Name: Dissezione e Cultura della gangliari Chick Statoacoustic Espianti e del midollo spinale in gel di collagene per saggi crescita dei neuriti (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-12-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 8 s
Description: Impara a dissezionare e coltivare gangli statoacustici e midollo spinale di pollo in gel di collagene 3D per studiare la crescita dei neuriti in risposta a fattori di crescita.

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Questo lavoro è stato finanziato dal National Institutes of Health di Grant RO1DC002756 e la Purdue Research Foundation. Ringraziamo Wu Doris e Wiese Chang per la consulenza con esperimenti e McPhail Rodney aiuto con figure.

Ricette Chick Ringers <table border="1"><tbody><tr><td> 7,2 g </td><td> NaCl </td></tr><tr><td> 0,23 g </td><td> CaCl 2 + 2H 2 O </td></tr><tr><td> 0,37 g </td><td> KCl </td></tr><tr><td> 0,115 g </td><td> Na 2 HPO 4 </td></tr><tr><td> 900 ml </td><td> Acqua (cultura grado Tissue) </td></tr></tbody></table> Nota: Regolare il pH a 7,4. Portare il volume finale a 1000 ml con acqua. PBS 10X <table border="1"><tbody><tr><td> 40 g </td><td> NaCl </td></tr><tr><td> 1 g </td><td> KCl </td></tr><tr><td> 7 g </td><td> Na 2 HPO 4 </td></tr><tr><td> 1,2 g </td><td> KH 2 PO 4 </td></tr><tr><td> 450 ml </td><td> DEPC acqua </td></tr></tbody></table> Nota: Regolare il pH a 7,4. Portare finalevolume di 500 ml con acqua. Concentrazione di lavoro (1X) è fatto diluendo 1 magazzino 10X parte con 9 parti di tessuto-cultura dell&#39;acqua grado, come quella ottenuta con un sistema Millipore irraggiamento UV per generare acqua con 18 MΩ-cm di conducibilità. SAG medio espianto tenendo <ul><li> DMEM/F12 con L-glutammina, 10 mM Hepes </li><li> 10% di insulina, Trasferimento, Selenio (ITS +1) </li><li> 1% pen-streptococco </li></ul> Espianto terreno di coltura <ul><li> SAG medio espianto tenendo </li><li> 10 ng / ml neurotrofina-3 (NT-3) </li><li> 10 ng / ml di fattore neurotrofico ciliare (CNTF) </li></ul> Dissezione del midollo spinale e medie tenendo <ul><li> L-15 </li><li> 10% di siero fetale bovino </li><li> 1% pen-streptococco </li></ul> Uova incubare a 37-38 ° C. Sterilizzare strumenti di dissezione e piatto Sylgard dissezione nel 70% di etanolo. Dissecting piatti e strumenti possono anche essere sterilizzati ai raggi UV durante la notte. <ol><li> Perle Mettere in una microtubo con 1 ml di PBS sterile, mescolare e attendere che le perline di depositarsi sul fondo della provetta. </li><li> Lavare le perle più volte rimuovendo il surnatante dopo le perline sono stabiliti e risospendere in PBS. </li><li> Incubare le perline in proteine ​​purificate (diluito in PBS) o solo PBS (controllo) per 1 ora a temperatura ambiente. </li><li> Sciacquare le perline in PBS e conservare in un 24-pozzetti con 1 ml di PBS fino al momento in collagene. </li></ol> 2. Ganglio dissezione Statoacoustic <ol><li> Sulla E4 rimuovere l&#39;embrione da l&#39;uovo e mettetelo in un piatto con la soluzione di Ringer pulcino per rimuovere membrane embrionali. </li><li> Posto l&#39;embrione in una Sylgard © allineati capsula di Petri riempite con HBSS freddo e la posizione l&#39;embrione su un lato con la vescicola otica rivolto verso l&#39;alto. Perno l&#39;embrione al piatto con perni dissezione. </li><li> Utilizzando due pin dissezione, fare un taglio orizzontale attraverso la pelle immediatamente ventrale alsacchetti canale, circa dove si incontra il dotto cocleare. Fare un taglio verticale anteriore e posteriore per il SAG. Usare pinze o una spilla dissezione per sollevare e rimuovere il lembo di pelle delimitato dai tre tagli. Nota: Il SAG è situato ai margini del anteroventral otocyst, circa a metà strada tra la sacca dorsale, che è facilmente visibile con l&#39;illuminazione di base chiaro, e il dotto cocleare ventrale che proietta ventromedially ed è oscurato dagli archi della faringe. Il dotto cocleare allunga così