Name: Preparazione e utilizzo lesioni Phantom alla pratica Belle biopsie agoaspirazione (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-09-29T21:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 26 s
Description: Impara a preparare una lesione fantoccio per esercitarti nella biopsia con agoaspirazione utilizzando materiali semplici come cartone, silicone e banana. Questo metodo pratico aiuta i tirocinanti a sviluppare competenze in citopatologia.

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<ol style="list-style-type:upper-alpha;"><li> Preparazione di lesione fantasma (phantom preparare circa 38 a 48 ore prima della effettiva sessione pratica di competenza FNA (Figura 1) o utilizzare pronta per l&#39;uso &#39;AV Phantom&#39; da sorgenti FNA, USA. La lesione fantasma (conservati in frigorifero senza congelamento) può essere tenuti pronti anche 3 o 4 giorni prima della sessione di pratica. </li><li> Praticare FNA competenza: Anche se abbiamo dimostrato la procedura utilizzando Shidham di THFV (Tissue semoventi con valvola funzionale) (Fonte FNA, USA), qualsiasi altro sistema FNA può essere utilizzato per la pratica (Figura 2). </li><li> Diffusione e l&#39;elaborazione dei aspirare nelle diapositive di vetro (Figura 3). </li></ol> Materiale richiesto <ol style="list-style-type:lower-alpha;"><li> Chiaro gomma siliconica caulk-disponibile in molte costruzioni / home negozi di miglioramento. Molte marche sono disponibili includendo GETM, DAP, Red Devil, White Lightning, e dei marchi catena locale. Abbiamo usato in gomma di silicone trasparente, Prodotti White Lightning, Cleveland, Ohio, USA, <a href="http://www.wlcaulk.com/products/all_purpose/silicone_rubber/wl09010.html">http://www.wlcaulk.com/products/all_purpose/silicone_rubber/wl09010.html</a> ) </li><li> Pistola per silicone </li><li> Un pezzo di foglio di pellicola trasparente (abbiamo usato Saran Wrap Cling Inoltre, SC Johnson &amp; Son Inc, Racine, WI, USA <a href="http://www.saranbrands.com/plastic-wrap/index.asp">http://www.saranbrands.com/plastic-wrap/index.asp</a> </li><li> Guanti in lattice </li><li> Diametro di banane largo o salsiccia. </li><li> Fermo e piatto piastra di base (circa 6 pollici x 6 pollici), fatto di cartone spesso, piatto in acrilico, o altro. </li><li> FNA eseguire attrezzature <ul><li> 25 gauge aghi ipodermici </li><li> Shidham di THFV (o di altri componenti per l&#39;esecuzione di FNA) </li><li> vetrini </li><li> colorazione kit </li></ul></li></ol> Passo-passo i dettagli A. Preparazione della lesione fantasma (phantom preparare 1 a 2 giorni prima di praticare FNA competenza (Figura 2) o utilizzare pronta per l&#39;uso &#39;AV Phantom&#39; da sorgenti FNA, USA. <ol><li> Tagliare una X 6 6 in pollici di sostenere bordo. </li><li> Tagliare un segmento da 2,5 pollici lunga serie di &#39;core lesione fantasma&#39; (banana o salsiccia). </li><li> Espellere 0,5 cm di spessore di strato calafatare sulla piastra di base. </li><li> Premere il &#39;fantasma lesione core&#39; leggermente in questo strato di calafatare. </li><li> Aggiungere più calafatare il &#39;core lesione fantasma&#39; in modo che sia completamente incorporato nel tumulo di caulk, senza intrappolare bolle d&#39;aria. </li><li> Regolare e modellare il calafatare sul &#39;core lesione fantasma&#39; con mano guantata. </li><li> Prendete un pezzo X 6 6 pollici formato di pellicola trasparente e coprire il tumulo calafatare e regolare la superficie della collina in una configurazione uniforme convessa con un pulito, mano guantata. </li><li> Lasciate la cura tumulo calafatare per 6-8 ore in più rispetto al tempo di maturazione di cui al punto le istruzioni del prodotto, (di solito per 24 ore), in luogo caldo. </li><li> Dopo la polimerizzazione, il calafatare dovrebbe essere ferma, e l&#39;involucro di plastica può essere staccata facilmente. </li><li> La lesione FNA fantasma è pronto per essere usato per praticare la procedura di FNA dopo circa 8 ore in cui il cumulo intera caulk ha completamente curato con il centro che contiene il &#39;core lesione fantasma&#39; (banana o salsiccia). </li></ol> B. Praticare FNA competenza sulla lesione AV Phantom. Qualsiasi approccio per ottenere alta qualità, adeguata aspirati FNA con una buona qualità prelievi citologici diretto dovrebbe affrontare i seguenti punti critici- <ol style="list-style-type:upper-roman;"><li> L&#39;indicatore, come l&#39;ago implicita nel titolo della procedura, gli aghi più sottili (numero di diametro superiore) resa migliore aspirati con la diluizione del sangue minimi. Per l&#39;equilibrio critico di vantaggi e limitazioni, dal 22 al 25 aghi calibro sono da preferire per la stabilità meccanica ottimale dell&#39;ago senza compromettere la qualità aspirare FNA. </li><li> Controllo sequenze appropriate in applicazione del vuoto e rilasciare nel corso della procedura di FNA-Questo è fondamentale per far progredire le cellule campionate con ogni colpo di spillo, verso il mozzo ago. Tuttavia, il materiale aspirato non dovrebbe essere consentito di giungere nella zona del gruppo ago aspirazione con siringa. Se questo non è impedito, il materiale può essere difficile da recuperare per fare strisci (questo materiale può tuttavia essere utilizzato per la preparazione cell block o per metodi di concentrazione come Cytospin, i metodi di filtro, o di recente preparati liquidi citologia). </li><li> Lo sviluppo di competenze appropriate nel trattamento del campione aspirato, compresa la preparazione striscio diretta e on-site valutazione di adeguatezza con triaging appropriato per le prove di accessori quali celle blocco preparazione immunocitochimica elettiva, citometria