13 febbraio 2011
Abbiamo descritto un protocollo per osservare e analizzare le traiettorie delle cellule che rotola su asimmetrici recettore fantasia substrati. I dati risultanti sono utili per l'ingegneria del recettore-fantasia substrati per etichette senza separazione delle cellule e l'analisi.
Questo protocollo osserva e analizza le traiettorie di rollio cellulare su pattern di recettori asimmetrici per facilitare l'ingegnerizzazione di substrati di pattern recettoriali per la separazione e l'analisi delle cellule senza marcatura. Inizia con la stampa a micro contatto di molecole PEG su un substrato d'oro per creare modelli alternati di monostrati autoassemblati, seguiti dal riempimento del substrato con P select e recettori. Quindi, incorporare il substrato con la camera di flusso. Far fluire le celle HL 60 nella camera.
Registrare una sequenza di immagini dell'interazione di rotolamento delle cellule HL 60 su modelli di selectina P e analizzare le immagini convertite dal video. Le traiettorie delle velocità di rotolamento della lunghezza di tracciamento del bordo della cella di rotolamento su piano, regione e bordo possono essere ottenute utilizzando un programma MATLAB. Questo metodo può fornire informazioni su come le cellule HO 60 si muovono sui modelli di recettori simmetrici nel flusso azionario.
Questo può essere applicato per quantificare le interazioni di superficie di altre cellule, l'analisi diretta delle cellule osservando le loro traiettorie sui modelli recettoriali. E per la progettazione di dispositivi di micro basamento per la separazione cellulare. La micro stampa a contatto viene utilizzata per creare modelli alternati di monostrati autoassemblati di molecole di peg sul substrato d'oro.
Per prima cosa inchiostriamo il timbro PDMS con una soluzione PEG da cinque millimolari in etanolo. Asciugare la superficie per 20 minuti. Metti delicatamente il timbro sulla superficie dell'oro per 40 secondi e assicurati che ci sia un buon contatto tra la superficie dell'oro e il timbro.
Non è richiesta alcuna pressione eccessiva. Sciacquare la superficie con etanolo e asciugare sotto un getto di azoto. Ora, utilizzando una camera di perfusione, incubare i substrati con 15 microgrammi per millilitro di soluzione di P selectina per tre ore a temperatura ambiente per modellare le aree rimanenti con P selectina, risciacquare la camera, quindi riempire le superfici con un milligrammo per millilitro, BSA per un'ora per bloccare le interazioni non specifiche.
Sciacquare la superficie con il tampone DPBS prima di eseguire l'esperimento di rotolamento cellulare. Assemblare la camera di flusso e quindi far fluire una sospensione di 10 alla quinta cella per millilitro. HL 60 celle sopra il modello, superfici in una camera di flusso rettangolare con angoli di inclinazione del modello del recettore di 10 gradi.
A temperatura ambiente di 24,5 gradi Celsius. Regolare la pompa a siringa per generare una portata di 75 microlitri al minuto con corrispondente sforzo di taglio laminare di 0,5 dines per centimetro quadrato. Ora con un microscopio invertito e una fotocamera montata registra HL 60 in rotazione.
Interazioni con l'adesivo p, select e substrati. Utilizzando un obiettivo quattro x a una velocità di un fotogramma al secondo per durate di 300 secondi. Esegui tre esperimenti indipendenti.
Presentare i dati come media e deviazione standard dei valori medi ottenuti da ciascun esperimento. Immagini al microscopio convertite dal video di HL 60.Rolling. Le interazioni con i substrati adesivi p, select e mostrano regioni chiare e scure corrispondenti rispettivamente al recettore della selectina p e alle regioni PEG.
Le tracce sono delineate utilizzando un programma MATLAB personalizzato qui. L'angolo di inclinazione del bordo era di 10 gradi e lo sforzo di taglio era di 0,5 dines per centimetro quadrato. Ulteriori analisi si formano sulla distribuzione della lunghezza di inseguimento del bordo, il valore medio della lunghezza di tracciamento sul bordo, nonché VE e VP, le velocità di laminazione sul bordo e all'interno delle bande.
Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come esaminare le traiettorie cellulari sui modelli di recettori asimmetrici.
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Questo protocollo osserva e analizza le traiettorie di rotolamento delle cellule su schemi asimmetrici di recettori, al fine di facilitare l'ingegnerizzazione di substrati con schemi di recettori per la separazione e l'analisi di cellule senza etichette.
Comprendere le traiettorie di rotolamento delle cellule su modelli asimmetrici di recettori permette una progettazione razionale di dispositivi di separazione microfluidici senza etichetta. Questo protocollo fornisce dati quantitativi sulla lunghezza del percorso lungo i bordi e sulla velocità di rotolamento sotto una definita tensione di taglio, sostenendo la modellazione predittiva del comportamento cellulare in flusso. Queste informazioni riducono le iterazioni empiriche nell'ingegnerizzazione dei dispositivi per flussi di lavoro di purificazione cellulare e analisi fenotipica.
Il metodo si inserisce nella fase iniziale della scoperta per guidare lo sviluppo di saggi e la generazione di strumenti preclinici, in particolare per bersagli in cui l'adesione sotto flusso rappresenta un parametro funzionale di lettura.