29 luglio 2011
Qui, abbiamo stabilito un metodo per verificare l'efficacia della droga con campioni chirurgici di tumori al cervello, chiamata "metodo dell'espianto del tumore". Con questo metodo, siamo in grado di valutare l'efficacia del farmaco senza rompere il microambiente dei tumori solidi. Per convalidare l'affidabilità di questo metodo, si descrivono i dati rappresentativi con i nostri campioni di glioma trattati con l'attuale prima linea agente chemioterapico, temozolomide.
L'obiettivo generale di questo procedimento è quello di stabilire un nuovo metodo per la valutazione dell'efficacia dei farmaci su campioni chirurgici di tumori cerebrali, denominato metodo tumor X explant. Questo viene realizzato innanzitutto ottenendo campioni chirurgici appena rimossi di gliomi maligni durante l'intervento chirurgico, da utilizzare per esperimenti preclinici. Successivamente, i campioni vengono trasportati presso il centro di approvvigionamento tessutale per essere suddivisi a fini diagnostici clinici e di ricerca.
Successivamente, nel laboratorio di ricerca, gli espianti tumorali vengono dissezionati in tessuti più piccoli e trasferiti in un mezzo ottimizzato. Infine, vengono effettuate iniezioni intratumorali con candidati farmaci e gli espianti vengono incubati per 16 ore. In definitiva, si possono ottenere risultati che rivelano l'efficacia del trattamento mediante colorazione con ematina ed eosina, nonché immunohistochimica con marcatori specifici per tipo cellulare.
È inoltre possibile valutare l'efficacia dei farmaci in vitro mediante citometria a flusso e saggi di formazione di neurosfere. La maggior parte degli attuali saggi per l'efficacia farmacologica lascia un divario tra l'efficacia del farmaco nei modelli sperimentali preclinici attuali e l'efficacia nei pazienti ricoverati. In particolare, quando testiamo candidati farmacologici su tumori solidi come i gliomi maligni, non possiamo sottovalutare gli scambi di segnalazione intercellulare e intracellulare.
Per evitare di alterare il microambiente dei tumori solidi, abbiamo sviluppato un metodo di coltura anty utilizzando l'espianto tumorale. Dopo il prelievo dei tumori dai pazienti, i campioni vengono trasferiti al Dipartimento di Anatomia Patologica, dove dividiamo i frammenti tumorali in due parti. Un campione tumorale proveniente da una delle due parti viene utilizzato per la sezione congelata e l'inclusione in paraffina ai fini della diagnosi clinica, mentre il restante tessuto tumorale viene inviato ai laboratori di ricerca per essere utilizzato dai ricercatori.
Utilizzando questo metodo, possiamo preservare il microambiente del tumore con le cellule endoteliali tumorali adiacenti e le cellule immunitarie, nonché le cellule cerebrali normali che circondano il tumore o migrano nelle cavità tumorali. Prima di processare il tessuto di glioblastoma, preparare la soluzione liquida, il mezzo e la soluzione di agar. Mescolarli in rapporto uno a uno.
Quindi aggiungere un millilitro in ciascun pozzetto di piastre a sei pozzetti. Dopo aver ricevuto il tessuto di glioblastoma multiforme fresco, trasferirlo in una piastra di Petri utilizzando pinzette e lavarlo accuratamente tre volte con cinque millilitri di PBS freddo al ghiaccio una volta, usando la lama chirurgica e le pinzette. Tagliare sezioni seriali di circa 10 millimetri di diametro dai campioni dissecati per creare blocchi tumorali, trasferendo ciascun blocco in un pozzetto della piastra a sei pozzetti contenente mezzo agar, permettendo un'esposizione sufficiente all'aria per mantenerlo vitale.
Successivamente, utilizzando una siringa da un millilitro per insulina e un ago da 28 gauge e mezzo pollice, iniettare i blocchi tumorali tre volte con DMSO al 5% o con temozolomide a 2,5 nanomolari o con un nuovo candidato farmaco antitumorale e incubare per 16 ore a 37 gradi Celsius in aria umidificata contenente il 5% di anidride carbonica. Al termine dell'incubazione, lavare i blocchi tre volte con cinque millilitri di PBS una volta. Successivamente, in provette da 50 millilitri, fissare i blocchi con 10 millilitri di formalina al 10% volume per volume per 24 ore.
Includere il tessuto in paraffina e tagliare sezioni da quattro micron per deparaffinizzare e reidratare le sezioni. Posizionare i vetrini su un portavetrini e incubarli nelle seguenti soluzioni. Lavare tre volte per cinque minuti ciascuna.
Eseguire tre risciacqui con etanolo al 100% per cinque minuti ciascuno. Un risciacquo con etanolo al 95% per cinque minuti e un risciacquo con etanolo al 70% per cinque minuti. Infine, risciacquare con acqua corrente per tre minuti.
