Name: Etichettatura cellule staminali con Ferumoxytol, un approvati dalla FDA nanoparticelle di ossido di ferro (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-11-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 5 s
Description: Impara a etichettare cellule staminali mesenchimali umane con ferumoxytol, nanoparticelle di ossido di ferro approvate dalla FDA, per la visualizzazione mediante risonanza magnetica. Questo metodo consente il monitoraggio non invasivo degli impianti cellulari in vivo.

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Questo lavoro è stato sostenuto da un finanziamento della National Institute of Arthritis e muscolo-scheletrico e malattie della pelle: 3R01AR054458-02S2.

1. Giorno 1 1) Piastra cellule <ol><li> HMSC piastra in un pallone T75 ad una confluenza del 80% almeno 18-24 ore prima dell'etichettatura. Fare riferimento alla Tabella 1 per le istruzioni per le navi alternativo. </li></ol> 2. Giorno 2 2) Preparare la soluzione di etichettatura. Questa preparazione si etichetta un (1) T75 fiasco al 80% confluenza con una concentrazione di 400 mg Fe / ml. Fare riferimento alla Tabella 1 per le istruzioni per le navi alternativo. <ol><li> Creare una soluzione (soluzione 1) mescolando 1 ml di siero-free media e 93,1 l di ferumoxytol (magazzino: 30 mg / ml) in un tubo da 15 ml. </li><li> Creare una seconda soluzione (soluzione 2) mescolando 1 ml di siero privo di mezzi di comunicazione e 7 ml di solfato di protamina (magazzino: 10 mg / ml) in un secondo tubo di 15 ml. </li><li> Consentire ad ogni soluzione a riposare per 5 minuti. </li><li> Aggiungere le soluzioni 1 e 2 insieme. Mescolare delicatamente la nuova soluzione di etichettatura. Lasciare che la soluzione a riposare per 5 minuti per consentire USPIO-procomplessi solfato di istamina a formare. </li><li> Aggiungere 5 ml di siero-multimediale gratuito al misto 2 ml di SPIO / soluzione di solfato di protamina per un volume finale di 7 ml. </li></ol> 3) Preparare le cellule per l'etichettatura <ol><li> Aspirare i media dalle cellule. </li><li> Lavare delicatamente le cellule una volta con 2-3 ml di pre-riscaldato Mg / Ca-free D-PBS o senza siero media per lavare via residuale le proteine ​​del siero e dei media o altri componenti che potrebbero mettere in pericolo agente di assorbimento di contrasto e di efficienza etichettatura. Aspirare il liquido di risciacquo. </li></ol> 4) Etichetta cellule <ol><li> Aggiungere il completo 7 ml di soluzione di etichettatura per le cellule. </li><li> Cellule posto in un incubatore (37 ° C / 5% di CO 2) e permettono alle cellule di incubare nella soluzione di etichettatura per 4 ore. </li><li> Aggiungere 700 ml di FCS alla soluzione di etichettatura delle cellule per ottenere una concentrazione finale del siero del 10%. Siero viene aggiunto a ristabilire l'ambiente arricchito di cui sono abituati le cellule, e per assistere in minimizing morte delle cellule che potrebbe derivare da un brusco passaggio a 24 ore di esposizione ad un ambiente privo di siero. </li><li> Permettono alle cellule di incubare con la soluzione di etichettatura per altre 20 ore. </li></ol> 3. 3 ° giorno 5) Preparare le cellule etichettate <ol><li> Aspirare la soluzione di etichettatura da parte delle cellule. </li><li> Lavare delicatamente le cellule con 2-3 ml di pre-riscaldato Mg / Ca-free D-PBS. Aspirare il PBS. E 'importante utilizzare Mg / Ca-free PBS come Mg e Ca potrebbe compromettere l'efficienza della tripsina nella fase successiva. </li><li> Aggiungere 2 ml di pre-riscaldato tripsina 0,05% per le cellule e inclinare il pallone avanti e indietro per garantire l'intera superficie del pallone è ricoperta da un sottile strato di tripsina. Mettere le cellule in un incubatore (37 ° C / 5% di CO 2) e permettono alle cellule di riposare per 5-7 minuti o fino a quando le cellule iniziano a staccarsi dal piatto. Potrebbe essere necessario per confermare il distacco al microscopio. Battere delicatamente i lati del pallone, se necessario, per facilitate