a flusso elettivo per immunofenotipizzazione delle lesioni linfoproliferative, presentando passa sterile per microbiologia studi, e compagnoriale per i test molecolari (citogenetica, ecc.) </li></ol> Ba Esecuzione di procedura FNA (indicato con THFV Shidham [1] (Fonte FNA, USA), ma qualsiasi altro sistema FNA può essere utilizzato per la pratica). (Fig. 3,4,5). <ol><li> Preparare l&#39;assemblea FNA con la valvola chiusa. </li><li> Localizzare la lesione e inserire la punta dell&#39;ago nella lesione. </li><li> Aprire la valvola per collegare il vuoto, attraverso l&#39;ago alla sua punta, per aspirare rappresentante componenti cellulari della lesione con ogni corsa avanti e indietro nella lesione. </li><li> Mantenere le aree vuoto e campione diverse della lesione inserendo l&#39;ago nella lesione in diverse direzioni. </li><li> Chiudere la valvola di scollegare il vuoto nel lume ago. </li><li> Equilibrare la pressione con condizioni ambientali (per esempio scollegando il siringa valvole da l&#39;ago per un breve istante e ricollegare. Se il dispositivo speciale con passi integrato, come &#39;THFV&#39; è utilizzato, questo e altri passi da Ba1 attraverso BA6 sono concertati automaticamente seguendo diverse fasi del sistema di valvole) [1]. </li><li> Rimuovere l&#39;ago dalla lesione con la valvola chiusa, al fine di prevenire la perdita del campione per capillarità nella lesione meno che ci sia pressione leggermente negativa al termine hub. </li><li> Rimuovere il contenuto aspirato sul vetrino per preparare striscio diretto (vedi sotto) (figura 6). </li></ol> Bb. Trattamento del campione aspirato con triage appropriato Diffondere la aspirare sui vetrini e preparazione di strisci di buona qualità diretto (Figura 6) seguita dalla colorazione corretta e triage (Figura 7,8). <ol><li> Una goccia di aspirare sloggiato sul vetrino si sviluppa da una varietà di approcci, come illustrato nella (Figura 6) [2]. L&#39;approccio comune è &#39;a&#39;. Tuttavia, se il campione è sangue diluito con un po microfragments, il sangue in eccesso viene drenata via inclinando il vetrino, e il microfragments poi sono sparsi tra questa diapositiva e far scorrere secondo bicchiere simile a &#39;a&#39;. Se l&#39;aspirato è prevalentemente una sospensione senza microfragments, ad esempio da lesioni linfoproliferative, si diffonde simile a &#39;b&#39; o &#39;c&#39;. </li><li> Le sbavature possono essere trattati e fissati in una varietà di modi per metodi di colorazione diversa durante valutazione in loco adeguatezza. Tuttavia, l&#39;approccio migliore è quello di asciugare tutte le sbavature. L&#39;aria secca strisci possono essere colorati con macchie Romanowski (come Difff-Quik macchia, Wright macchia) dopo la fissazione metanolo o con il Pap macchia dopo reidratazione salina-e post-fissazione (nel 95% di etanolo o preferibilmente in etanolo al 95% con 5 % di acido acetico) [3]. L&#39;eliminazione delle interferenze dovute al sangue oscurando è un beneficio significativo [3]. </li><li> A seconda dei risultati iniziali cytomorphologic durante la valutazione sul campo adeguatezza, triage aggiuntive (come il blocco di celle elettiva, microscopia elettronica, culture microbiologia, citometria a flusso, citogenetica molecolare-test, ecc) è raccomandato come indicato. </li></ol> Rappresentante dei risultati: <img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig1tmb.jpg" alt="figura 1" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig1.jpg">Clicca qui per vedere una versione più grande della figura 1</a> . Figura 1. Materiali necessarie per la preparazione AV Phantom per la pratica di competenza FNA (* Noi usiamo involucro di plastica Saran che non aderire al calafatare alla fine, durante la rimozione dopo l&#39;indurimento completo della calafatare.) <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig2tmb.jpg" alt="figura 2" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig2.jpg">Clicca qui per vedere una versione più grande della figura 2.</a> Figura 2. Preparazione AV lesione Phantom <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig3tmb.jpg" alt="figura 3" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig3.jpg">Clicca qui per vedere una versione più grande della figura 3.</a> Figura 3. Passaggi critici nella procedura FNA. <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig4tmb.jpg" alt="figura 4" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig4.jpg">Clicca qui per vedere una versione più grande della figura 4.</a> Figura 4. EUS-FNA-Sintesi dei passaggi critici * (vedi Fig. 3) <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig5tmb.jpg" alt="figura 5" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig5.jpg">Clicca qui per vedere una versione più grande della figura 5.</a> Le insidie ​​Figura 5. Legate ai passaggi critici in FNA procedure. <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig6tmb.jpg" alt="figura 6" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig6.jpg">Clicca qui per vedere una versione più grande della figura 6.</a> Figura 6. Preparazione degli strisci diretta del campione FNA tra due diapositive. <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig7tmb.jpg" alt="figura 7" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig7.jpg">Clicca qui per vedere una versione più grande della figura 7.</a> Figura 7. Wet fisso strisci contro essiccati all&#39;aria. <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig8tmb.jpg" alt="figura 8" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig8.jpg">Clicca qui per vedere una versione più grande della figura 8.</a> Figura 8. Wet fisso strisci contro essiccati all&#39;aria.

