Name: Un protocollo ottimizzato per la cura dei Fopius arisanus, Un parassitoide di frutta Tephritid mosche (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min
Description: Impara un protocollo ottimizzato per l'allevamento di Fopius arisanus, un parassitoide utilizzato nel controllo biologico delle mosche delle frutta Tephritid. Questo metodo facilita la gestione sostenibile dei parassiti agricoli nelle regioni tropicali.

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Ringraziamo Keith Shigeteni per l&#39;assistenza nel insectary e Natasha Sostrom per un aiuto con la computer grafica. Questo lavoro è stato finanziato dalla USDA-ARS. Opinioni, risultati, le conclusioni o raccomandazioni espresse in questa pubblicazione sono quelle degli autori e non riflettono necessariamente le opinioni del USDA. USDA è un fornitore di pari opportunità e datore di lavoro.

1. Preparare le uova ospitare moscerino della frutta per parasitization <ol><li> Preparare un substrato per le uova di mosca della frutta per essere parassitato da preparare agar (o in alternativa, Gelcarin GP812, FMC biopolimero, Ewing NJ; un'opzione più conveniente) piatti pieni, 10 cm di lunghezza per lato e 1,5 cm di profondità. Preparare agar ad una concentrazione di 9 g per litro di acqua. </li><li> Riempire i piatti fino al bordo con agar liquido (circa 70ml), e permettere loro di raffreddare e solidificare (almeno 45 minuti). </li><li> Una volta che i blocchi di agar sono solidi, applicare un unico strato di carta velina (un unico capo di tessuto lotto 'preferenza' Georgia Pacific), che coprono la parte superiore di ogni blocco. Il tessuto dovrebbe aderisce perfettamente alla agar a causa di umidità superficiale. </li><li> Applicare un volume di 0,5 ml uova di mosca della frutta sospese in acqua alla superficie del tessuto coperta dei blocchi agar. Nel nostro insectary, questo è equivalente a circa 6000 uova di Bactrocera dorsale (12000 uova per ml). </li><li> Utilizzare un panno pulito 2,5 centimetri largo pennello intinto in acqua per diffondere le uova di mosca della frutta in modo uniforme su tutta la superficie del tessuto. </li><li> Mettere le uova moscerino della frutta sotto lo schermo inferiore del parassitoide gabbie per consentire deposizione delle uova. Toccare la parte inferiore dello schermo in basso per rimuovere i parassiti morti che possono ostruire le uova. E 'meglio se lo schermo inferiore non tocca le uova. </li><li> Lasciare i parassiti di oviposit durante la notte e nel giorno successivo, circa 21 ore. Questo è un tempo sufficiente per una percentuale elevata delle uova da parassitati. Più superparasitization esposizione rischi. </li></ol> 2. Cova e impupamento di frutta ospitare parassitati vola <ol><li> Preparare allevamento contenitore mettendo 3-3,5 blocchi agar preparata di uova parassitizzate per 1,25 litri di dieta mosca della frutta 19 con uova verso l'alto. </li><li> Posizionare il contenitore dieta con le uova su un montante sopra uno strato di 1,5 centimetri di profondità vermiculite grado fine o sabbia lavata in un contenitore impupamento più grande. Coprire il recipiente con un coperchio impupamento e nastro i bordi con del nastro adesivo. Vermiculite può essere riutilizzato dopo vagliatura (vedi sotto). </li><li> Accertarsi che vi sia spazio sufficiente tra la parte superiore del contenitore dieta e il coperchio del contenitore impupamento per le larve mosca della frutta a strisciare fuori e 'pop' 20 nel vemiculite sottostante. </li><li> Spostare i contenitori impupamento in una stanza a 27 ° C e 80% di umidità relativa (RH) per una settimana. Contenitori Coprire con un panno scuro per i primi quattro giorni, per poi togliere il panno per i giorni rimanenti. </li><li> Rimuovere dieta larvale dopo una settimana, una volta che le larve hanno schioccato ed è entrato nella vermiculite per impupamento. Se ci sono le larve nel vermiculite, permettere loro di pupate durante la notte. </li><li> Setacciare la pupe dalla vermiculite. Inizia con un setaccio grossolano (circa 3 mm), quindi usare un setaccio a mano per eliminare eventuali grumi rimasti di vermiculite. </li></ol> 3. Ordinamento e selezione <ol><li> Pupa contenenti F. arisanus può essere parzialmente separati dai moscerini della frutta unparasitized per dimensione. Raccogliere pupa tra mm 1,65 e 2,26 di diametro, in quanto questi sarà arricchita per le mosche parassitati 12. Puparia che sono più piccole contengono per lo più parassitoidi sottodimensionato, maggiore pupa contengono per lo più mosche. Si noti inoltre che per le pupe parassitati la percentuale di femmine correla positivamente con la dimensione 12. </li><li> Una varietà di metodi possono essere utilizzati per ordinare pupe per dimensione. Ci descrive un metodo meccanico utilizzando un formato personalizzato sorter 21. </li><li> Luogo pupe nell'imbuto in alto di un alimentatore di vibrazione che alimenta lentamente il selezionatore dimensioni. </li><li> Alimentare le pupe in selezionatrice dimensioni, che consiste in una coppia di barre rotolamento leggermente divergenti con un angolo di 30 °. Il calo pupe individualmente in base alle dimensioni in un array di slot vuoti che in dieci contenitori separati attraverso un imbuto. </li><li> Raccogliere pupe dalle coppe nella gamma di dimensioni di 1,65 2,26 millimetri e metterli in una gabbia di emergenza per 