superficie cellulare distacco. </li><li> Aggiungere 4 ml di supporti completi pre-riscaldato al pallone per neutralizzare la tripsina. Lavare delicatamente il pallone pipettando la tripsina / media / soluzione cellulari su e giù diverse volte. Raccogliere l'intera soluzione in un tubo da 15 ml. Centrifugare la soluzione delle cellule a 400 RCF per 5 minuti. </li><li> Attentamente aspirare il surnatante senza disturbare il pellet. Risospendere le cellule in 5 ml di mezzi di comunicazione (contenente siero o siero-free). Centrifugare la soluzione delle cellule a 400 RCF per 5 minuti. </li><li> Ripetere il lavaggio delle cellule descritto al punto 5.5. In totale, le cellule saranno lavata tre volte per rimuovere residui, free agent di contrasto nei media e sulla superficie delle cellule. </li><li> Contare le celle a questo punto per raggiungere la conta delle cellule più accurate, come le cellule verranno persi durante il lavaggio precedente. Eseguire un test di vitalità delle cellule. Le cellule sono ora pronte per la successiva analisi e di sperimentazione o applicazione. RM può essere eseguita con T1-w e T2-w parametri, perché anche se ferumoxytol è un T2-w mezzo di contrasto, ferumoxytol espone anche effetti T1. Rappresentante T2-w parametri RMN che possono essere utilizzati per l'immagine cellule ferumoxytol etichettati comprendono: le sequenze FSE o SE_Multislice con un TR di 2000-2500 ms e un TE di 60-80 ms. Per acquisire un T1-w immagine, diminuire il valore TE su un FSE o sequenza SE_Multislice o utilizzare una sequenza GRE con un alto e basso TR TE. Figura 4 mostra un potenziale di applicazioni per l'imaging in vivo di cellule staminali etichettati. </li></ol> 4. Rappresentante dei risultati: Cellule marcate dimostrare un effetto di contrasto significativo oscuramento o negativo su immagini T2-pesate MR e un effetto di luminosità o contrasto positivo sul T1 pesate MR (Figura 2). Longitudinale RM e test di vitalità eseguite 5 giorni dopo l'etichettatura dimostrato alcun segnale significativo MR e nessun impatto significativo sulla viabilità rispetto ai controlli senza etichetta (dati non riportati). jove_content "&gt; cellule staminali con etichetta possono essere successivamente differenziate in vari tipi di cellule o iniettata per via endovenosa per un esame più vivo. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3482/3482fig1.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Schematica linea del tempo per l'etichettatura di cellule staminali con nanoparticelle di ossido di ferro, ferumoxytol. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3482/3482fig2.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Immagini RM di sezioni sagittali thrrough tubi eppendorf con le cellule in una pallina di cellule. A) senza etichetta controlli. B) le cellule etichetta dimostrando un significativo T2 o negativo effetto di contrasto pesata in T2 FSE o SE_Multislice imaging e un T1 o positivo effetto di contrasto sulla sequenza T1 GRE. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/3482/3482fig3.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Sagittale sezioni dei tubi eppendorf con le cellule in cellule PELlascia. Un minimo di 10.000 cellule ferumoxytol etichettati possono essere rilevati tramite T2-w RM. <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/3482/3482fig4.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. Visualizzazione MR di ferumoxytol marcato le cellule staminali iniettate nei ventricoli cerebrali murine. A) assiale, l'immagine di MR barin murini senza iniezione di USPIO marcato le cellule staminali. B) assiale, C) coronale, e D) sagittale immagini RM raffigurante il T2, effetto negativo di contrasto di USPIO marcata con cellule staminali (frecce bianche) iniettato in un cervello murino. <img alt="Tabella 1" src="/files/ftp_upload/3482/3482table1.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Tabella 1"> Tabella 1. Adattamenti Quantità per l'etichettatura delle cellule nei vasi alternativo.

