Name: Caricamento di merci su Kinesin Navette Powered molecolare (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-11-03T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min
Description: Scopri come caricare nanosfere su microtubuli che scivolano su proteine motorie kinesin. Questo metodo di biotecnologia consente il trasporto nanometrico per applicazioni in nanotecnologia e biosensing.

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Siamo fortemente indebitati a Jonathon Howard, il cui gruppo ha sviluppato il protocollo di base per un test di volo a vela motilità che è stato successivamente adattato da noi. Il sostegno finanziario NSF concedere DMR0645023 Si ringrazia.

1.) Tamponi e reagenti Queste soluzioni dovrebbero essere preparate in anticipo e conservato in aliquote comodamente dimensioni. Una aliquota dovrebbe contenere soluzione sufficiente per un tipico esperimento e una nuova aliquota dovrebbe essere utilizzato per ogni dosaggio motilità. Le condizioni di conservazione e le dimensioni aliquota tipici sono menzionati anche i seguenti protocolli. 1. BRB80 tampone, (80 TUBI mM, 1 mM MgCl 2, 1 mM EGTA in deionizzata distillata (gg) l'acqua, pH regolato a 6,9 con KOH) <ul><li> Portare a 100 mL di soluzione madre di 0,5 M EGTA in acqua gg. Regolare il pH a 7,0 con 2 M NaOH. </li><li> Portare a 100 mL di soluzione madre 1 M MgCl 2 in acqua gg. Autoclave la soluzione. </li><li> Aggiungere 24,2 g di TUBI e 3,1 g pellet KOH in circa 800 ml di acqua dd e mescolare per sciogliere. Regolare il pH a 6,9 con 1 M soluzione di KOH. Aggiungere 2 ml di soluzione 0,5 M EGTA magazzino e 1 ml di 1 M MgCl 2 soluzione madre. Portare il volume a 1000 ml con acqua dd. </li><li> Aliquota in 50 mL tubi falco e congelare a -20 ° C per un uso futuro. Il tubo BRB80 attualmente in uso può essere conservato a 4 ° C oa temperatura ambiente. </li></ul> 2. Cloruro di magnesio, MgCl 2 (100 mM in acqua gg) <ul><li> Diluire in acqua dd per ottenere una concentrazione finale di 100 mm. </li><li> Aliquota (10 volumi mL) in provette da 0,5 ml microcentrifuga e conservare a -20 ° C per un uso futuro </li></ul> 3. Guanosina-5'-trifosfato, sale disodico, GTP (25 mM gg acqua, pH regolato a 7 da NaOH) <ul><li> Pesare e si sciolgono in acqua dd e regolare il pH a 7 per soluzione 2 M di NaOH. </li><li> Verificare la concentrazione di misurare l'assorbanza UV a 260 nm. (Utilizzare un coefficiente di estinzione di 11,7 x 103 M -1 cm -1). </li><li> Aliquota (10 volumi mL) in provette da 0,5 ml microcentrifuga e conservare a -20 ° C per un uso futuro. </li></ul> 4. Dimetil solfossido, DMSO <ul><li> Aliquota (10 volumi mL) in provette da 0,5 ml microcentrifuga e conservare a -20 ° C per un uso futuro. </li></ul> 5. Taxol (1 mM in DMSO) <ul><li> Pesare e si dissolvono in DMSO sotto cappa d'aspirazione a raggiungere una concentrazione finale di 1 mm. </li><li> Aliquota (20 volumi mL) in provette da 0,5 ml microcentrifuga e conservare a -20 ° C per un uso futuro. </li></ul> 6. D-(+)-glucosio, (2 M in acqua gg) <ul><li> Pesare e si sciolgono in acqua dd per ottenere una concentrazione finale di 2 M. </li><li> Aliquota (20 volumi mL) in provette da 0,5 ml microcentrifuga e conservare a -20 ° C per un uso futuro. </li></ul> 7. Glucosio ossidasi, (2 mg / ml in BRB80) <ul><li> Sciogliere in BRB80 per ottenere una concentrazione finale di 2 mg / ml. </li><li> Aliquota (20 volumi mL) in provette da 0,5 ml microcentrifuga e conservare a -20 ° C per un uso futuro. </li></ul> 8. Ditiotreitolo, DTT (1 M gg acqua) <ul><li> Sciogliere in acqua gg sotto cappa d'aspirazione a raggiungere una concentrazione finale di 1 M. </li><li> Aliquota (20 volumi mL) in provette da 0,5 ml microcentrifuga e conservare a -20 ° C per un uso futuro. </li></ul> 9. Catalasi, (0,8 mg / ml in BRB80) <ul><li> Sciogliere in BRB80 in almeno 2 fasi per ottenere una concentrazione finale di 0,8 mg / ml. Determinare la concentrazione in ogni fase di misurare l'assorbanza UV a 276 nm e 406 nm (Utilizzare un coefficiente di estinzione di 3,1 x 10 5 M -1 cm -1 a 276 nm e 2,2 x 10 5 M -1 cm -1 a 406 nm e l'equazione A = cL). </li><li> Aliquota (20 volumi mL) in provette da 0,5 ml microcentrifuga e conservare a -20 ° C per un uso futuro. </li></ul> 10. Adenosina-5'-trifosfato, ATP (100 mM a 100mM MgCl 2) <ul><li> Preparare una soluzione stock di mM MgCl 100 2 gg in acqua. Pesare polvere secca e si dissolvono in questa soluzione, per ottenere una concentrazione finale di 100 mm. </li><li> Verificare la concentrazione di misurare l'assorbanza UV a 260 nm. (Utilizzare un coefficiente di estinzione di 15,4 x 10 3 M -1 cm -1). </li><li> Aliquota (20 volumi mL) in provette da 0,5 ml microcentrifuga e conservare a -20 ° C per un uso futuro. </li></ul> 11. Caseina soluzione (20 mg / mL caseina in BRB80) <ul><li> Aggiungere circa 3 g di caseina e 30 ml di acqua gg in un tubo da 50 ml falco. Vortex per circa 1 ora fino a quando la soluzione si sviluppa consistenza densa. </li><li> Centrifugare a 15000 g per circa 30 minuti. Filtrare il surnatante con 0,5 micron e 0,2 micron filtri per siringa. </li><li> Determinare la concentrazione del supernatante di misurare l'assorbanza UV a 280 nm (Utilizzare un coefficiente di estinzione di 0,67 centimetri ml mg -1 -1). Diluirlo a 20 mg / ml in BRB80. </li><li> Aliquota (20 volumi mL) inper tubi da microcentrifuga da 0,5 ml e conservare a -20 ° C per un uso futuro. </li></ul> 2.) Soluzioni standard Questi sono preparati il ​​giorno dell'esperimento e deve essere eliminata dopo l'esperimento è finito. Preparare 1 ml di ciascuna. 