7 giorni in più fino a quando la maggior parte le mosche sono emersi dalle pupe unparasitized. </li><li> Successivamente, utilizzare un ventilatore per separare puparia vuote da quegli insetti ancora contiene. </li></ol> 4. F. arisanus emergere e manutenzione <ol><li> Per mantenere la colonia di F. arisanus utilizzare una gabbia parassitoide holding con una facciata in vetro rimovibile, circa 25 cm di lunghezza per lato. La gabbia ha 1mm 2 di screening sulla parte superiore e due dei lati. La parte posteriore della gabbia viene ricoperta da un foglio di gomma con un foro di 9 centimetri per l'accesso. Il fondo della gabbia ha un taglio fuori coperta nella parte interna con 1-2mm 2 schermo grande abbastanza per permettere il posizionamento di due blocchi agar con le uova mosca della frutta per la deposizione delle uova parassitoide. </li><li> Le gabbie azienda deve anche avere una parte colorata lungo la parte inferiore del quarto anteriore in vetro per ridurre al minimo la luce che può creare affollamento parassitoide lungo la parte anteriore della gabbia, con conseguente elevata mortalità. </li><li> Mettere circa 11 g di queste selezioniTed pupe in contenitori in plastica di circa 9 cm di diametro. Questo dovrebbe produrre circa 600-700 parassiti per gabbia. Selezione del formato dovrebbe portare a circa il 60% donne. </li><li> Fissare i coperchi proiettato ai contenitori. I coperchi devono essere coperti con 2 mm 2 di screening, che permetterà adulti F. arsianus di lasciare i contenitori su emergere ma, conterrà alcun moscerini della frutta rimanenti. </li><li> Mantenere i parassiti a 24 ° C e circa il 45% di umidità relativa, con una ventilazione 12:12 fotoperiodo e buono. Se la mortalità elevata si osserva, spostando le gabbie all'aperto per alcune ore al giorno o ventilazione aumentando può ridurre. I parassiti dovrebbero essere pronti a oviposit in una settimana supplementare e deve essere produttivo per altre due settimane. </li><li> Streak non diluito il miele filato lungo la parte superiore delle gabbie almeno tre volte alla settimana o ogni volta che il miele è disponibile a secco. Applicare il miele filato in strisce strette con un dito. Si noti che se le strisce sono troppo pesanti il ​​miele sarà flebo in gabbia, se troppo chiaro il miele si asciuga rapidamente e richiedono riapplicazione frequente. </li><li> Luogo blocchi agar (10 cm x 10 cm x 4 cm) sulle cime delle gabbie di fornire umidità per i parassiti. Questi dovrebbero essere cambiati due volte alla settimana. </li></ol> 5. Rappresentante dei risultati: Riportiamo qui i risultati di procedure di controllo qualità condotti sulla USDA-ARS F. arisanus operazione allevamento a Hilo, Hawaii tra il 5 gennaio e 22 giugno 2010. L'allevamento nella posizione Hilo sulla scala descritto in questo articolo il video e il protocollo è stato avviato nel mese di agosto 2009, ed i problemi iniziali e regolazioni con la nuova posizione era stata per lo più risolto da gennaio. Pertanto, questi dati sono rappresentativi dei risultati di altri ricercatori potrebbero ottenere iniziano la loro colonia, se seguire il protocollo come descritto e hanno esperienza di allevamento di insetti in genere. In questo periodo siamo stati mantenendo una piccola colonia di F. arisanus: 4 gabbie parassitoide tenendo prodotte a settimana, equivalenti a circa 3600 F. arisanus. Una prima verifica dei tassi di parasitization arricchito è stato condotto prendendo un campione di 2 g di pupe nella gamma di dimensioni di 1,65-2,26 mm (arricchito) prima di una settimana supplementare di sviluppo in una gabbia holding (cioè immediatamente dopo la dieta larvale è stato rimosso e il pupe setacciata e le dimensioni ordinati. Ci riferiamo a questi come 'pupe presto'). Durante i primi tre mesi del 2010 i parassiti proporzione media del campione è stato arricchito 0,46 (SD = 0,18). Durante il trimestre successivo questa media è stata di 0,58 (DS = 0,08), riflettendo la stabilizzazione delle procedure e l'allevamento in colonia nella nuova posizione. Si noti che le pupe che non sono stati arricchiti con successo parassitati comprendono quelli che non hanno prodotto emergenti e quelli che hanno prodotto le mosche. Dopo un'ulteriore settimana per la rimozione gabbia svolgimento di puparia vuoto altri due grammi del campione è stata presa ('pupe fine'). Moscerini della frutta rappresenta meno dell'1% di questo secondo campione. La bassa percentuale di moscerini della frutta è in parte dovuto alla all'emergere di mosche in precedenza rispetto ai parassiti, per cui la maggior parte vola rimasto nel contenitore azienda. Infine, la Figura 1 fornisce la resa in massa pupa da gennaio a giugno 2010. I rendimenti sono misurati dal pupe arricchita nella gamma di dimensioni di interesse, 1,65-2,26 mm. La grande massa di "pupe precoce" all'inizio dell'anno indica una percentuale elevata di moscerini della frutta e pupe unemerged in quel momento, mentre sono stati applicati adeguamenti da apportare al nuovo impianto. <img src="/files/ftp_upload/2901/2901fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Resa arricchito (diametro pupa 1,65 2,26 millimetri) precoce (immediatamente dopo la selezione del formato) e 'in ritardo' (dopo aver tenuto per una settimana e la rimozione di involucri vuoti) pupe al USDA-ARS colonia F. ariasnus a Hilo, Hawaii , gennaio - giugno 2010