la sua dimensione dorsoventrale aumenterà progressivamente su E4 tra Hamburger-Hamilton fasi 23-25 ​​settembre. </li><li> Tirare la otocyst in direzione posteriore per separarlo dalla SAG. Spostare il tessuto che circonda la SAG con perni dissezione e rimuovere con attenzione il SAG dall&#39;embrione utilizzando # 55 pinze. Rimuovere grossi pezzi di tessuto mesenchimale e fasci nervosi che sporge dalla SAG. </li><li> Usando una bocca larga punta della pipetta, trasferire l&#39;espianto ad un24-pozzetti con 0,5 ml di espianto SAG tenendo media. Tenere espianti su ghiaccio oa temperatura ambiente per un massimo di 4 ore. </li></ol> 3. Dissezione del midollo spinale <ol><li> Rimuovere la E6 dell&#39;embrione dall&#39;uovo e mettetelo in un piatto contenente la soluzione di Ringer pulcino. Togliere la testa e le membrane embrionali. </li><li> Mettere il corpo in un Sylgard © piatto contenente la dissezione a freddo medio dissezione del midollo spinale. Posizione e il pin del &quot;giù ventrale&quot; embrione e caudale di fronte al sperimentatore. Luogo pin dissezione attraverso ogni arto e fino alla fine anteriore. </li><li> Con pinze e / o dissezione pin, rimuovere con attenzione la pelle e tessuto, muovendosi in una direzione ventrale, fino a quando la superficie dorsale del midollo spinale è visibile. </li><li> Tagliare la linea mediana dorsale del midollo spinale con un perno dissezione, in un posteriore in direzione anteriore, lungo l&#39;intera lunghezza del midollo spinale. Questo crea un &quot;libro aperto&quot;, come i lati sinistro e destro del midollo spinale separati. </li><li&gt; Eliminare il tessuto circostante, lateralmente, per isolare il midollo spinale ed esporre i gangli della radice dorsale (DRG). Rimuovere il DRG e meningi per sfregamento un perno dissezione o pinze tra il midollo spinale e DRG. </li><li> Togliere il midollo spinale dal corpo tenendo il più a fine caudale del midollo spinale con una pinza e di sollevamento in alto e lontano dal sperimentatore. Rimuovere DRG rimanente e meningi. </li><li> Tenere un capo del midollo spinale con una pinza (o pin al piatto) e Vännäs usare le forbici per tagliare lungo la linea mediana ventrale, a bisecare il midollo spinale. </li><li> Tenere un capo del espianto con una pinza per immobilizzare il tessuto e usare le forbici per tagliare Vännäs espianti piccolo (100-500 um di lunghezza) per tutta la lunghezza del tessuto. La lastra di fondo può essere riconosciuto come un chiaro ispessimento del tessuto lungo un bordo espianto. </li><li> Utilizzare una bocca larga punta della pipetta per trasferire espianti di un piatto ben 24 con 0,5 ml di mezzo di dissezione a freddo. Tenere espianti su ghiaccio per mantenere la vitalità dei tessuti, fo fino a 4 ore. </li></ol> 4. Espianto cultura con le proteine ​​purificate di verificare le risposte dei neuriti <ol><li> Preparare un 1,5 mg / ml soluzione di collagene in una provetta da 15 ml conica, sul ghiaccio, secondo le istruzioni del produttore. </li><li> Verificare la soluzione di collagene ha un pH di 7-7,4 carta pH utilizzando l&#39;indicatore. Regolare il pH con l&#39;aggiunta di NaOH in 1 volumi microlitri. </li><li> Trasferimento espianti a un 24-pozzetti utilizzando una pipetta punta larga bocca e aspirare il liquido in eccesso. Espianti multiple possono essere coltivate in un pozzo, ma devono essere collocati ad almeno 500 micron di distanza l&#39;uno dall&#39;altro. </li><li> Aggiungere 0,5 ml di collagene per il pozzetto contenente l&#39;espianto. Posizionare l&#39;espianto sulla superficie inferiore del pozzo. Assicurarsi di impostare ogni cultura completamente prima di procedere con il pozzo successivo perché il collagene comincia a polimerizzare a temperatura ambiente. </li><li> Posizionare la piastra di coltura in A ° C più calda scivolo per 30-45 minuti per polimerizzare il collagene 37. Quando il collagene ha polimerasirizzato la renderanno simile ad un gel. </li><li> Aggiungere 