1. BRB80CS0.5 <ul><li> Soluzione diluita di caseina in BRB80 ad una concentrazione finale di 0,5 mg / ml e memorizzare sul ghiaccio. Questa soluzione viene introdotto nella cella di flusso prima di chinesina e aiuta a mantenere l'attività dopo chinesina superficie di adsorbimento. </li></ul> 2. BRB80CA <ul><li> Preparare 0,2 mg / ml caseina e 1 mM ATP in BRB80 e memorizzare sul ghiaccio. Chinesina è ulteriormente diluita utilizzando questa soluzione prima introduzione nella cella di flusso. </li></ul> 3. BRB80T <ul><li> Soluzione diluita di taxolo in BRB80 ad una concentrazione finale di 10 mM e conservare a temperatura ambiente. Questa soluzione viene utilizzata per stabilizzare i microtubuli. </li></ul> 4. BRB80CT <ul><li> Preparare 10 taxolo mM e 0,2 mg / ml di caseina in BRB80 e conservare a temperatura ambiente. Questo è utilizzato per preparare ulteriormente il Antifade e soluzioni microtubuli. </li></ul> 5. BRB80AF <ul><li> Preparare 20 mM D-glucosio, 20 mg / ml glucosio ossidasi, 8 mg / mL catalasi, 10 mM DTT, e 20 mM ATP in BRB80CT e conservare a temperatura ambiente. Questa soluzione viene utilizzata per diluire streptavidina e nanosfere e "lavare via" la streptavidina in eccesso nella cella di flusso. La velocità chinesina può essere controllata regolando la concentrazione di ATP in questa soluzione. </li></ul> 3.) Kinesin Preparazione <ul><li> Esprimere una chinesina costruire costituito dalla wild-type, full-length catena Drosophila melanogaster chinesina pesanti e un C-terminale His-tag in Escherichia coli e purificare con un Ni-NTA colonna, come descritto al punto 6. </li><li> Fai aliquote (10 L ciascuno) in tubi da microcentrifuga da 0,5 ml e conservare a -80 ° C per un uso futuro. La concentrazione di chinesina attivi in queste aliquote è di circa 200 nM 7. </li><li> Per un tipico esperimento, diluire la soluzione chinesina 20 volte in BRB80CA. Etichettare il KIN20 soluzione e memorizzare sul ghiaccio. </li></ul> 4.) Microtubuli Preparazione <ul><li> In un tubo da microcentrifuga 0,5 ml, preparare 25 ml di soluzione di crescita: 4 mM MgCl 2, 1 mM GTP e 5% DMSO (v / v) in BRB80 buffer. </li><li> Aggiungere 6,25 ml di questa soluzione per un'aliquota di 20 mg di liofilizzato tubulina biotinilato. </li><li> Vortex, poi posto in un bagno di calore a 37 ° C per 30 minuti per polimerizzare. Diluire 100-volte in BRB80T vortice e delicatamente. Etichettare il MT100 soluzione e conservare a temperatura ambiente. </li><li> Fai una diluizione di 10 volte MT100 in BRB80AF. Etichettare il MT1000 soluzione. </li></ul> 5.) Streptavidina e Nanosphere Solution Preparare AlexaFluor568 streptavidina marcata ad una concentrazione di 100 nM in BRB80AF. Etichettarla STV100 e memorizzare sul ghiaccio. Allo stesso modo, diluire nanosfere 5000 volte in soluzione BRB80AF. Etichettarla NS5000 e memorizzare sul ghiaccio. 6.) Flusso costruzione cellulare Costruire una cella di flusso utilizzando due coprioggetto di vetro separate da nastro biadesivo. Questa cella di flusso è di circa 2 cm di lunghezza, 1 cm di larghezza e 100 micron alto, e ha un volume di circa 20 l. Le soluzioni sono introdotti nella cella di flusso da un lato con una pipetta e fuori malvagio dall'altro utilizzando carta da filtro. 7.) Assemblea Saggio invertito Superficie del vetro viene prima rivestita con la caseina che consente chinesina di mantenere la sua funzionalità su adsorbimento. Dopo kinesina è assorbito, microtubuli sono introdotti, che sono detenuti da cinesina. I microtubuli sono poi rivestiti con streptavidina fluorescenti. Dopo aver lavato i streptavidina eccesso, biotinilato polistirolo fluoresceina nanosfere (40 nm di diametro) vengono introdotti. Superficie nanosfere adsorbito stazionario si scontrano con i microtubuli in movimento e vengono caricate su di loro (Figura 1). L'ordine del flusso di soluzioni e di tempo concesso prima dell'introduzione della soluzione successiva sono elencati di seguito. <ul><li> BRB80CS0.5, a 5 minuti </li><li> KIN20, a 5 minuti </li><li> MT1000, a 5 minuti </li><li> STV100, a 5 minuti </li><li> BRB80AF, 3x </li><li> NS5000 </li></ul> 8.) Microscopia Montare la cella di flusso sul palco subito dopo l'introduzione del microscopio nanosfere. In questo esperimento, un TE2000-U Eclipse microscopio a fluorescenza (Nikon, Melville, NY) dotata di un obiettivo olio 100X (NA 1,45), una X-Cite 120 lampada (EXFO, Ontario, Canada) e un ixon EMCCD fotocamera (ANDOR, South Windsor, CT) è stato utilizzato. Un filtro FITC cubo (# 48001) e un cubo TRITC filtro (# 48002, Tecnologie Chroma, Rockingham, VT) sono stati utilizzati per nanosfere immagine e microtubuli respectivamente sulla superficie inferiore di celle di flusso. Il tempo di esposizione è stato 0.2s, mentre il tempo tra le esposizioni è stato 2 s. <img src="/files/ftp_upload/2006/2006fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Schema del navette molecolari.