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Noi non hanno conflitti di interesse da segnalare.

In questo articolo video di protocollo e di accompagnamento che abbiamo descritto e dimostrato un protocollo ottimizzato per l&#39;allevamento di F. ariasnus, un parassitoide di moscerini della frutta Tephritid, in un ambiente di laboratorio. Questo protocollo è stato affinato negli anni per ridurre al minimo la quantità di lavoro e attrezzature specialistiche necessarie per mantenere una colonia. Prendiamo atto che una ben consolidata, produttiva e stabile colonia di moscerini della frutta host è richiesto per qualsiasi tentativo di parassitoidi allevamento. Nel nostro insectary usiamo Bactrocera dorsale come un moscerino della frutta di accoglienza, ma altre specie hanno dimostrato di essere ospiti competenti e 14-17. Diversi aspetti di F. manutenzione colonia arisanus rimangono da esplorare. Questi includono la velocità di adattamento in questa specie di laboratorio 10, meccanismi di apprendimento 22 e le mutazioni genetiche che possono verificarsi con l&#39;adattamento e meccanismi che possono essere coinvolte nella plasticità moscerino della frutta host. Negli ultimi dieci anni ci sono stati numerosi esempi della diffusione di mosche Dacine in tutto il mondo, in particolare quelli del genere Bactrocera: B. dorsale in Polinesia Francese, B. carambolae in alcune parti del Sud America, B. invadens in Africa e B. zonata in Africa e Mediterraneo settentrionale. 3,23,18 prova l&#39;efficacia degli agenti di controllo biologico, come F. arisanus nei confronti delle altre specie di Bactrocera dovrebbe essere una priorità, ed è nostra speranza che l&#39;applicazione dei metodi descritti in questo articolo protocollo e video di accompagnamento, accelererà la ricerca su F. arisanus in una più ampia varietà di punti 24. Infine, ulteriori ricerche con questo metodo come punto di partenza può anche fornire informazioni importanti per la colonizzazione di parassitoidi uovo romanzo 25,1

un protocollo ottimizzato per la cura dei fopius arisanus, un parassitoide di frutta tephritid mosche

