Fonte: Frederick W. Damen e Craig J. Goergen,Weldon School of Biomedical Engineering, Purdue University, West Lafayette, Indiana
In questo video, viene dimostrata la risonanza magnetica (MRI) ad alto campo e di piccolo diametro con monitoraggio fisiologico per acquisire circuiti cine gated del sistema cardiovascolare murino. Questa procedura fornisce una base per valutare la funzione ventricolare sinistra, visualizzare le reti vascolari e quantificare il movimento degli organi dovuto alla respirazione. Le modalità di imaging cardiovascolare di piccoli animali comparabili includono ultrasuoni ad alta frequenza e tomografia micro-computerizzata (TC); tuttavia, ogni modalità è associata a compromessi che dovrebbero essere considerati. Mentre gli ultrasuoni forniscono un’elevata risoluzione spaziale e temporale, gli artefatti di imaging sono comuni. Ad esempio, il tessuto denso (cioè lo sterno e le costole) può limitare la profondità di penetrazione dell’imaging e il segnale iperecoico all’interfaccia tra gas e liquido (cioè la pleura che circonda i polmoni) può offuscare il contrasto nel tessuto vicino. La micro-TC al contrario non soffre di tanti artefatti nel piano, ma ha una risoluzione temporale inferiore e un contrasto limitato dei tessuti molli. Inoltre, la micro-TC utilizza radiazioni a raggi X e spesso richiede l’uso di agenti di contrasto per visualizzare la vascolarizzazione, entrambi noti per causare effetti collaterali a dosi elevate, tra cui danni da radiazioni e lesioni renali. La risonanza magnetica cardiovascolare fornisce un buon compromesso tra queste tecniche negando la necessità di radiazioni ionizzanti e fornendo all’utente la possibilità di visualizzare senza agenti di contrasto (sebbene gli agenti di contrasto siano spesso utilizzati per la risonanza magnetica).
Questi dati sono stati acquisiti con una sequenza di risonanza magnetica Fast Low Angle SHot (FLASH) che è stata gated dai picchi R nel ciclo cardiaco e dai plateau espiratori nella respirazione. Questi eventi fisiologici sono stati monitorati attraverso elettrodi sottocutanei e un cuscino sensibile alla pressione che è stato fissato contro l’addome. Per garantire che il mouse fosse adeguatamente riscaldato, è stata inserita una sonda di temperatura rettale che è stata utilizzata per controllare l’uscita di una ventola di riscaldamento a prova di risonanza magnetica. Una volta che l’animale è stato inserito nel foro dello scanner MRI e sono state eseguite sequenze di navigazione per confermare il posizionamento, sono stati prescritti i piani di imaging FLASH gated e sono stati acquisiti i dati. Nel complesso, la risonanza magnetica ad alto campo è un potente strumento di ricerca in grado di fornire contrasto dei tessuti molli per lo studio di modelli di malattie di piccoli animali.
La risonanza magnetica è una tecnica che sfrutta le proprietà paramagnetiche dei tessuti per visualizzare il contrasto dei tessuti molli. Il foro di una macchina MRI viene convenzionalmente avvolto utilizzando una bobina solenoide che fornisce un campo magnetico omogeneo costante (B0) quando viene applicata una corrente elettrica. Nell’imaging murino ad alto campo presentato, viene utilizzata un’intensità del campo magnetico di 7 Tesla (T), che è circa 140.000 volte quella del campo magnetico terrestre e più del doppio delle comuni intensità cliniche dello scanner 3T e 1,5T. Questo campo magnetico omogeneo fa sì che i protoni di idrogeno inerenti a quasi tutti i tessuti viventi allineino i loro assi di rotazione. Questi spin possono quindi essere “ribaltati” usando onde a radiofrequenza (RF) ad un certo angolo rispetto all’asse di rotazione (cioè l’angolo di inversione). Mentre i protoni tentano di rilassarsi al loro orientamento originale, la componente del loro spin perpendicolare al loro asse principale induce un segnale elettrico rilevabile.