<ol><li>Agarwal, A., Hess, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomolecular+motors+at+the+intersection+of+nanotechnology+and+polymer+science%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+Polymer+Science%22%5BJournal%5D)">Biomolecular motors at the intersection of nanotechnology and polymer science.</a> Progress in Polymer Science. 35 (1-2), 252-252 (2010).</li>
<li>Howard, J., Hunt, A. J., Baek, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assay+of+microtubule+movement+driven+by+single+kinesin+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Assay of microtubule movement driven by single kinesin molecules.</a> Methods Cell Biol. 39, 137-137 (1993).</li>
<li>Agarwal, A., Katira, P., Hess, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Millisecond+curing+time+of+a+molecular+adhesive+causes+velocity-dependent+cargo-loading+of+molecular+shuttles%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">Millisecond curing time of a molecular adhesive causes velocity-dependent cargo-loading of molecular shuttles.</a> Nano Lett. 9 (3), 1170-1170 (2009).</li>
<li>Diez, S., Reuther, C., Dinu, C., Seidel, R., Mertig, M., Pompe, W., Howard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stretching+and+Transporting+DNA+Molecules+Using+Motor+Proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">Stretching and Transporting DNA Molecules Using Motor Proteins.</a> Nano Lett. 3 (9), 1251-1251 (2003).</li>
<li>Bachand, G. D., Rivera, S. B., Boal, A. K., Gaudioso, J., Liu, J., Bunker, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assembly+and+transport+of+nanocrystal+CdSe+quantum+dot+nanocomposites+using+microtubules+and+kinesin+motor+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">Assembly and transport of nanocrystal CdSe quantum dot nanocomposites using microtubules and kinesin motor proteins.</a> Nano Lett. 4 (5), 817-817 (2004).</li>
<li>Coy, D. L., Wagenbach, M., Howard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinesin+takes+one+8-nm+step+for+each+ATP+that+it+hydrolyzes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Kinesin takes one 8-nm step for each ATP that it hydrolyzes.</a> J. Biol. Chem. 274 (6), 3667-3667 (1999).</li>
<li>Katira, P., Agarwal, A., Fischer, T., Chen, H. -Y., Jiang, X., Lahann, J., Hess, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantifying+the+performance+of+protein-resisting+surfaces+at+ultra-low+protein+coverages+using+kinesin+motor+proteins+as+probes%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Materials%22%5BJournal%5D)">Quantifying the performance of protein-resisting surfaces at ultra-low protein coverages using kinesin motor proteins as probes.</a> Advanced Materials. 19, 3171-3171 (2007).</li>
<li>Vigers, G. P. A., Coue, M., McIntosh, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+Microtubules+Break+Up+Under+Illumination%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Fluorescent Microtubules Break Up Under Illumination.</a> J. Cell Biol. 107, 1011-1011 (1988).</li>
<li>Brunner, C., Hess, H., Ernst, K. -H., Vogel, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lifetime+of+biomolecules+in+hybrid+nanodevices%5BTitle%5D)+AND+%22Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">Lifetime of biomolecules in hybrid nanodevices.</a> Nanotechnology. 15 (10), S540-S540 (2004).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Con piccole modifiche, questo protocollo è stato usato con successo da una varietà di gruppi di assemblare chinesina-microtubuli saggi motilità base. DTT 10 mM nella soluzione motilità finale può essere sostituito con lo 0,5% β-mercaptoetanolo. Soluzioni standard (BRB80AF, KIN20 e MT1000) più di 2 ore di vita non deve utilizzare. Qualsiasi soluzione contenente microtubuli taxolo e soprattutto non devono mai essere posti su ghiaccio. L&#39;eccessiva esposizione della cella di flusso ai risultati UV luce di eccitazione ne...