An Optimized Protocol for Rearing Fopius arisanus, a Parasitoid of Tephritid Fruit Flies

Fopius arisanus (Sonan) è un importante parassitoide di moscerini della frutta Tephritid per almeno due ragioni. In primo luogo, è uno dei soli tre parassitoidi opiine noti per infettare l&#39;ospite durante la fase di uovo 1. In secondo luogo, ha una vasta gamma di potenziali ospiti moscerino della frutta. Forse a causa della sua storia di vita, F. arisanus è stato usato con successo per il controllo biologico dei moscerini della frutta in più regioni tropicali 2-4. Un ostacolo per l&#39;ampio uso di F. arisanus per il controllo della mosca della frutta è che è difficile stabilire una colonia stabile di laboratorio 5-9. Nonostante questa difficoltà, nel 1990 i ricercatori dell&#39;USDA messo a punto un metodo affidabile per mantenere le popolazioni di laboratorio di F. arisanus 10-12. C&#39;è notevole interesse in F. arisanus 13,14 biologia, soprattutto per quanto riguarda la sua capacità di colonizzare una grande varietà di host Tephritid 14-17; interesse è soprattutto guidato da l&#39;allarmante diffusione di parassiti Bactrocera moscerino della frutta a nuovi continenti negli ultimi dieci anni 18. Ulteriori ricerche su F. arisanus e ulteriori implementazioni di questa specie come agente di controllo biologico potranno beneficiare di ottimizzazioni e miglioramenti dei metodi di allevamento. In questo protocollo e video associati articolo viene descritto un metodo ottimizzato per l&#39;allevamento di F. arisanus basato su un approccio descritto in precedenza 12. Il metodo che descriviamo qui permette l&#39;allevamento di F. arisanus in piccola scala senza l&#39;uso di frutta, utilizzando materiali disponibili nelle regioni tropicali di tutto il mondo e con i requisiti manuale relativamente basso del lavoro.

Fopius arisanus è un uovo-parassitoide larvale di moscerini della frutta Tephritid che viene utilizzato con successo nel controllo biologico di questi parassiti importanti tropicale. Descriviamo qui un protocollo ottimizzato per l&#39;allevamento di F. arisanus su piccola scala con materiali facilmente reperibili.

Un protocollo ottimizzato per la cura dei Fopius arisanus, Un parassitoide di frutta Tephritid mosche

*Fopius arisanus* (Sonan) è un importante parassitoide dei ditteri della frutta Tephritidae per almeno due ragioni. In primo luogo, è uno dei soli tre opiini...