0,5 ml di caldo terreno di coltura espianto integrato sia con proteine ​​purificate (diluito in PBS) o PBS (Control) e incubare a 37 ° C, 5% di CO 2. Effetti sulla crescita dei neuriti dovrebbe essere visibile da 24 ore. NOTA: Abbiamo utilizzato lo stesso protocollo per espianti SAG cultura fino a 42 ore. </li></ol> 5. Espianto co-coltura con le proteine ​​rivestite di perline prova escrescenza direzionale dei neuriti <ol><li> Inizia con passi cultura espianto 4,1-4,4. </li><li> Utilizzando una pipetta, trasferire 1-5 perle da PBS al pozzo contenente la soluzione di collagene ed espianto. </li><li> Utilizzare pinze per posizionare perline 50-500 micron dal bordo l&#39;espianto. </li><li> Posizionare la piastra su A ° C più calda scivolo per 30-45 minuti per polimerizzare il collagene 37. Il tessuto o perla può diventare sfollati come il collagene polimerizza. Controllare le culture e riposizionare il tessuto e perline durante i primi 5 min. </li><li> Aggiungere 0,5 ml SAG media per ogni pozzetto e incubare per 24 ore. </li></ol> 6. Visualizzazione di crescita dei neuriti di immunoistochimica <ol><li> Sciacquare le culture in PBS e fissare per 1 ora a temperatura ambiente in 4% paraformaldeide in PBS. </li><li> Rilasciare il gel dalle pareti dei pozzi tracciando intorno al bordo del gel con la punta arrotondata di una spatola in teflon micro. Eseguire la immunostain con il gel nei pozzetti. Sciacquare più volte in PBS. </li><li> Incubare in 0,5 ml di soluzione di bloccaggio (10% di siero bovino, 0,1% Triton X-100, sodio azide allo 0,1% in PBS) notte a 4 ° C. </li><li> Incubare in 0,5 ml di anticorpo primario (anti-β-tubulina anticorpo diluito 1:500 in blocco soluzione) una notte a 4 ° C. </li><li> Sciacquare più volte in PBS. Incubare in 0,5 ml di anticorpo secondario (Alexa Fluor 488 capra anti-topo IgG 2b diluito 1:500) notte a 4 ° C. Da questo passo in avanti, tenere le piastre al buio o avvolgerlo in un foglio, a causa della sensibilità alla luce dianticorpi secondari. </li><li> Sciacquare più volte in PBS e conservare a 4 ° C in PBS per un massimo di una settimana. </li></ol> 7. Rappresentante Risultati <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3600/3600fig1.jpg" /> Figura 1. Risultati rappresentativi dei neuriti con gli effetti di purificazione e di NT-3 NT-3-rivestito perline su E4 espianti SAG pulcino. SAG corpi cellulari dei neuroni e neuriti erano immunostained con β-tubulina e ripreso con un obiettivo 10x su un microscopio confocale. Dopo 24 ore in vitro, gli espianti SAG visualizzata crescita dei neuriti maggiore in presenza di 100 ng / ml umano purificato NT-3 aggiunti al mezzo di coltura cellulare (1B), rispetto ai controlli (1A). SAG neuroni sono stati co-coltura con perline impregnato IN100 ng / ml, NT-3 per dimostrare che una sorgente puntiforme di NT-3 può localmente promuovere crescita dei neuriti. Espianti visualizzati più lunga e più densa dei neuriti escrescenza sul lato dellaespianto di fronte al tallone rispetto al lato opposto (1D) e rispetto al controllo culture con perline imbevute di PBS (1C). Barra di scala = 200 micron. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3600/3600fig2.jpg" /> Figura 2. Risultati rappresentativi dei neuriti con gli effetti di purificazione e di Wnt5a Wnt5a perle rivestite in E6 pulcino midollo spinale. Espianti di midollo spinale sono state immunostained con β-tubulina e ripreso con un microscopio confocale. Dopo 24 ore di crescita in presenza di Wnt5a purificato del mouse (400ng/ml), crescita dei neuriti da espianti pulcino midollo spinale è stato aumentato (2B), rispetto ai controlli colta senza Wnt5a (2A). Perline imbevuto di 500 ng / ml Wnt5a, posto 300-500 micron dal bordo di espianti midollo spinale, anche promosso crescita dei neuriti (2D) rispetto al controllo culture (2C). Simili co-coltura risultati sono stati precedentemente pubblicato con Wnt5a cellule che esprimono 8. Barra di scala = 200micron.