<table><tbody><tr><td>Adenosina-5&amp;rsquo;-trifosfato (ATP)</td><td>Invitrogen</td><td>A1049</td><td></td></tr><tr><td>Tubulina biotinilata</td><td>Cytoskeleton, Inc.</td><td>T333</td><td></td></tr><tr><td>Caseina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C-0376</td><td></td></tr><tr><td>Catalasi</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C-9322</td><td></td></tr><tr><td>Glucosio D-(+)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G-7528</td><td></td></tr><tr><td>Dimetilsulfossido (DMSO)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D-8779</td><td></td></tr><tr><td>Ditiotreitolo (DTT)</td><td>Bio-Rad</td><td>161-0610</td><td></td></tr><tr><td>Acido etilenglicole-bis(2-ammino&amp;#8211;etiletiletere)-&lt;em&gt;N,N,N&amp;#8242;,N&amp;#8242;&lt;/em&gt;-tetraacetico (EGTA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E-4378</td><td></td></tr><tr><td>Microsfere biotinilate FluoSpheres, 40 nm, fluorescenti giallo-verdi (505/515)</td><td>Invitrogen</td><td>F-8766</td><td></td></tr><tr><td>Glucosio ossidasi</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G-7016</td><td></td></tr><tr><td>Guanosina-5&amp;rsquo;-trifosfato (GTP)</td><td>Roche Group</td><td>106399</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di magnesio (MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>63069</td><td></td></tr><tr><td>Paclitaxel (Taxolo)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T1912</td><td></td></tr><tr><td>Acido 1,4-piperazindietanosulfonico, piperazina-1,4-bis(2-etanosulfonico), piperazina-N,N&amp;#8242;-bis(2-etanosulfonico) (PIPES)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-6757</td><td></td></tr><tr><td>Iodrato di potassio (KOH)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-6310</td><td></td></tr><tr><td>Iodrato di sodio (NaOH)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>480878</td><td></td></tr><tr><td>Streptavidina coniugata con Alexa Fluor 568</td><td>Invitrogen</td><td>S11226</td><td></td></tr></tbody></table>

