12 settembre 2011
Trasfezione genica mediante elettroporazione è migliorato di circa due volte quando l'orientamento del campo elettrico viene modificato durante l'applicazione di impulsi, mentre la vitalità cellulare non è interessato. L'aumento della transfezione genetica è causata dalla crescita dell'area membrana che è competente per l'ingresso del DNA nella cellula.
Il trasferimento genico mediante elettroporazione è un metodo fisico utilizzato per veicolare geni all'interno delle cellule attraverso l'applicazione di impulsi elettrici brevi e intensi. In un trasferimento genico mediante elettroporazione di successo, sono coinvolti diversi passaggi: la formazione di un complesso tra DNA e membrana cellulare, la translocazione del DNA attraverso la membrana porata, il trasferimento del DNA dal citoplasma al nucleo e l'espressione genica per il trasferimento genico mediante elettroporazione. Vengono utilizzati diversi protocolli di impulsi elettrici al fine di ottenere la massima trasfezione genica.
Uno di questi consiste nel modificare l'orientamento del campo elettrico durante l'erogazione dell'impulso. In questo video, mostriamo la differenza nell'efficienza del trasferimento genico mediante elettroporazione quando tutti gli impulsi vengono somministrati nella stessa direzione e quando vengono somministrati modificando l'orientamento del campo elettrico. Gli esperimenti sono stati condotti su cellule ovariche di criceto cinese, CHOK1, per l'esperimento.
Seguire questi passaggi: coltivare le cellule in un’allevola nell’incubatrice per 24 ore. Nel giorno dell’esperimento, preparare la sospensione cellulare utilizzando tripsina con una soluzione di tripsina al 0,25 % in EDTA, contare le cellule, centrifugare le cellule per cinque minuti a 1000 giri al minuto a quattro gradi Celsius e risospendere i pellet cellulari in tampone fosfato di sodio Miller ISO OSM fino a una densità cellulare di 5 milioni di cellule per millilitro. Quindi trasferire il campione nella piastra appropriata; le cellule vengono esposte a un campo elettrico in una punta di pipetta con elettrodi integrati collegati a un generatore prototipo ad alta tensione.
Questi elettrodi permettono l'applicazione di un campo elettrico relativamente omogeneo in diverse direzioni. La punta e il generatore sono stati sviluppati presso il laboratorio di Bionica della facoltà di ingegneria elettrica. Università di Luana aggiunge plasmide, E-G-F-P-N uno a una sospensione cellulare con concentrazione di 10 microgrammi per millilitro.
Mescolare accuratamente le cellule con il DNA plasmidico e incubare la miscela per due o tre minuti a temperatura ambiente prima di applicare gli impulsi elettrici. Aspirare 100 microlitri di sospensione cellulare nella punta del pipetto con elettrodi integrati. In questo esperimento, viene applicata una serie di otto impulsi rettangolari utilizzando un generatore prototipo ad alta tensione; vengono impiegati diversi protocolli di campo elettrico nel primo protocollo.
Tutti gli impulsi vengono somministrati nella stessa direzione, mentre nel secondo protocollo gli impulsi sono somministrati modificando l'orientamento del campo elettrico. Il secondo protocollo può essere utilizzato soltanto con un apposito generatore di impulsi, che permette l'applicazione di impulsi elettrici in direzioni diverse. Immediatamente dopo la somministrazione degli impulsi, trasferire le cellule dalla punta della pipetta in piastre a sei pozzetti e aggiungere siero bovino fetale.
Incubare le cellule per cinque minuti a 37 gradi CELs, utilizzando il 25% del volume del campione. Per consentire la risaldatura della membrana cellulare, aggiungere due millilitri di HAMF 12 a ciascun campione in una piastra a sei pozzetti e incubare le cellule per 24 ore a 37 gradi Celsius in un'atmosfera umidificata con 5% CO2 all'interno dell'incubatore. L'efficienza del trasferimento genico mediante elettroporazione viene determinata come la percentuale di cellule che esprimono GFP a 24 ore dall'applicazione dell'impulso.
Le cellule vengono osservate utilizzando un microscopio a fluorescenza nel software di acquisizione. Impostare la lunghezza d'onda di eccitazione a 488 nanometri e scegliere un filtro passa-banda appropriato per l'immagine fluorescente verde per rilevare le cellule che esprimono GFP. Acquisire almeno cinque immagini, in contrasto di fase e fluorescenza verde, a 20 ingrandimenti.
Il conteggio delle cellule mediante ingrandimento dell'obiettivo avviene nell'immagine a contrasto di fase e nelle cellule che esprimono GFP nell'immagine di fluorescenza verde, determinando la percentuale di efficienza del trasferimento genico mediante elettroporazione, dividendo il numero di cellule che esprimono GFP per il numero totale di cellule in ciascuna immagine corrispondente. La percentuale di cellule che esprimono GFP quando tutti gli impulsi vengono somministrati nella stessa direzione e quando gli impulsi vengono somministrati modificando l'orientamento del campo elettrico è presentata modificando l'orientamento del campo elettrico. La percentuale di cellule che esprimono GFP aumenta in modo significativo.
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Questo studio analizza la trasfezione genica mediante elettroporazione, evidenziando l'impatto dell'orientamento del campo elettrico sull'efficienza della trasfezione. I risultati indicano che la modifica della direzione del campo elettrico durante l'applicazione dell'impulso può raddoppiare i tassi di trasfezione genica senza compromettere la vitalità cellulare.
Ottimizzare l'orientamento del campo elettrico durante l'elettroporazione aumenta l'efficienza del trasferimento genico del plasmide, offrendo una strategia non virale per migliorare i rendimenti di trasfezione nei flussi di lavoro di validazione iniziale del target e di identificazione dei composti promettenti. Questo approccio supporta la riduzione del rischio meccanicistica aumentando l'ingresso del DNA attraverso un'accresciuta competenza della membrana senza compromettere la vitalità cellulare, migliorando così la fiducia predittiva nei modelli preclinici. Il metodo consente una consegna genica riproducibile e scalabile per lo sviluppo di saggi e applicazioni di screening fenotipico nella ricerca e sviluppo biofarmaceutica.
Questo metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione dell'obiettivo all'identificazione del capostazione, in cui è necessaria una trasfezione genica efficiente per valutare la funzione dell'obiettivo e modulare i percorsi nei modelli cellulari.