Name: Immunoprecipitazione della cromatina dal tessuto dei gangli dorsali seguenti danno assonale (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-20T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 41 s
Description: Scopri l'immunoprecipitazione della cromatina dai gangli dorsali dopo lesione assonale. Questo metodo identifica siti di legame dei fattori di trascrizione e modificazioni epigenetiche per studiare la rigenerazione neuronale.

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Vorremmo ringraziare Andrea Tedeschi per un aiuto nel fissare gli esperimenti ChIP iniziale in laboratorio e Ricco Lindner per il suo contributo per mettere a punto le condizioni per la ChIP. Questo lavoro è stato sostenuto dalla Fondazione Hertie; Grant Fortuna, Università di Tuebingen, e la DFG DI concede 1497/1-1 (tutti concessi a Simone Di Giovanni).

1. Sciatico e dorsale della colonna lesioni nervose <ol><li> L'animale è posto su un asciugamano chirurgico e sotto un thermopad è presente in tutto il procedimento mantenendo la temperatura del corpo del mouse a 37 ° C. Tutti gli animali sono anestetizzati per l'intervento chirurgico con un continuo isoflurano / O 2 amministrazione. Gli strumenti chirurgici vengono sterilizzati in autoclave prima della procedura. </li><li> Per lesioni sciatico, sia posteriori sono accuratamente rasata, e depilazione si completa con Epilatore generico prima di pulizia della pelle con l'alcool seguita da Betadyne 3 volte. </li><li> Il nervo sciatico è esposta facendo una incisione 4 millimetri posteriore e parallelo al femore a metà coscia attraverso la pelle e diffondendo i muscoli a parte del bicipite femorale con una pinza sottile. </li><li> Il nervo sciatico è esposta poi ferito, e la pelle è chiusa con due clip sutura. </li></ol> NOTA: La stessa incisione è fatta per esporre il nervo sciatico, ma la ferita viene suturata chiuso lasciando intatto il nervo per l'infortunio farsa. <ol start="5"><li> Per lesioni della colonna dorsale, la parte posteriore del mouse è accuratamente rasata, e depilazione si completa con Epilatore generico prima pulizia della pelle con l'alcool spray / swipe. </li><li> Il midollo spinale è esposto facendo una incisione 2,5 cm circa T7 a T13. La pelle è allargate, e il tessuto connettivo viene rimosso lungo la vertebra da T9 a T11. </li><li> Un laminectomia viene eseguita a livello T10 </li></ol> NOTA: Per la maggior parte degli esperimenti, la laminectomia è considerato l'infortunio Sham. <ol start="8"><li> Alcune gocce di xylocaina vengono aggiunti al tessuto per anestetizzare il cavo, e la dura madre viene rimosso, facendo attenzione a non toccare il midollo spinale. </li><li> Le colonne dorsali sono feriti e il muscolo viene suturata vicino, sempre facendo attenzione a non toccare il midollo spinale. Infine, la pelle viene suturata chiusa con clip sutura. Buprenorfina (0,1 mg / kg di peso corporeo) deve essere somministrato due volte al giorno per 48 ore o fino a quando non più necessari. </li></ol> 2. Cross-linking <ol><li> Sezionare DRG L4 e L5 di topo ferito dopo euthanization. Raccogliere un totale di 16 DRG in ghiacciato HBSS + cocktail di inibitori della proteasi (2 feriti e 2 farsa DRG da ciascun animale, per un totale di 4 animali). </li><li> Centrifugare brevemente il DRG, poi rimuovere con attenzione i HBSS e aggiungere 500 microlitri di 1% di formaldeide in PBS + cocktail di inibitori della proteasi e incubare il campione per 30 minuti a 37 ° C. </li></ol> PUNTO CRITICO. Usa fresca, formaldeide grado di biologia molecolare. <ol start="3"><li> Aggiungere 125 mM di glicina per fermare la fissazione e incubare per 5 minuti a temperatura ambiente. </li><li> In breve centrifuga, aspirare il tampone, e lavare il tessuto due volte con 500 microlitri ghiaccio PBS freddo cocktail + inibitori della proteasi. </li></ol> 3. Nuclei di preparazione e taglio della cromatina <ol><li> Aspirare off PBS, aggiungere 400 ml di tampone di lisi SDS, il trasferimento di un pre-raffreddata