caricamento di merci su kinesin navette powered molecolare

Cargo Loading onto Kinesin Powered Molecular Shuttles

Le cellule hanno sviluppato sofisticate macchine molecolari, come chinesina proteine ​​motrici e filamenti di microtubuli, al sostegno attivo di trasporto intracellulare di carico. Mentre kinesins coda dominio si lega ad una varietà di carichi, domini testa kinesins utilizzare l&#39;energia chimica immagazzinata nelle molecole di ATP per passo lungo il reticolo microtubuli. Il lungo e rigido microtubuli fungono da piste per lunghe distanze di trasporto intracellulare. Questi motori e filamenti possono anche essere impiegati in microfabbricazione ambienti sintetici come componenti di navette molecolari 1. In un progetto di uso frequente, i motori chinesina sono ancorati alla superficie della pista con la coda, e microtubuli funzionalizzate servire come elementi costitutivi di trasporto merci, che sono spinti da questi motori. Queste navette possono essere caricati con il carico utilizzando il legame forte e selettiva tra biotina e streptavidina. I componenti chiave (tubulina biotinilato, streptavidina, e carico biotinilato) sono disponibili in commercio. Sulla base del classico saggio motilità invertita 2, la costruzione di navette molecolari è dettagliata qui. Chinesina proteine ​​motrici sono assorbiti da una superficie coperte con caseina; microtubuli sono polimerizzati da tubulina biotinilato, ha aderito al chinesina e successivamente rivestito con streptavidina marcata con rodamina. La concentrazione di ATP è mantenuto a concentrazione subsaturating di raggiungere una velocità ottimale microtubulo scorrimento per il carico merci 3. Infine, biotinilato marcato con fluoresceina nanosfere vengono aggiunti come merce. Nanosfere allegare ai microtubuli a causa di collisioni tra microtubuli volo a vela e nanosfere aderire alla superficie. Il protocollo può essere facilmente modificato per caricare una varietà di carichi come il DNA biotinilato 4, 5 o quantum dots una vasta gamma di antigeni tramite anticorpi biotinilati 4-6.

