte di scoperta (log2 fold change = 9,854; p corretto = 1,24 × 10-29).
Un modulo di co-espressione associato alle DFU converge con i DEG e i geni correlati alla DPN
WGCNA è stata eseguita sui 5.000 geni con maggiore variabilità trasformati con VST. È stata selezionata una potenza di soft-thresholding pari a 18 per la rete firmata, al fine di bilanciare l'adattamento alla topologia scale-free e la connettivitàFigura 2A). L'analisi di clustering gerarchico e il rilevamento dinamico di moduli hanno identificato diversi moduli di co-espressione (Figura 2B). Il modulo blu presentava la più forte associazione positiva con l'ulcera del piede diabetico (Pearson r = 0.97, p = 5 × 10-13; Figura 2C). Vengono forniti i corrispondenti riassunti del controllo qualità relativi al raggruppamento dei campioni e alle dimensioni dei moduli in Figura supplementare 1A,B.
All'interno del modulo blu, 689 geni hanno soddisfatto i criteri per essere considerati hub: |MM| > 0,8 e |GS| > 0,5 (Figura 2D). L'intersezione tra i 3.691 geni DEG, i 689 geni hub del modulo blu e i 1.062 geni associati ai DPN ha prodotto 77 geni candidati condivisi (Figura 2E). Una rappresentazione semplificata della rete degli hub del modulo blu e le statistiche degli hub con i punteggi più elevati sono mostrate nella Figura supplementare 2A,B.
La selezione multi-metodo delle caratteristiche identifica sei geni ma evidenzia un overfitting nel coorte di scoperta
I 77 geni sovrapposti sono stati analizzati mediante LASSO, foresta casuale e SVM-RFE. LASSO ha mantenuto sette geni alla penalità selezionata: MMP1, MMP13, TRPV2, CCL7, AURKA, MKI67 e CHEK1 (Figura 3A). Il filtraggio mediante foresta casuale ha conservato 41 geni con un'importanza pari o superiore alla media, inclusi cinque membri del pannello finale tra le caratteristiche più altamente classificate (Figura 3B). SVM-RFE ha prodotto un AUC di 1,00 per ogni sottoinsieme nidificato valutato; secondo la regola del legame di dimensione minima, CHEK1 è stato selezionato come sottoinsieme composto da un singolo gene (Figura 3C), sollevando preoccupazioni riguardo all'overfitting e a una valutazione troppo ottimistica nel gruppo di scoperta. Le relative espressioni nel gruppo di scoperta, le mappe termiche e le curve ROC sono mostrate nella Figura supplementare 3A–C.
Nessun gene è stato selezionato da tutti e tre i metodi. La conservazione dei geni supportati da almeno due metodi ha prodotto CCL7, CHEK1, MKI67, MMP1, MMP13 e TRPV2 (Figura 3D). L'annotazione GO di questi sei geni ha evidenziato il disassemblaggio della matrice extracellulare, i processi catabolici e metabolici del collagene, il cromosoma condensato e le funzioni legate alle metalloendopeptidasi (tutti con p corretto BH < 0,05; Figura 3E). L'analisi KEGG ha identificato la via di segnalazione dell'interleuchina-17 (IL-17) (CCL7/MMP1/MMP13; p corretto = 1,81 × 10-4) e la via di segnalazione della relaxina (MMP1/MMP13; p corretto = 0,0175; Figura 3F). Questi risultati di arricchimento sono stati utilizzati per caratterizzare le funzioni biologiche rappresentate dal pannello di sei geni.
La valutazione incrociata tra dataset mostra un supporto eterogeneo per MMP1
Nella matrice unita GSE68183/GSE80178 (9 ulcere del piede diabetico e 6 controlli), CCL7, MMP1, e MMP13 differivano tra i gruppi dopo la correzione di BH per i sei geni (aggiustato p = 0,0168, 0,0159 e 0,0431, rispettivamente; Figura 4A). CHEK1, MKI67, e TRPV2 non ha raggiunto la soglia di significatività corretta (corretta p = 0,259, 0,680 e 0,259). L'analisi ROC per singolo gene ha prodotto AUC di 0,944 per CCL7 (95% CI, 0,825–1,000), 0,704 per CHEK1 (0,403–1,000), 0,574 per MKI67 (0,243–0,905), 0,981 per MMP1 (0,930–1,000), 0,870 per MMP13 (0,686–1,000) e 0,722 per TRPV2 (0.447–0.997; Figura 4B). Questi valori ROC sono stati considerati esplorativi poiché la procedura di unione preliminare e di correzione per effetti di batch non era completamente documentata.
