Name: Saggi biologici per la resistenza di monitoraggio Insetticida (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-30T16:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 30 s
Description: Scopri i saggi biologici per monitorare la resistenza agli insetticidi negli artropodi. Questo metodo permette di determinare i livelli di resistenza confrontando i valori LC50 e di migliorare le strategie di gestione dei parassiti.

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Vorremmo ringraziare Cotton Incorporated Support Program Stato # 08-317MO, USDA / CSREES SR-IPM di Grant 2009-34103-20018 e Landis internazionale per il finanziamento della ricerca relativi a questa pubblicazione.

<ol><li>Yu, S. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aYu%2C+SJ+%22The+Toxicology+and+Biochemistry+of+Insecticides%22">The Toxicology and Biochemistry of Insecticides</a>. , CRC Press Taylor & Francis Group. Boca Raton, Fl. (2008).</li>
<li>Pimentel, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Environmental+and+Economic+Costs+of+the+Application+of+Pesticides+Primarily+in+the+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Dev.+Sustain%22%5BJournal%5D)">Environmental and Economic Costs of the Application of Pesticides Primarily in the United States.</a> Environ. Dev. Sustain. 7, 229-252 (2005).</li>
<li>Plapp, F. W. Jr, McWhorter, G. M., Vance, W. H., H, W. Monitoring for pyrethroid resistance in the tobacco budworm in Texas-1986. Proceedings Beltwide Cotton Production Research Conferences. Beltwide Cotton Production Research Conferences, 5–8 January 1987, Dallas, TX, , National Cotton Council of America. Memphis, Tenn. (1987).</li>
<li>Prabhaker, N., Toscano, N. C., Henneberry, T. J., Castle, S. J., Weddle, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+two+bioassay+techniques+for+resistance+monitoring+of+silverleaf+whitefly+%28Homoptera%3A+Aleyrodidae%29+in+California%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Assessment of two bioassay techniques for resistance monitoring of silverleaf whitefly (Homoptera: Aleyrodidae) in California.</a> J. Econ. Entomol. 89, 805-815 (1996).</li>
<li>Sivasupramaniam, S., Johnson, S., Watson, T. F., Osman, A. A., Jassim, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((glass-vial+technique+for+monitoring+tolerance+of+Bemisia+argentifolii+%28Homoptera%3A+Aleyrodidae%29+to+selected+insecticides+in+Arizona%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">glass-vial technique for monitoring tolerance of Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) to selected insecticides in Arizona.</a> J. Econ. Entomol. 90, 66-74 (1997).</li>
<li>Shean, B., Cranshaw, W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+susceptibilities+of+green+peach+aphid+%28Homoptera%3A+Aphididae%29+and+two+endoparasitoids+%28Hymenopera%3A+Encyrtidae+and+Braconidae%29+to+pesticides%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Differential susceptibilities of green peach aphid (Homoptera: Aphididae) and two endoparasitoids (Hymenopera: Encyrtidae and Braconidae) to pesticides.</a> J. Econ. Entomol. 84, 844-850 (1991).</li>
<li>Willrich, M. M., Leonard, B. R., Cook, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laboratory+and+field+evaluations+of+insecticide+toxicity+to+stink+bugs+%28Heteroptera+Pentatomidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cotton+Sci%22%5BJournal%5D)">Laboratory and field evaluations of insecticide toxicity to stink bugs (Heteroptera Pentatomidae).</a> J. Cotton Sci. 7, 156-163 (2003).</li>
<li>Snodgrass, G. L., Adamczyk, J., Gore, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxicity+of+insecticides+in+a+glass-vial+bioassay+to+adult+brown%2C+green%2C+and+southern+green+stink+bugs+%28Heteroptera%3A+Pentatomidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Toxicity of insecticides in a glass-vial bioassay to adult brown, green, and southern green stink bugs (Heteroptera: Pentatomidae).</a> J. Econ. Entomol. 98, 177-181 (2005).</li>