FOIA Aus è un importante agente di controllo biologico nelle Hawaii perché attacca le mosche delle piante da frutto, che sono parassiti economicamente rilevanti in tutte le regioni tropicali e in particolare qui alle Hawaii. Il vantaggio di FOIA Aus è che attacca lo stadio uovo dell'insetto parassita, controllandolo quindi in una fase precoce. Nei seguenti filmati, potrete osservare da vicino come alleviamo FOIA Aus in un ambiente di laboratorio.E alla fine di questo programma, verranno illustrate alcune discussioni su come questo particolare parassitoide sia stato utilizzato in un programma di rilascio di successo nella Polinesia Francese. Inizieremo il nostro protocollo con parassiti adulti pronti a ovi­deporsi nelle uova di una mosca della frutta ospite. Il primo passaggio consiste nel preparare le uova della mosca della frutta per presentarle al parassitoide.Successivamente, si lascia che le larve di moscerino della frutta schiudano, si sviluppino e si impupino. Una volta che i moscerini della frutta raggiungono lo stadio di pupa, vengono selezionati in base alla dimensione per arricchire la popolazione di parassiti. Infine, i parassiti emergono e vengono mantenuti fino alla maturazione.Successivamente si incontrano e sono nuovamente pronti a entrare in OSI in un nuovo lotto di frutta. Uova di moscerino. Questo completa il ciclo.Preparare un substrato per il frutto. Uova di mosca creando blocchi di trivella di circa 10 centimetri per lato. La trivella viene preparata a una concentrazione di nove grammi di polvere di trivella per litro di acqua.Utilizzando una superficie livella, riempire le capsule fino all'orlo con l'agar liquido, lasciandolo solidificare per almeno 45 minuti. Una volta che i blocchi di agar sono solidi, applicare un singolo strato di carta da filtro che copra la parte superiore di ciascun blocco di agar. La carta deve aderire facilmente all'agar grazie all'umidità superficiale.Un secondo arrotolamento. Applicare le uova di moscerino sulla superficie dei blocchi della coclea rivestita con tessuto. Un volume di 0,5 millilitri di uova di moscerino in sospensione fornisce circa 6.000 uova per blocco.Un pennello largo 2,5 centimetri, inumidito con acqua, viene utilizzato per distribuire uniformemente le uova di moscerino della frutta sulla superficie del tessuto. Le uova di moscerino della frutta vengono ora posizionate al di sotto della griglia inferiore delle gabbie dei parassiti per consentire la deposizione delle uova da parte dei parassiti; picchiettando il lato inferiore della griglia si rimuovono i parassiti morti, che potrebbero ostruire la frutta. Le uova di moscerino permettono ai parassiti di deporre le uova durante la notte.Circa 21 ore sono sufficienti affinché una percentuale elevata di uova di moscerino della frutta venga parassitata. Un'esposizione più lunga comporta il rischio di superparassitismo. I componenti principali necessari per l'allevamento delle uova dopo l'esposizione ai parassiti sono la dieta per larve di moscerino della frutta, i contenitori per la dieta larvale e i contenitori per la pupe.Posizionare da tre a tre e mezzo blocchi preparati di trivella contenenti uova parassitate su un litro e un quarto di frutta. Dieta per larve di mosca. Posizionare il contenitore della dieta con le uova su un supporto rialzato e un contenitore per la pupe sopra uno strato di vermiculite fine o sabbia lavata profondo un centimetro e mezzo.Fissare i bordi del contenitore per la pupazione con nastro adesivo di carta. Assicurarsi che vi sia spazio sufficiente tra la parte superiore del contenitore della dieta e il coperchio del contenitore per la pupazione, in modo che le larve possano uscire e cadere nella vermiculite sottostante. Trasferire i contenitori per la pupazione in una stanza a 27 gradi centigradi e 80% di umidità relativa per una settimana.Coprire i contenitori con un panno pesante per i primi quattro giorni dopo una settimana. Aprire i contenitori per la pupe e rimuovere la dieta larvale. Utilizziamo Bre Dorsals come moscerino della frutta ospite per allevare foia Airis.Altre specie appartenenti ai generi Asfa e sitis sono anche ospiti potenziali. Se sono presenti larve non mature nella vermiculite, lasciarle impuppare durante la notte setacciandole. Le pupe vengono recuperate dalla vermiculite iniziando con un setaccio grosso e un contenitore grande.Successivamente, utilizzare un setaccio manuale per rimuovere eventuali grumi residui di vermiculite Eria contenente opia. Gli Ais possono essere parzialmente separati dalle mosche della frutta non parassitate in base a. Pertanto, sulla base di ricerche precedenti, raccogliamo soltanto le aria con un diametro compreso tra 1,65 e 2,26 millimetri, che sono più piccole e contengono principalmente