provetta, e distruggere il tessuto con circa 30 colpi con la micropestle. </li></ol> PUNTO CRITICO. Lisi e la rottura del tessuto sono vitali per una buona resa della cromatina reticolato. <ol start="2"><li> Sonicare il campione con 8 impulsi, 10 secondi ciascuna al 70% di uscita (Bandelin, Sonoplus GM70). </li></ol> ATTENZIONE. Il taglio della cromatina deve essere ottimizzato per il vostro sonicazione particolare istituiscono e la frammentazione propria della cromatina devono essere controllati prima di eseguire l'esperimento IP effettivo (vedi sezione 3). NOTA. Frammentazione della cromatina può essere eseguita anche micrococcal nucleasi (MNase) digestione. Come regola generale, la frammentazione mediante ultrasuoni è preferibile per il tessuto fisso, mentre la digestione MNase è favorito per immunoprecipitazione della cromatina natale dei tessuti. Reticolato, cromatina tranciati possono essere conservati a -80 ° C per un massimo di 2 mesi, ma evitare ripetuti cicli gelo / disgelo. 4. Analisi di digestione della cromatina (consigliato) <ol><li> 10 ml di rimuovere il campione cromatina tranciati per l'analisi. Aggiungere 200 mM di NaCl al campione e invertire il cross-link di incubazione a 65 ° C per 2 ore. </li><li> Purificare DNA (vedi paragrafo 8) ed eseguire un gel di agarosio all'1%. DNA dovrebbe essere frammentato per una lunghezza di circa 200-1000 bp (Figura 1). </li></ol> ATTENZIONE. Eccessiva frammentazione della cromatina può portare alla diminuzione del segnale, mentre la frammentazione incompleta porterà a risoluzione ridotta e lo sfondo aumentata. 5. Immunoprecipitazione <ol><li> Determinare il numero di reazioni di immunoprecipitazione (vedi nota sotto), e si dividono equamente in campioni di nuovi tubi. Portare il volume di ognifino a 500 microlitri di buffer di ChIP + cocktail di inibitori della proteasi. </li><li> Prelevare 5 ml di campione diluito e il tuo trasferimento in un nuovo tubo. Questo è il vostro esempio l'ingresso 1% e sarà conservato a -20 ° C fino al momento (sezione 7). </li><li> Per ogni immunoprecipitazione, aggiungere anticorpi appropriati o normale controllo IgG e incubare a ° C per una notte con rotazione 4. </li></ol> NOTA. Nel determinare il numero di immunoprecipitazione, un controllo positivo (ad esempio anticorpi istone H3) e un controllo negativo (Normale IgG) dovrebbe essere considerato. La quantità di anticorpi utilizzati per ogni IP varia tra gli anticorpi e deve essere empiricamente determinato. Tuttavia, è di solito entro un range di 2-10? G / immunoprecipitazione. <ol start="4"><li> Per la tua immunoprecipitato anticorpi / proteine ​​/ DNA complesso, aggiungere 30 ml di perline proteina ChIP Grado G magnetica e incubare per 2 ore a 4 ° C con rotazione. </li></ol> 6. Lavaggio <ol><li> Di pull-down legato cromatina-tallone complesso, posizionare il tubo sul sostegno magnetico. Attendere che la soluzione è chiara e poi rimuovere con attenzione il tuo supernatante. </li><li> Aggiungere 1 ml di lavare iposodica (buffer ChIP) ai talloni e incubare a 4 ° C per 3-5 minuti con la rotazione, poi a tendina perline e aspirare fuori lavare come al punto 6.1. Ripetere questo passaggio per un totale di 3 lavaggi. </li><li> Aggiungere 1 ml di tampone di lavaggio ad alta sale (ChIP di buffer + 350 mM NaCl) ai talloni e incubare per 3-5 minuti con la rotazione, poi a tendina perline e aspirare fuori lavare come al punto 6.1. </li></ol> 7. Eluizione e l'inversione del cross-linking <ol><li> Prendete il vostro campioni di ingresso fuori dal -20 ° C, aggiungere 150 ml di tampone di eluizione ChIP e mettere da parte a temperatura ambiente fino a Passo 7.5. </li><li> Aggiungere 150 ml di tampone 1x eluizione ChIP per ogni campione IP dal punto 6.3. </li><li> Collocare le provette in un Thermomixer ed eluire la cromatina dal perline incubando i campioni a 65 ° C per 30 minuti con vortexando gentilmente. </li><li> Pull-down perline sul sostegno magnetico, e con attenzione il trasferimento della cromatina eluiti (surnatante) in nuovi tubi. </li><li> Per tutti i tubi, tra cui i campioni di ingresso, aggiungere 200mm di NaCl e 40 mcg / reazione di proteinasi K e incubare a 65 ° C per 2 ore. </li></ol> NOTA. Il passo eluizione può essere effettuata a temperatura ambiente, anche, ma potrebbe non essere così efficiente. 