<li>Nielsen, A. L., Shearer, P. W., Hamilton, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxicity+of+insecticides+to+Halyomorpha+halys+%28Hemiptera%3A+Pentatomidae%29+using+glass-vial+bioassays%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Toxicity of insecticides to Halyomorpha halys (Hemiptera: Pentatomidae) using glass-vial bioassays.</a> J. Econ. Entomol. 101, 1439-1442 (2008).</li>
<li>Dennehy, T. J., Russell, J. S. Susceptibility of Lygus bug populations in Arizona to acephate (Orthene) and bifenthrin (Capture) with related contrasts of other insecticides. Proceedings Beltwide Cotton Conferences. Proceedings Beltwide Cotton Conferences, 9–12 January 1996, Nashville, TN, , National Cotton Council of America. Memphis, Tenn. (1996).</li>
<li>Snodgrass, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glass-vial+bioassay+to+estimate+insecticide+resistance+in+adult+tarnished+plant+bugs%5BTitle%5D)+AND+%22Heteroptera%3A+Miridae%29.+J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Glass-vial bioassay to estimate insecticide resistance in adult tarnished plant bugs.</a> Heteroptera: Miridae). J. Econ. Entomol. 89, 1053-1059 (1996).</li>
<li>Snoddgrass, G. L., Scott, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+discriminating-dose+bioassay+for+detecting+pyrethroid+resistance+in+tarnished+plant+bug+%28+Heteroptera%3A+Miridae%29+populations%5BTitle%5D)+AND+%22Southwest.+Entomol%22%5BJournal%5D)">A discriminating-dose bioassay for detecting pyrethroid resistance in tarnished plant bug ( Heteroptera: Miridae) populations.</a> Southwest. Entomol. 24, 301-307 (1999).</li>
<li>Lopez, J. D. Jr, Hoffman, W. C., Latheef, M. A., Fritz, B. K., Martin, D. E., Lan, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+vial+bioassay+of+insecticidal+toxicity+against+cotton+fleahopper%2C+Pseudatomoscelis+seriatus+%28Hemiptera%3A+Miridae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pest.+Sci.%22%5BJournal%5D)">Adult vial bioassay of insecticidal toxicity against cotton fleahopper, Pseudatomoscelis seriatus (Hemiptera: Miridae).</a> J. Pest. Sci.. 33, 261-265 (2008).</li>
<li>Lopez, J. D. Jr, Hoffman, W. C., Latheef, M. A., Fritz, B. K., Martin, D. E., Lan, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+toxicity+of+selected+insecticides+against+thrips+on+cotton+in+laboratory+bioassays%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cotton+Sci%22%5BJournal%5D)">Evaluation of toxicity of selected insecticides against thrips on cotton in laboratory bioassays.</a> J. Cotton Sci. 12, 188-194 (2008).</li>
<li>Smith, T. P., Hammond, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+susceptibility+of+sweetpotato+weevil+%28Coleoptera%3A+Brentidae%29+to+selected+insecticides%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Comparative susceptibility of sweetpotato weevil (Coleoptera: Brentidae) to selected insecticides.</a> J. Econ. Entomol. 99, 2024-2029 (2006).</li>
<li>Kanga, L. H. B., Wall, M. L., Plapp, F. W. Jr, Gardiner, E. M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pyrethroid+resistance+in+field-collected+boll+weevils+from+southeast+Arkansas+in+1994%5BTitle%5D)+AND+%22Southwest.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Pyrethroid resistance in field-collected boll weevils from southeast Arkansas in 1994.</a> Southwest. Entomol. 20, 247-253 (1995).</li>
<li>Bayoun, I. M., Plapp, F. W. J. r, Gilstrap, F. E., Michels, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxicity+of+selected+insecticides+to+Diuraphis+noxia+%28Homoptera%3A+Aphidiae%29+and+its+natural+enemies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Toxicity of selected insecticides to Diuraphis noxia (Homoptera: Aphidiae) and its natural enemies.</a> J. Econ. Entomol. 88, 1177-1185 (1995).</li>