In GSE134431 (13 campioni di ulcere del piede diabetico e 8 campioni di piede diabetico senza ulcere), MMP1 l'espressione era maggiore nelle ulcere del piede diabetico (DFU) rispetto ai campioni di controllo non ulcerati (DFS) al test di Wilcoxon al livello di significatività nominale (p = 0,0225), anche se questa associazione non è rimasta significativa dopo la correzione BH (aggiustato p = 0.135; Figura 4C). Gli altri cinque geni non hanno mostrato differenze significative tra i gruppi. MMP1 ha mostrato anche l'AUC descrittiva più elevata, con un valore di 0,808 (IC 95%, 0,589–1,000), mentre gli AUC degli altri candidati variavano da 0,529 a 0,635 (Figura 4D). In generale, MMP1 ha mostrato il modello descrittivo più coerente tra i sei candidati, ma la replica statistica è risultata incompleta.
L'analisi a singola cellula localizza MMP1 principalmente nei fibroblasti
Il dataset a singola cellula conteneva 69.944 cellule provenienti da 24 campioni (14 DFU e 10 controlli) e comprendeva 10 tipi cellulari annotati (Figura 5A). La visualizzazione delle caratteristiche tramite UMAP ha localizzato l'espressione di MMP1 in regioni cellulari ristrette, piuttosto che mostrare un'espressione uniforme lungo tutto l'atlante (Figura 5B). Nel complesso, 3.799 cellule (5,43%) presentavano un'espressione normalizzata di MMP1 maggiore di zero. I fibroblasti mostravano l'espressione normalizzata media più alta (0,181) e la frazione maggiore complessiva di cellule positive per MMP1 (7,88%; Figura 5C).
A livello di campione, l'espressione media di MMP1 era più elevata nei campioni di DFU rispetto ai campioni di controllo in cheratinociti, fibroblasti e cellule endoteliali. Dopo la correzione BH su tutti i tipi cellulari testati, ciascuno di questi confronti presentava un valore p aggiustato di 0,0214 (cheratinociti: 9 campioni di controllo e 14 di DFU; fibroblasti: 10 e 14; cellule endoteliali: 10 e 14; Figura 5D). La frazione positiva per MMP1 è aumentata dal 5,86% al 9,29% nei fibroblasti, dallo 0,026% al 6,68% nei cheratinociti e dallo 0,29% al 2,67% nelle cellule endoteliali (Figura 5E).
Le correlazioni tra i punteggi dei moduli per cellula sono state modeste. La correlazione positiva più elevata è stata osservata per il punteggio del modulo senescenza/fenotipo segreto associato alla senescenza (SASP) (rho di Spearman = 0,274), seguita da rimodellamento della matrice extracellulare (rho = 0,240), ferroptosi (rho = 0,197) e attivazione dei fibroblasti (rho = 0,170; Figura 5F). Il confronto tra fibroblasti MMP1-alti e MMP1-bassi ha mostrato un arricchimento per termini legati all'organizzazione della matrice extracellulare, all'organizzazione della struttura extracellulare, all'organizzazione delle fibrille di collagene, all'elaborazione delle glicoproteine e al ripiegamento delle proteine (Figura 5G). Questi risultati descrittivi hanno associato lo stato dei fibroblasti MMP1-alti a processi legati al rimodellamento della matrice. Ulteriori rappresentazioni UMAP a livello di gruppo, sommari campionari comprendenti tutti i tipi cellulari e contesto relativo ai punteggi funzionali sono forniti nella Figura supplementare 4A–C. Le associazioni a livello di singola cellula non sono state considerate come evidenza indipendente dal donatore.