parassitoidi di dimensioni ridotte.Le aree più grandi contengono principalmente mosche. È possibile utilizzare una varietà di metodi per ordinare le pupe in base alla dimensione. Descriveremo un metodo meccanico che impiega un separatore su misura per le aree parassitate raccolte.La percentuale di femmine aumenta con la dimensione. Posizionare il campione nel imbuto in cima al separatore meccanico per dimensione. Un alimentatore a vibrazione lo sposta verso l'alto lungo una coppia di barre rotolanti leggermente divergenti, inclinate di un angolo di 30 gradi. I campioni cadono singolarmente in una serie di fessure che sfociano, attraverso degli imbuto, in 10 contenitori separati.Mettere i pupe di dimensioni comprese tra 1,65 millimetri e 2,26 millimetri in una gabbia di emergenza per altri sette giorni, fino a quando la maggior parte delle mosche non sarà emersa dai pupe parassitizzati. Successivamente, utilizzare un ventilatore per separare le pupa vuote da quelle che contengono ancora parassitoidi vivi. Per mantenere la colonia di Opia Aus, utilizzare una gabbia di contenimento per parassiti con un frontale in vetro rimovibile, di circa 25 centimetri di lunghezza per lato.La gabbia ha una griglia di un millimetro quadrato sulla parte superiore e su due dei lati. La parte posteriore della gabbia è ricoperta con un foglio di gomma che presenta un foro di nove centimetri per l'accesso. Il fondo della gabbia ha un'apertura ricoperta internamente con una griglia da uno a due millimetri quadrati.Di dimensioni sufficienti da permettere il posizionamento di due blocchi elicoidali con frutta e uova di mosca per il parassita nella posizione sopra indicata. Le gabbie di contenimento dovrebbero inoltre presentare una parte colorata lungo il quarto inferiore della parte anteriore in vetro, per ridurre al minimo l'accumulo del parassita lungo il fronte della gabbia. Collocare circa 11 grammi dell'aria selezionata in contenitori di plastica, di circa nove centimetri di diametro.Questo dovrebbe produrre circa 600-700 parassiti per gabbia. La selezione per dimensione dovrebbe dare come risultato circa il 60% di femmine. Fissare i coperchi a rete ai contenitori. I coperchi devono essere ricoperti con una rete da due millimetri quadrati, che permetterà agli adulti di uscire dai contenitori al momento dell'emergenza, ma tratterrà eventuali moscerini della frutta rimanenti.Mantenere i parassiti a 24 gradi centigradi e circa il 45% di umidità relativa, con un fotoperiodo di 12 ore di luce e 12 ore di buio e una buona ventilazione. Applicare almeno tre volte alla settimana, o ogni volta che il miele disponibile è secco, del miele filato in sottili strisce lungo la parte superiore delle gabbie, utilizzando la punta di un dito. Si noti che se le strisce sono troppo spesse, il miele gocciolerà all'interno della gabbia; se sono troppo sottili, il miele si seccherà rapidamente e richiederà applicazioni frequenti. Posizionare blocchi di umidità (auger blocks) di 10 centimetri quadrati e quattro centimetri di profondità sulla parte superiore delle gabbie per fornire umidità ai parassiti.Questi blocchi devono essere cambiati due volte alla settimana. Nel 2001 abbiamo ricevuto un piccolo finanziamento iniziale per verificare se potevamo introdurre dei controlli biologici nella Polinesia Francese per aiutare a mitigare la situazione, poiché in quel periodo la mosca delle frutta orientale stava causando un'infestazione incredibile di tutti i frutti tropicali. Il laboratorio qui alle Hawaii ha effettuato 10 spedizioni.Quindi ognuna di queste spedizioni ammontava solitamente a circa centomila esemplari di Opia air, anche se in realtà erano molti di più; spedivamo il Drosophila orientale con il parassitoide all'interno, e successivamente li facevamo schiudere. Abbiamo quindi allestito un piccolo laboratorio a Tahiti, dove ricevevamo questi esemplari e facevamo emergere i FOIA Air Sanus. Nel corso di un periodo di circa un anno, abbiamo rilasciato quasi un milione di FOIA Aans.Nel complesso, questo è il risultato di maggior successo al di fuori delle Hawaii. Quando FOIA Aus fu inizialmente rilasciato alle Hawaii, è stato il miglior esempio di controllo biologico dei moscerini della frutta in tutto il Pacifico. Negli ultimi 10 anni, si è verificata una diffusione notevole del complesso Bactrocera Dorsals in tutto il mondo.Quindi Bactrocera Carbo si è diffusa in Sud America, in Suriname, e attualmente è presente nel Nord del Brasile. In seguito, un'altra specie chiamata Bacter Inance si è diffusa in tutta l'Africa causando ogni sorta di danni. Inoltre, si è verificata anche la diffusione del batterio della papaia.Questo successo apre ora opportunità per rilasciare questi FOIA Aus in Sud America, Africa e in altre parti dell'Asia.

