4 settembre 2010
Analisi di singola cellula viene effettuata mediante spettrometria di massa su cellule animali e vegetali a pressione atmosferica, utilizzando una fibra ottica affilato per assaggiare le cellule per la ionizzazione elettrospray ablazione laser (LAESI) spettrometria di massa.
L'obiettivo generale del seguente esperimento è espellere il contenuto di una singola cellula vivente e ionizzare le biomolecole rilasciate per l'analisi mediante uno spettrometro di massa in condizioni di pressione atmosferica. Questo risultato si ottiene selezionando una singola cellula attraverso un microscopio a lunga distanza e ablazionando la cellula selezionata con un impulso laser di lunghezza d'onda 2,94 micrometri, erogato tramite una fibra ottica affilata. L'ablazione di una singola cellula provoca la formazione di un pennacchio microscopico di materiale particolato neutro, da ionizzare successivamente.
Viene intercettato da uno spruzzo elettrostatico. Le goccioline cariche dello spruzzo si fondono con le particelle della nube di ablazione proveniente dalla cellula. Le goccioline risultanti sono arricchite con le molecole della cellula e generano gli ioni corrispondenti.
Vengono ottenuti risultati che mostrano uno spettro di massa proveniente da una singola cellula. Lo spettro contiene numerosi picchi relativi ai metaboliti e ai lipidi della cellula. Salve, sono il dottor Bin Drester del Verese Laboratory del Dipartimento di Chimica della George Washington University.
Oggi vi mostreremo il procedimento per l'analisi diretta di singole cellule vive mediante spettrometria di massa a pressione atmosferica. Utilizziamo questo procedimento nel nostro laboratorio per studiare metaboliti e lipidi di singole cellule vegetali e animali. Cominciamo dunque.
L'ablazione laser per l'ablazione laser, ionizzazione mediante spruzzo elettrostatico, spettrometria di massa o MS pigra è prodotta da un impulso laser di cinque nanosecondi a una lunghezza d'onda di 2,94 micrometri. Un oscillatore ottico parametrico accordabile, azionato da un laser a neodimio YAG, è utilizzato per l'ablazione in questo studio.
Per iniziare, montare l'estremità incisa di una fibra ottica su un micromanipolatore e avvicinarla alla superficie della cellula. Per un efficiente deposito di energia, tenere l'estremità non incisa della fibra ottica mediante un porta-fibra nudo per l'allineamento ottico. Il porta-fibra è montato su un traduttore a cinque assi.
Accoppiare l'energia laser alla fibra focalizzando il fascio mediante una lente piano-convessa in fluoruro di calcio o in seleniuro di zinco con rivestimento antiriflesso, indirizzandolo sull'estremità non incisa della fibra; utilizzare specchi d'oro protetti per deviare il fascio laser nell'infrarosso medio verso la lente di focalizzazione. Per mantenere la distanza tra la punta appuntita della fibra e la superficie della cellula, utilizzare un microscopio video a lunga distanza montato con un angolo compreso tra 15 e 30 gradi rispetto alla superficie. Questo sistema comprende inoltre un obiettivo corretto all'infinito con ingrandimento cinque volte, dotato di una telecamera CCD per il monitoraggio e l'acquisizione delle immagini.
Un secondo microscopio video è montato perpendicolarmente alla superficie del campione per visualizzare le cellule dall'alto e selezionarle per l'analisi. Questo sistema fornisce un riscontro visivo per allineare la punta della fibra sopra la cellula selezionata per l'ablazione e l'analisi. È composto da un obiettivo zoom di precisione con ingrandimento sette volte, da una lente obiettivo corretta all'infinito con lunga distanza di lavoro 10 volte e da una telecamera CCD.
Il sistema di elettrospruzzo è stato costruito utilizzando un raccordo metallico con perfluoro conduttivo, elastomero, raccordi feral, tubi, porta ago con manicotto e tubo in silice FU. L'emettitore raccomandato è in acciaio inossidabile e presenta una punta conica con un diametro di 50 micrometri; preparare una soluzione al 50% di metanolo con 0,1% di acido acetico per l'elettrospruzzo. Pompare la soluzione a una velocità compresa tra 200 e 300 nanolitri al minuto mediante una pompa a siringa.
Utilizzando una siringa da 500 microlitri, verrà applicata una tensione elevata compresa tra 2, 803.000 volt al giunto metallico mediante un alimentatore regolato. Per generare uno spruzzo elettrostatico stabile, assicurarsi che tutte le connessioni elettriche siano sicure e schermate correttamente, con messa a terra adeguata, poiché il contatto diretto con parti scoperte in alta tensione può provocare scosse elettriche. Ottenere il campione di tessuto o cellule vitali da una fonte appropriata e conservarlo secondo le raccomandazioni prima dell'analisi.
