RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
it_IT
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Fonte: Laboratori del Dr. Ian Pepper e del Dr. Charles Gerba - Università dell'Arizona
Autore dimostrativo: Bradley Schmitz
Il suolo comprende il sottile strato sulla superficie terrestre, contenente fattori biotici e abiotici che contribuiscono alla vita. La porzione abiotica comprende particelle inorganiche di dimensioni e forma variabili che determinano la consistenza del suolo. La porzione biotica incorpora residui vegetali, radici, materia organica e microrganismi. L'abbondanza e la diversità dei microbi del suolo è espansiva, poiché un grammo di terreno contiene 10batteri 7-8, 10 6-8 actinomiceti,10 funghi 5-6, 10 3 lieviti,10 4-6 protozoi,10 3-4 alghe e 53 nematodi. Insieme, i fattori biotici e abiotici formano architetture attorno alle radici delle piante, note come rizosfera, che forniscono condizioni favorevoli per i microrganismi del suolo.
I fattori biotici e abiotici promuovono la vita nei suoli. Tuttavia, contribuiscono anche a dinamiche stressanti che limitano i microbi. Lo stress biotico comporta la competizione tra la vita per adattarsi e sopravvivere in condizioni ambientali. Ad esempio, i microbi possono secernere sostanze inibitorie o tossiche per danneggiare i microrganismi vicini. Penicillium notatum è un fungo famigerato, in quanto riduce la competizione per i nutrienti producendo un antimicrobico, che gli esseri umani raccolgono per creare la penicillina farmaceutica. Gli stress abiotici derivano da proprietà fisiche o chimiche che limitano la sopravvivenza microbica, come luce, umidità, temperatura, pH, sostanze nutritive e consistenza.
1. Preparazione del microcosmo del scivolo del suolo
2. Colorazione e microscopia a vetrino

Figura 1. Un vetrino al microscopio.
Le relazioni tra i vari organismi e i componenti inorganici nel suolo sono vitali per comprendere i cambiamenti del suolo e gli stress ambientali, ma non possono essere chiarite senza una visualizzazione diretta.
Il suolo, un sistema estremamente complesso, è un habitat per milioni di organismi diversi. La regione del suolo direttamente intorno alle radici delle piante in particolare, chiamata rizosfera, contiene una serie unica di organismi che sono direttamente influenzati dalle radici delle piante.
La componente abiotica, o non biologica, della rizosfera comprende particelle inorganiche di dimensioni e forma variabili che contribuiscono alla consistenza del suolo. La porzione biotica, o biologica, comprende residui vegetali, radici, materia organica e microrganismi.
Questo video dimostrerà la visualizzazione diretta dei componenti biotici e abiotici del suolo della rizosfera, al fine di comprendere i fattori che influenzano i cambiamenti del suolo e prevedere gli stress ambientali.
Gli organismi microscopici tendono a risiedere nell'acqua situata all'interno dei pori del suolo. I batteri sono tra gli organismi più semplici e abbondanti presenti nel suolo e si trovano in molte morfologie tra cui sfere chiamate cocchi, bastoncelli chiamati bacilli e forme filamentose.
Le specie fungine, come lieviti e muffe, sono i secondi organismi più abbondanti nel suolo. Lavorano per decomporre e riciclare la materia organica morta. I funghi filamentosi microscopici differiscono visivamente dagli altri microrganismi, in quanto possiedono ife lunghe e ramificate che rilasciano spore.
L'osservazione diretta delle relazioni tra questi organismi è impegnativa, ma può essere ottenuta utilizzando un test di vetrino a contatto. Questo metodo viene eseguito immergendo un vetrino nel terreno per diversi giorni e consentendo agli organismi e alle particelle del suolo di adsorbirsi sulla superficie del vetrino.
La diapositiva viene quindi rimossa ad angolo per evitare sbavature della superficie. I microbi sono fissati con acido acetico e colorati con macchia Rose Bengal per consentire la visualizzazione tramite microscopia ottica.
Ora che hai compreso i principi alla base della tecnica di analisi del vetrino a contatto, diamo un'occhiata al processo in laboratorio.