Navette molecolari costituiti da microtubuli funzionalizzati scivolando sulla superficie aderito chinesina proteine ​​motore può servire come sistema di trasporto su scala nanometrica. Qui, l&#39;assemblaggio di un sistema di navetta tipico è descritto.

Caricamento di merci su Kinesin Navette Powered molecolare

Le cellule hanno evoluto sofisticati macchinari molecolari, come le proteine motorie della chinesina e i filamenti di microtubuli, per supportare il trasporto intracellulare attivo...

L'obiettivo generale di questa procedura è caricare le nanosfere sui microtubuli, che si muovono su una superficie rivestita con chinesina in forma di motori. Questo viene ottenuto innanzitutto rivestendo la superficie di una camera di flusso in vetro con una soluzione di caseina. Il secondo passaggio della procedura consiste nell'assorbire le proteine motrici della chinesina sulla superficie della camera di flusso.Il terzo passaggio della procedura consiste nell'aggiungere i microtubuli. L'ultimo passaggio della procedura è aggiungere le molecole di streptavidina, che si legheranno ai microtubuli, e successivamente aggiungere le nanosfere. Le nanosfere si legano alla superficie della camera di flusso, dove possono essere raccolte dai microtubuli.In definitiva, è possibile osservare come le nanosfere vengano raccolte dai microtubuli e trasportate lungo la superficie mediante microscopia a fluorescenza. Ciao, sono Elaine Jen Smith del laboratorio del Dott. Henry Hess e del Dipartimento di Scienza e Ingegneria dei Materiali dell'Università della Florida. Oggi vi mostreremo una procedura per il saggio di motilità invertito.Utilizziamo questo procedimento nel nostro laboratorio per studiare il caricamento del carico su microtubuli e il movimento di trasportatori molecolari. Cominciamo dunque. Prima dell'inizio di questo procedimento, preparare frescamente tutte le soluzioni stock come descritto nella parte scritta di questo video.Una volta preparate le soluzioni stock, iniziare la preparazione dei microtubuli trasferendo con una pipetta 25 microlitri di soluzione di crescita in una provetta microcentrifuga da 0,65 millilitri. Successivamente, aggiungere 6,25 microlitri di soluzione di crescita a 20 microgrammi di tubulina biotinilata liofilizzata. Vortexare la soluzione e collocarla in un bagno termico a 37 gradi Celsius per 30 minuti per indurre la polimerizzazione; al termine dell'incubazione, diluire la soluzione di 100 volte in Taxol Buffer ed eseguire un delicato vortex.Questa soluzione serve a stabilizzare i microtubuli. Etichettare la soluzione come vuota 100 e conservarla a temperatura ambiente. Successivamente, preparare una diluizione dieci volte più concentrata di MT 100 nel buffer anti-fade ed etichettare questa soluzione come MT 1000.Quindi preparare i motori chinesina diluendo la soluzione di chinesina di 20 volte in un tampone TP. Etichettare la soluzione come chinesina 20x e conservarla sul ghiaccio. Infine, preparare le soluzioni di streptavidina e di nanosfere.Per prima cosa, aggiungere streptavidina marcata con Alexa Fluor 5 6 8 fino a una concentrazione di 100 nano molari nel Buffer Antifa. Etichettare la soluzione come STV 100, quindi diluire le nanosfere di 5.000 volte nel Buffer Antifa ed etichettare questa miscela come NS 5.000. Conservare entrambe le soluzioni sul ghiaccio.Dopo aver preparato le soluzioni per il saggio di caricamento del carico, costruire una camera di flusso utilizzando un vetrino portaoggetto e un vetrino coprioggetto separati da nastro adesivo doppio. Incollare innanzitutto due strisce di nastro adesivo doppio ai bordi del vetrino portaoggetto, lasciando un'apertura di circa un centimetro tra le strisce. Successivamente, posizionare il vetrino coprioggetto sopra il nastro.Applicare pressione sul cover slip utilizzando il bordo piatto di una pinzetta per creare un sigillo. La cella di flusso costruita è lunga circa due centimetri, larga un centimetro e alta 100 micron, e ha un volume di circa 20 microlitri. Per iniziare il montaggio del saggio invertito.Posizionare la punta della pipetta tra il coprioggetto e il vetrino. Quindi iniettare 0,5 milligrammi per