<li>Smith, T. R., Cave, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pesticide+susceptibility+of+Cybocephalus+nipponoicus+and+Rhyzobius+Iophanthae+%28Coleoptera+Cybocephalidae%2C+Coccinellidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Fla.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Pesticide susceptibility of Cybocephalus nipponoicus and Rhyzobius Iophanthae (Coleoptera Cybocephalidae, Coccinellidae).</a> Fla. Entomol. 89, 502-507 (2006).</li>
<li>Sukontason, K., Olson, J. K., Hartberg, W. K., Duhrkopf, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organophosphate+and+pyrethroid+susceptibilities+of+Culex+salinarius+adults+from+Texas+and+New+Jersey%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am.+Mosquito+Contr%22%5BJournal%5D)">Organophosphate and pyrethroid susceptibilities of Culex salinarius adults from Texas and New Jersey.</a> J Am. Mosquito Contr. 14, 477-480 (1998).</li>
<li>Kanga, L. H. B., Plapp, F. W. J. r, Wall, M. L., Elzen, G. W., Lopez, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+for+resistance+to+organophosphorus%2C+carbamate%2C+and+pyrethroid+insecticides+in+the+oriental+fruit+moth+%28Lepidoptera%3A+Torticidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+Entomol%22%5BJournal%5D)">Monitoring for resistance to organophosphorus, carbamate, and pyrethroid insecticides in the oriental fruit moth (Lepidoptera: Torticidae).</a> Canadian Entomol. , 131-441 (1999).</li>
<li>Plapp, F. W., Jackman, J. A., Campanhola, C., Frisbie, R. E., Graves, J. B., Luttrell, R. G., Kitten, W. F., Wall, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+and+management+of+pyrethroid+resistance+in+the+tobacco+budworm+%28Lepidoptera%3A+Noctuidae%29+in+Texas%2C+Mississippi%2C+Louisiana%2C+Arkansas%2C+and+Oklahoma%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Monitoring and management of pyrethroid resistance in the tobacco budworm (Lepidoptera: Noctuidae) in Texas, Mississippi, Louisiana, Arkansas, and Oklahoma.</a> J. Econ. Entomol. 83, 335-341 (1990).</li>
<li>Mink, J. S., Boethel, D. J., Leonard, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+permethrin+resistance+in+soybean+looper+%28Lepidoptera%3A+Noctuidae%29+adults%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Entomol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Monitoring permethrin resistance in soybean looper (Lepidoptera: Noctuidae) adults.</a> J. Entomol. Sci. 28, 43-50 (1993).</li>
<li>Cook, D. R., Leonard, B. R., Gore, J., Temple, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Baseline+responses+of+bollworm%2C+Heliocoverpa+zea+%28Boddie%29%2C+and+tobacco+budworm%2C+Heliothis+virescens+%28F.%29%2C+to+indoxcarb+and+pyridalyl%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Agricul.+Urban+Entomol%22%5BJournal%5D)">Baseline responses of bollworm, Heliocoverpa zea (Boddie), and tobacco budworm, Heliothis virescens (F.), to indoxcarb and pyridalyl.</a> J. Agricul. Urban Entomol. 22, 99-109 (2005).</li>
<li>Temple, J. H., Pommireddy, P. L., Cook, D. R., Maçon, P., Leonard, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arthopod+management%3A+Susceptibility+of+selected+lepidopteran+to+pests+Rynaxypyr%2C+a+novel+insecticide%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cotton+Sci%22%5BJournal%5D)">Arthopod management: Susceptibility of selected lepidopteran to pests Rynaxypyr, a novel insecticide.</a> J. Cotton Sci. 13, 23-31 (2009).</li>
<li>Plapp, F. W., Vinson, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+toxicities+of+some+insecticides+to+the+tobacco+budworm+and+its+ichneumonid+parasite%2C+Campoletis+sonorensis%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Comparative toxicities of some insecticides to the tobacco budworm and its ichneumonid parasite, Campoletis sonorensis.</a> Environ. Entomol. 6, 381-384 (1977).</li>
