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Le vescicole extracellulari o EV sono vescicole di dimensioni nanometriche, eterogenee, legate alla membrana secrete da varie cellule, comprese le cellule tumorali cerebrali. Le piccole vescicole extracellulari sono una sottopopolazione che comprende vescicole extracellulari di derivazione endosomica e con perdita di membrana.
Per purificare le piccole vescicole extracellulari, iniziare assumendo vescicole extracellulari preestratte sospese in un tampone integrato con saccarosio che mantiene una soluzione omogenea e preserva l'integrità strutturale delle vescicole extracellulari.
A questa soluzione, quindi, si aggiunge un volume appropriato di iodixanolo - un mezzo inerte e non tossico a gradiente di densità - per ottenere la densità desiderata.
Lo iodisxanolo solubilizza le proteine contaminanti per essere rimosse successivamente.
Successivamente, aggiungere strati di soluzioni di iodixanolo di densità progressivamente decrescenti per creare un gradiente di densità discontinuo.
Centrifugare la provetta ad alta velocità.
A seconda dei loro tassi di galleggiamento, le vescicole extracellulari più dense migrano verso uno strato altrettanto denso di mezzo di gradiente, mentre le vescicole extracellulari meno dense migrano ulteriormente verso uno strato più leggero e i contaminanti più densi formano un pellet sul fondo del tubo.
A questo punto, trasferire piccole frazioni degli strati di gradiente in provette fresche contenenti un tampone adatto.
Successivamente, centrifugare le provette ad altissima velocità in condizioni di refrigerazione.
Durante la centrifugazione, la bassa temperatura impedisce alle vescicole extracellulari di subire danni da calore indotti dall'alta velocità.
Dopo che le EV pure si sono abbassate, rimuovere il surnatante. Risospendere le EV in un buffer appropriato e procedere alla caratterizzazione e all'analisi proteomica.
Innanzitutto, aggiungi 1,5 millilitri di iodixanolo al 60% agli 1,5 millilitri del tampone saccarosio/Tris che contiene le EV per creare una soluzione finale contenente il 30% di iodixanolo. Pipettare su e giù più volte per mescolare accuratamente la soluzione.
Trasferire questa soluzione sul fondo di una provetta per ultracentrifugazione da 5,5 millilitri. Successivamente, mescolare il brodo di iodixanolo al 60% con acqua ultrapura per preparare almeno 1,5 millilitri di una soluzione di iodixanolo al 20% e al 10%.
Utilizzando una siringa e un ago da 18 G, misurare 1,3 millilitri della soluzione di iodixanolo al 20% e sovrapporla accuratamente sopra il gradiente inferiore.
Tenere lo smusso dell'ago a contatto con l'interno del tubo appena sopra il menisco e aggiungere la soluzione goccia a goccia per evitare di mescolare gli strati all'interfaccia di densità.
Quindi, sovrapporre 1,2 millilitri della soluzione di iodixanolo al 10% sopra lo strato al 20% utilizzando la stessa tecnica. Bilanciare e caricare con cura le provette per ultracentrifugazione nei secchi del rotore.
Impostare le velocità di accelerazione e decelerazione di un rotore a secchiello oscillante alle velocità minime e centrifugare a 268.000 x g e a 4 gradi Celsius per 50 minuti.
Durante la centrifugazione del campione, etichettare dieci provette per microcentrifuga da 1,5 millilitri per ciascun campione che corrisponderanno alle frazioni da 1 a 10 del gradiente di densità.
Una volta completata la centrifugazione, rimuovere delicatamente le provette dai secchi del rotore e posizionarle in un supporto stabile. Pipettare 10 frazioni seriali da 490 microlitri dalla parte superiore del gradiente nelle provette corrispondenti.
Utilizzando un rifrattometro, misurare gli indici di rifrazione delle frazioni. Quindi, trasferire ogni frazione in una provetta di ultracentrifugazione pulita da 12 millilitri.
Aggiungere 5 millilitri di 1x PBS a ciascuna provetta e pipettare lentamente su e giù per mescolare. Aggiungere altri 6 millilitri di 1x PBS sulla parte superiore del tubo e mescolare di nuovo con cura.
Ultracentrifugare le provette a 100.000 x g e a 4 gradi Celsius per ri-pellettare le piccole vescicole. Decantare il surnatante e picchiettare le provette per asciugare prima di lisare le vescicole per l'analisi delle proteine o risospendere le vescicole extracellulari per l'analisi morfologica.