<ol><li>Fekete, D. M., Campero, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axon+guidance+in+the+inner+ear%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Axon guidance in the inner ear.</a> Int. J. Dev. Biol. 51 (6-7), 549-549 (2007).</li>
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<li>Lyuksyutova, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anterior-posterior+guidance+of+commissural+axons+by+Wnt-frizzled+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Anterior-posterior guidance of commissural axons by Wnt-frizzled signaling.</a> Science. 302 (5652), 1984-1984 (2003).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Vi presentiamo un metodo per sezionare e cultura SAG E4 ed E6 espianti midollo spinale, da ragazza, sotto siero senza condizioni. Questa procedura è attualmente utilizzato nel nostro laboratorio per studiare gli effetti dei vari ligandi secreto SAG sulla sopravvivenza dei neuroni e crescita dei neuriti. Nuovi aspetti di questo protocollo includono l&#39;uso di un siero privo di espianti di sistema per la coltura e l&#39;uso di perline imbevute di fattori di crescita per studiare gli effetti sulla escrescenza SAG neuriti...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reagente </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Commento </td></tr><tr><td> Attrezzatura </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Dissezione microscopio </td><td></td><td></td><td> Usiamo un stereomicroscopio Leica M80 con campo chiaro di base di illuminazione </td></tr><tr><td> Far scorrere più caldi </td><td> CS &amp; E. </td><td></td><td> Collagene polimerizzazione </td></tr><tr><td> Pollo uovo incubatore </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 37 ° C / 5% CO 2 umidificata coltura cellulare incubatore </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Dissezione Materiali </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Sylgard &amp;copia; rivestito capsula di Petri </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 24-oltre piastra di coltura cellulare </td><td> Corning </td><td> 3526 </td><td></td></tr><tr><td> # 5 Dumont forcipe </td><td> Strumenti Scienza multa </td><td> 11252-30 </td><td></td></tr><tr><td> # 55 Dumont forcipe </td><td> Strumenti Scienza multa </td><td> 11295-51 </td><td></td></tr><tr><td> Perni in acciaio inox dissezione </td><td> Strumenti Scienza multa </td><td> 26002-10 </td><td> Embrione pinning, dissezione multa </td></tr><tr><td> Moria mestolo forato </td><td> Strumenti Scienza multa </td><td> 10370-17 </td><td> Embrione raccolta / trasferimento </td></tr><tr><td> 200 ul larga bocca pipetta suggerimenti </td><td> Dot Scientific Inc </td><td> 118-96R </td><td> Espianto trasferimento </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> E4 e uova di gallina E6 </td><td></td><td></td><td> &amp; Nbsp; </td></tr><tr><td> Soluzione pulcino Ringer </td><td></td><td></td><td> Embrione vendemmia </td></tr><tr><td> HBSS </td><td> Sigma </td><td> H8264 </td><td> SAG dissezione </td></tr><tr><td> L15 media </td><td> Sigma </td><td> L5520 </td><td> Midollo spinale medio dissezione </td></tr><tr><td> Siero di vitello fetale </td><td> Atlanta Biologicals </td><td> S11150 </td><td> Midollo spinale medio dissezione </td></tr><tr><td> Vännäs Forbici </td><td> Mondo Strumenti di precisione </td><td> 501778 </td><td> Dissezione del midollo spinale </td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Collagene preparazione </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Rat-tail collagene di tipo I </td><td> BD Biosciences </td><td> 354249 </td><td> Espianto cultura </td></tr><tr><td> 10X PBS (sterili) </td><td></td><td></td><td> Per neutralize collagene </td></tr><tr><td> NaOH 1N (sterili) </td><td></td><td></td><td> Per neutralizzare collagene </td></tr><tr><td> Acqua distillata (sterile) </td><td></td><td></td><td> Per neutralizzare collagene </td></tr><tr><td> pH carte indicatore (6,0-8,1) </td><td> Whatman </td><td> 2629-990 </td><td> Per controllare il pH collagene </td></tr><tr><td> Provette da 15 ml </td><td> Dot Scientific Inc </td><td> 818-PG </td><td></td></tr><tr><td> 500 microlitri larga bocca pipetta suggerimenti </td><td> Dot Scientific Inc </td><td> 119-R100 </td><td> Al collagene pipetta </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Espianto cultura </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> DMEM/F12 media </td><td> Sigma </td><td> D8437 </td><td> Espianto terreno di coltura </td></tr><tr><td> IL SUO 1 </td><td> Sigma </td><td> I2521 </td><td> Supplemento media </td&gt; </tr><tr><td> Penicillina-Streptomicina </td><td> Invitrogen </td><td> 15140-122 </td><td> Supplemento media </td></tr><tr><td> CNTF (ratto) </td><td> Sigma </td><td> C3835 </td><td> Supplemento media </td></tr><tr><td> NT-3 (umano) </td><td> Sigma </td><td> N1905 </td><td> Supplemento media </td></tr><tr><td> Purificato del mouse Wnt5a </td><td> R &amp; D Systems </td><td> 645-WN-010 </td><td></td></tr><tr><td> Affi-gel blu gel perline </td><td> Bio-Rad </td><td> 153-7302 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Immunoistochimica </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Paraformaldeide </td><td> Sigma </td><td> P6148 </td><td> Fissazione </td></tr><tr><td> PBS </td><td></td><td></td><td> Risciacqui </td></tr><tr><td> Triton X-100 </td><td> Sigma </td><td> T9284 </td><td> Soluzione bloccante </td></tr><tr><td> Sodioazide </td><td> Sigma </td><td> S8032 </td><td> Soluzione bloccante </td></tr><tr><td> Siero di vitello </td><td> Invitrogen </td><td> 16170-078 </td><td> Soluzione bloccante </td></tr><tr><td> Monoclonale IgG2b anti-tubulina β 1 ​​+ II anticorpi </td><td> Sigma </td><td> T8535 </td><td> Corpi cellulari etichette e neuriti </td></tr><tr><td> Alexa fluor 488 capra anti-topo IgG2 anticorpi b </td><td> Invitrogen </td><td> A21141 </td><td> Rileva anticorpi β tubulina </td></tr><tr><td> Micro teflon spatola </td><td> VWR </td><td> 57949-033 </td><td> Gel di collagene rilascio da ben </td></tr></tbody></table>