Inoltre, possono essere applicati gradienti magnetici che pertturano il campo magnetico principale e consentono eccitazioni RF isolate spazialmente per localizzare il segnale ricevuto. Specifica per i metodi qui descritti, la sequenza FLASH utilizza eccitazioni ripetitive ad angolo di capovolgimento basso per indurre un modello di stato stazionario nel movimento del protone. Questo paradigma consente ai tessuti che sono intrinsecamente dinamici, come nel sistema cardiovascolare, di essere ripresi rapidamente e ottenere istantanee relativamente stabili all’interno del ciclo cardiaco. Attraverso l’attivazione della sequenza FLASH con segnali fisiologici, è possibile acquisire immagini del sistema cardiovascolare che evidenziano sia il movimento cardiaco, vascolare e respiratorio.
1. Preparazione animale
2. Risonanza magnetica cardiaca – Questa sezione può essere adattata per altre applicazioni.
La risonanza magnetica ad alto campo di piccolo diametro, o risonanza magnetica cardiaca, valuta la funzione cardiovascolare senza l’uso di radiazioni ionizzanti o mezzi di contrasto.
Le modalità di imaging cardiovascolare comparabili includono ultrasuoni ad alta frequenza, che emettono un fascio di onde acustiche da un trasduttore e registrano gli echi creati mentre le onde si riflettono per generare immagini dal vivo. Fornisce immagini ad alta risoluzione spaziale e temporale; tuttavia, gli artefatti di imaging possono essere osservati a causa della limitata profondità di penetrazione nel tessuto denso.
Un’altra tecnica di imaging è la micro-TC, che richiede una serie di proiezioni a raggi X per creare sezioni trasversali 3D. Ha una risoluzione temporale inferiore e un contrasto limitato dei tessuti molli e spesso richiede l’uso di agenti di contrasto per visualizzare le strutture vascolari. Questi sono noti per causare danni da radiazioni e insufficienza renale a dosi elevate.
In alternativa, la risonanza magnetica utilizza forti elettromagneti per l’immagine dei tessuti nel corpo in base alle loro proprietà magnetiche. Nella risonanza magnetica cardiaca, le sequenze di risonanza magnetica convenzionali sono gated dai picchi R nel ciclo cardiaco e dai plateau espiratori nella respirazione per valutare la funzione cardiovascolare.
Questo video illustrerà come raccogliere dati MRI con una sequenza di attivazione veloce a basso angolo o flash MRI. Questa tecnica fornisce un contrasto dei tessuti molli di alta qualità per lo studio di modelli di malattie di piccoli animali.
La risonanza magnetica è una tecnica che utilizza le proprietà paramagnetiche del tessuto per visualizzare il contrasto dei tessuti molli. Il foro di una macchina MRI è convenzionalmente avvolto utilizzando una bobina solenoide che fornisce un campo magnetico omogeneo costante, B-zero, quando viene applicata una corrente elettrica.
Nell’imaging a specchio ad alto campo, è possibile impiegare un’intensità del campo magnetico di 7 Tesla, circa 140.000 volte quella del campo magnetico terrestre e più del doppio delle comuni intensità cliniche dello scanner 3-Tesla e 1,5-Tesla. Questo campo magnetico omogeneo fa sì che i protoni di idrogeno inerenti a quasi tutti i tessuti viventi allineino i loro assi di rotazione. Questi spin possono quindi essere ribaltati usando la radiofrequenza, o onde RF, ad un certo angolo rispetto all’asse di rotazione, noto anche come angolo di inversione.