millilitro di soluzione di caseina nella cella di flusso. Questo rivestimento della cella di flusso permetterà alla chinesina di mantenere la sua funzionalità dopo l'assorbimento.Attendere cinque minuti affinché la soluzione di caseina rivesta la superficie. Successivamente, assorbire la chinesina sulla cella di flusso introducendo la chinasi nella soluzione 20; le soluzioni vengono introdotte nelle celle di flusso posizionando la punta della pipetta tra il coprioggetto e il vetrino. Quindi, la soluzione viene iniettata nella cella di flusso da un lato, mentre contemporaneamente viene aspirata dall'altro lato.Con carta da filtro, lasciare assorbire la chinasi per cinque minuti. Successivamente, introdurre i microtubuli nella cella a flusso pipettando la soluzione MT 1000 nella cella a flusso. Lasciare riposare per cinque minuti affinché i microtubuli si depositino e si attacchino ai motori della chinasi dopo l'adesione dei microtubuli ai motori della chinasi.Rivestire i microtubuli con streptavidina fluorescente TTR introducendo la soluzione STV 100 nella camera di flusso. Lasciare incubare per cinque minuti affinché le molecole di streptavidina TTR si leghino ai microtubuli. Rimuovere l'eccesso di streptavidina TTR eseguendo tre lavaggi con 30 microlitri di soluzione Antifa nella camera di flusso.Infine, introdurre le nanosfere fluorescenti di polistirene biotinilato pipettando la soluzione NS 5.000 nella cella di flusso. La superficie assorbe in modo stazionario. Le nanosfere collidono con i microtubuli in movimento e si legano ad essi.In questo esperimento, si utilizza un microscopio a fluorescenza Eclipse TE 2000 U dotato di un obiettivo ad immersione in olio da 100x, un lampada X site da 20 e una camera E-M-C-C-D. Applicare innanzitutto una goccia di olio di immersione sull'obiettivo. Quindi montare la cella a flusso sul portacampioni del microscopio utilizzando il cubo filtro trixy.Mettere a fuoco i microtubuli, quindi passare al cubo del filtro fitzy per visualizzare le nanosfere. Successivamente, aprire il programma and or I exon e impostare la modalità di acquisizione su cinetica. Utilizzare un tempo di esposizione di 0,5 secondi, una lunghezza della serie cinetica di 20 e un tempo di ciclo cinetico di sei secondi.Passare dal microscopio all'oculare alla telecamera e iniziare ad acquisire le immagini. Per le prime quattro immagini, utilizzare il cubo trixi per visualizzare i microtubuli. Per le successive 12 immagini, passare al cubo filtro Fitz per acquisire le immagini delle nanosfere.Quindi tornare al cubo filtro trixi. Per le ultime quattro immagini, in cui si osservano i microtubuli, questi vengono visualizzati utilizzando il cubo filtro Trissy; il cubo filtro viene commutato su fite. Per visualizzare le nanosfere in questo caso, le nanosfere trasportate dai microtubuli sono indicate dalle frecce. Non tutte le nanosfere sono state prelevate dai microtubuli.Ora la posizione delle nanosfere viene mostrata 36 secondi dopo, rivelando che le nanosfere si sono spostate. Quando i microtubuli vengono immaginati nuovamente, è evidente che anche i microtubuli hanno percorso il campo visivo. Queste immagini dimostrano che le nanosfere sono state spostate a causa del trasporto mediato dai microtubuli.Abbiamo appena illustrato come eseguire il saggio di motilità invertito. Quando si esegue questa procedura, è importante ricordare di cambiare i cubetti filtro durante l'acquisizione delle immagini, in modo da poter visualizzare sia i microtubuli che le nanosfere. Questo è tutto.Grazie per aver guardato e buona fortuna con i vostri esperimenti.

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Microscopia singola molecola approch fornito intuizioni romanzo in trasporto nucleare.

Singola molecola Imaging dei trasporti nucleari

Il trasporto intracellulare di carichi, come vescicole o organelli, è effettuato da proteine motrici molecolari che seguono i microtubuli polarizzati. Questo protocollo descrive la correlazione della direzionalità del trasporto delle singole particelle di carico che si muovono all'interno dei neuroni, con la quantità relativa e il tipo di proteine motorie associate.