<ol><li>Shidham, V. B., Pandit, A. W., Rao, R. N., Basir, Z., Shidham, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+Harvester+with+Functional+Valve+%28THFV%29%3A+Shidham%27s+device+for+reproducibly+higher+specimen+yield+by+fine+needle+aspiration+biopsy+with+easy+to+perform+steps%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Clinical+Pathology%22%5BJournal%5D)">Tissue Harvester with Functional Valve (THFV): Shidham's device for reproducibly higher specimen yield by fine needle aspiration biopsy with easy to perform steps.</a> BMC Clinical Pathology. 7 (2), (2007).</li>
<li>Shidham, V. B., Epple, J. AppendiX I: Collection and processing of effusion fluids for cytopathologic evaluation. Shidham, V. B., Atkinson, B. F. , 'Cytopathologic Diagnosis of Serous Fluids' First edition, Elsevier; W.B. Saunders Company. Chapter 15 207-235 (2007).</li>
<li>Shidham, V., Kampalath, B., England, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Routine+air+drying+of+all+the+smears+prepared+during+fine+needle+aspiration+and+intraoperative+cytology+studies%3A+An+opportunity+to+practice+a+unified+protocol%2C+offering+the+flexibility+of+choosing+variety+of+staining+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cytologica%22%5BJournal%5D)">Routine air drying of all the smears prepared during fine needle aspiration and intraoperative cytology studies: An opportunity to practice a unified protocol, offering the flexibility of choosing variety of staining methods.</a> Acta Cytologica. (45), 60-68 (2001).</li>
</ol>