8. DNA di recupero <ol><li> Aggiungere 1 volume di fenolo cloroformio / i vostri campioni dal punto 7.5 e vortex per 30 secondi. </li><li> Centrifugare alla massima velocità in una microcentrifuga a temperatura ambiente per 5 minuti. </li><li> Con attenzione recuperare il acquosa (superiore) in fase di nuovi tubi, aggiungere 1 volume di cloroformio alla fase acquosa, e vortex per 30 secondi. </li><li> Centrifugare alla massima velocità in una microcentrifuga a temperatura ambiente per 5 minuti. </li><li> Con attenzione recuperare il acquosa (superiore) in fase di nuovi tubi, quindi aggiungere 300 mm di NaOAc, 20 mg / reazione di glicogeno, e 2,5 volumi di etanolo ghiacciato del 100%. </li></ol> ATTENZIONE. L'aggiunta di un vettore, come il glicogeno, è necessario per migliorare la precipitazione di frammenti di DNA relativamente piccole dimensioni. <ol start="6"><li> Incubare a -80 ° C per 2 ore al DNA precipitato. </li></ol> NOTA. Precipitazione Il passo può essere eseguita anche durante la notte a -20 ° C. <ol start="7"><li> Centrifugare i campioni alla massima velocità in una microcentrifuga per 20 minuti a 4 ° C. </li><li> Rimuovere con cura il supernatante e lavare il pellet di DNA precipitato con 300 ml di ghiacciata etanolo al 70%. </li><li> Centrifugare i campioni alla massima velocità in una microcentrifuga per 10 minuti a 4 ° C. </li><li> Rimuovere con cura il più possibile sovranatante e lasciare che il pellet asciugare all'aria. </li><li> Risospendere in 20 ml di sterili H 2 O. I campioni sono ora pronti per la PCR, o il DNA può essere conservato a -20 ° C. </li></ol> 9. Rappresentante Risultati Un risultato rappresentativo di un esperimento di ChIP DRG seguente lesione sciatico è dimostrato (figure 1 e 2). In primo luogo, mostriamo DNA frammentato per una lunghezza di circa 200-1000 bp (Figura 1). In secondo luogo, dimostrare un segnale ChIP seguenti PCR dal promotore prossimale della crescita associati proteina-43 (GAP-43) solo su lesioni del nervo sciatico (corsia 4, figura 2, 5 '). Nessun segnale di PCR è presente quando l'animale riceve una lesione farsa solo (corsia 3), e durante l'uso normale IgG sieriche per l'IP (corsia 5 e 6). Per verificare la specificità dell'anticorpo, abbiamo analizzato i campioni di DNA stesso, ma ha utilizzato un set di primer di controllo che rileva una regione nel 3'-UTR del nostro gene di interesse in cui è prevista alcuna occupazione. Segnali di PCR sono assenti da tutte le corsie (corsie 3-6, Figura 2, 3 '), ad eccezione del segnale di ingresso, che rappresenta non IP campioni di DNA di serie controlli PCR (corsie 1-2, Figure 2). Questa procedura ChIP può essere eseguita in seguito sia sciatico o lesioni della colonna vertebrale dorsale come riassunto in uno schema (Figura 3). <img src="/files/ftp_upload/2803/2803fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Gel di agarosio invertito reticolato del DNA che è stato tranciato da sonicazione alla gamma di lunghezze proprio frammento. <img src="/files/ftp_upload/2803/2803fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Semi-quantitativa dei risultati della PCR da tessuto DRG dopo lesione del nervo sciatico dimostrando che p53 acetilata lega al GAP-43 regione del promotore prossimale 48 ore dopo la lesione al nervo sciatico. Controllo PCR dallo spettacolo stesso tessuto DRG che p53 acetilata non si lega ad una regione di controllo del DNA si trova nella regione 3'-non tradotta (UTR) del gene della GAP-43 (S = Sham, I = feriti). <img src="/files/ftp_upload/2803/2803fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Uno schema generale che indica la posizione dei siti di lesione del nervo sciatico, e la colonna dorsale.

