30 gennaio 2011
Il saggio descrive un modo rapido per misurare la rapida formazione di biofilm in batteri e funghi. Questo metodo utilizza una micropiastra come substrato per la formazione di biofilm microbico, e il biofilm viene visualizzato per mezzo viola ceppo di cristallo. Il saggio fornisce sia un test qualitativo o quantitativo per la formazione di biofilm presto.
L'obiettivo generale di questa procedura è quello di stabilire e studiare i biofilm in una piastra microtitolata. Questo viene ottenuto innanzitutto aggiungendo una coltura batterica a una piastra a 96 pozzetti. Successivamente, la coltura viene incubata alla temperatura e per il tempo appropriati, in base al microrganismo, per colorare il biofilm.
Viene aggiunto violetto di cristallo in ogni pozzetto contenente batteri, quindi i batteri vengono lavati. Infine, i pozzetti vengono fotografati e i batteri quantificati. In definitiva, è possibile ottenere risultati che mostrano l'accumulo e la formazione di biofilm nel tempo attraverso la misurazione del violetto di cristallo.
Il principale vantaggio di questo metodo è che consente ai ricercatori di valutare rapidamente la formazione di biofilm in organismi batterici e fungini. Può inoltre essere configurato per schermate genetiche ad alto rendimento, oppure per identificare nuovi composti terapeutici in grado di inibire la formazione di biofilm. Preparare una coltura notturna di cinque millilitri del ceppo selvatico di pseudomonas, aerogen o di una variante mutante.
In mezzo LB, diluire 10 microlitri di coltura in un millilitro di M 63 fresco, un mezzo minimo integrato con magnesio, solfato, glucosio e acidi cassino. Successivamente, trasferire con una pipetta 100 microlitri di coltura diluita in pozzetti separati di una piastra rotonda a 96 pozzetti. Incubare la piastra a 37 gradi Celsius per quattro-24 ore per consentire la formazione di biofilm.
Una volta formati i biofilm, rimuovere la piastra dall'incubatore e scartare i sopranatanti di coltura capovolgendo la piastra e agitando per eliminare il liquido. Quindi immergere delicatamente la piastra in un contenitore piccolo pieno d'acqua per rimuovere eventuali cellule non legate o componenti del mezzo che potrebbero causare una colorazione di fondo. Agitare via l'acqua, asciugare la piastra tamponandola e ripetere il lavaggio.
Una volta che la piastra è pulita, aggiungere 125 microlitri per pozzetto di una soluzione di violetto di cristallo allo 0,1%. Per colorare le cellule, incubare la piastra a temperatura ambiente per 10-15 minuti.
Quindi lavare la piastra da tre a quattro volte come illustrato in precedenza. Asciugare energicamente la piastra su una pila di fazzoletti di carta per rimuovere il liquido in eccesso dopo l'ultimo lavaggio, capovolgere la piastra e lasciarla asciugare capovolta per alcune ore. Una volta asciutta la piastra, le pozzette possono essere fotografate con una fotocamera digitale per valutare la qualità dei biofilm.
Come mostrato qui, i batteri mobili come Pseudomonas aerogen a sinistra e Pseudomonas fluorescence a destra tendono a formare biofilm nella zona dell'interfaccia aria-liquido durante la crescita del biofilm. Al contrario, i batteri Staphylococcus ora, che sono non mobili, formano biofilm sul fondo delle pozzette. Per quantificare i biofilm, aggiungere prima 125 microlitri di acido acetico al 30% in ogni pozzetta, inclusa una pozzetta vuota contenente solo acido acetico, e incubare la piastra a temperatura ambiente per 10-15 minuti per permettere la solubilizzazione del violetto di cristallo trattenuto dai biofilm.
Successivamente, trasferire i 125 microlitri di colorante solubilizzato da ogni pozzetto a una nuova piastra microtitolatrice piatta da 96 pozzetti. Utilizzando un lettore di piastre, quantificare l'assorbanza di ogni pozzetto a una lunghezza d'onda di 550 nanometri. La concentrazione di violetto cristallo in ogni pozzetto è proporzionale al numero di cellule nel biofilm.
Questo grafico mostra una quantificazione della formazione e dell'accumulo di biofilm da parte di Pseudomonas fluorescens nel tempo durante l'incubazione a 37 gradi Celsius. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come eseguire un saggio di biofilm in piastra a 96 pozzetti, utilizzato in combinazione con altri metodi come la microscopia. Tale metodo può contribuire in modo significativo alla nostra comprensione della formazione del biofilm.
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Questo saggio descrive un metodo rapido per misurare la formazione precoce di biofilm in batteri e funghi utilizzando una piastra a microtitolazione. Il biofilm viene visualizzato mediante colorazione con violetto di cristallo, consentendo analisi sia qualitative che quantitative.
Il saggio di formazione del biofilm in piatto microtitolatore consente una valutazione rapida e ad alto rendimento dello sviluppo del biofilm nelle fasi iniziali, supportando la validazione degli bersagli nella scoperta di agenti antimicrobici. Quantificando l'accumulo del biofilm mediante colorazione con violetto di cristallo, il metodo fornisce dati riproducibili e quantitativi che aiutano a ridurre i rischi associati ai candidati terapeutici mirati all'adesione microbica e alla persistenza. Questo approccio scalabile è applicabile a sistemi batterici e fungini, facilitando lo screening nelle fasi iniziali di composti modulatori del biofilm.
Il saggio si inserisce nel percorso di scoperta che va dall'identificazione del bersaglio all'ottimizzazione del composto leader, in particolare per programmi anti-infettivi rivolti alla resistenza mediata da biofilm.