Biopsie con ago sottile aspirazione (FNAB) sono ampiamente eseguita come una economica, tecnica sicura, rapida e mini-invasiva per la diagnosi del tessuto di vari tumori e lesioni. In questa procedura, un 18-27 gauge viene inserito nella lesione, avanti e indietro più volte in diverse aree della lesione sotto vuoto controllato (aspirazione) di intensità variabile da minimo sotto forma di unica azione capillare di circa 10 ml vuoto in siringa per recuperare materiale diagnostico dei tessuti. Un ago con calibro più fine più alto è il numero preferito di recuperare un buon materiale citologico per preparare strisci diretti. Gauge più ampia di 18G recupera più adeguato campione per il blocco delle cellule, citometria a flusso, microscopia elettronica, citogenetica, microbiologia ecc culture Anche se la procedura è semplice, controllare le varie fasi con l&#39;applicazione corretta ed il rilascio di vuoto a misure appropriate in modo concertato è estremamente importante per risultati ottimali. A causa della non disponibilità di appositamente progettato ad alto rendimento aghi, aghi ipodermici convenzionale o le loro modifiche sono utilizzati per eseguire questa procedura. Tuttavia, gli aghi ipodermici hanno delle limitazioni che portano ad una bassa resa di campione se utilizzato in modo convenzionale. Il requisito di grip siringa speciale aggiunge di solito la complessità della procedura. Pertanto, a causa della mancanza di idonei dispositivi disponibili in commercio aghi FNAB, questa procedura estremamente versatile soffre un problema frequente di recupero campione inadeguata. Recentemente, un dispositivo aumentando il rendimento con la riproducibilità è stata segnalata [1]. Inoltre, attualmente vi è una mancanza di modello adatto per praticare attitudine ai FNAB da personale sanitario in formazione tra residenti e compagni. Abbiamo avuto un modello standardizzato con un pezzo di fegato bovino fresco farcito in guanto di lattice per praticare FNAB competenza. Tuttavia, questo modello è difficile da organizzare a breve termine. Acquisto di fegato bovino fresco di solito è la situazione limitante. Inoltre, la gestione del fegato può introdurre contaminazione fattori legati da richiamo significativo indietro. La tendenza per il guanto in lattice a perdere dopo un paio di punture spillo porta alla confusione potenziale durante la sessione di prove libere. Riportiamo e descrivere un nuovo metodo semplice ma di incorporare un piccolo pezzo di banana (o salsiccia) in un mastice di silicone disponibili in commercio in gomma e altri materiali facilmente reperibili. Il fantasma FNAB mantiene tenuta di vuoto permettendo così l&#39;aspirazione di materiale dal campione incorporato, equivalente alla procedura FNAB reale su una lesione in ambito clinico. In questo video, dimostriamo la procedura che consente FNAB lesione fantasma e la pratica della procedura FNAB. Dimostra anche in breve il trattamento dei campioni recuperate compresa la preparazione striscio e colorazione [2,3]. Poiché il caulk richiede tempo per curare la lesione fantasma dovrebbe essere preparata in anticipo circa 24 a 48 ore prima della sessione pratica. Paragonabile pronto per l&#39;uso lesione fantasma possono essere ottenuti da una fonte commerciale (Fonte FNA, USA). La lesione fantasma per la pratica di FNAB competenza possono essere utilizzati per la formazione dei residenti e compagni prima dell&#39;inizio della prestazione FNAB su pazienti in ambiente clinico.