<ol><li>Narsinh, K. H., Plews, J., Wu, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+human+induced+pluripotent+and+embryonic+stem+cells%3A+fraternal+or+identical+twins%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Ther%22%5BJournal%5D)">Comparison of human induced pluripotent and embryonic stem cells: fraternal or identical twins?</a> Mol Ther. 19, 635-638 (2011).</li>
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</ol>

Tutti i collaboratori di questo studio non offrono informazioni.

Migliorare l&#39;efficacia di engraftments cellule staminali è fondamentale per il progresso della medicina rigenerativa. Una tecnica non invasiva di visualizzazione per le cellule staminali in vivo migliora in modo significativo la nostra capacità di comprendere i meccanismi che portano a risultati attecchimento di successo. Etichettatura magnetica per la visualizzazione MR, come la procedura abbiamo dimostrato, permette il monitoraggio in vivo di cellule staminali con la RM. Le cellule staminali magn...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reagente </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Commenti (opzionale) </td></tr><tr><td> D-MEM glucosio </td><td> Sigma </td><td> D5648 </td><td> O medio altra base per la linea di cellule staminali desiderato da utilizzare </td></tr><tr><td> D-PBS (Ca + +, Mg + + libero) </td><td> GIBCO </td><td> 14190-144 </td><td></td></tr><tr><td> Tripsina-EDTA 0,05% </td><td> Invitrogen </td><td> 25300-120 </td><td></td></tr><tr><td> Siero fetale bovino (FBS) </td><td> Hyclone </td><td> SH30071.03 </td><td></td></tr><tr><td> Ferumoxytol (Feraheme) </td><td> AMAG </td><td> 59338-0775-01 </td><td></td></tr><tr><td> Solfato di protamina </td><td> APP Pharm. </td><td> 22930 </td><td></td></tr>
</tbody>
</table>

etichettatura cellule staminali con ferumoxytol, un approvati dalla fda nanoparticelle di ossido di ferro

Labeling Stem Cells with Ferumoxytol, an FDA-Approved Iron Oxide Nanoparticle

Terapie basate sulle cellule staminali offrono un potenziale significativo per il settore della medicina rigenerativa. Tuttavia, molto resta ancora da capire per quanto riguarda la cinetica in vivo di cellule trapiantate. Un metodo non invasivo per monitorare ripetutamente le cellule staminali trapiantate in vivo avrebbe permesso agli investigatori di monitorare direttamente i trapianti di cellule staminali e di individuare gli esiti attecchimento di successo o insuccesso. Una vasta gamma di cellule staminali continua ad essere indagato per innumerevoli applicazioni. Questo protocollo si concentra su tre diverse popolazioni di cellule staminali: embrionali umane del rene 293 (HEK293), le cellule, cellule staminali mesenchimali (hMSC) e staminali pluripotenti indotte (iPS), cellule. HEK 293 cellule derivano da cellule embrionali renali in coltura con tranciati adenovirus 5 del DNA. Queste cellule sono ampiamente utilizzati nella ricerca perché sono facilmente colta, crescono velocemente e sono facilmente transfettate. hMSCs si trovano nel midollo adulti. Queste cellule can essere replicate come cellule indifferenziate, mantenendo multipotenza o la potenzialità di differenziarsi in un numero limitato di destini delle cellule. hMSCs possono differenziare a lignaggi dei tessuti mesenchimali, tra cui gli osteoblasti, adipociti, condrociti, tendini, muscoli e stroma del midollo. le cellule iPS sono geneticamente cellule adulte riprogrammate che sono stati modificati per esprimere geni e fattori simili a definire le proprietà delle cellule staminali embrionali. Queste cellule sono pluripotenti senso che hanno la capacità di differenziarsi in tutte le linee cellulari 1. Sia hMSCs e le cellule iPS hanno dimostrato la capacità di rigenerazione dei tessuti in vivo. Risonanza magnetica (RM) con l&#39;uso di etichette superparamagnetiche nanoparticelle di ossido di ferro (SPIO) delle cellule si sono dimostrati efficaci per il monitoraggio in vivo di cellule staminali a causa della risoluzione anatomica microscopica vicino, un sangue più lunga emivita che permette l&#39;imaging longitudinale e la alto sensitivity per il rilevamento delle cellule forniti da RM di SPIO nanoparticelle 2-4. Inoltre, la RM con l&#39;uso di SPIOs è clinicamente traducibile. SPIOs sono composti da un nucleo di ossido di ferro con uno strato superficiale destrano, carboxydextran o amido che serve per contenere il nocciolo bioreactive ferro da componenti del plasma. Questi agenti creare disomogeneità locali del campo magnetico che portano ad una diminuzione del segnale in immagini T2-pesate RM 5. Purtroppo, SPIOs non vengono più prodotte. Seconda generazione, ultrasmall SPIOs (USPIO), tuttavia, offrono una valida alternativa. Ferumoxytol (FerahemeTM) è uno USPIO composto da un non-stechiometrico magnetite nucleo circondato da un mantello polyglucose carboxymethylether sorbitolo. Il colloidale, dimensione delle particelle di 17-30 nm ferumoxytol è determinato dal dispersione della luce. Il peso molecolare è di 750 kDa, e il relassività costante a campo 2T MRI è 58,609 MM-1 sec-1 forza 4. Ferumoxytol è stato recentemente dalla FDA ha approvato uns un integratore di ferro per il trattamento della carenza di ferro nei pazienti con insufficienza renale 6. Il nostro gruppo ha applicato questo agente in un &quot;off label&quot; l&#39;uso per applicazioni di etichettatura delle cellule. La nostra tecnica dimostra efficace di etichettatura di cellule staminali con ferumoxytol che porta a significativi effetti segnale RM di cellule etichettate sulle immagini MR. Questa tecnica può essere applicata per monitoraggio non invasivo di terapie con cellule staminali in ambito pre-clinico e clinico.