<ol><li>Beirowski, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+and+qualitative+analysis+of+Wallerian+degeneration+using+restricted+axonal+labelling+in+YFP-H+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">Quantitative and qualitative analysis of Wallerian degeneration using restricted axonal labelling in YFP-H mice.</a> Journal of Neuroscience Methods. 134, 23-35 (2004).</li>
<li>Carey, M. F. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCarey%2C+MF+%22Chromatin+immunoprecipitation+%28ChIP%29%22">Chromatin immunoprecipitation (ChIP)</a>. , Cold Spring Harb. Protocol. (2009).</li>
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<li>Haring, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromatin+immunoprecipitation%3A+optimization%2C+quantitative+analysis+and+data+normalization.+Plant+Methods%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Chromatin immunoprecipitation: optimization, quantitative analysis and data normalization. Plant Methods.</a> 11, 3-11 (2007).</li>
<li>Jiang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+neuronal+chromatin+from+brain+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Isolation of neuronal chromatin from brain tissue.</a> BMC Neurosci. 9, 42-42 (2008).</li>
<li>Lee, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+neural+stem+cells+from+the+postnatal+cerebellum%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Isolation of neural stem cells from the postnatal cerebellum.</a> Nat Neurosci. 8, 723-729 (2005).</li>
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<li>Tedeschi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+p53-CBP%2Fp300+transcription+module+is+required+for+GAP-43+expression%2C+axon+outgrowth%2C+and+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Death+and+Differentiation%22%5BJournal%5D)">A p53-CBP/p300 transcription module is required for GAP-43 expression, axon outgrowth, and regeneration.</a> Cell Death and Differentiation. 16, 543-554 (2009).</li>
<li>Teng, F. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axonal+regeneration+in+adult+CNS+neurons--signaling+molecules+and+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Axonal regeneration in adult CNS neurons--signaling molecules and pathways.</a> J Neurochem. 96, 1501-1508 (2006).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Questo protocollo fornisce un metodo per chiedere direttamente sull&#39;ambiente cromatina durante la rigenerazione assonale nel sistema nervoso adulto seguenti danno assonale. Incorpora il modello DRG lesioni con immunoprecipitazione della cromatina per sondare l&#39;ambiente trascrizionali ed epigenetici successive a lesioni sia alla PNS e CNS. E &#39;particolarmente utile per gli investigatori che vogliono caratterizzare putativi siti di legame per il loro fattore di trascrizione preferiti, e per determinare se l&#39...