<li>Xu, J., Shelton, A. M., Cheng, X. iaN. ian <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variation+in+susceptibility+of+Diadegma+insulare+%28Hymenoptera%3A+Ichneumonidae%29+to+permethrin%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Variation in susceptibility of Diadegma insulare (Hymenoptera: Ichneumonidae) to permethrin.</a> J. Econ. Entomol. 94, 541-546 (2001).</li>
<li>Snodgrass, G. L., Scott, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Seasonal+changes+in+pyrethroid+resistance+in+tarnished+plant+bug+%28Heteroptera%3A+Miridae%29+populations+during+a+three+year+period+in+the+delta+area+of+Arkansas%2C+Louisiana+and+Mississippi%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Seasonal changes in pyrethroid resistance in tarnished plant bug (Heteroptera: Miridae) populations during a three year period in the delta area of Arkansas, Louisiana and Mississippi.</a> J. Econ. Entomol. 93, 441-446 (2000).</li>
<li>Miller, A. L. E., Way, M. O., Bernhardt, J., Stout, M. J., Tindall, K. V. Multi-state resistance monitoring of rice stink bug with a new and old insecticide. Proceedings Rice Technical Working Group, February 22-25, 2010, Biloxi, MS, , (2010).</li>
<li>Abbott, W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+computing+the+effectiveness+of+an+insecticide%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">A method for computing the effectiveness of an insecticide.</a> J. Econ. Entomol. 18, 265-267 (1925).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22User%27s+Manual+version+8.0%22">User's Manual version 8.0</a>. , SAS Institute. Cary, N.C. (2002).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22A+user%27s+guide+to+Probitor+Logit+analysis%22">A user's guide to Probitor Logit analysis</a>. , LeOra Software. Berkeley, CA. (2002).</li>
<li>Preisler, H. K., Robertson, J. L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPreisler%2C+HK+%22Pesticide+bioassays+with+arthropods%22">Pesticide bioassays with arthropods</a>. , CRC Press. Boca Raton, FL. (1992).</li>
<li>Hollingsworth, R. G., Steinkraus, D. C., Tugwell, N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Responses+of+Arkansas+population+of+tarnished+plant+bugs+%28Heteroptera%3A+Miridae%29+to+insecticides%2C+and+tolerance+differences+between+nymphs+and+adults%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Econ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Responses of Arkansas population of tarnished plant bugs (Heteroptera: Miridae) to insecticides, and tolerance differences between nymphs and adults.</a> J. Econ. Entomol. 90, 21-26 (1997).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Il LC 50 valore può essere utilizzato per stabilire la suscettibilità di base di una popolazione target (s). Il valore di questi dati possono essere in indagini di monitoraggio futuri o per l&#39;obiettivo immediato di confronto dei risultati attuali a quella di una precedentemente determinato LC 50 a determinare la suscettibilità della popolazione target si è spostato. LC 50 valori reali possono essere confrontati tra le popolazioni esaminando gli intervalli di confidenza al 95%, se i limiti superiori ed inferiori non si sovrappongono, allora è probabile che la popolazione ha subito un cambiamento significativo nella suscettibilità e in alcune situazioni è indice di resistenza 33. L&#39;LC 50 s può essere utilizzato anche per esaminare i cambiamenti stagionali insetticida esusceptibilitye 28, o confrontare le risposte tra le specie o insetticidi AI s. Un lavoro considerevole è anche possibile utilizzare questi dati per confrontare le risposte tra maschi e femmine 10 o tra adulti e stadi immaturi, 10,34. A volte sono ampi intervalli di confidenza o non in grado di essere calcolato. Per ottenere intervalli di confidenza stretti condurre il biotest con più insetti e / o più concentrazioni.