La copertura della rete dà priorità agli ingredienti associati a MMP1 e alle erbe candidate
La tabella filtrata delle relazioni tra erbe, ingredienti e target conteneva 561 record unici che collegavano 99 erbe, 14 ingredienti e cinque dei sei target candidati. MMP1 era il target più frequente, con 156 record, seguito da CHEK1 (120), MMP13 (102), MKI67 (100) e TRPV2 (83; Figura 6A). Tra gli ingredienti, la quercetina e la luteolina presentavano la copertura maggiore di erbe ed erano collegate rispettivamente a 83 e 62 erbe. La berberina era collegata a 10 erbe; questi tre ingredienti sono stati utilizzati come ingredienti principali nella regola di priorizzazione (Figura 6B).
Il punteggio di copertura ha posizionato Guanhuangbo, Mahuang e Niuxi al primo posto in classifica (punteggio = 38 ciascuno; Figura 6C). Ognuno di essi copriva tutti e cinque i bersagli disponibili e conteneva due ingredienti associati a MMP1. La matrice ingredienti-bersagli ha mostrato che la quercetina garantiva la copertura più ampia tra tutti i bersagli analizzati, mentre la luteolina e la berberina fornivano ulteriore connettività centrata su MMP1 (Figura 6D). Una rete mirata ha collegato le erbe principali a ingredienti rappresentativi e ai cinque bersagli disponibili (Figura 6E). Questi risultati hanno identificato combinazioni erba-ingrediente-bersaglio con elevata copertura nei database, da sottoporre a ulteriore valutazione. Le matrici di supporto per la copertura erbe-bersagli e ingredienti principali sono mostrate nella Figura supplementare 5A,B.
Saggi preliminari su tessuti accoppiati mostrano una maggiore abbondanza di mRNA e proteina MMP1
La valutazione mediante Western blot ha mostrato un'abbondanza maggiore di MMP1 nei campioni di DFU rispetto ai corrispondenti campioni del tessuto perilesionale non ulcerato (Figura 7A,B). Le tre coppie appaiate hanno mostrato una differenza media nel rapporto MMP1/cofilina (ulcera meno perilesionale) di 0,3553 (IC 95%, 0,1959–0,5147; test t appaiato a due code, t(2) = 9,592, p = 0,0107). Le misurazioni appaiate di ciascun paziente sono riportate nella Figura 7B. Dopo aver mediato cinque pozzetti tecnici per gene per ciascun campione, la qPCR ha mostrato un'abbondanza normalizzata di mRNA di MMP1 maggiore in ciascuno dei quattro campioni di DFU rispetto al corrispondente campione perilesionale (Figura 7C). La differenza media all'interno del paziente (ulcera meno perilesionale) nel ΔCq è stata di −2,6035 (IC 95%, −2,8024 a −2,4046; test t appaiato a due code, t(3) = −41,663, p = 3,04 × 10−5), corrispondente a un aumento geometrico medio di 6,08 volte (IC 95%, 5,30–6,98). Queste osservazioni, ottenute con un piccolo numero di campioni, sono preliminari e non dimostrano un effetto funzionale.
Nei dataset di scoperta e nei dataset esterni in bulk, MMP1 ha mostrato il modello descrittivo più coerente tra i sei geni prioritizzati, anche se la replicazione statistica non è stata completa. I riassunti a livello di singola cellula hanno evidenziato l'espressione media più elevata nei fibroblasti, e le misurazioni accoppiate di WB da tre pazienti e le misurazioni accoppiate di qPCR da quattro pazienti hanno mostrato un'abbondanza maggiore di MMP1. Queste osservazioni supportano MMP1 come candidato associato alle ulcere del piede diabetico (DFU) da approfondire in ulteriori indagini. Il flusso di lavoro complessivo, dalla computazione alla valutazione tissutale, è riassunto nella Supplementary Figure 6.