Per prima cosa, raccogli il terreno del giardino superficiale e trasferisci il terreno in laboratorio. Pesare 150 g di terreno nei 2 contenitori separati. Un contenitore deve essere etichettato come campione di trattamento, che sarà modificato con sostanze nutritive per incoraggiare una rapida proliferazione degli organismi. Etichettare l'altro come controllo, che rimarrà invariato.
Calcola il contenuto di acqua nel terreno, utilizzando la tecnica mostrata nel video Determinazione del contenuto di umidità nel suolo di questa raccolta. Sulla base di questo calcolo, determinare la quantità di acqua nel terreno su una base di peso secco. Ora calcola la quantità di acqua che deve essere aggiunta per dare un contenuto di umidità del suolo del 15%. Questo porta l'umidità alla capacità del campo, ottimale per la crescita dei microrganismi.
Misurare la quantità calcolata di acqua distillata utilizzando un cilindro graduato. Versare il volume d'acqua calcolato in ciascun contenitore. Sulla base del peso secco precedentemente determinato del terreno, calcolare la quantità di glucosio necessaria per ottenere una concentrazione finale di glucosio nel suolo dell'1% in massa, utilizzando la base del peso secco. Pesare questa quantità di glucosio e aggiungerla solo al contenitore di trattamento.
Pesare 200 mg di nitrato di ammonio, quindi aggiungerlo solo al contenitore di trattamento. Il nitrato di ammonio funge da fonte di nutrienti azotati per i microbi del suolo. Mescolare la miscela di terreno, glucosio e nitrato di ammonio nel contenitore.
Quindi, etichettare 4 vetrini per microscopio puliti: due come trattamento e due come controllo. Inserire i due vetrini di trattamento nel contenitore del terreno di trattamento. Lasciare una sezione di ogni diapositiva esposta sopra la superficie del terreno e assicurarsi che vi sia uno spazio tra le due diapositive.
Inserire le due diapositive di controllo nel contenitore del terreno di controllo nello stesso modo. Coprire le tazze con un involucro di plastica e fissare con un elastico. Forare più volte l'involucro di plastica per consentire il trasferimento d'aria, ma evitare comunque un'eccessiva evaporazione.
Infine, pesare entrambe le tazze, registrarne il peso e incubarle in un'area designata a temperatura ambiente per sette giorni.
Dopo l'incubazione di sette giorni, calcola il contenuto di umidità del suolo pesando le tazze del terreno. Determinare se il peso è stato perso a causa dell'evaporazione dell'acqua e sostituire l'acqua se necessario.
Rimuovere l'involucro di plastica dal contenitore e rimuovere i due vetrini dal terreno premendo ogni diapositiva in posizione inclinata e ritirandosi in modo che la faccia superiore della diapositiva sia indisturbata.
Picchiettare delicatamente le diapositive per rimuovere le particelle di terreno di grandi dimensioni. Usando un asciugamano di carta umido, pulire la faccia inferiore delle diapositive. Lasciarli asciugare a temperatura ambiente in una cappa aspirante. Una volta asciutto, raccogliere un vetrino con una pinica e immergerlo in acido acetico per 1-3 minuti.
Risciacquare la parte superiore del vetrino con un leggero flusso di acqua distillata per rimuovere l'acido in eccesso. Ripetere questi passaggi per tutte le diapositive. Lasciare asciugare all'aria le diapositive.
Sostenere la diapositiva su un rack di colorazione sopra un contenitore per catturare il colorante in eccesso. Usando un contagocce, coprire delicatamente la superficie di ogni diapositiva con colorante fenolico Rose Bengal. Lasciare macchiare le diapositive per 5-10 minuti, avendo cura di aggiungere più colorante secondo necessità per mantenere le diapositive bagnate. Risciacquare delicatamente i vetrini con acqua per rimuovere le macchie in eccesso e lasciare asciugare le diapositive a temperatura ambiente.
Esaminare i vetrini su un microscopio ottico, utilizzando un obiettivo di immersione in olio. Il terreno trattato avrà più microbi del suolo.
