19 aprile 2011
Un metodo semplice ed efficace per trasformare Physcomitrella pantens Protoplasti è descritto. Questo metodo è adattato da protocolli per Physocmitrella Protonemal protoplasti e Arabidopsis Mesofillo trasformazione di protoplasti 1.
L'obiettivo generale di questa procedura è trasformare i protoplasti SCO Metre Protoplasts. Ciò si ottiene digerendo prima le piante con Drizly. Successivamente, i protoplasti vengono lavati con mannitolo per rimuovere il drizly e vengono quindi incubati con DNA e peg.
Infine, i protoplasti trasformati vengono sparsi su piastre e incubati. In definitiva, i risultati possono essere ottenuti. Che mostrano protoplasti trasformati che esprimono proteine marcate in fluorescenza attraverso la microscopia a fluorescenza A dimostrare la procedura sarà Y lu, un postdoc del mio laboratorio.
Il vantaggio principale di questa tecnica è che è efficace e genera costantemente protoplasti che esprimono la proteina di interesse Per isolare il muschio I protoplasti iniziano aggiungendo nove millilitri di 8% di mannitolo in una capsula di Petri usando una spatola Posizionare il muschio di cinque o sette giorni da due a tre piastre PP NH quattro nel mannitolo. Si prega di consultare il protocollo scritto allegato per questa e altre ricette di reagenti. Successivamente, aggiungere tre millilitri di 2% di essiccazione e incubare a temperatura ambiente agitando delicatamente per un'ora.
Filtrare la miscela attraverso maglie da 100 micron fino ad ottenere una sospensione verde omogenea. Quindi centrifugare il filtrato a 250 g per cinque minuti. Scartare il surnatante molto delicatamente.
Risospendere i protoplasti in 500 microlitri di mannitolo all'8%. Quindi aggiungere altri 9,5 millilitri di mannitolo all'8%. Assicurarsi che i protoplasti siano completamente sospesi.
Eseguire le fasi di lavaggio altre due volte centrifugando nuovamente la soluzione a 250 G per cinque minuti. Scarto del surnatante e sospensione dei protoplasti. Primo in 500 microlitri.
Quindi 9,5 millilitri di mannitolo all'8% utilizzando un emocitometro. Contare il numero di protoplasti in 10 microlitri di sospensione per trasformare il DNA nei protoplasti isolati. Per prima cosa, centrifugare la miscela di protoplasti a 250 G per cinque minuti.
Rimuovere il surnatante, risospendere i protoplasti a 1,6 milioni per millilitro in soluzione di MMG. Incubare la sospensione a temperatura ambiente per 20 minuti. Successivamente, aggiungere 600 microlitri della soluzione di Protoplasts in una provetta di coltura contenente 60 microgrammi di DNA. Scuotere.
Aggiungere delicatamente 700 microlitri di soluzione di calcio PEG e agitare. Incubare bene il campione a temperatura ambiente per 30 minuti durante questo periodo di attesa. Coprire le lastre PRMB con cellophane.
Quindi diluire la sospensione con tre millilitri di W cinque soluzione centrifugare a 250 G per cinque minuti. Per rimuovere il PEG risospeso, i protoplasti in due millilitri di piastra PRMT un millilitro per piastra PRMB ricoperta di cellophane. Conservare le piastre a 25 gradi Celsius in una camera di crescita.
Infine, quattro giorni dopo la trasformazione, trasferire il cellophane su piastre di selezione fresche. Questa figura mostra un esempio di piante di 18 giorni rigenerate da protoplasti, trasformate con 15 microgrammi di plasma super arrotolato, DNA, che trasportano una cassetta resistente all'igromicina. Qui, 30 microgrammi dello stesso plasmide super avvolto, il DNA, sono stati trasformati in protoplasti.
In questo campione sono stati trasformati 60 microgrammi di DNA scozzese. E infine, queste piante sono state rigenerate da protoplasti che sono stati trasformati con 120 microgrammi dello stesso DNA di plasma super avvolto che trasporta la cassetta di resistenza all'igromicina. L'efficienza di trasformazione non è influenzata da concentrazioni di DNA fino a 60 microgrammi.
Tuttavia, concentrazioni più elevate di DNA sono dannose per questa procedura. I dati indicano che questo metodo fornisce risultati coerenti su un'ampia gamma di quantità di DNA Una volta semestrale. Questa tecnica può essere eseguita in tre ore se eseguita correttamente.
Seguendo questa procedura, è possibile eseguire metodi aggiuntivi come l'RNAi transitorio e il knockout genico per rispondere a ulteriori domande sulla funzione genica.
Questo articolo descrive un metodo semplice ed efficiente per la trasformazione di protoplasti di Physcomitrella patens. La tecnica è adattata da protocolli esistenti per la trasformazione di protoplasti e mira a produrre risultati costantemente efficaci.
La trasformazione mediata da PEG di protoplasti di Physcomitrella patens consente un trasferimento genico efficiente e riproducibile, supportando la genomica funzionale ad alto rendimento nei sistemi vegetali. Questa capacità è fondamentale per i team di scoperta iniziale che mirano a indagare la funzione genica, validare bersagli e accelerare l'elucidazione di percorsi metabolici in un modello geneticamente accessibile. La scalabilità del metodo e il suo potenziale di standardizzazione lo rendono prezioso per schermate genetiche su larga scala e per la riduzione del rischio meccanicistico nell'intero portafoglio di ricerca.
Questo protocollo di trasformazione si inserisce nel percorso continuo che va dalla scoperta iniziale all'identificazione del capostazione, consentendo la manipolazione genetica, la validazione degli obiettivi e lo sviluppo di saggi nei modelli vegetali.