Per i dettagli sulla recupero dell'antigene e sull'inibizione della perossidasi endogena, consultare il protocollo scritto allegato. Per bloccare le sezioni, coprire i tessuti con siero di capra normale al 10%, trasferire i vetrini in una scatola umida e incubare per un'ora a temperatura ambiente. Lavare i vetrini tre volte in PBS 1x per cinque minuti ciascuna.
Successivamente, aggiungere gli anticorpi primari, come la caspasi-3 specifica per l'uomo o il KI-67, diluiti in PBS 1x, quindi incubare tutta la notte a quattro gradi Celsius il giorno successivo. Lavare i vetrini in PBS 1x per 3 volte, 10 minuti ciascuna. Successivamente, coprire i tessuti con due o tre gocce di anticorpo secondario marcato con HRP.
Posizionare i vetrini in una scatola umida e incubare per un'ora a temperatura ambiente. Lavare con PBS 1x per tre volte, cinque minuti ciascuna. Sviluppare i campioni utilizzando un kit cromogeno DAB seguendo le istruzioni del produttore per la controcolorazione.
Immergere i vetrini nell'ematin per 10-15 secondi. Quindi risciacquare con acqua corrente per tre minuti. Disidratare i campioni immergendo i vetrini nelle seguenti soluzioni in un reagente di montaggio e un coprioggetto.
Quindi utilizzare un microscopio a fluorescenza per acquisire le immagini dei vetrini. L'immagine ponderata in T1 con mezzo di contrasto al gadolinio mostrata in questa figura dimostra un tumore di glioblastoma multiforme (GBM) evidenziato nel lobo frontale destro di un paziente prima dell'intervento chirurgico. L'immagine postoperatoria ha confermato la rimozione subtotale della lesione dopo l'intervento.
La colorazione con ematossilina ed eosina dimostra la presenza di necrosi, cellule a pseudopalizzata e proliferazione microvascolare. Pertanto, questi tumori sono stati diagnosticati istopatologicamente come GBM al fine di verificare se questi campioni di esplicanti tumorali potessero essere utilizzati in modo affidabile. A scopo di un test di efficacia del farmaco, abbiamo valutato l'effetto del farmaco temozolomide o TMZ; l'immunohistochimica dei tessuti GBM trattati con TMZ mostra una riduzione sostanziale delle cellule tumorali positive per KI 67 rispetto ai campioni di controllo.
A sua volta, l'immunoeistochimica con un marcatore di apoptosi, la caspasi tre, non ha evidenziato alcuna differenza significativa tra i campioni di glioma trattati con TMZ e i campioni di controllo. L'effetto del trattamento con temozolomide può essere ulteriormente caratterizzato combinando questo saggio ex explan con colture in vitro o con citometria a flusso. Possiamo confrontare questo metodo ex explan con il trapianto di xenotrapianto e con il saggio di formazione di sfere in vitro per lo screening di nuovi agenti antitumorali.
Una volta ottenuti i tessuti tumorali in laboratorio, la procedura per questo esperimento può essere completata entro un'ora. Questo nuovo saggio è relativamente semplice da eseguire e riproducibile dopo la dissociazione degli impianti tumorali trattati. Possiamo combinarlo con esperimenti in vitro.
Un vantaggio fondamentale di questo saggio è che preserva il microambiente tumorale. Otteniamo dati positivi con espanti tumorali trattati con Temodar, che sono coerenti con l'esito dei medesimi pazienti sottoposti a trattamento con Temodar dopo gli interventi chirurgici. Infine, questo approccio è applicabile ad altri tumori solidi e potrebbe quindi avere il potenziale di accelerare l'identificazione di nuovi agenti chemioterapici per il trattamento dei tumori solidi.
Questo studio stabilisce un nuovo metodo per il test dell'efficacia dei farmaci mediante campioni chirurgici di tumori cerebrali, denominato metodo dell'espianto tumorale. Questo approccio consente di valutare l'efficacia del farmaco preservando il microambiente tumorale.
I modelli preclinici attuali per il glioma maligno spesso non riescono a prevedere l'efficacia clinica dei farmaci a causa della perdita dell'ambiente microtumorale in vitro e delle discrepanze interspecifiche negli xenotrapianti. Il metodo dell'espianto tumorale colma questa lacuna preservando le interazioni native tra tumore e stroma, consentendo valutazioni della risposta ai farmaci più fisiologicamente rilevanti. Questo approccio supporta la riduzione del rischio meccanicistica e migliora la fiducia predittiva nella scoperta precoce di farmaci in oncologia.
Il metodo dell'espianto tumorale si inserisce nel percorso iniziale della scoperta, sostenendo la verifica delle ipotesi e l'identificazione dei composti promettenti prima dei modelli preclinici, che richiedono maggiori risorse.