Mentre i protoni tentano di rilassarsi al loro orientamento originale, la componente del loro spin perpendicolare al loro asse principale induce un segnale elettrico rilevabile, risultando in un’immagine. Inoltre, possono essere applicati gradienti magnetici che pertturano il campo magnetico principale e consentono eccitazioni RF isolate spazialmente per localizzare il segnale ricevuto. Specifica per i metodi descritti in questo video è la sequenza FLASH, che utilizza eccitazioni RF a basso angolo di capovolgimento che vengono rapidamente ripetute per indurre un modello di stato stazionario nel movimento del protone. Il tempo di ripetizione è molto più breve del tipico tempo di rilassamento del protone.
Quando l’idrogeno non escitato, come quello nel sangue, entra nel frame di imaging, viene prodotto un segnale relativamente alto. Ciò consente di visualizzare rapidamente il sistema cardiovascolare e fornire istantanee stabili all’interno del ciclo cardiaco. Attraverso l’attivazione della sequenza FLASH con segnali fisiologici, è possibile acquisire immagini del sistema cardiovascolare che evidenziano il movimento cardiaco, vascolare e respiratorio.
Dopo aver esaminato i principi fondamentali della risonanza magnetica cardiaca, passiamo ora attraverso la procedura passo-passo per preparare e immaginare un animale.
Innanzitutto, identifica il mouse da image, quindi trasferisci il mouse nella camera di abbattimento. Quindi, anestetizzare l’animale usando l’isoflurano e confermare il knockdown usando una tecnica di pizzicamento delle dita. Quindi, aprire il flusso di isoflurano al cono del naso nella sala mrI e chiudere il flusso di isoflurano alla camera di abbattimento. Questo innesca il tubo più lungo con anestetico.
Assicurarsi che tutto il personale sia sicuro per la risonanza magnetica, quindi trasferire il mouse nella fase di imaging e fissare il cono del naso attorno all’animale. Posizionare il mouse in modo tale che il suo cuore sia approssimativamente allineato con un centro della bobina RF. Quindi, riconfermare il knockdown usando la tecnica del pizzicamento della dita. Quindi, inserire i tre cavi dell’elettrocardiogramma per via sottocutanea. Posiziona una guinzaglio ciascuna a sinistra e a destra del cuore e una alla base dell’arto posteriore sinistro.
Inserire la sonda del termometro rettale utilizzando una guainata di sonda sterile e lubrificante. Quindi, posizionare un sensore di respirazione del cuscino sulle regioni epigastriche dell’addome e fissarlo in posizione utilizzando il cartone per acquisire la segnalazione sensibile alla pressione.
Verificare che tutti i segnali fisiologici vengano acquisiti attraverso il software di monitoraggio all’esterno della sala scanner. Quindi, impostare il modulo di riscaldamento e la ventola per iniziare a riscaldare il flusso d’aria al mouse. Fissare il tubo dell’aria in posizione in modo tale che l’aria calda soffi verso il mouse, iniziando appena oltre la punta della coda. Infine, posizionare la bobina RF sul mouse e assicurarsi che tutti i cavi e i tubi siano sicuri.
Esaminiamo ora il protocollo passo-passo per eseguire la risonanza magnetica cardiaca sul mouse anestetizzato.
Innanzitutto, sintonizzare e abbinare la bobina RF al di fuori del foro del magnete per garantire il massimo rilevamento del segnale. Questo è indicato da una stretta valle a zero hertz per ogni componente della bobina RF. Quindi, inserire lentamente lo stadio di imaging nel foro del magnete. Assicuratevi che il mouse sia posizionato direttamente al centro del foro e che la bobina di gradiente abbia una spaziatura uguale lungo tutte le direzioni radiali. Questa posizione garantisce un campo magnetico principale omogeneo.
Quindi, eseguire una scansione di navigazione per individuare il mouse all’interno dello scanner. Confermare se un segmento del cuore è visualizzato all’interno di tutti e tre i piani, vale a dire assiale, sagittale e coronale. Quindi, impostate i parametri per la sequenza FLASH e selezionate il trigger esterno da attivare. Sul software di monitoraggio, configurare i trigger esterni in modo tale che le sequenze mrI vengano eseguite in serie solo su picchi R nei cicli cardiaci durante la respirazione stabile nella fase espiratoria.