Le interazioni spaziali tra organismi fungini e batterici nei tipici campioni di suolo possono essere facilmente visualizzate. Le particelle di suolo mostrano forme scure irregolari.
Gli organismi fungini mostrano spesse ife filamentose, mentre gli actinomiceti mostrano sottili ife filamentose.
I batteri si trovano come piccoli cocchi o forme di bastoncello, tipicamente in ciuffi, particelle di terreno o ife fungine di rivestimento.
L'isolamento diretto degli organismi dal suolo è importante per la comprensione delle caratteristiche del suolo e dell'ambiente.
I nematodi entomopatogeni sono vermi rotondi microscopici che parassitano gli insetti. Sebbene non siano visualizzati nel test del vetrino di contatto, possono essere isolati dai campioni di terreno raccolti, come mostrato in questo esempio.
In primo luogo, i nematodi sono stati innescati nel terreno usando insetti identificati dall'esame visivo. I nematodi sono stati isolati dall'esca degli insetti morti, posizionando gli insetti morti in un ambiente umido e buio e permettendo ai nematodi di migrare nell'acqua circostante. I nematodi sono stati quindi raccolti dall'acqua e analizzati.
I funghi filamentosi sono vitali per la salute del suolo a causa del loro ruolo nel riciclaggio dei nutrienti. L'isolamento e l'osservazione di funghi filamentosi dal suolo sono stati condotti in questo esempio.
I campioni di terreno sono stati diluiti con acqua e aggiunti a piastre sterili separate di streptomicina agar Rose Bengal. La streptomicina ha impedito la crescita batterica e ha permesso la crescita dei funghi. Le colonie fungine sono state contate e montate su un vetrino usando nastro adesivo. I funghi sono stati poi ripresi usando un microscopio ottico.
I microrganismi del suolo scompongono naturalmente i componenti nel suolo, come piante e organismi morti. È stata esaminata la biodegradazione e la colonizzazione di film plastici biodegradabili, come mostrato in questo esempio.
I funghi sono stati isolati da film plastici sepolti nel terreno per diversi mesi. I funghi sono stati poi testati individualmente per la crescita su film plastici. I film plastici sono stati quindi incubati con il ceppo fungino selezionato senza mezzi di crescita, al fine di osservare la degradazione diretta della plastica da parte dei funghi.
Hai appena visto l'introduzione di JoVE al test del vetrino a contatto per l'imaging qualitativo dei microbi del suolo. Ora dovresti capire come preparare la diapositiva di contatto e visualizzare i microbi del suolo. Grazie per l'attenzione!
Le relazioni tra i vari organismi e i componenti inorganici del suolo sono vitali per comprendere i cambiamenti del suolo e gli stress ambientali, ma non possono essere chiarite senza una visualizzazione diretta.
Il suolo, un sistema estremamente complesso, è l'habitat di milioni di organismi diversi. In particolare, la regione del suolo che circonda le radici delle piante, chiamata rizosfera, contiene una serie unica di organismi che sono direttamente influenzati dalle radici delle piante.
La componente abiotica, o non biologica, della rizosfera comprende particelle inorganiche di dimensioni e forma variabili che contribuiscono alla struttura del suolo. La parte biotica, o biologica, comprende residui vegetali, radici, materia organica e microrganismi.
Questo video dimostrerà la visualizzazione diretta delle componenti biotiche e abiotiche del suolo della rizosfera, al fine di comprendere i fattori che influenzano i cambiamenti del suolo e di prevedere gli stress ambientali.
Gli organismi microscopici tendono a risiedere nell'acqua situata all'interno dei pori del suolo. I batteri sono tra gli organismi più semplici e abbondanti presenti nel suolo e si trovano in molte morfologie, tra cui sfere chiamate cocchi, bastoncelli chiamati bacilli e forme filamentose.
Le specie fungine, come lieviti e muffe, sono i secondi organismi più abbondanti nel suolo. Lavorano per decomporre e riciclare la materia organica morta. I funghi filamentosi microscopici differiscono visivamente dagli altri microrganismi, in quanto possiedono ife lunghe e ramificate che rilasciano spore.