DISPONIBILITÀ DEI DATI:
I set di dati transcriptomici pubblici sono disponibili presso l'NCBI Gene Expression Omnibus con i numeri di accessione GSE199939, GSE68183, GSE80178, GSE134431 e GSE165816. Nell'File Supplementare 1 sono inclusi gli script disponibili per l'analisi e la generazione di figure, tabelle di espressione e risultati elaborati, tabelle sorgenti quantitative per le figure, tabelle di output statistici, la cartella di lavoro originale per la qPCR e il progetto strumentale, nonché le immagini originali non ritagliate dei blot western fornite. L'archivio contiene inoltre metadati cellulari estratti, cronologia dei comandi dall'oggetto single-cell recuperato, rapporti di verifica del tipo di matrice e un elenco dei file. L'File Supplementare 1 conserva i file sorgenti storici e include una cartella R2_Updates contenente le tabelle sorgenti riviste per il saggio accoppiato, gli output statistici, il codice per la generazione delle figure e l'inventario corretto dei parametri. L'analisi completa in formato Seurat RDS è indicata nella documentazione dell'archivio ma non è incorporata in questo file ZIP supplementare. La cronologia completa della fusione bulk, le impostazioni originali di filtraggio e annotazione single-cell e i dettagli completi relativi alla sottrazione dello sfondo nei blot e alla quantificazione per banda non sono interamente disponibili; tali limitazioni sono descritte nel protocollo e nella discussione. L'RDS recuperato localmente non è stato depositato in un archivio pubblico.

Figura 1: La trascrittomica di scoperta identifica un programma di espressione associato all'ulcera del piede diabetico (DFU). (A) Panoramica del flusso di lavoro computazionale, comprendente la costruzione del set genico DPN, l'analisi di scoperta su GSE199939, l'integrazione di rete e di apprendimento automatico, la valutazione su dati bulk e single-cell, e la previsione degli ingredienti-target-erbe nella medicina tradizionale cinese (TCM). (B) Analisi delle componenti principali dei profili di espressione di GSE199939 sottoposti a trasformazione stabilizzante la varianza (VST) ottenuti da 10 campioni DFU e 11 campioni di controllo. Le ellissi indicano le regioni del gruppo al 90%; le percentuali indicano la varianza spiegata da ciascuna componente. (C) Diagramma a vulcano dei risultati dell'analisi differenziale di espressione con DESeq2 per DFU rispetto al controllo. I punti rossi e turchesi indicano geni sovraespressi rispettivamente in DFU e nel controllo, utilizzando |log2 fold change| > 1 e p corretto con BH < 0,05; i punti grigi non soddisfano entrambi i criteri. (D) Mappa termica dei punteggi z per riga dei 50 geni con i valori di p corretti più bassi. Le colonne rappresentano i campioni biologici e la barra di annotazione indica il gruppo. DEGs, geni diversamente espressi; DFU, ulcera del piede diabetico; DPN, neuropatia periferica diabetica; VST, trasformazione stabilizzante la varianza. La valutazione sperimentale finale è descritta nel protocollo e nella Figura 7. qPCR, reazione a catena della polimerasi quantitativa; TCM, medicina tradizionale cinese; RF, foresta casuale; LASSO, operatore di selezione e riduzione assoluta minima; SVM-RFE, eliminazione ricorsiva delle caratteristiche mediante macchina a vettori di supporto. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 2: WGCNA e conoscenze pregresse su DPN convergono su 77 geni candidati. (A) Valutazione della soglia morbida della rete con segno per i 5.000 geni con maggiore variabilità trasformati con VST. La potenza selezionata era beta = 18; la linea tratteggiata indica l'adattamento desiderato alla topologia scale-free di 0,85. (B) Dendrogramma genico con assegnazione dinamica dei colori dei moduli basata sul legame medio. (C) Correlazioni di Pearson tra gli eigengeni dei moduli e il carattere binario DFU. Ogni cella mostra il coefficiente di correlazione e il corrispondente valore