Che caratterizza la composizione molecolare di motori su Moving assonale Cargo Utilizzo dell&#39;analisi &quot;Cargo Mapping&quot;

Qui, un protocollo è presentato per identificare Kinesin-1 carichi. Un mutante senza motore della Kinesin-1 catena pesante (KIF5B) aggrega nel citoplasma e induce l'aggregazione dei suoi carichi. Entrambi gli aggregati vengono rilevate al microscopio a fluorescenza. Una strategia simile può essere impiegato per identificare carichi di altre proteine ​​motrici.

Identificazione Kinesin-1 Cargos Utilizzando la microscopia a fluorescenza

Presentiamo un protocollo per costruire navette molecolari, dove proteine motrici superficie-aderito chinesina propel microtubuli tintura-etichettati. Interazioni deboli di kinesins con superficie consente loro reversibile attaccamento ad essa. Questo crea un sistema su scala nanometrica che esibisce dinamico montaggio e smontaggio dei suoi componenti, pur mantenendo la sua funzionalità.

Assemblaggio molecolare navette arricchite reversibilmente attaccato Kinesins

L'obiettivo di questo protocollo è quello di formare insiemi di motori molecolari sulle nanostrutture di origami del DNA e osservare la motilità dell'insieme utilizzando la microscopia a fluorescenza totale della riflessione interna.

Produzione di Dynein e Kinesin Motor Ensemble su nanostrutture DNA Origami per l'osservazione a singola molecola

La cinesina mitotica bidirezionale-5 Cin8 si accumula in ammassi che si dividono e si fondono durante la loro motilità. L'accumulo negli ammassi cambia anche la velocità e la direzionalità di Cin8. Qui viene descritto un protocollo per saggi di motilità con Cin8-GFP purificato e analisi delle proprietà mobili di singole molecole e cluster di Cin8.

Motilità di singole molecole e cluster di Kinesin-5 Cin8 bidirezionale purificata da cellule S. cerevisiae

Questo studio descrive in dettaglio la purificazione di KIF1A (1-393LZ), un membro della famiglia kinesin-3, utilizzando il sistema di espressione del baculovirus Sf9. L'analisi in vitro di scorrimento monomolecola e multimotore di questi motori purificati ha mostrato robuste proprietà di motilità paragonabili ai motori del lisato cellulare di mammifero. Pertanto, il sistema Sf9-baculovirus è suscettibile di esprimere e purificare la proteina motoria di interesse.

Analisi a singola molecola dei motori della famiglia Kinesin-3 superprocessiva purificata Sf9

Un nuovo sistema in vitro per caricare simultaneamente quattro tendini nella cultura è descritta.

Ex vivo Carico meccanico del tendine

Il calcio è un messaggero onnipresente nel sistema nervoso, essenziale per innescare il rilascio dei neurotrasmettitori e dei cambiamenti nella forza sinaptica. Qui mostriamo una tecnica per il caricamento di Ca 2 +-indicatori in terminazioni nervose Drosophila. Abbiamo anche dimostrare fabbricazione degli apparati necessari e sottolineare i punti critici per il successo della tecnica.

Caricamento terminazioni nervose Drosophila con gli indicatori di calcio

Qui riportiamo la generazione di Tre ricombinasi attraverso la regia, l'evoluzione molecolare. Tre ricombinasi riconosce un pre-definito sequenza bersaglio all'interno della sequenza LTR di HIV-1 provirus, con la conseguente escissione e l'eradicazione del provirus infette da cellule umane. Mentre ancora nella sua infanzia, per la regia evoluzione molecolare consentirà la creazione di enzimi personalizzati che fungeranno da strumenti di chirurgia molecolare e medicina molecolare.

Evoluzione molecolare del ricombinasi Tre

Scopri come caricare nanosfere su microtubuli che scivolano su proteine motorie kinesin. Questo metodo di biotecnologia consente il trasporto nanometrico per applicazioni in nanotecnologia e biosensing.

Caricamento di merci su Kinesin Navette Powered molecolare

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