<table><tbody><tr><td>Beccherino in vetro da 50-100 ml </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Matraccio tarato con tappo (è possibile utilizzare matracci di colore ambrato per pesticidi sensibili alla luce, come i piretroidi)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Provette in vetro da 20 ml con coperchi senza guarnizione</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Metodo per colorare le provette (pittura o pennarelli)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Acetone</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rullo per hot dog commerciale (elemento riscaldante disattivato)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Due bottiglie lavavetri (una modificata in modo che l'apertura sia ampia per un'erogazione rapida del liquido e una con apertura stretta per un'erogazione lenta dei liquidi)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Portacampioni piccolo in plastica (assicurarsi che tutti i materiali plastici siano compatibili con l'acetone)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Accesso a una bilancia con precisione di lettura di 0,001 g o superiore.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Parafilm M</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pipetta ripetibile</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Punte appropriate</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pipette di vetro adatte al matraccio tarato.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cappa (utilizzata per eliminare l'odore di acetone)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Un luogo per conservare le soluzioni di insetticida e le provette [frigorifero (per le soluzioni), stanza buia o congelatore, a seconda del prodotto chimico (per le provette)]</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

saggi biologici per la resistenza di monitoraggio insetticida

Bioassays for Monitoring Insecticide Resistance

Resistenza dei parassiti ai pesticidi è un problema crescente, perché i pesticidi sono parte integrante di agricoltura ad alto rendimento di produzione. Quando pochi prodotti sono etichettati per un parassita individuo all&#39;interno di un sistema particolare coltura, opzioni di controllo chimico sono limitati. Pertanto, lo stesso prodotto (s) sono utilizzati più volte e la pressione selezione continua è posta sulla parassiti bersaglio. Ci sono sia i costi finanziari e ambientali connessi con lo sviluppo di popolazioni resistenti. Il costo di resistere ai pesticidi è stata stimata in circa 1,5 miliardi di dollari all&#39;anno negli Stati Uniti. Questo documento descrive i protocolli, attualmente utilizzato per monitorare artropodi (in particolare insetti) popolazioni per lo sviluppo di resistenza. Il test fiala adulti viene utilizzato per misurare la tossicità di insetticidi di contatto e una modifica di questo test è utilizzato per impianti-sistemico insetticidi. In questi test biologici, gli insetti sono esposti alla tecnica insetticida grado e risposte (mortalità) registrati in uno specifico intervallo post-esposizione. I dati di mortalità sono sottoposti ad analisi probit Log Dose per generare stime di una concentrazione letale che fornisce la mortalità al 50% (LC 50) della popolazione bersaglio e una serie di limiti di confidenza (CL) come stime della variabilità dei dati. Quando questi dati sono raccolti per una serie di insetticida sensibili della popolazione, la LC 50 può essere utilizzato come dati di base ai fini del monitoraggio futuro. Dopo le popolazioni sono stati esposti a prodotti, i risultati possono essere paragonato a un precedentemente determinata LC 50 utilizzando la stessa metodologia.

Questo manoscritto mostra e discute le tecniche utilizzate per esaminare la suscettibilità di pesticidi e di rilevare la resistenza a contatto e pesticidi sistemici in artropodi infestanti.

Saggi biologici per la resistenza di monitoraggio Insetticida

La resistenza dei parassiti ai pesticidi è un problema crescente poiché i pesticidi sono parte integrante di un'agricoltura produttiva ad alta resa. Quando pochi prodotti...