L'osservazione diretta delle relazioni tra questi organismi è impegnativa, ma può essere ottenuta utilizzando un saggio su vetrino a contatto. Questo metodo viene eseguito immergendo un vetrino nel terreno per diversi giorni e consentendo agli organismi e alle particelle del terreno di adsorbirsi sulla superficie del vetrino.
La slitta viene quindi rimossa ad angolo per evitare sbavature sulla superficie. I microbi sono fissati con acido acetico e colorati con la colorazione Rose Bengal per consentire la visualizzazione tramite microscopia ottica.
Ora che hai compreso i principi alla base della tecnica del saggio su vetrino a contatto, diamo un'occhiata al processo in laboratorio.
Per prima cosa, raccogli il terreno superficiale del giardino e trasferisci il terreno in laboratorio. Pesare 150 g di terra nei 2 contenitori separati. Un contenitore deve essere etichettato come campione di trattamento, che verrà modificato con sostanze nutritive per incoraggiare la rapida proliferazione degli organismi. Etichetta l'altro come controllo, che rimarrà invariato.
Calcola il contenuto d'acqua nel suolo, utilizzando la tecnica mostrata nel video Determinazione del contenuto di umidità nel suolo di questa raccolta. Sulla base di questo calcolo, determinare la quantità di acqua nel terreno in base al peso secco. Ora calcola la quantità di acqua che deve essere aggiunta per ottenere un contenuto di umidità del suolo del 15%. Questo porta l'umidità alla capacità del campo, ottimale per la crescita dei microrganismi.
Misurare la quantità calcolata di acqua distillata utilizzando un cilindro graduato. Versare il volume d'acqua calcolato in ogni contenitore. Sulla base del peso secco del terreno precedentemente determinato, calcolare la quantità di glucosio necessaria per raggiungere una concentrazione finale di glucosio nel suolo dell'1% in massa, utilizzando la base del peso secco. Pesare questa quantità di glucosio e aggiungerla solo al contenitore per il trattamento.
Pesare 200 mg di nitrato di ammonio, quindi aggiungerlo solo al contenitore di trattamento. Il nitrato di ammonio funge da fonte di nutrienti azotati per i microbi del suolo. Mescola la miscela di terreno, glucosio e nitrato di ammonio nel contenitore.
Quindi, etichettare 4 vetrini da microscopio puliti: due come trattamento e due come controllo. Inserire i due vetrini di trattamento nel contenitore del terreno di trattamento. Lasciare una sezione di ogni scivolo esposta sopra la superficie del terreno e assicurarsi che ci sia uno spazio tra i due scivoli.
Inserire allo stesso modo le due slitte di controllo nel contenitore del terreno di controllo. Copri le tazze con pellicola trasparente e fissale con un elastico. Forare più volte l'involucro di plastica per consentire il trasferimento dell'aria, ma evitare comunque un'eccessiva evaporazione.
Infine, pesa entrambe le coppette, registra il loro peso e incubale in un'area designata a temperatura ambiente per sette giorni.
Dopo l'incubazione di sette giorni, calcolare il contenuto di umidità del suolo pesando le tazze del terreno. Determinare se il peso è stato perso a causa dell'evaporazione dell'acqua e, se necessario, sostituire l'acqua.
Rimuovere l'involucro di plastica dal contenitore e rimuovere i due vetrini dal terreno premendo ciascuno scivolo in posizione inclinata e ritirandolo in modo che la faccia superiore del vetrino non sia disturbata.
Picchiettare delicatamente i vetrini per rimuovere le particelle di terreno più grandi. Utilizzando un tovagliolo di carta umido, pulire la parte inferiore delle diapositive. Lasciarli asciugare a temperatura ambiente in una cappa aspirante. Una volta asciutto, raccogli un vetrino con una pinza e immergilo nell'acido acetico per 1-3 minuti.
Sciacquare la parte superiore del vetrino con un getto delicato di acqua distillata per rimuovere l'acido in eccesso. Ripeti questi passaggi per tutte le diapositive. Lasciare asciugare le diapositive all'aria.