preparazione e utilizzo lesioni phantom alla pratica belle biopsie agoaspirazione

Preparation and Using Phantom Lesions to Practice Fine Needle Aspiration Biopsies

Attualmente, gli operatori sanitari compresi i residenti e compagni non hanno un modello adatto fantasma di praticare l&#39;agoaspirato biopsia (FNAB) procedura. In passato, abbiamo standardizzato un modello costituito da guanti in lattice contenenti fresca fegato bovino per la pratica FNAB. Tuttavia, questo modello è difficile da organizzare e preparare in tempi brevi, con l&#39;acquisto di fegato fresco bovino è l&#39;aspetto più impegnativo. Manipolazione di fegato con problemi di contaminazione legati è anche un pareggio importante schiena. Inoltre, le perdite di materiale dei guanti, dopo un ago pochi passi, con conseguente disordine. Abbiamo stabilito un nuovo metodo semplice di incorporare un piccolo pezzo di salsiccia o di banane in un mastice di silicone disponibili in commercio in gomma. Questo modello consente la conservazione di tenuta vuoto e l&#39;aspirazione di materiale dal campione incorporato, che assomiglia ad un procedimento effettivo FNAB sulle lesioni massa clinica. Il materiale aspirato nel mozzo dell&#39;ago può essere elaborato simile ai modelli procurato durante una procedura effettiva FNAB, facilitando competenza aggiuntiva in preparazione striscio e colorazione.

Praticare delle biopsie fini di aspirazione dell&#39;ago (FNAB) da tirocinanti è relativamente impegnativo, a causa della mancanza di un facilmente disponibile, lesione appropriato. Preparazione di una lesione AV fantasma per praticare la procedura di FNAB e competenza mastering è relativamente facile.

Preparazione e utilizzo lesioni Phantom alla pratica Belle biopsie agoaspirazione

Attualmente, gli operatori sanitari, inclusi specializzandi e ricercatori, non dispongono di un modello phantom adeguato per esercitarsi nella biopsia per aspirazione con ago sottile (FNAB)...