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Un metodo per l'allevamento di Drosophila melanogaster in condizioni axeniche e gnotobiotic è presentato. Fly embrioni vengono dechorionated in ipoclorito di sodio, trasferiti asetticamente alla dieta sterili, e allevati in contenitori chiusi. Inoculando dieta ed embrioni con i batteri porta ad associazioni gnotobiotic, e la presenza di batteri è confermata dalla placcatura di tutto il corpo omogenati Drosophila.

Allevamento la mosca della frutta<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Sotto axeniche e Gnotobiotic Condizioni

Qui presentiamo un protocollo basato sul sistema di esca del verme della farina (Tenebrio molitor) che è stato utilizzato per isolare e selezionare funghi entomopatogeni (EPF) da campioni di suolo. Una formula efficace del numero di conidi (ECN) viene utilizzata per selezionare EPF ad alta tolleranza allo stress in base alle caratteristiche fisiologiche per il controllo microbico dei parassiti sul campo.

Isolamento e selezione di funghi entomopatogeni da campioni di suolo e valutazione della virulenza fungina contro gli insetti nocivi

Ganaspis brasiliensis- un parassitoide larvale di Drosophila suzukii (un parassita invasivo globale delle colture da frutto) - è stato approvato o è considerato per l'introduzione in Europa e negli Stati Uniti per il controllo biologico di questo parassita. Questo articolo fornisce protocolli per l'allevamento su piccola scala e su larga scala di questo parassitoide.

Metodi per l'allevamento del parassitoide Ganaspis brasiliensis, un promettente agente di controllo biologico per la Drosophila suzukii invasiva

Aumentare il rilevamento di moscerini della frutta tefritidi immaturi sul campo può innescare sforzi tempestivi per eliminare le popolazioni di questi parassiti distruttivi. Rilevare le larve tardive è più veloce e più preciso quando si mushing frutta ospite in un sacchetto e si passa la polpa attraverso una serie di setacci rispetto al taglio manuale e all'ispezione visiva.

Setacciare la polpa della frutta per rilevare moscerini della frutta tefritidi immaturi sul campo

Qui presentiamo un protocollo per ottenere funghi entomopatogeni da una piralide forestale e un modo sostitutivo per valutare le loro attività entomopatogene utilizzando un insetto modello di Coleotteri. Questo metodo è efficiente e conveniente per esplorare le risorse fungine entomopatogene da insetti nocivi che perforano il legno nelle foreste naturali.

Isolamento, identificazione comportamentale e valutazione della patogenicità di funghi entomopatogeni da una piralide forestale

Questo articolo descrive il mantenimento in laboratorio (compreso l'accoppiamento e l'alimentazione) della mosca dittera inferiore Bradysia (Sciara) coprophila.

Manutenzione in laboratorio della mosca dei ditteri inferiori Bradysia (Sciara) coprophila: un nuovo/vecchio organismo modello emergente

L'obiettivo di questo protocollo è facilitare l'analisi funzionale delle interazioni parassitoide–ospite in Asobara japonica e Drosophila melanogaster. attraverso metodi di allevamento ottimizzati, un saggio di infezione a posizione unica e un knockdown genico mediato da RNAi.

Protocolli per l'allevamento efficiente e l'analisi funzionale della vespa endoparassitoide Asobara japonica e del suo ospite Drosophila melanogaster

Studiare Aggressione in Drosophila (moscerino della frutta)

Questo video illustra le tecniche generali utilizzate per posteriore Anopheles gambiae in laboratorio. I metodi per la cura per le zanzare di laboratorio sono dimostrati in tutte le fasi del ciclo di vita dell'organismo da larve di pupe al sangue al seno adulti.

Protocollo per la cura dei Mosquito (A. gambiae)

Un metodo rapido per l'analisi di composti volatili in frutta viene descritto. I composti volatili presenti nello spazio di testa di un omogenato del campione vengono rapidamente separati e determinati con ultraveloce gas cromatografia (GC) accoppiato con un'onda acustica di superficie (SAW) sensore. Una procedura per la gestione dei dati e di analisi è anche discusso.

Fruit Analisi Volatile Utilizzando un naso elettronico

Impara un protocollo ottimizzato per l'allevamento di Fopius arisanus, un parassitoide utilizzato nel controllo biologico delle mosche delle frutta Tephritid. Questo metodo facilita la gestione sostenibile dei parassiti agricoli nelle regioni tropicali.

Un protocollo ottimizzato per la cura dei Fopius arisanus, Un parassitoide di frutta Tephritid mosche

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