<table border="1"><tbody><tr><th> Reagente </th><th> Azienda </th><th> Numero di catalogo </th></tr><tr><td> ChIP Buffer 10x </td><td> Cell Signaling </td><td> 7008 </td></tr><tr><td> 2x ChIP Elution Buffer </td><td> Cell Signaling </td><td> 7009 </td></tr><tr><td> ChIP grado proteina G Beads Magnetic </td><td> Cell Signaling </td><td> 9006 </td></tr><tr><td> Grip Rack Magna (8 bene) </td><td> Millipore </td><td> 20-400 </td></tr><tr><td> Cloroformio </td><td> MERCK </td><td> ONU 1888 </td></tr><tr><td> 37% di formaldeide </td><td> ROTH </td><td> CP10.1 </td></tr><tr><td> 10x Glycine Soluzione </td><td> Cell Signaling </td><td> 7005 </td></tr><tr><td> Glicogeno </td><td> Sigma </td><td> G1767 </td></tr><tr><td> HBSS 10x </td><td> Gibco </td><td> 14185 </td></tr><tr><td> Istone H3 anticorpi (coniglio) </td><td> Cell Signaling </td><td> 2650 </td></tr><tr><td> Normale coniglio IgG </td><td> Cell Signaling </td><td> 2729 </td></tr><tr><td> Fenolo / cloroformio / alcool isoamilico </td><td> ROTH </td><td> A156.1 </td></tr><tr><td> Inibitori della proteasi Cocktail compresse </td><td> Roche </td><td> 04 693 116 001 </td></tr><tr><td> Proteinasi K (20 mg / ml) </td><td> Cell Signaling </td><td> 10012 </td></tr><tr><td> SDS Lysis Buffer </td><td> Upstate </td><td> 20-163 </td></tr></tbody></table><table border="1"><tbody><tr><th> Attrezzatura necessaria </th></tr><tr><td> Ultrasuoni </td></tr><tr><td> Micropestle </td></tr><tr><td> Microcentrifuga </td></tr><tr><td> Thermomixer </td></tr></tbody></table>

