11 gennaio 2011
In questo articolo, abbiamo descritto la procedura di chirurgia e la movimentazione suggerimenti per l'impianto di ultra-sottile a base di poliammide array di microelettrodi (PBM-array) sul cranio del mouse per l'acquisizione ad alta densità encefalografia (EEG) in un modello murino.
Ciao, sono Mina Lee del Gen Choice Laboratory presso il Center for Neuroscience del Korea Institute of Science and Technology. Oggi dimostreremo la condizione di EG ad alta densità nel modello di massa con array di micro elettrodi a base di polietilene. La procedura prevede l'installazione degli strumenti, la preparazione degli animali per l'intervento chirurgico e l'esecuzione di interventi di chirurgia stereotossica.
Dopo l'intervento, eseguiremo la registrazione EEG e quindi analizzeremo i dati. Iniziamo. Prima di iniziare l'intervento, predisporre gli strumenti stereotossici e tutto il materiale necessario.
L'ambiente deve essere pulito. Prepara il topo per l'intervento chirurgico. Dimostrerò l'intervento chirurgico di oggi utilizzando un topo ibrido di base sei nero J 1 29 s quattro S-V-J-A-E di 17 settimane.
Possiamo anche usare topi più pesanti di 25 grammi. Anetizzare il topo con un'iniezione IP di cocktail contenente 120 milligrammi per chilogrammo, ketamina e sei milligrammi per chilogrammo di uscita. Pizzicare delicatamente la coda del topo, per assicurarsi che il topo sia anestetizzato abbastanza profondamente da procedere con l'intervento chirurgico.
Per iniziare l'intervento chirurgico, montare l'animale sullo stereo tossico a parte. Posiziona le barre d'aria nel connel del mouse una per una e rendilo stretto. Metti un po' di metanolo sulla sua testa e poi modella la parte più lontana della sua testa.
Iniettare, praticare un'incisione anteriore posteriore tra gli occhi e tra le orecchie e il cranio. Pizzicare la pelle del mouse utilizzando delle micro pinze per mantenere l'incisione larga. Rimuovere qualsiasi tessuto o membrana rimanente dal cranio con gli scambi di taglio sterilizzati.
Metti il pennarello sopra la sua testa. Contrassegna i punti lambda BMA. Quindi rimuovere il pennarello e segnare i punti utilizzando una vecchia penna migliore.
Proprio nel segno. Il punto. Porta l'elettrodo a pellicola sopra la testa e metti una goccia di acqua T sul cranio.
Posiziona il BMA al centro del quinto strato dell'Ontario del poli miglior micro electro array. Stendere accuratamente la pellicola dalla parte mediale a quella successiva con i batuffoli di cotone morbido d'acqua. Dare qualche minuto fino a quando non si asciuga completamente.
Questo aiuta con una migliore aderenza. Fai tre segni di penna con una penna a base di olio nello spazio residuo. Questi segni sono dove forerai.
Fare molta attenzione a non toccare l'interno con i fori. Posizionare le tre viti di sterzo sterili sul cranio e posizionarle fino a quando non sono ben aderenti al cordone. Mescolare una densa miscela di liquido, liquido, accuratamente cemento dentale e coprire la pellicola, le viti dell'elettrodo e il resto del cranio.
Prepara un altro lotto e usalo per coprire completamente l'elettrodo. Scoprire nuovamente le viti per fissarlo. Ricorda, quest'uomo non dovrebbe essere sotto l'elettrodo della pellicola.
Metti un doppio segno con del nastro adesivo sul retro del piano del connettore. Posiziona un bastoncino rigido come una cinghia al centro del cranio usando una colla forte. Nell'esperimento di oggi, uso la punta di un tampone da taglio per questo passaggio del bastone, manipolo la posizione del connettore in modo che sia all'indietro fino a quando non entra in contatto con la punta del punto di taglio.
La distanza tra il cranio e il connettore deve essere superiore a cinque millimetri. Attacca il piano del connettore sulla punta del batuffolo di cotone aggiungendo una colla forte. Coprire il resto dell'area aperta con cemento acrilico ul.
Dopo l'indurimento del cemento, rimuovere le pinze e mescolare la pelle. Rimuovi il mouse dal parus e copri lo spazio extra. Con il cemento dentale acrilico applicare l'antibiotico sodio intorno al cemento e all'area della sutura.
Metti il topo nella sua gabbia e fornisci un elenco di cinque giorni per il recupero. Collegare il mouse all'EEG e tirare il fuoco e dare più di un'ora per l'abitazione. Dopo un'ora di registrazione EEG, abbiamo eseguito l'acquisizione di EEG ad alta densità in un modello murino con un array di micro elettrodi a base di poli.
Quando si esegue questa procedura, è importante ricordarsi di maneggiare delicatamente la pellicola electro Tri perché ha uno spessore di soli sette micrometri. A, è necessaria una goccia di acqua del rubinetto quando si riordina l'elettrodo. Se si salta questo passaggio, l'elettrodo può essere ruotato facilmente e assicurarsi che i denti acrilici realizzati con alta viscosità non permeino sotto la pellicola.
Dopo la registrazione, conduciamo analisi offline utilizzando il laboratorio di metanfetamina per disegnare diversi grafici cerebrali per visualizzare chiaramente le attività cerebrali nei topi. Questo è il segnale EEG multicanale rappresentativo dopo l'iniezione di GBL. Nel pannello di sinistra, è possibile visualizzare i segnali e multicanale rappresentativi dopo l'iniezione di GBL nel pannello di destra.
Vengono presentate mappe topografiche cerebrali come il ritardo medio di potenza, la forza di picco media e la mappa di probabilità media di insorgenza delle crisi. Quindi questo è tutto. Grazie per l'attenzione.
Questo articolo dimostra la procedura chirurgica per l'impianto di un array di microelettrodi a base di poliimide (PBM-array) sul cranio del topo, permettendo l'acquisizione EEG ad alta densità in un modello di topo.
High-density EEG in freely moving mice enables mechanistic de-risking of neural circuit hypotheses by linking electrophysiological signatures to behavior in genetically tractable models. This approach supports target validation in neuropsychiatric drug discovery by providing quantitative, reproducible readouts of network activity relevant to disease mechanisms. The polyimide-based microelectrode array enhances signal fidelity and chronic recording capacity, improving predictive confidence in preclinical efficacy assessments.
The method integrates into the discovery continuum from hypothesis generation through lead optimization by supplying dynamic, systems-level neural data that informs target selection and compound prioritization.