Per preparare una lesione fantoccio, tagliare un pezzo di cartone di sei per sei pollici da utilizzare come piastra di base. Coprire la piastra di base con uno strato di sigillante spesso mezzo pollice. Quindi tagliare un pezzo di banana lungo due pollici e mezzo e premere delicatamente nella sigillante.La banana funge da nucleo della lesione fantasma. Inserire completamente il nucleo nel mastice senza intrappolare bolle d'aria. Coprire il nucleo con un pezzo di pellicola trasparente e modellare una superficie liscia a forma di cupola. Lasciare indurire il supporto di mastice in un luogo caldo dopo che il mastice è diventato rigido e completamente indurito.Rimuovere la pellicola di plastica e praticare la FNA per acquisire padronanza nel prelievo del campione dal centro della banana ed esercitarsi nella preparazione dello striscio. Sono il dottor Vino della Divisione di Citopatologia del Dipartimento di Anatomia Patologica del Medical College del Wisconsin. E io sono il dottor George Varszegi, borsista in Citopatologia nello stesso dipartimento.Oggi illustreremo una procedura per preparare una lesione fantoccio al fine di esercitarsi nella competenza nell'esecuzione della FNAV, utilizzando strumenti e materiali semplici e facilmente reperibili. Utilizziamo generalmente questa tecnica per introdurre i fellow in citopatologia e i residenti in anatomia patologica alla procedura finale di biopsia con agoaspirato. Successivamente, durante la loro formazione, i fellow e i residenti affineranno le proprie abilità eseguendo agoaspirati su lesioni clinicamente palpabili sotto la supervisione del personale docente.Cominciamo. Preparare la lesione simulata uno o due giorni prima della sessione prevista di pratica di FNA (agoaspirato con ago sottile). Prima di iniziare, tenere pronti sul banco un pezzo di cartone, una pistola per sigillante, una banana non sbucciata e della pellicola trasparente.Il primo passo nella preparazione di una lesione fantoccio è tagliare un pezzo di cartone di sei pollici per sei pollici da utilizzare come piastra di base. Successivamente, tagliare un segmento di banana lungo circa due pollici, che fungerà da nucleo della lesione fantoccio. Una volta pronto il nucleo della lesione fantoccio, prendere una pistola per sigillante e stendere uno strato di sigillante spesso circa mezzo pollice sulla piastra di base.Premere leggermente il nucleo della lesione simulata nel sigillante umido. Aggiungere ora altro sigillante sopra il nucleo della lesione simulata per incorporarlo completamente. Fare attenzione a non intrappolare bolle d'aria nel sigillante indossando i guanti.Spalmare manualmente il sigillante sul nucleo della lesione fantoccio per assicurarsi che sia completamente circondato. Coprire ora l'ammasso con un pezzo di pellicola trasparente di 15 x 15 cm e modellare l'ammasso in una forma convessa liscia. Collocare l'ammasso di sigillante in un luogo caldo per farlo indurire da sei a otto ore in più rispetto al tempo di indurimento indicato per la marca specifica di sigillante utilizzata.Il sigillante si indurisce quando esposto all'aria. È possibile lasciare il mucchio a temperatura ambiente superiore a 60 gradi Fahrenheit oppure incubarlo a 37 gradi Celsius per accelerare l'indurimento. Dopo l'indurimento, il sigillante è rigido e si può facilmente rimuovere la pellicola di plastica.La lesione simulata per FNA è ora pronta per essere utilizzata nella pratica della procedura di FNA. Ora che avete preparato la lesione simulata e questa si è indurita, potete usarla per esercitarvi nella procedura di FNAB. Qui stiamo utilizzando il raccoglitore di tessuti con valvola funzionante, ma potete usare qualsiasi sistema di FNA in breve tempo.Il THFB è composto da un ago per perforare il campione, un manicotto dell'ago per raccogliere il materiale aspirato, una siringa per controllare la pressione all'interno del dispositivo e una valvola per collegare e scollegare il manicotto dell'ago dalla siringa. Iniziare preparando l'insieme per FNA con la valvola che collega il manicotto dell'ago alla siringa chiusa. Ora estrarre lo stantuffo della siringa per creare un vuoto all'interno del cilindro della siringa.Quindi inserire la punta dell'ago nella lesione. Aprire la valvola per collegare il connettore dell'ago al vuoto nella siringa. Il vuoto aspira il materiale dalla lesione all'interno dell'ago e nel connettore dell'ago.Spostare l&#39;ago avanti e indietro nella lesione per aspirare un campione rappresentativo di componenti cellulari. Mantenendo il vuoto, campionare diverse aree della lesione inserendo l&#39;ago nella lesione in direzioni diverse. Al termine del campionamento, ruotare la valvola per disconnettere il vuoto nel corpo della siringa ed equalizzare la pressione con le condizioni esterne aprendo la valvola.Successivamente, ruotare la valvola per disconnettere l'esterno e il corpo della siringa. Rimuovere l'ago dalla lesione con la valvola chiusa. Mantenere la valvola chiusa conserva una leggera pressione negativa nell'estremità del connettore e impedisce al campione di defluire nuovamente nella lesione per azione capillare.Paragonabile al fenomeno della pipettaggio, il campione di tessuto è ora al sicuro all'interno del connettore dell'ago. Dopo aver rimosso l'ago dalla sede, aspirare il contenuto sul vetrino per preparare uno striscio diretto. Una volta depositata una goccia di aspirato sul vetrino, è possibile spargerla utilizzando diversi metodi, a seconda della natura dell'aspirato; di solito si spalma il campione tra due vetrini usando il metodo qui mostrato.Se un campione effettivo deve essere diluito con sangue, eliminare l'eccesso di sangue inclinando il vetrino prima di posizionare il secondo vetrino sopra. Se il prelievo è prevalentemente una sospensione senza microframmenti, come nei casi di lesioni linfoproliferative, può essere steso utilizzando il metodo a coste, in cui il bordo di un vetrino viene usato per creare una serie di strisci a coste su un altro vetrino, oppure si può utilizzare il metodo di diffusione, in cui un vetrino viene usato per formare un film su un secondo vetrino. Una volta preparati gli strisci, è possibile processarli e fissarli in diversi modi.Per diversi metodi di colorazione, l'approccio migliore consiste nell'essiccare rapidamente all'aria tutti i preparati entro uno o due minuti. L'essiccazione dei preparati più spessi e umidi può essere accelerata muovendo lateralmente i vetrini nell'aria o, preferibilmente, utilizzando un asciugacapelli o un ventilatore portatile alimentato a batteria. Quando si utilizza un ventilatore, prestare attenzione a evitare l'aerosolizzazione, specialmente nei casi di lesioni che si presume siano infette; una volta essiccati i preparati, colorarli in modo appropriato in base ai propri esperimenti.Qui stiamo dimostrando la colorazione di uno striscio essiccato all'aria con il colorante D quick, che è uno dei coloranti di Romanowski per i tempi. Seguire le istruzioni del produttore. Riteniamo che l'essiccazione all'aria migliori notevolmente la chiarezza della colorazione, come mostrato in questo esempio di strisci colorati con il metodo Pap.L'analisi di questi colorazioni iniziali determinerà ulteriori test che si potrebbe desiderare eseguire, come microscopia elettronica selettiva su blocco cellulare, colture microbiologiche o altri. Il corretto completamento dell'aspirazione della lesione simulata permetterà un'adeguata aspirazione del materiale lesionale, in questo caso materiale vegetale pastoso proveniente dalla banana. Questo materiale può essere spalmato su vetrini per esercitarsi nella stesura e nella colorazione.Abbiamo appena mostrato come preparare una lesione fantoccio per esercitarsi nella competenza della FNAB. Durante l'esecuzione di questo esperimento, è importante ricordare che la lesione fantoccio deve essere preparata almeno 36 ore prima della sessione di valutazione della competenza, poiché il gel sigillante richiede un certo tempo per solidificare. Un altro aspetto fondamentale è l'applicazione e la successiva liberazione del vuoto in una sequenza corretta, al fine di ottenere un campione ottimale durante l'esecuzione della procedura FNAV.Ecco fatto. Grazie per aver guardato e buona fortuna nella pratica. E grazie mille.