immunoprecipitazione della cromatina dal tessuto dei gangli dorsali seguenti danno assonale

Chromatin Immunoprecipitation from Dorsal Root Ganglia Tissue following Axonal Injury

Assoni nel sistema nervoso centrale (SNC), non si rigenerano, mentre quelli del sistema nervoso periferico (PNS) si rigenerano in misura limitata dopo l&#39;infortunio (Teng et al., 2006). Si riconosce che i programmi trascrizionali essenziali per la crescita dei neuriti e assonale vengono riattivati ​​su lesioni in PNS (Makwana et al., 2005). Tuttavia gli strumenti disponibili per analizzare regolazione neuronale gene in vivo sono limitati e spesso difficile. Gangli delle radici dorsali (DRG) offrono un ottimo sistema modello lesioni perché sia ​​il SNC e SNP sono innervate da un assone biforcata provenienti dal soma stesso. I gangli rappresentano una discreta collezione di corpi cellulari in cui tutti gli eventi trascrizionali si verificano, fornendo così una regione ben definita di attività trascrizionale che possono essere facilmente riproducibile e rimosso dall&#39;animale. Lesioni delle fibre nervose nel PNS (es. nervo sciatico), dove la rigenerazione assonale si verifica, dovrebbe rivelare un insieme di programmi trascrizionali che sono distinti da quelli rispondendo a un infortunio simile nel sistema nervoso centrale, in cui la rigenerazione non avviene (per esempio il midollo spinale ). Siti di legame per il fattore di trascrizione, modificazione degli istoni e DNA derivati ​​da lesioni al sistema nervoso centrale sia PNS o possono essere caratterizzati con immunoprecipitazione della cromatina (ChIP). Qui, descriviamo un protocollo ChIP utilizzando tessuti fissati DRG del mouse seguente danno assonale. Questa potente combinazione fornisce un mezzo per caratterizzare la pro-ambiente di rigenerazione cromatina necessario per promuovere la rigenerazione assonale.

Vi presentiamo un metodo per immunoprecipitazione della cromatina dal tessuto dei gangli dorsali seguenti danno assonale. L&#39;approccio può essere utilizzata per identificare specifici siti di legame fattore di trascrizione e di importanti modificazioni epigenetiche degli istoni e del DNA per la rigenerazione degli assoni danneggiati sia nel sistema nervoso periferico e centrale.

Immunoprecipitazione della cromatina dal tessuto dei gangli dorsali seguenti danno assonale

Gli assoni nel sistema nervoso centrale (SNC) non rigenerano, mentre quelli nel sistema nervoso periferico (SNP) rigenerano in misura limitata dopo...