Abbiamo descritto una tecnica per l&#39;etichettatura e tracciabilità delle cellule staminali con la FDA ha approvato, superparamagnetiche ossido di ferro (SPIO), ferumoxytol (Feraheme). Questa tecnica di imaging cellulare che utilizza la risonanza magnetica (RM) per la visualizzazione, è facilmente accessibile per monitoraggio a lungo termine e la diagnosi di engraftments staminali successo o insuccesso delle cellule nei pazienti.

Etichettatura cellule staminali con Ferumoxytol, un approvati dalla FDA nanoparticelle di ossido di ferro

Le terapie basate sulle cellule staminali offrono un potenziale significativo per il campo della medicina rigenerativa. Tuttavia, resta molto da comprendere riguardo all'in vivo...

In questa tecnica, nelle scienze traslazionali le cellule vengono marcate utilizzando un ossido di ferro superparamagnetico ultra-piccolo approvato dalla FDA chiamato far amatol. Si inizia con cellule staminali mesenchimali umane seminate al 80% di confluenza, quindi si trasfetta l'agente di contrasto far amatol in un mezzo privo di siero per etichettare le cellule. Successivamente, si procede alla raccolta e al conteggio delle cellule staminali mesenchimali umane marcate per l'uso sperimentale.In definitiva, i risultati della risonanza magnetica possono mostrare un notevole contrasto negativo o effetto T2 derivante da cellule marcate con U-S-P-I-O. Benvenuti al laboratorio DDR link del programma di imaging molecolare presso lo Stanford. Le implicazioni di questa tecnica si estendono al tracciamento in vivo di innesti di cellule staminali mediante visualizzazione diretta tramite imaging RM non invasivo.Il vantaggio principale di questa tecnica rispetto alle tecniche esistenti, come l'etichettatura con SPIOs, è che l'USPIO è l'unico nanoparticella di ossido di ferro approvata dalla FD che può essere utilizzata per l'etichettatura cellulare mediante un uso fuori indicazione. In un tubo conico da 15 millilitri, diluire l'agente di contrasto in un millilitro di mezzo privo di siero; in un secondo tubo, diluire il solfato di protamina in un millilitro di mezzo privo di siero ed equilibrare entrambe le soluzioni a temperatura ambiente per cinque minuti. Ora unire le soluzioni e lasciarle a riposo per cinque minuti per permettere la formazione del complesso USPIO-solfato di protamina.Quindi aggiungere cinque millilitri di mezzo privo di siero per creare una soluzione di marcatura con nanoparticelle. Coltivare una cultura confluenziale di cellule staminali mesenchimali umane precedentemente seminate con una confluenza dell'80% almeno 18-24 ore prima della marcatura. Aspirare il mezzo dalle cellule.Lavare delicatamente le cellule con tre millilitri di mezzo privo di siero preriscaldato per rimuovere eventuali interferenze con l'assorbimento dell'agente di contrasto e l'efficienza di marcatura. Aggiungere ora sette millilitri di soluzione di marcatura e collocare le cellule in un incubatore per quattro ore. Dopo quattro ore, rimuovere le cellule marcate dall'incubatore e aggiungere 700 microlitri di siero fetale bovino, quindi incubare per ulteriori 20 ore.Lavare le cellule con soluzione salina tamponata al fosfato, priva di magnesio e calcio, preriscaldata. Quindi aggiungere due millilitri di tripsina al 0,05%, preriscaldata, e inclinare