Quindi, prescrivere la sequenza FLASH iniziale impostando i parametri e posizionando un rettangolo del piano di imaging nella vista coronale. Quindi premere continua a eseguirlo in modo tale che il piano della fetta segua l’asse dall’apice del cuore attraverso la valvola aortica. Questo ciclo cine iniziale fornirà una visione a due camere del cuore.
Quindi, mentre si fa riferimento ai risultati dalla vista a due camere, prescrivere ed eseguire una nuova sequenza FLASH lungo l’asse della valvola aortica apice per visualizzare una vista a quattro camere.
Infine, prescrivere una fetta di asse corto che sia perpendicolare all’asse della valvola aortica apice circa a metà del cuore. I muscoli papillari dovrebbero essere distintamente visibili all’interno dell’uscita del ciclo cine in questa posizione. Una volta completata l’imaging, trasferire i dati acquisiti in una posizione appropriata per l’analisi, quindi ritrarre la fase di imaging dal foro del magnete e rimuovere la bobina di gradiente e tutte le sonde dall’animale prima di trasferire l’animale dal letto dello scanner.
Ora che abbiamo ottenuto una risonanza magnetica cardiaca in un topo, esaminiamo i risultati delle scansioni. Questa figura mostra il cine loop di una vista ad asse corto del ventricolo sinistro, direttamente perpendicolare all’asse apice di base del cuore e in una posizione che include i muscoli papillari.
Qui, vediamo l’imaging del cine del sangue di un cuore di topo con 14 istantanee di visualizzazione ad asse corto attraverso il ciclo cardiaco, tra cui la diastole finale e la sistole di picco. Le regioni del segnale di dropout all’interno del lume del ventricolo sinistro indicano un rapido movimento del sangue, che originariamente era fuori piano e non taggato dall’eccitazione dell’onda RF.
Questa immagine mostra una vista a quattro camere del cuore con afflusso di sangue luminoso attraverso le valvole mitrale e tricuspide, e poi fuori attraverso le valvole aortica e polmonare, rispettivamente.
Infine, ecco una proiezione di massima intensità che mostra come più fette possono essere combinate spazialmente per visualizzare il sistema cardiovascolare dell’intero topo. La figura mostra una pila 3-dimensionale di immagini di sangue sincronizzate nel tempo, luminose e 2-dimensionali che mostrano le regioni toraciche e addominali di un topo.
Diamo ora un’occhiata ad alcune altre applicazioni di questa tecnica mri. Come estensione della tecnica descritta, possiamo usare questa tecnologia per confrontare la cinematica dei cuori sani rispetto a quelli malati. I modelli murini di disfunzione cardiaca possono essere molto più controllati di quelli che si trovano nella clinica. Ciò consente ai ricercatori di identificare fattori specifici che contribuiscono alle malattie cardiache e di studiare il processo di rimodellamento dopo l’infortunio.
Uno sforzo di ricerca comparabile può essere eseguito con un focus vascolare, come quello con la formazione di aneurisma dell’aorta addominale. Il sangue fornisce un segnale ad alta intensità utilizzando il metodo MRI ad alto campo di piccolo diametro descritto qui. Questo aumento del contrasto può essere sfruttato per valutare l’espansione di un aneurisma dell’aorta addominale e misurare i cambiamenti nelle proprietà biomeccaniche del vaso.
Hai appena visto l’introduzione di JoVE alla risonanza magnetica cardiovascolare.
Ora dovresti sapere come eseguire l’imaging cardiaco e come acquisire i dati del cine loop del cuore murino utilizzando sequenze FLASH FLASH a sangue luminoso standard sincronizzate con segnali cardiaci e respiratori. Infine, dovresti anche sapere come identificare le strutture cardiache in queste immagini. Grazie per l’attenzione!