L'obiettivo generale di questa procedura è immunoprecipitare complessi di proteine legate al DNA da tessuto di gangli della radice dorsale dopo una lesione nervosa. Questo viene ottenuto innanzitutto inducendo una lesione del nervo sciatico o della colonna dorsale. Il secondo passaggio consiste nel cross-linkare il campione e solubilizzare il complesso proteina-DNA.Il terzo passaggio della procedura consiste nell'immunoprecipitare un complesso specifico proteina-DNA. Infine, il DNA viene purificato e recuperato. In ultima analisi, è possibile ottenere risultati che mostrano l'arricchimento di frammenti di DNA associati a una proteina o a una modificazione istonica del DNA.Questo metodo può aiutare a rispondere a domande fondamentali nel campo della rigenerazione assonale, come ad esempio quali siti di legame del DNA, fattori di trascrizione e modifiche istoniche siano necessari per la regolazione di geni importanti nella promozione della rigenerazione assonale. Per iniziare, posizionare un animale anestetizzato sul tavolo operatorio. Mantenere l’anestesia per tutta la durata dell’intervento mediante somministrazione continua di isoflurano in ossigeno attraverso un cono nasale prima di procedere.Verificare la corretta profondità dell'anestesia mediante il riflesso alla pressione del dito del piede per la lesione del nervo sciatico. Rasare con cura la regione posteriore e rimuovere i peli residui con un agente depilatorio. Una volta rimosso il pelo, pulire la pelle applicando ripetutamente alcol, seguito da Betadine.Eseguire un'incisione di quattro millimetri attraverso la cute, posteriore e parallela al femore. A metà coscia, utilizzare pinzette fini per separare i muscoli ed esporre il nervo sciatico bianco sottostante. Una volta isolato, il nervo può essere lasciato integro per funzionare da controllo chirurgico fittizio oppure reciso per indurre una lesione.Per concludere, avvicinare i lembi di pelle e chiudere con due clip chirurgiche per l'lesione della colonna dorsale. Rimuovere i peli dalla schiena e pulire il sito dell'incisione come mostrato in precedenza. Praticare un'incisione di 2,5 centimetri sopra il midollo spinale, da circa T7 a T13.Utilizzare pinzette fini per tenere la pelle mentre si separa il tessuto adiposo. Successivamente, fissare il tessuto adiposo superficiale con due ganci. Una volta arretrato il tessuto adiposo, individuare il vaso sanguigno nello spazio tra la sesta e la settima vertebra da utilizzare come punto di riferimento.Tagliare bilateralmente il muscolo a livello delle vertebre ottava e decima e inserire due ganci per mantenerlo aperto. Utilizzare forbici piccole per rimuovere i muscoli presenti sulla lamina da T8 a T10, tenendo fermo il processo spinoso. Eseguire una laminectomia a livello di T10 tagliando l'osso di collegamento su entrambi i lati.Sollevare con attenzione la metà superiore delle vertebre per esporre il midollo spinale sottostante. Applicare alcune gocce di Xylocaine al 2% per anestetizzare il midollo spinale, quindi rimuovere la dura madre, avendo cura di non toccare il midollo spinale.Fermarsi a questo punto fornirebbe un controllo chirurgico fittizio per lesione della colonna dorsale. Eseguire un taglio profondo da 0,3 a 0,4 millimetri attraverso il midollo spinale. Infine, suturare il muscolo e rilasciare il tessuto adiposo superficiale.Unire la pelle e chiudere con clip chirurgiche. Riposizionare l'animale nella gabbia di provenienza e monitorarlo fino a completo recupero. 48 ore dopo la lesione, eutanasia l'animale e raccogliere i gangli della radice dorsale L4 e L5, o DRG.Il primo passo consiste nell'esporre la colonna vertebrale ventrale. Successivamente, rimuovere la metà ventrale delle vertebre da T12 a L6. Per esporre il midollo spinale, identificare i gangli radicolari dorsali (DRG) situati nello spazio tra le vertebre laterali rispetto al midollo spinale.Utilizzare pinzette fini per afferrare i gangli radicolari dorsali L4 e L5 sollevandoli leggermente. Tagliare il più vicino possibile al corpo del GRD. Raccogliere un totale di 16 GRD da quattro animali e collocarli in HBSS freddo su ghiaccio.Centrifugare brevemente il ganglio della radice dorsale, aggiungere 500 microlitri di formaldeide al 1% e incubare il campione per 30 minuti. A 37 gradi Celsius, aggiungere glicina 125 millimolare per arrestare la fissazione e incubare per cinque minuti a temperatura ambiente. Dopo una breve centrifugazione, aspirare il tampone e lavare il tessuto due volte con 500 microlitri di PBS freddo su ghiaccio contenente un cocktail di inibitori delle proteasi.Successivamente, aspirare il PBS e aggiungere 400 microlitri di buffer di lisi SDS, quindi frammentare il tessuto con circa 30 movimenti di un pestello micro. Dopodiché, sottoporre il cromatina a sonica con otto impulsi da dieci secondi ciascuno al 70% dell'output. Si consiglia di analizzare un campione per confermare la frammentazione del DNA in lunghezze comprese tra circa 200 e 1000 paia di basi.Dividere il campione di cromatina sonificata in parti uguali in un nuovo tubo. Per ogni reazione di immunoprecipitazione da eseguire, portare il volume di ciascun tubo a 500 microlitri con buffer chip più cocktail di inibitori delle proteasi. Successivamente, prelevare cinque microlitri del campione diluito e trasferirli in un nuovo tubo.Questo è il tuo campione di input all'1% e verrà conservato a meno 20 gradi Celsius fino al momento dell'utilizzo. Successivamente, aggiungere l'anticorpo o il controllo con IgG normale in ogni provetta e incubare a quattro gradi Celsius con rotazione durante la notte. Il giorno seguente.Immunoprecipitare il complesso aggiungendo 30 microlitri di perle magnetiche di proteina G e incubando per due ore a quattro gradi Celsius con rotazione. Successivamente, posizionare il tubo su un supporto magnetico per far sedimentare il complesso di perle con la cromatina legata. Quando la soluzione è limpida, rimuovere con attenzione il soprannatante e lavare le perle tre volte con un millilitro di tampone a basso contenuto salino, con un'incubazione di tre-cinque minuti a quattro gradi Celsius con rotazione per ogni lavaggio.Successivamente, lavare una volta con un millilitro di tampone ad alta salinità. A questo punto, recuperare il campione di input al 1% da meno 20 gradi Celsius e aggiungere 150 microlitri di tampone di eluizione per ChIP. Mettere da parte il tubo a temperatura ambiente per un uso successivo.Ritornando ai campioni di IP, aggiungere 150 microlitri di buffer di eluizione one x chip in ogni provetta. Incubare i campioni a 65 gradi Celsius per 30 minuti con un leggero vorticoso per eluire la cromatina dalle perle. Posizionare le perle sul supporto magnetico ed trasferire con attenzione la cromatina eluita in nuove provette, inclusi i campioni di input.Aggiungere 200 millimolar di cloruro di sodio e 40 microgrammi per reazione di proteasi K e incubare a 65 gradi Celsius per due ore; dopo l'incubazione, recuperare il DNA utilizzando procedure standard per ulteriori analisi. Vengono mostrati i risultati di PCR semi-quantitativa da tessuto DRG dopo lesione del nervo sciatico. Le corsie uno e due mostrano il segnale PCR dai campioni in ingresso.Il segnale PCR nella corsia quattro mostra che la P 53 acetilata si lega alla regione del promotore prossimale di gap 43 solo dopo una lesione del nervo sciatico. Nessun segnale PCR è presente quando l'animale riceve una lesione fittizia, come mostrato nella corsia tre, e quando viene utilizzato siero IgG normale, mostrato nelle corsie cinque e sei. La PCR di controllo ottenuta dallo stesso tessuto dei gangli della radice dorsale mostra che la P 53 acetilata non si lega a una regione di controllo del DNA localizzata nella regione non tradotta tre-prime del gene gap 43.Nel tentativo di eseguire questa procedura, è importante ricordare tre passaggi fondamentali per il successo. Iniziare con una quantità sufficiente di tessuto, garantire una frammentazione e solubilizzazione efficienti del complesso DNA-proteina e scegliere un buon anticorpo per l'immunoprecipitazione in base alla proteina di interesse.