L'obiettivo generale del seguente esperimento è determinare se l'insetto ha sviluppato resistenza all'insetticida. Ciò si ottiene preparando le concentrazioni da testare, sciogliendo l'insetticida di grado tecnico in acetone per insetticidi a contatto, come descritto da Plaid AL nel 1987, oppure in soluzione acquosa di miele per insetticidi sistemici, come descritto da Snores Etol nel 2008.Come secondo passaggio, eluare 0,5 millilitri della soluzione insetticida in acetone in un vial di vetro da 20 millilitri, e ruotare i vials su un rullo per hot dog commerciale con l'elemento riscaldante spento oppure eluare 0,5 millilitri della soluzione insetticida in acqua zuccherata su un pezzo di schiuma floreale posizionato all'interno di un vial. Successivamente, raccogliere l'insetto desiderato per il test in vial adulto al fine di condurre il bioassay, che monitora i risultati della resistenza agli insetticidi ottenuti verificando se l'insetto ha sviluppato o meno resistenza all'insetticida, confrontando la lc 50 ottenuta tramite analisi probit con lc 50 preesistenti. Ciao, mi chiamo Audra Miller.Sono del Delta Research Center del College of Agriculture, Food and Natural Resources dell'Università del Missouri a Portageville, Missouri. Eseguirò un esperimento presso il laboratorio di entomologia della dottoressa Kelly Kindle. Mostrerò la procedura per rilevare se si sta verificando una resistenza agli insetticidi.Ora iniziamo. È fondamentale adottare adeguate precauzioni di sicurezza, come occhiali protettivi, maschere e guanti, ecc. Quando si maneggiano insetticidi, consultare la scheda di dati di sicurezza del materiale per individuare l'equipaggiamento di protezione personale raccomandato per l'agrofarmaco specifico in esame.Per preparare una soluzione madre, correggere in base alla purezza e pesare l'insetticida di grado tecnico in modo appropriato. All'interno della cappa, riempire parzialmente una bottiglia tarata con acetone. Aggiungere l'insetticida e risciacquare il contenitore di pesata con acetone direttamente nella bottiglia.Riempire il matraccio fino al segno di graduazione con acetone mescolando mediante inversione ripetuta. Eseguire diluizioni in serie secondo necessità, codificando con colori i contenitori per le concentrazioni mediante vernice o pennarelli. Versare circa metà del volume pari al numero di contenitori da preparare in un piccolo becher quando la soluzione non è in uso, coprirlo per ridurre al minimo l'evaporazione.Utilizzare una pipetta ripetitrice per aggiungere 0,5 millilitri nei vial. Lavorare da concentrazioni basse a elevate, iniziando dal controllo con acetone puro per rivestire l'interno del vial con l'insetticida di grado tecnico. Posizionare i vial su un rullo per hot dog commerciale con il riscaldamento spento.Lasciare ruotare i vial fino a quando tutta l'acetone non è evaporata. Esaminare singolarmente ogni vial per verificare l'assenza di umidità. Raccogliere gli insetti da sottoporre a test utilizzando trappole a feromoni, retini da sfalcio o qualsiasi altro mezzo di cattura di massa.Fornire agli insetti cibo e umidità per un periodo compreso tra otto e 24 ore. Selezionare esemplari sani e attivi per il saggio biologico, utilizzando da 10 a 25 insetti per ogni prova di concentrazione. Posizionare gli insetti nei vial in modo che siano esposti all'intera gamma delle concentrazioni, e non a una singola concentrazione alla volta.Dopo un tempo di incubazione appropriato, valutare la mortalità in base a criteri di movimento coordinato, come la capacità di raddrizzarsi quando viene posto sulla sua superficie dorsale o di compiere movimenti coordinati quando viene leggermente stimolato. Se l'insetto riesce a raddrizzarsi ma cade subito dopo, non vi è movimento coordinato, quindi l'insetto deve essere considerato morto. Registrare il numero di individui vivi e morti e calcolare la percentuale di sopravvivenza per tutte le concentrazioni.Preparare provette con l'insetticida di grado tecnico disciolto in una soluzione acquosa di miele al 10%. Pesare il miele per ottenere una soluzione acquosa di miele al 10% in volume, trasferirla in una fiala tarata e aggiungere l'insetticida di grado tecnico alla soluzione acquosa di miele, risciacquando il becher. Ripetere il procedimento di preparazione della diluizione in serie, ma utilizzare la soluzione acquosa di miele invece dell'acetone. Tagliare un pezzo di schiuma floreale e posizionarlo all'interno della provetta Eloqua.Applicare 0,5 mL di soluzione sulla schiuma florale contenente gli insetti, sigillando con una pallina di cotone invece che con un coperchio. Eseguire il bioassay nello stesso modo previsto per gli insetticidi a contatto, correggendo la mortalità rispetto al controllo. Secondo Abbott, determinare la concentrazione letale necessaria per uccidere il 50% di una popolazione e gli intervalli di confidenza al 95%.Questa operazione può essere eseguita utilizzando un programma software come SAS Proc probate o Polo Plus; ad esempio, in questo programma campione per SAS, dose rappresenta la concentrazione utilizzata nel bioassay. N è il numero di individui testati a una determinata concentrazione e risposta è il numero di individui morti; si calcola la probabilità dello 0,5 e questo valore corrisponde alla lc 50 con limiti di confidenza compresi tra 0,1891 e 0,3273 microgrammi per provetta. Se esistono dati di base per l'insetto testato o una lc 50 ottenuta da una popolazione nota come suscettibile, la nuova lc 50 può essere confrontata con la lc 50 dei dati di base o delle popolazioni suscettibili.Se l'lc 50 di base fosse 0,1487 microgrammi per flacone con limiti di confidenza compresi tra 0,1167 e 0,1793 microgrammi per flacone, si potrebbe concludere che vi è un cambiamento significativo nella resistenza poiché i limiti di confidenza non si sovrappongono. Tuttavia, se l'lc 50 di base fosse 0,1487 microgrammi per flacone, ma i limiti di confidenza fossero compresi tra 0,0958 e 0,1983 microgrammi per flacone, non vi sarebbe un aumento significativo della resistenza poiché i limiti di confidenza si sovrappongono. Questo esperimento può essere utilizzato per aiutare a determinare se la resistenza agli insetticidi è la causa del fallimento dell'insetticida oppure no, ma ricordare che quando si lavora con insetticidi si dovrebbe sempre utilizzare l'equipaggiamento protettivo adeguato. Ora.Grazie per aver guardato e buona fortuna con i vostri esperimenti.