il fiasco avanti e indietro per assicurare che l'intera superficie del fiasco sia ricoperta. Porre le cellule in un incubatore per cinque minuti o fino a quando le cellule iniziano a staccarsi dalla piastra, se necessario.Verificare l'adesione al microscopio e battere delicatamente i lati del matraccio per favorire il distacco delle cellule dalla superficie. Aggiungere ora quattro millilitri di mezzo completo preriscaldato. Sciacquare delicatamente il matraccio e trasferire l'intera soluzione in un tubo conico da 15 millilitri; raccogliere le cellule mediante centrifugazione e lavare i pellet tre volte con cinque millilitri di mezzo.Infine, enumerare le cellule vitali. Le cellule sono ora pronte per l'analisi. Queste risonanze magnetiche mostrano sezioni sagittali attraverso pellet di cellule renali embrionali umane in tubi einor rispetto ai controlli non marcati in tubi.Le cellule staminali marcate con pH amatol mostrano un significativo scurimento o effetto di contrasto negativo nelle immagini RM pesate in T2 e un chiarimento o effetto di contrasto positivo nelle immagini pesate in T1. Questo marcatore a base di ossido di ferro è una sonda funzionale in diverse linee di cellule staminali embrionali. Queste curve dose-risposta dimostrano che è possibile rilevare già 10.000 cellule marcate con farol mediante risonanza magnetica pesata in T2.Le cellule staminali marcate possono essere correttamente differenziate in vari tipi cellulari o iniettate per via endovenosa per indagini in vivo. Ad esempio, queste immagini di risonanza magnetica mostrano cellule staminali marcate con oxit iniettate nei ventricoli cerebrali contralaterali, come indicato dalle frecce. Durante l'esecuzione di questa procedura, è importante ricordare di lavare le cellule tre volte con PBS, come mostrato nel video, per rimuovere l'agente di contrasto libero residuo sulla superficie delle cellule, che potrebbe portare a un sovrastima dell'effetto di contrasto delle cellule marcate dopo lo sviluppo.Questa tecnica traccerà la strada ai ricercatori nel campo della medicina rigenerativa per esplorare ulteriormente il potenziale clinico dell'innesto di cellule staminali in vivo con visualizzazione a lungo termine e tracciamento delle cellule staminali.

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Per la valutazione delle terapie con cellule staminali nuovo, è importante non invasiva traccia le cellule iniettate in vivo. Questo video vi mostrerà come etichetta cellule staminali mesenchimali ed embrionali con il ferro mezzi di contrasto a base di ossidi in vivo per la successiva RM in vivo.

Etichettatura hESC e hMSCs con nanoparticelle di ossido di ferro per i non-invasiva in vivo inseguimento con la RM

Questo video mostra le tecniche per l'etichettatura delle cellule staminali embrionali umane e cellule staminali mesenchimali con coloranti fluorescenti. Questa tecnica può essere utilizzata per un monitoraggio in vivo di cellule staminali trapiantate con imaging ottico e per le correlazioni istopatologiche con microscopia a fluorescenza.

Etichettatura Cellule staminali con le tinture fluorescenti per la rilevazione non invasiva con Optical Imaging

In questo video, ci mostra come etichetta cellule staminali embrionali umane (hESC) con cloruro di manganese...