La Figura 1 mostra un ciclo cine di una vista ad asse corto del ventricolo sinistro, che è direttamente perpendicolare all’asse base-apice del cuore e in una posizione che include i muscoli papillari.
Figura 1: Imaging cinematico luminoso di un cuore di topo con 14 istantanee ad asse corto lungo tutto il ciclo cardiaco, tra cui diastole finale (t = 8) e sistole di picco (t = 13). Le regioni del segnale di dropout all’interno del lume del ventricolo sinistro indicano un rapido movimento del sangue, che originariamente era fuori piano e non taggato dall’eccitazione dell’onda RF.
La seconda immagine rappresentativa mostra una vista a 4 camere del cuore con afflusso di sangue brillante attraverso le valvole mitrale e tricuspide, che poi fuoriesce attraverso le valvole aortica e polmonare, rispettivamente.
Figura 2: Cine imaging luminoso del sangue di un cuore di topo con una vista a quattro camere che mostra la diastole finale (a sinistra) e la sistole di picco (a destra). Le regioni del segnale di dropout all’interno del lume del ventricolo sinistro indicano un rapido movimento del sangue, che originariamente era fuori piano e non taggato dall’eccitazione dell’onda RF.
Infine, un terzo risultato rappresentativo è una proiezione di intensità massima (MIP) che mostra come le fette multiple possono essere combinate spazialmente per visualizzare il sistema cardiovascolare di tutto il corpo del topo.
Figura 3: Proiezione di massima intensità di una pila tridimensionale di immagini di sangue luminoso bidimensionale sincronizzate nel tempo, che mostrano le regioni toraciche e addominali di un topo. Il cuore, la vena cava inferiore e il piccolo aneurisma dell’aorta addominale (cerchio rosso) possono essere visti da questa vista.
Qui, la risonanza magnetica cardiaca viene utilizzata in combinazione con il gating cardiaco e respiratorio per acquisire i dati del ciclo cine-cine del cuore murino. Mentre il cuore è stato al centro della dimostrazione, ulteriori regioni del sistema cardiovascolare possono essere immaginate seguendo la stessa metodologia. Anche se la risonanza magnetica non soffre degli stessi artefatti comunemente osservati con altre modalità di imaging, esiste un notevole compromesso con la risoluzione spaziale raggiunta per durata di acquisizione. Questo compromesso è preoccupante quando il topo non può sopportare durate più lunghe di anestesia, come nei modelli di malattia grave. Tuttavia, la risonanza magnetica ha il vantaggio di visualizzare il tessuto sottostante senza il rischio di danni da radiazioni ionizzanti inerenti alla micro-TC. Utilizzando tecniche di risonanza magnetica, è possibile eseguire una valutazione in vivo del sistema cardiovascolare, gettando le basi per studi longitudinali sia sulla progressione della malattia che sulla risposta terapeutica associata in modelli di piccoli animali.
Come estensione della tecnica descritta, questa tecnologia può essere utilizzata per confrontare la cinematica dei cuori sani rispetto a quelli malati. I modelli murini di disfunzione cardiaca possono essere molto più controllati di quelli trovati in clinica, consentendo ai ricercatori di identificare fattori specifici che contribuiscono alle malattie cardiache e di studiare il processo di rimodellamento dopo lesioni meccaniche. Inoltre, uno sforzo di ricerca comparabile può essere eseguito con un focus vascolare come quello con formazione di aneurisma dell’aorta addominale (AAA). Dato che il sangue dà un segnale ad alta intensità con i metodi descritti, il contrasto può essere sfruttato per valutare l’espansione di un AAA e misurare i cambiamenti nelle proprietà biomeccaniche del vaso. Infine, gli studi che esaminano la vascolarizzazione del cervello possono essere condotti per confrontare le risposte angiogeniche a lesioni cerebrali traumatiche o ictus. Idealmente, come con la maggior parte delle immagini pre-cliniche, tecniche come la risonanza magnetica cardiovascolare ad alto campo possono migliorare la nostra comprensione dei processi delle malattie umane e stimolare l’innovazione verso la prossima generazione di tecnologia diagnostica.