I bulbi di allium per questa dimostrazione sono stati acquistati da un negozio locale. Per la preparazione del campione del bulbo di allium, tagliare longitudinalmente il bulbo con un bisturi chirurgico, sezionando un segmento di circa due centimetri quadrati della squama di un bulbo di cipolla. Successivamente, staccare un monolayer intatto del tessuto epidermico interno. Utilizzare la superficie umida dell'epidermide per montare il tessuto su un vetrino microscopico precedentemente pulito.
Tenere il vetrino mediante un supporto universale, montato su un palco di traslazione a tre assi per il posizionamento. Immediatamente dopo aver montato il campione, acquisire gli spettri di massa per prevenire il degrado cellulare. Iniziare accendendo il laser, lo spruzzo elettrostatico e lo spettrometro di massa.
Ottimizzare la geometria della sorgente ionica lazy regolando la posizione del punto di ablazione e dell'emettitore elettrospray l'uno rispetto all'altro e rispetto all'orifizio dello spettrometro di massa. Per ottenere la massima intensità ionica, selezionare la cellula di interesse per l'analisi utilizzando il sistema di visualizzazione in vista superiore. Dopo la selezione, spostare la piattaforma del campione in modo da posizionare la cellula selezionata direttamente al di sotto della punta affilata della fibra ottica.
Utilizzando il microscopio con vista laterale, regolare nuovamente la distanza tra la punta e la superficie della cellula a circa 20 micrometri. Una volta raggiunta la posizione corretta, inviare impulsi laser sulla cellula selezionata attraverso la punta della fibra incisa. Ciò determina la perforazione della parete cellulare e l'espulsione del citoplasma sotto forma di materiale particellato.
Dopo la post-ionizzazione mediante elettrospruzzo, gli ioni prodotti vengono raccolti dallo spettrometro di massa e vengono registrati gli spettri di massa. Al termine dell'acquisizione dei dati, impostare il laser, l'elettrospruzzo e lo spettrometro di massa in modalità stand-by oppure spegnerli. Conservare il campione di tessuto di Allium cepa ablato per un'eventuale osservazione mediante microscopia ottica; un'ablazione riuscita di una singola cellula provoca la rottura della parete cellulare e la raccolta di uno spettro di massa debole.
Di seguito sono riportati i risultati dell'analisi MS lazy di una singola cellula epidermica inclusa in un bulbo di allium SEPA, che mostra un'immagine rappresentativa ottenuta mediante microscopia ottica. Dopo il campionamento di una cellula, la parete cellulare viene perforata e l'estensione della perforazione è limitata dai confini con le cellule adiacenti. Le cellule adiacenti risultano integre.
Qui viene mostrato uno spettro di massa lazy rappresentativo prodotto dalla cellula. Viene rilevata una vasta gamma di ioni dall'allium sea per cellula, e sulla base delle loro masse accurate, dei modelli di distribuzione degli isotopi e degli spettri di massa in tandem, gli ioni vengono attentamente assegnati a metaboliti endogeni. Gli ioni rilevati da una singola cellula erano simili a quelli osservati nell'analisi dello stesso tessuto mediante spettrometria di massa lazy convenzionale su più cellule.
Vi abbiamo appena mostrato come analizzare singole cellule vive mediante spettrometria di massa a pressione atmosferica. Quando si esegue questa procedura, è importante ricordare di indossare occhiali protettivi per evitare esposizioni accidentali a laser infrarossi di classe quattro. Questo è tutto.
Grazie per aver guardato e buona fortuna con i vostri esperimenti.
Questo studio dimostra l'uso della spettrometria di massa con ionizzazione mediante elettrospray e ablazione laser (LAESI) per l'analisi di singole cellule vegetali e animali. Il metodo consente l'analisi diretta di metaboliti e lipidi cellulari a pressione atmosferica.
La spettrometria di massa diretta su singola cellula a pressione atmosferica consente un profilo metabolico senza marcatura, senza alterare gli stati cellulari nativi, supportando la validazione precoce dei bersagli grazie alla rivelazione dell'espressione eterogenea di biomarcatori in popolazioni isogeniche. Questa capacità riduce i rischi nell'identificazione dei composti promettenti fornendo dati quantitativi sui metaboliti con risoluzione spaziale, correlati agli esiti dello screening fenotipico, informando decisioni di avanzamento o interruzione nella selezione preclinica dei bersagli. La compatibilità del metodo con cellule vive e la minima preparazione del campione si allineano ai flussi di lavoro nella fase di scoperta, che richiedono un'ancoraggio fenotipico rapido e riproducibile dei bersagli molecolari.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione dell'obiettivo guidata da ipotesi all'identificazione di composti promettenti, in cui il profilo metabolico a singola cellula fornisce informazioni sulla fiducia nell'obiettivo e sulla progettazione di saggi fenotipici prima dello screening dei composti.