p a due code; il colore indica direzione e intensità. (D) Significatività genica per DFU rispetto all'appartenenza al modulo nel modulo blu. I punti blu soddisfano |appartenenza al modulo| > 0,8 e |significatività genica| > 0,5; n = 689 geni hub. (E) Intersezione tra tre insiemi: 3.691 DEG, 689 geni hub del modulo blu e 1.062 geni associati a DPN, che produce 77 candidati comuni. DFU, ulcera del piede diabetico; DPN, neuropatia periferica diabetica; GS, significatività genica; MM, appartenenza al modulo; WGCNA, analisi della rete di co-espressione genica pesata. Il gruppo di scoperta comprendeva 21 campioni (10 DFU e 11 controlli). L'annotazione della Figura 2D utilizza |MM| > 0,8 e |GS| > 0,5, coerentemente con il criterio basato sul valore assoluto verificato nel codice originale di selezione. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 3: La priorizzazione delle caratteristiche multimetodo produce un pannello di sei geni. (A) Curva di validazione incrociata a cinque ripetizioni per la regressione LASSO binomiale. Le linee verticali tratteggiate indicano lambda.min e lambda.1se; le caratteristiche non nulle selezionate sono state prese a lambda.1se, a meno che quella penalità non abbia prodotto nessuna caratteristica. (B) Riduzione media del Gini nella foresta casuale per i 20 geni con punteggio più alto da un modello di 1.000 alberi. Le barre rosse identificano i membri del pannello finale di sei geni; la linea tratteggiata indica l'importanza media utilizzata come soglia di mantenimento per l'intero insieme di candidati. (C) AUC della LOOCV con SVM lineare-RFE attraverso sottoinsiemi annidati di caratteristiche. Tutte le dimensioni dei sottoinsiemi hanno prodotto AUC = 1,00; CHEK1 è stato selezionato secondo la regola del legame a dimensione minima, indicando un overfitting nel coorte di scoperta. (D) Matrice di supporto dei metodi per CCL7, CHEK1, MKI67, MMP1, MMP13 e TRPV2. I punti indicano la selezione tramite LASSO, foresta casuale o SVM-RFE; l'ultima colonna riporta il numero di metodi di supporto. (E) Termini selezionati di Gene Ontology arricchiti tra i sei geni. La posizione dei punti mostra il rapporto genico, le etichette dei punti indicano il numero di geni mappati, il colore mostra il -log10 del p aggiustato BH e la striscia laterale denota l'ontologia. (F) Percorsi KEGG arricchiti tra i geni mappati. La posizione dei punti mostra l'arricchimento in termini di fold, le dimensioni delle etichette dei punti indicano il numero di geni mappati e il colore distingue i percorsi. L'arricchimento richiedeva un p nominale < 0,05 e un p aggiustato BH < 0,05. AUC, area sotto la curva ROC; BH, Benjamini-Hochberg; BP, processo biologico; CC, componente cellulare; KEGG, Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes; LOOCV, validazione incrociata leave-one-out; MF, funzione molecolare; SVM-RFE, eliminazione ricorsiva delle caratteristiche mediante macchina a vettori di supporto. LASSO, operatore di selezione e riduzione assoluta minima. I pannelli A–D utilizzano i 21 campioni di scoperta (10 DFU e 11 controlli). Nel pannello A, le barre di errore indicano l'errore standard dell'errore di validazione incrociata. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 4: Valutazione trascrittomica bulk su dataset incrociati del pannello di sei geni. (A) Espressione dei sei geni nella matrice fusa GSE68183/GSE80178 (6 controlli e 9 campioni di DFU). (B) Curve ROC corrispondenti per singolo gene con valori di AUC; gli intervalli di confidenza al 95% sono riportati nella tabella dei dati sorgente. Poiché la fusione iniziale e la correzione per batch non sono state completamente documentate, questi risultati sono stati interpretati come esplorativi. (C) Espressione log2(RPKM + 1) in GSE134431 (8 campioni di DFS non ulcerati e 13 campioni di DFU). (D) Curve ROC corrispondenti per singolo gene e valori di AUC. In (A) e (C), i box mostrano la mediana e