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Imaging in diretta degli assoni spinali dopo rizotomia

Studio genetico della rigenerazione assonale con colture di neuroni adulti Root dorsali gangliari

Fonte: Li, Q., et al. Indagine sulla rigenerazione degli assoni dei mammiferi: elettroporazione in vivo del ganglio della radice dorsale del topo adulto. J. Vis. Exp. (2018)Questo video mostra il processo di rigenerazione assonale in un nervo sciatico di topo a seguito di una lesione da schiacciamento. Il nervo isolato viene fissato e preparato per l'imaging, con proteine fluorescenti espresse nei neuroni per visualizzare la crescita degli assoni. Utilizzando un microscopio a epifluorescenza,...

Rigenerazione assonale nel nervo sciatico di un topo a seguito di una lesione da schiacciamento

Fonte: Li, Q. et al. Indagine sulla rigenerazione degli assoni dei mammiferi: elettroporazione in vivo del ganglio della radice dorsale del topo adulto. J. Vis. Exp. (2018)Questo video dimostra la trasfezione mediata dall'elettroporazione di neuroni DRG di topo per studiare la rigenerazione degli assoni. Delinea i passaggi per la consegna di costrutti di acido nucleico ai neuroni DRG, l'induzione di lesioni al nervo sciatico e la valutazione della rigenerazione assonale.

Trasfezione mediata da elettroporazione dei gangli della radice dorsale di topo per promuovere la rigenerazione sensoriale degli assoni

Un paradigma danno usando il cavo larvale nervoso ventrale Drosophila per studiare la rigenerazione del sistema nervoso centrale e la riparazione è descritto. Stabbing seguito da scansione laser microscopia confocale in time-lapse e fissi campioni, combinata con l'analisi quantitativa con software volutamente sviluppato e genetica, sono utilizzati per studiare i meccanismi molecolari della rigenerazione e riparazione del SNC.

Un paradigma Infortunio per Indagare riparazione del sistema nervoso centrale in<em&gt; Drosophila</em

Questo protocollo presenta l'uso di un'iniezione di ganglio della radice dorsale (DRG) con un vettore virale e una concomitante lesione da schiacciamento della radice dorsale in un ratto adulto come modello per studiare la rigenerazione sensoriale degli assoni. Questo modello è adatto per studiare l'uso della terapia genica per promuovere la rigenerazione sensoriale degli assoni.

Radice dorsale Ganglion iniezione e dorsale radice Lesioni Crush come un modello per sensoriale Axon Regeneration

L'elettroporazione è un approccio efficace per trasportare geni degli interessi nelle cellule. Applicando questo approccio in vivo sui neuroni del ganglio di topo adulto radice dorsale (DRG), descriviamo un modello per lo studio di rigenerazione dell'assone in vivo.

Inquirenti rigenerazione dell'assone dei mammiferi: In Vivo elettroporazione del ganglio di radice dorsale del topo adulto

Di seguito viene presentato lo sviluppo per l'acquisizione costante di sezioni criostatiche gangliari a radice dorsale di alta qualità.

Una procedura per la criosezione del ganglio della radice dorsale del topo

Questo protocollo descrive un sistema microfluidico che modella le dinamiche metaboliche neuronali post-danno assonale, consentendo l'imaging, l'analisi multi-omica e gli studi meccanicistici del rimodellamento metabolico intrinseco.

Chip microfluidico per la costruzione di modelli di lesioni assonali e l'abilitazione dell'analisi multi-omica

I gangli della radice dorsale (DRG) contengono i corpi cellulari dei neuroni sensoriali primari e trasmettono segnali sensoriali periferici al midollo spinale. Questo protocollo descrive un metodo per la dissezione DRG del muro che supporta l'isolamento standardizzato dei gangli strutturalmente intatti, l'identificazione anatomica segmentale, una guida intuitiva per gli utenti principianti e la riduzione del danno procedurale ai tessuti.

Dissezione e isolamento dei gangli dorsali della radice del topo

Scopri l'immunoprecipitazione della cromatina dai gangli dorsali dopo lesione assonale. Questo metodo identifica siti di legame dei fattori di trascrizione e modificazioni epigenetiche per studiare la rigenerazione neuronale.

Immunoprecipitazione della cromatina dal tessuto dei gangli dorsali seguenti danno assonale

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