Determinazione della produzione di ROS da parte dei neutrofili in seguito all'interazione con biofilm opsonizzato

0 visualizzazioni3:47 min • July 8th, 2025

I batteri marcati con opsonine sono riconosciuti da specifici recettori neutrofili, innescando la fagocitosi con il rilascio di specie reattive dell'ossigeno, o ROS, e la degradazione batterica.

Per quantificare la produzione di ROS da parte dei neutrofili in vitro, prelevare una piastra a più pozzetti. Il pozzetto del test contiene un biofilm di Staphylococcus aureus composto da batteri incorporati in film di matrice extracellulare. Il pozzetto di controllo è senza biofilm.

Incubare il biofilm con siero umano, consentendo alle opsonine sieriche di opsonizzare il biofilm.

Aspirare il siero. Lavare con tampone, rimuovendo le opsonine non legate. Aggiungi neutrofili e luminolo, un composto chemiluminescente ai pozzetti. Centrifugare, portando i neutrofili vicino al biofilm.

Utilizzando un lettore di piastre, misurare la luminescenza nel tempo.

Nel pozzetto contenente il biofilm, i neutrofili si legano alle opsonine del biofilm, causando l'attivazione dei neutrofili e l'internalizzazione batterica nei fagosomi. Specifiche vie di segnalazione vengono attivate, causando l'assemblaggio della NADPH ossidasi sui fagosomi.

La NADPH ossidasi catalizza il trasferimento di elettroni dal NADPH all'ossigeno molecolare, generando ROS che degradano i batteri. Inoltre, la NADPH ossidasi sulla membrana cellulare rilascia ROS a livello extracellulare.

In risposta, i batteri del biofilm producono enzimi che neutralizzano i ROS e rilasciano leucocidine che formano pori nelle membrane dei neutrofili e causano la lisi, interrompendo la produzione di ROS. Il luminol reagisce con i ROS, provocandone l'eccitazione, ed emette luminescenza al momento del rilassamento.

Il pozzetto del test mostra livelli di ROS aumentati rispetto al controllo, indicando interazioni biofilm opsonizzate da neutrofili.

Aggiungere 100 microlitri di siero umano normale al 20% diluito in HBSS, goccia a goccia, al biofilm lavato e incubare a 37 gradi Celsius per 30 minuti per opsonizzare il biofilm. Aspirare la soluzione di siero e lavare i biofilm, goccia a goccia, con 150 microlitri di HBSS. Aspirare l'HBSS, lasciando dietro di sé pozzetti con biofilm opsonizzati.

Aggiungere il luminol ai neutrofili risospesi in HBSS per ottenere una concentrazione finale di 5 micromolari di luminol. Questa soluzione è pronta per l'uso per i gruppi A e C. Aggiungere neutrofili mescolati con luminol ai pozzetti con biofilm opsonizzati.

Per il gruppo D, preparare una soluzione di luminol 50 micromolari in HBSS in una provetta separata senza neutrofili e aggiungerla al pozzetto contenente il biofilm. Aliquotare 350 microlitri di neutrofili mescolati con luminol e aggiungere PMA alla miscela a una concentrazione finale di 500 nanogrammi per millilitro.

Per il gruppo B, aggiungere i neutrofili di questa miscela in pozzetti senza biofilm. Questo serve come controllo positivo. Centrifugare la piastra a 270 RCF per 30 secondi a 4 gradi Celsius. Assicurarsi che il lettore di piastre sia impostato su 37 gradi Celsius, la luminescenza e la cinetica leggono per 60 minuti con intervalli di 3 minuti.

Posizionare la piastra nel lettore di piastre per misurare la produzione di ROS da parte dei neutrofili per 60 minuti.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026