l'intervallo interquartile, i baffi si estendono fino a 1,5 volte l'intervallo interquartile e i punti rappresentano i campioni biologici. Gli asterischi indicano significatività nominale ottenuta da test di Wilcoxon rank-sum bilaterali (*p < 0,05, **p < 0,01); i valori di p aggiustati con metodo BH per i sei geni sono riportati nel testo e nella tabella dei dati sorgente. La direzione ROC è stata selezionata automaticamente da pROC. AUC, area sotto la curva caratteristica operativa del ricevitore; DFS, cute di piede diabetico non ulcerata; DFU, ulcera del piede diabetico; RPKM, letture per chilobase per milione di letture mappate; ROC, caratteristica operativa del ricevitore. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 5: La localizzazione a singola cellula associa MMP1 ai segnali di rimodellamento da parte dei fibroblasti e della matrice. (A) UMAP di 69.944 cellule provenienti da 24 campioni (10 controlli e 14 campioni di DFU), colorati in base alle 10 annotazioni dei tipi cellulari ottenute con SingleR. (B) Grafici delle caratteristiche UMAP che mostrano l'espressione normalizzata di MMP1 nelle cellule di controllo e DFU. (C) Riassunto per tipo cellulare dell'espressione media normalizzata di MMP1; la dimensione dei punti e le etichette indicano la frazione complessiva di cellule positive per MMP1, definita come espressione normalizzata > 0. (D) Espressione media di MMP1 a livello di campione in cellule endoteliali, fibroblasti e cheratinociti. I riquadri mostrano la mediana e l'intervallo interquartile; i punti rappresentano i campioni biologici. Sono stati eseguiti test bilaterali di Wilcoxon rank-sum seguiti da correzione BH per tutti i tipi cellulari testati. I numeri disponibili di campioni erano 10 controlli e 14 DFU per cellule endoteliali e fibroblasti, e 9 controlli e 14 DFU per cheratinociti. (E) Frazioni di cellule positive per MMP1 per gruppo e tipo cellulare. (F) Correlazioni di Spearman per cellula tra l'espressione di MMP1 e i punteggi dei moduli funzionali. (G) Arricchimento dei processi biologici GO tra i geni upregolati nei fibroblasti MMP1-alti rispetto ai fibroblasti MMP1-bassi. BH, Benjamini-Hochberg; DFU, ulcera del piede diabetico; ECM, matrice extracellulare; GO, Gene Ontology; HSC, cellule staminali ematopoietiche; UMAP, uniform manifold approximation and projection. Le correlazioni per cellula e l'arricchimento condizionato all'espressione nei pannelli F e G sono descrizioni esplorative, senza inferenza confermativa che tenga conto del donatore. L'indipendenza a livello di campione richiede la verifica degli identificatori dei donatori. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 6: Previsione basata sul coverage degli ingredienti, bersagli ed erbe della medicina tradizionale cinese centrata su MMP1. (A) Numero di record erba-ingrediente-bersaglio filtrati nel database per ciascun bersaglio candidato disponibile. (B) Numero di erbe associate agli ingredienti più frequenti; in turchese sono indicati gli ingredienti collegati a MMP1. (C) Erbe principali ordinate in base al punteggio di coverage; le barre dorate indicano i tre punteggi più alti in assoluto. (D) Matrice ingrediente-bersaglio per ingredienti rappresentativi con alto coverage. I valori delle celle mostrano il numero di erbe collegate; le celle vuote indicano l'assenza di record nella tabella delle relazioni filtrata. (E) Rete dettagliata che collega erbe, ingredienti e bersagli candidati con punteggio elevato. Il colore dei nodi indica il tipo di entità; i collegamenti erba-ingrediente in grigio indicano contenimento, mentre i collegamenti ingrediente-bersaglio in turchese indicano link presenti nel database. La tabella delle relazioni filtrata conteneva 561 record univoci, 99 erbe, 14 ingredienti e cinque bersagli con collegamenti qualificanti; CCL7 è mostrato come un sesto nodo candidato isolato. TCM, medicina tradizionale cinese. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figura 7: Valutazione preliminare mediante qPCR e western blot del tessuto del paziente dell'espressione di MMP1 nel DFU. (A) Western blot rappresentativo fornito in precedenza che mostra l'abbondanza proteica di MMP1 nel tessuto perilesionale non ulcerato e nel tessuto DFU, con cofilina come controllo di caricamento. (B) Rapporti MMP1-cofilina recuperati dal progetto originale di tracciamento grafico. I simboli indicano singole misurazioni biologiche di tre coppie di pazienti; le linee collegano campioni appaiati di tessuto perilesionale e DFU. Il test t appaiato bilaterale ha dato t(2) = 9,592 e p = 0,0107. (C) Abbondanza relativa di mRNA di MMP1 in quattro coppie di pazienti appaiate confermate dagli autori: NC–DFU, NC1–DFU1, NC2–DFU2 e NC3–DFU3. Cinque pozzetti tecnici per ACTB e cinque pozzetti tecnici per MMP1 sono stati mediati separatamente all'interno di ciascun campione prima del calcolo di ΔCq. L'espressione relativa è stata calcolata con il metodo 2−ΔΔCq utilizzando la media di ΔCq del tessuto perilesionale come calibratore comune. Ogni simbolo rappresenta un singolo campione biologico; le linee collegano tessuti appaiati. Il test t appaiato bilaterale ha utilizzato i valori di ΔCq a livello di campione (t(3) = −41,663; p = 3,04 × 10−5), non le variazioni di espressione nei pozzetti tecnici. Non vengono utilizzati asterischi di significatività. I pozzetti tecnici non sono replicati biologici. Controllo indica tessuto perilesionale non ulcerato. Cq, ciclo di quantificazione. I valori di p relativi al tessuto e al saggio sono nominali ed esplorativi. Cliccare qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
| Gene | Accesso RefSeq | Primer diretto da 5 prime a 3 prime | Primer inverso da 5 prime a 3 prime |
| MMP1 | NM_002421 | ATGAAGCAGCCCAGATGTGGAG | TGGTCCACATCTGCTCTTGGCA |
| ACTB | NM_001101.5 | CACCATTGGCAATGAGCGGTTC | AGGTCTTTGCGGATGTCCACGT |
Tabella 1: Sequenze dei primer per la validazione tramite PCR quantitativa di MMP1. Sono riportate le sequenze oligonucleotidiche dirette e inverse (5′–3′) e gli identificativi dei trascritti NCBI RefSeq per MMP1 umano (NM_002421) e ACTB (NM_001101.5). ACTB (β-actina) è stato utilizzato come gene di riferimento per l'espressione relativa di MMP1.
Figura supplementare 1: Riepiloghi del controllo qualità della WGCNA. (A) Clustering gerarchico con collegamento medio dei campioni GSE199939 basato sui 5.000 geni con maggiore variabilità trasformati con stabilizzazione della varianza. Le etichette dei campioni sono colorate per gruppo; la linea tratteggiata orizzontale rappresenta la guida dell'altezza del dendrogramma al 95° percentile utilizzata per la valutazione visiva degli outlier. (B) Numero di geni assegnati a ciascun modulo WGCNA. Le barre turchesi indicano gli otto moduli non grigi che soddisfano il criterio di associazione con DFU; le barre grigie indicano gli altri moduli. DFU, ulcera del piede diabetico; VST, trasformazione con stabilizzazione della varianza; WGCNA, analisi della rete di co-espressione genica pesata. Cliccare qui per scaricare questo file.
Figura supplementare 2: Supporto per la co-espressione del modulo blu. (A) Rete semplificata di co-espressione dei 25 geni hub del modulo blu con rango più alto. Tra le correlazioni a coppie con |r| > 0,70, la rete visualizzata contiene l'unione dei due collegamenti più forti per ciascun gene. La dimensione dei nodi indica il grado all'interno di questa rete visualizzata e semplificata, mentre il colore di riempimento indica la significatività genica per l'ulcera del piede diabetico (DFU). (B) Significatività genica e appartenenza al modulo blu per i 15 hub con rango più alto. Il sottoinsieme di collegamenti è stato selezionato per migliorare la leggibilità e non rappresenta tutte le correlazioni valide. DFU, ulcera del piede diabetico; GS, significatività genica; MM, appartenenza al modulo. Cliccare qui per scaricare il file.