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Questo video spiega i meccanismi di resistenza pianta ospite di erbivori e dimostra una non-scelta di test che stima il contributo relativo di antibiosi e tolleranza per spittlebug resistenza...

Caratterizzano Erbivoro meccanismi di resistenza: Spittlebugs su Brachiaria Spp. come esempio

In questo video, dimostriamo il test topico per determinare la tossicità di un potenziale insetticida su zanzare femmine adulte. Utilizzando un antagonista del recettore della dopamina che causa l'inibizione letale della neurotrasmissione nelle zanzare, questo metodo descrive un modo per valutare gli effetti tossici degli insetticidi dopo l'applicazione topica.

Test topico: una tecnica per valutare il potenziale insetticida degli antagonisti del recettore della dopamina su zanzare femmine adulte mediante applicazione topica

Viene presentato un approccio robusto e flessibile per confermare la resistenza agli erbicidi nelle popolazioni di erbe infestanti. Questo protocollo consente di dedurre i livelli di resistenza agli erbicidi e di applicarli a un'ampia gamma di specie di erbe infestanti ed erbicidi con adattamenti minori.

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valutazioni Insetticida sono spesso presi di mira contro gli insetti adulti, piuttosto che stadi immaturi. Qui, vi presentiamo un protocollo per la valutazione insetticidi contro le uova di bug letto con un confronto con il primo stadio bug letto ninfale. Questi protocolli possono essere regolati per altri insetti per valutare l'efficacia insetticida in fasi della vita non adulti.