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Questo studio presenta una tecnica avanzata di biopsia prostatica transperineale utilizzando un metodo a doppio foro a forma di cono e una guida della sonda a doppio piano. Queste modifiche riducono il trauma, migliorano il recupero del paziente e migliorano l'accuratezza della biopsia, rendendo la procedura un approccio affidabile e minimamente invasivo per la diagnosi del cancro alla prostata.

Biopsia prostatica transperineale con metodo a doppio foro a forma di cono con guida della sonda a doppio piano

L'epitelio dell'orecchio interno sensoriale del pesce zebra adulta è un sistema di buon modello per la comprensione dei meccanismi di rigenerazione delle cellule dei capelli nei vertebrati adulti. Questo protocollo dimostra la dissezione belle degli epiteli, attraverso il quale possiamo ottenere campioni di tessuto per lo studio degli eventi rigenerativi a livello cellulare e subcellulare.

Dissezione lordo e Arti di epiteli sensoriali dell&#39;orecchio interno in adulti Zebrafish ( Danio rerio)

Impara a preparare una lesione fantoccio per esercitarti nella biopsia con agoaspirazione utilizzando materiali semplici come cartone, silicone e banana. Questo metodo pratico aiuta i tirocinanti a sviluppare competenze in citopatologia.

Preparazione e utilizzo lesioni Phantom alla pratica Belle biopsie agoaspirazione

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