Figura supplementare 3: Rappresentazioni grafiche dell'analisi con apprendimento automatico nella coorte di scoperta. (A) Espressione normalizzata di CCL7, CHEK1, MKI67, MMP1, MMP13 e TRPV2 nella coorte di scoperta GSE199939. I box mostrano la mediana e l'intervallo interquartile, mentre i punti rappresentano i campioni biologici. (B) Mappa termica dei punteggi z-score a livello di campione per gli stessi sei geni. Le etichette brevi dei campioni sono associate agli identificatori GEO nella chiave dei dati di origine. (C) Curva ROC del modello multigenico adattato alla coorte di scoperta. Un valore AUC di 1,00 è stato ottenuto adattando e valutando il modello sugli stessi 21 campioni, indicando un overfitting nella coorte di scoperta. AUC, area sotto la curva caratteristica operativa del ricevitore; ROC, curva caratteristica operativa del ricevitore. La coorte di scoperta comprendeva 21 campioni (10 DFU e 11 controlli). Cliccare qui per scaricare questo file.
Figura supplementare 4: Contesto dell'espressione a singola cellula. (A) UMAP di 69.944 cellule colorate in base al gruppo di controllo e al gruppo DFU. (B) Espressione media di MMP1 a livello di campione biologico in tutte e 10 le annotazioni dei tipi cellulari; i punti rappresentano i campioni, e l'asse x utilizza una trasformazione della radice quadrata per la visualizzazione. (C) Mappa termica dei punteggi dei moduli funzionali riassunti tra le cellule all'interno di ciascun tipo cellulare annotato e standardizzati all'interno di ogni modulo. DFU, ulcera del piede diabetico; UMAP, uniform manifold approximation and projection. Cliccare qui per scaricare questo file.
Figura supplementare 5: Matrici di copertura del MTC di supporto. (A) Numero di record erbe-target presenti nel database per le 18 erbe con maggiore punteggio che presentano copertura associata a MMP1 e per i cinque target candidati rappresentati nella tabella delle relazioni filtrata. (B) Numero di record nel database che collegano le stesse erbe con i principi attivi principali quercetina, luteolina e berberina. I valori nelle celle indicano i record univoci del database dopo la rimozione dei duplicati. MTC, medicina tradizionale cinese. Cliccare qui per scaricare questo file.
Figura supplementare 6: Flusso di lavoro per la valutazione computazionale e tissutale. Lo schema riassume gli input della scoperta, l'intersezione DEG/WGCNA, la selezione esplorativa delle caratteristiche, la valutazione bulk esterna, il contesto a singola cellula, l'estensione TCM e la valutazione dell'espressione tissutale abbinata. La qPCR ha utilizzato quattro coppie di pazienti abbinate e il western blotting ha utilizzato tre coppie di pazienti abbinate. I conteggi dei candidati e i risultati computazionali riportati sono stati mantenuti dall'analisi originale. L'input TPM nel flusso di lavoro di scoperta basato sui conteggi, i record incompleti della pre-elaborazione originale a singola cellula e i piccoli cohort per i saggi tissutali rimangono limitazioni. Lo schema non implica che le analisi di scoperta siano state revalidate. Cliccare qui per scaricare questo file.
Tabella Supplementare 1: Elenco del software, database, parametri e limitazioni per l'analisi. Questo file documenta 26 passaggi analitici, indicando il passaggio di analisi, lo strumento o database utilizzato, la versione riportata, gli input, i parametri principali, gli output e le informazioni mancanti o le limitazioni. Comprende trascrittomica di scoperta, WGCNA, screening genico e selezione di caratteristiche, arricchimento, analisi esterne bulk e single-cell, analisi di rete TCM e reportistica degli esperimenti su tessuti. La tabella riporta le informazioni metodologiche disponibili e non stabilisce di per sé un'indipendente riproducibilità. Cliccare qui per scaricare il file.
File Supplementare 1: Archivio di dati, codice di analisi, figure originali e saggi originali. Questo archivio contiene gli script disponibili per l'analisi e la generazione delle figure, tabelle di espressione e risultati elaborati, dati numerici e statistici originali per le figure, la cartella di lavoro originale per la qPCR e il progetto dello strumento, immagini non ritagliate dei blot western fornite, metadati e cronologia dei comandi per singola cellula, rapporti di verifica in formato matrice e un elenco dei file. I file storici sono stati conservati; la cartella R2_Updates fornisce l'analisi corretta dei saggi accoppiati, le figure originali aggiornate e l'inventario dei parametri rivisto. Cliccare qui per scaricare questo file.