Un metodo per la valutazione Insetticida efficacia contro Bed Bug,<em&gt; Cimex lectularius</em&gt;, Uova e First stadi

Arene di analisi biologica di foto-attrazione vengono utilizzati per determinare i colori di luce ottimali per massimizzare l'attrazione dell'insetto; Tuttavia le analisi biologiche e metodi sono specifici per target habitat e comportamenti dell'insetto. Modifiche e attrezzature personalizzabili sono spiegate per insetti notturni o diurni e terrestri o aerei.

Elementi chiave dell'analisi biologica di attrazione di foto per studi di insetti o programmi di monitoraggio

Protocolli sono descritti per valutare la tossicità delle chimiche alle zanzare immature e adulte per lo sviluppo come nuove classi di larvicidi, adulticides ed endectocidi. I protocolli consentono un elevato throughput test delle chimiche multiple a punto singolo dose e successiva valutazione tramite test di risposta dose per determinare la tossicità per contatto o ingestione.

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Qui, presentiamo un protocollo per produrre casa volare carbossilesterasi proteine in vitro con un sistema di espressione di baculovirus mediata delle cellule di insetto e successivamente funzionalmente caratterizzano i loro ruoli in che metabolizza permetrina, quindi, che conferisce piretroidi resistenza conducendo basati su cellule MTT assay e in vitro gli studi metabolici.

Caratterizzazione funzionale di Carboxylesterases in casa resistente all'insetticida mosche, Musca Domestica

L'efficacia dei pesticidi di sanità pubblica targeting insetti fastidiosi e malattia-vector non è uniforme tra diverse zone ecologiche. Qui presentiamo un sistema di tecniche utilizzando insetti vettori in cattività come sentinelle per l'efficacia dei pesticidi per derivare mappe elettroniche sostenendo la valutazione standard di pesticidi in diversi ambienti.

Efficacia dei pesticidi contro le zanzare vettore di malattia nel campo di visualizzazione

Descriviamo la metodologia e l'importanza del biotest di applicazione topica per misurare la suscettibilità agli insetticidi nelle zanzare e nei moscerini della frutta. Il test presentato è ad alto rendimento, utilizza la massa degli insetti, consentendo così di calcolare una dose letale relativizzata alla massa anziché la concentrazione, e probabilmente ha una variabilità inferiore rispetto ad altri metodi simili.

Biotest di applicazione topica per quantificare la tossicità degli insetticidi per zanzare e moscerini della frutta

Questo protocollo descrive il saggio di alimentazione obbligata per valutare l'effetto potenzialmente tossico di un fitochimico sulle larve di insetti lepidotteri. Si tratta di un test biologico per insetti altamente scalabile, facile da ottimizzare la dose subletale e letale, l'attività deterrente e l'effetto fisiologico. Questo potrebbe essere utilizzato per lo screening di insetticidi ecologici.

Sviluppo di un sistema di dosaggio per l'alimentazione per la valutazione dell'effetto insetticida di sostanze fitochimiche su Helicoverpa armigera

Questo studio mirava a indagare la relazione tra il momento dell'applicazione dei pesticidi e l'attività delle api, misurata tramite bioacustica, nella soia. L'analisi ha mostrato che l'applicazione di pesticidi, indipendentemente dal tempismo, non ha avuto alcun effetto sull'attività delle api, sulla defogliazione o sulla ressa. Tuttavia, l'attività delle api era più alta più tardi nella giornata e durante il picco della fioritura della soia.

Valutazione della repellenza di una combinazione insetticida-fungicida per le api utilizzando la bioacustica

Scopri i saggi biologici per monitorare la resistenza agli insetticidi negli artropodi. Questo metodo permette di determinare i livelli di resistenza confrontando i valori LC50 e di migliorare le strategie di gestione dei parassiti.

Saggi biologici per la resistenza di monitoraggio Insetticida

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