Appoggiare il vetrino su una rastrelliera per la colorazione sopra un contenitore per raccogliere il colorante in eccesso. Utilizzando un contagocce, coprire delicatamente la superficie di ogni vetrino con colorante fenolico Rose Bengal. Lasciare macchiare i vetrini per 5-10 minuti, avendo cura di aggiungere altro colorante se necessario per mantenere i vetrini bagnati. Sciacquare delicatamente i vetrini con acqua per rimuovere le macchie in eccesso e lasciare asciugare i vetrini a temperatura ambiente.
Esaminare i vetrini al microscopio ottico, utilizzando un obiettivo a immersione in olio. Il terreno trattato avrà più microbi del suolo.
Le interazioni spaziali tra organismi fungini e batterici nei tipici campioni di suolo possono essere facilmente visualizzate. Le particelle di terreno mostrano forme irregolari scure.
Gli organismi fungini mostrano ife filamentose spesse, mentre gli attinomiceti mostrano ife filamentose sottili.
I batteri si trovano sotto forma di piccoli cocchi o bastoncini, tipicamente in ciuffi, sulle particelle di terreno o sulle ife fungine di rivestimento.
L'isolamento diretto degli organismi dal suolo è importante per la comprensione delle caratteristiche del suolo e dell'ambiente.
I nematodi entomopatogeni sono microscopici vermi rotondi che parassitano gli insetti. Sebbene non siano visualizzati nel saggio del vetrino a contatto, possono essere isolati dai campioni di terreno raccolti, come mostrato in questo esempio.
In primo luogo, i nematodi sono stati innescati nel terreno utilizzando insetti identificati dall'esame visivo. I nematodi sono stati isolati dall'esca dell'insetto morto, posizionando gli insetti morti in un ambiente umido e buio e permettendo ai nematodi di migrare nell'acqua circostante. I nematodi sono stati quindi raccolti dall'acqua e analizzati.
I funghi filamentosi sono vitali per la salute del suolo grazie al loro ruolo nel riciclaggio dei nutrienti. In questo esempio è stato condotto l'isolamento e l'osservazione di funghi filamentosi dal suolo.
I campioni di terreno sono stati diluiti con acqua e aggiunti a piastre sterili separate di agar streptomicina del Rose Bengal. La streptomicina ha impedito la crescita batterica e ha permesso la crescita dei funghi. Le colonie fungine sono state contate e montate su un vetrino utilizzando del nastro adesivo. I funghi sono stati quindi ripresi utilizzando un microscopio ottico.
I microrganismi del suolo scompongono naturalmente i componenti del suolo, come le piante e gli organismi morti. È stata esaminata la biodegradazione e la colonizzazione di film plastici biodegradabili, come mostrato in questo esempio.
I funghi sono stati isolati da film di plastica sepolti nel terreno per diversi mesi. I funghi sono stati poi testati individualmente per la crescita su film plastici. I film plastici sono stati quindi incubati con il ceppo fungino selezionato senza mezzi di crescita, al fine di osservare la degradazione diretta della plastica da parte dei funghi.
Avete appena visto l'introduzione di JoVE al saggio su vetrino a contatto per l'imaging qualitativo dei microbi del suolo. Ora dovresti capire come preparare il vetrino di contatto e visualizzare i microbi del suolo. Grazie per l'attenzione!
Related Videos
Environmental Microbiology
364.9K Visualizzazioni
Environmental Microbiology
136.4K Visualizzazioni
Environmental Microbiology
108.6K Visualizzazioni
Environmental Microbiology
63.8K Visualizzazioni
Environmental Microbiology
30.7K Visualizzazioni
Environmental Microbiology
47.6K Visualizzazioni
Environmental Microbiology
44.4K Visualizzazioni
Environmental Microbiology
53.6K Visualizzazioni
Environmental Microbiology
31.6K Visualizzazioni
Environmental Microbiology
44.6K Visualizzazioni
Environmental Microbiology
44.0K Visualizzazioni
Environmental Microbiology
190.0K Visualizzazioni
Environmental Microbiology
305.2K Visualizzazioni
Environmental Microbiology
14.8K Visualizzazioni