High-field small-bore magnetic resonance imaging, or cardiac MRI, assesses cardiovascular function without the use of ionizing radiation or contrast agents.
Comparable cardiovascular imaging modalities include high frequency ultrasound, which emits a beam of acoustic waves from a transducer and records the echoes created as the waves reflect to generate live images. It provides high spatial and temporal resolution images; however, imaging artifacts can be observed due to the limited penetration depth in dense tissue.
Another imaging technique is micro-CT, which takes a series of X-ray projections to create 3D cross sections. It has a lower temporal resolution and limited soft tissue contrast, and often requires the use of contrast agents to visualize vascular structures. These are known to cause radiation damage and renal failure at high doses.
Alternatively, MRI uses strong electromagnets to image tissues in the body based on their magnetic properties. In cardiac MRI, conventional MRI sequences are gated off of R peaks in the cardiac cycle and expiratory plateaus in respiration to assess cardiovascular function.
This video will illustrate how to gather MRI data with a triggering fast low angle shot, or FLASH MRI sequence. This technique provides high quality soft tissue contrast for the study of small animal disease models.
Magnetic resonance imaging is a technique that uses the paramagnetic properties of tissue to visualize soft tissue contrast. The bore of an MRI machine is conventionally wrapped using a solenoid coil that provides a constant homogeneous magnetic field, B-zero, when an electric current is applied.
In high-field mirroring imaging, a 7-Tesla magnetic field strength can be employed, approximately 140,000 times that of Earth’s magnetic field, and more than double the common clinical 3-Tesla and 1.5-Tesla scanner field strengths. This homogeneous magnetic field causes the hydrogen protons inherent to almost all living tissues to align their axes of rotation. These spins can then be tipped using radiofrequency, or RF waves, to a certain angle relative to the axis of rotation, also known as the flip angle.
As the protons then attempt to relax back to their original orientation, the component of their spin perpendicular to their main axis induces a detectable electrical signal, resulting in an image. Furthermore, magnetic gradients can be applied that perturb the main magnetic field and allow for spatially isolated RF excitations to localize the received signal. Specific to the methods described in this video is the FLASH sequence, which uses low flip angle RF excitations that are rapidly repeated to induce a steady state pattern in the proton motion. The repetition time is much shorter than the typical proton relaxation time.
When unexcited hydrogen, such as that in blood, enters the imaging frame, a relatively high signal is produced. This allows the cardiovascular system to be imaged rapidly and provide stable snapshots within the cardiac cycle. Through triggering the FLASH sequence with physiologic signals, images of the cardiovascular system can be acquired that highlight cardiac, vascular, and respiratory motion.
Having reviewed the main principles of cardiac MRI, let us now walk through the step-by-step procedure to prepare and image an animal.
First, identify the mouse to be imaged, then transfer the mouse to the knockdown chamber. Then, anesthetize the animal using isoflurane and confirm knockdown using a toe-pinch technique. Next, open the isoflurane flow to the nose cone in the MRI room and close the isoflurane flow to the knockdown chamber. This primes the longer tubing with anesthetic.
Ensure that all personnel are MR safe, then transfer the mouse to the imaging stage and secure the nose cone around the animal. Position the mouse such that its heart is approximately aligned with a center of the RF coil. Next, reconfirm knockdown using the toe-pinch technique. Then, insert the three electrocardiogram leads subcutaneously. Place one lead each to the left and right of the heart and one at the base of the left hind limb.
Insert the rectal thermometer probe using a sterile probe sheath and lubricant. Then, place a pillow respiration sensor on the epigastric regions of the abdomen, and secure it in place using cardboard to acquire pressure sensitive signaling.