Etichettatura in vitro di cellule staminali embrionali umane per la Risonanza Magnetica

Obiettivo della presentazione è quello di dimostrare un metodo altamente riproducibile per generare matrice associata impianti di cellule staminali a difetti della cartilagine, che può essere visualizzato con la RM. Le cellule staminali sono etichettati con FDA ha approvato Ferumoxides, mescolato con agarosio, impiantati in difetti della cartilagine e ripreso con uno scanner 7T MR.

L&#39;impianto di Ferumoxides etichetta cellule staminali mesenchimali in difetti della cartilagine

Questo articolo descrive una sequenza ottimizzata di eventi per l'imaging multimodale di innesti cellulari nel cervello di roditori utilizzando: (i) in bioluminescenza vivo e la risonanza magnetica, e (ii) post mortem l'analisi istologica. La combinazione di queste modalità di imaging su un singolo animale consente la valutazione del trapianto cellulare ad alta risoluzione, sensibilità e specificità.

Imaging multimodale impianto di cellule staminali nel sistema nervoso centrale di topi

La somministrazione mirata di cellule è utile in una varietà di applicazioni biomediche.  L'obiettivo di questo protocollo è quello di utilizzare nanoparticelle di ossido di ferro superparamagnetiche (SPION) per marcare le cellule e quindi consentire approcci di targeting cellulare magnetico per un alto grado di controllo sulla consegna e la localizzazione delle cellule.

Etichettatura delle cellule e Targeting con superparamagnetico ossido di ferro nanoparticelle

Viene presentato un protocollo per la sintesi e la cationizzazione della magnetoferritina drogata con cobalto, nonché un metodo per magnetizzare rapidamente le cellule staminali con magnetoferritina cationizzata.

Sintesi di cationizzata Magnetoferritin per la magnetizzazione ultra-veloce di celle

Questo manoscritto descrive l'erogazione efficiente, non virale miR alle cellule endoteliali da un vettore PEI / MNP e la loro magnetizzazione. Così, oltre alla modificazione genetica, questo approccio consente di orientamento delle cellule magnetica e risonanza magnetica rilevabilità. La tecnica può essere utilizzata per migliorare le caratteristiche dei prodotti cellulari terapeutici.

preparazione e<em&gt; In Vitro</em&gt; Caratterizzazione di magnetizzato miR-modificato cellule endoteliali

Presentato qui è un protocollo per la consegna e il monitoraggio di cellule staminali mesenchymale non invasive (MSC) in un modello murino di lesioni cerebrali traumatiche. Le nanoparticelle di ossido di ferro superparamagnetiche sono impiegate come sonda di risonanza magnetica (MRI) per l'etichettatura MSC e il tracciamento in vivo non invasivo dopo la consegna intranasale mediante risonanza magnetica in tempo reale.

Monitoraggio delle cellule staminali mesenchymale con etichetta chimica dell'ossido di ferro superparamagnetico utilizzando la risonanza magnetica dopo la consegna intranasale in un modello murino traumatico da lesioni cerebrali

Le nanoparticelle di ossido di ferro sono sintetizzati tramite una procedura sol gel non acquosa e rivestiti con molecole corte anioniche o polimeri. L'uso della magnetometria per monitorare l'incorporazione e le biotrasformazioni di nanoparticelle magnetiche all'interno delle cellule staminali umane è dimostrato utilizzando un magnetometro a campione vibrante (VSM).

Utilizzo della magnetometria per monitorare l'incorporazione cellulare e la successiva biodegradazione delle nanoparticelle di ossido di ferro sintetizzate chimicamente

Il contenuto di idroperossido lipidico rappresenta l'indicatore più comunemente usato della morte cellulare ferroptotica. Questo articolo dimostra l'analisi passo-passo della citometria a flusso del contenuto di idroperossido lipidico nelle cellule dopo induzione della ferroptosi.

Rivelare il fenotipo ferroptotico del medulloblastoma

Impara a etichettare cellule staminali mesenchimali umane con ferumoxytol, nanoparticelle di ossido di ferro approvate dalla FDA, per la visualizzazione mediante risonanza magnetica. Questo metodo consente il monitoraggio non invasivo degli impianti cellulari in vivo.

Etichettatura cellule staminali con Ferumoxytol, un approvati dalla FDA nanoparticelle di ossido di ferro

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