Confirm that all physiological signals are being acquired through the monitoring software outside the scanner room. Next, set up the heating module and fan to begin warming the airflow to the mouse. Secure the air tubing in place such that the warm air blows towards the mouse, starting just past the tip of its tail. Finally, place the RF coil over the mouse and make sure all cables and tubing are secure.
Let us now review the step-by-step protocol to perform cardiac MRI on the anesthetized mouse.
First, tune and match the RF coil outside the bore of the magnet to ensure maximum signal detection. This is indicated by a narrow valley at zero hertz for each component of the RF coil. Next, slowly insert the imaging stage into the bore of the magnet. Ensure that the mouse is positioned directly in the center of the bore and the gradient coil has equal spacing along all radial directions. This position ensures a homogeneous main magnetic field.
Next, run a navigation scan to locate the mouse within the scanner. Confirm if some segment of the heart is visualized within all three planes, namely axial, sagittal, and coronal. Then, set the parameters for the FLASH sequence and select the external triggering to be on. On the monitoring software, configure the external triggers such that the MRI sequences are serially run only on R-peaks in cardiac cycles during stable respiration in the expiratory phase.
Next, prescribe the initial FLASH sequence by setting the parameters and positioning an imaging plane rectangle in the coronal view. Then press continue to run it such that the slice plane follows the axis from the apex of the heart through the aortic valve. This initial cine loop will provide a two-chamber view of the heart.
Then, while referencing the results from the two-chamber view, prescribe and run a new FLASH sequence along the apex aortic valve axis to visualize a four-chamber view.
Finally, prescribe a short axis slice that is perpendicular to the apex aortic valve axis approximately halfway through the heart. The papillary muscles should be distinctly visible within the cine loop output at this location. Once imaging is completed, transfer acquired data to an appropriate location for analysis, then retract the imaging stage from the bore of the magnet and remove the gradient coil and all probes from the animal before transferring the animal from the scanner bed.
Now that we’ve obtained a cardiac MRI in a mouse, let us review the results of the scans. This figure shows the cine loop of a short axis view of the left ventricle, directly perpendicular to the base apex axis of the heart and at a position that includes the papillary muscles.
Here, we see the blood cine imaging of a mouse heart with 14 short axis view snapshots across the cardiac cycle, including end diastole and peak systole. The regions of dropout signal within the lumen of the left ventricle indicates fast blood moving, which was originally out of plane and not tagged by the RF wave excitation.
This image shows a four-chamber view of the heart with bright blood inflow through the mitral and tricuspid valves, and then out through the aortic and pulmonary valves, respectively.
Finally, here is a maximum intensity projection that shows how multiple slices can be spatially combined to visualize the cardiovascular system of the whole mouse. The figure shows a 3-dimensional stack of time-synced, bright, 2-dimensional blood images showing the thoracic and abdominal regions of a mouse.
Let us now look at some other applications of this MRI technique. As an extension of the described technique, we can use this technology to compare the kinematics of healthy versus diseased hearts. Murine models of cardiac dysfunction can be far more controlled than those found in the clinic. This allows researchers to identify specific factors contributing to heart disease as well as study the remodeling process after injury.
A comparable research endeavor can be performed with a vascular focus, such as that with abdominal aortic aneurysm formation. Blood gives a high intensity signal using the high-field small-bore MRI method described here. This increase in contrast can be exploited to assess the expansion of an abdominal aortic aneurysm and measure changes to the vessel’s biomechanical properties.
You’ve just watched JoVE’s introduction to cardiovascular magnetic resonance imaging.
You should now know how to perform cardiac imaging and how to acquire cine loop data of the murine heart using standard bright blood FLASH MRI sequences synced with cardiac and respiration signals. Finally, you should also know how to identify cardiac structures in these images. Thanks for watching!
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