dissezione e cultura della gangliari chick statoacoustic espianti e del midollo spinale in gel di collagene per saggi crescita dei neuriti

Dissection and Culture of Chick Statoacoustic Ganglion and Spinal Cord Explants in Collagen Gels for Neurite Outgrowth Assays

Gli organi sensoriali dell&#39;orecchio interno di pollo sono innervate dai processi periferici del ganglio statoacoustic (SAG) neuroni. Innervazione organo sensoriale dipende da una combinazione di segnali guida degli assoni 1 e fattori di sopravvivenza 2 situata lungo la traiettoria degli assoni in crescita e / o all&#39;interno degli stessi obiettivi degli organi sensoriali. Per esempio, l&#39;interferenza funzionale con un percorso classico di guida degli assoni segnalazione, semaforina-Neuropilin, generato misrouting di assoni otic 3. Inoltre, diversi fattori di crescita espresse negli obiettivi sensoriali dell&#39;orecchio interno, compresi neurotrofina-3 (NT-3) e del fattore neurotrofico cervello derivato (BDNF), sono stati manipolati in animali transgenici, ancora una volta porta a misrouting di assoni SAG 4. Queste stesse molecole promuovere sia la sopravvivenza e la crescita dei neuriti dei neuroni SAG pulcino in vitro 5,6. Qui, descriviamo e dimostrare il metodo in vitro stiamo ucantare per testare la reattività dei neuriti SAG pulcino alle proteine ​​solubili, tra cui morfogeni noto come il Wnts, così come fattori di crescita che sono importanti per la promozione dei neuriti escrescenza SAG e la sopravvivenza dei neuroni. Usando questo sistema modello, speriamo di trarre conclusioni circa gli effetti che ligandi secreto può esercitare sulla sopravvivenza dei neuroni e SAG crescita dei neuriti. Espianti SAG sono sezionato il giorno embrionale 4 (E4) e coltivate in gel tridimensionale di collagene sotto siero senza condizioni per 24 ore. In primo luogo, la reattività dei neuriti è testato da espianti coltura integrata con proteine ​​di media. Poi, per chiedere se fonti puntuali di ligandi secreto può avere effetti direzionali sulla crescita dei neuriti, gli espianti sono co-coltura con le proteine ​​rivestite perline e analizzati per la capacità del cordone di promuovere a livello locale o inibire escrescenza. Abbiamo anche una dimostrazione della dissezione (modificato protocollo 7) e la cultura della E6 espianti midollo spinale. Noiabitualmente uso espianti midollo spinale per confermare bioattività delle proteine ​​e proteine-impregnati perline, e per verificare le specie reattività crociata con i tessuti pulcino, alle condizioni stessa cultura espianti SAG. Questi test in vitro sono utili per lo screening rapido per le molecole che esercitano trofico (sopravvivenza) o tropico (direzionale) effetti sui neuroni SAG, soprattutto prima di effettuare studi in vivo. Inoltre, questo metodo permette la sperimentazione di singole molecole sotto siero senza condizioni, con alta sopravvivenza dei neuroni 8.

Dimostriamo come sezionare e cultura pulcino ganglio statoacoustic E4 ed E6 espianti midollo spinale. Espianti sono coltivate sotto siero senza condizioni in gel di collagene 3D per 24 ore. Reattività dei neuriti è testato con fattore di crescita integrata medie e con le proteine ​​rivestite perline.

Dissezione e Cultura della gangliari Chick Statoacoustic Espianti e del midollo spinale in gel di collagene per saggi crescita dei neuriti

Gli organi sensoriali dell'orecchio interno del pollo sono innervati dai processi periferici dei neuroni del ganglio statoacustico (SAG). L'innervazione degli organi sensoriali ...

L'obiettivo generale del seguente esperimento è valutare la crescita dei neuriti nei neuroni del ganglio statoacustico coltivati in vitro quando diversi fattori di crescita vengono aggiunti al mezzo di coltura. Questo viene ottenuto innanzitutto mediante la dissezione del ganglio statoacustico e dei midolli spinali di controllo dall'embrione, al fine di creare X espianti per la coltura. Come secondo passaggio, gli X espianti vengono posizionati nel collagene, in presenza di proteine solubili per testare la crescita complessiva oppure di microsfere rivestite di proteine per testare la crescita direzionale.Successivamente, X espianti vengono marcati con anticorpi anti-tubulina beta e analizzati mediante microscopio confocale. Al fine di visualizzare i neuriti che emergono dal ganglio, si ottengono risultati che mostrano gli effetti che i ligandi secreti possono esercitare sulla sopravvivenza neuronale e sulla crescita dei neuriti. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo della ricerca uditiva, come ad esempio quali molecole siano importanti per la sopravvivenza dei neuroni otici e per il guidaggio assonale mentre gli organi sensoriali vengono innerv

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Questo video viene illustrato come visualizzare i percorsi assonale di gruppi geneticamente definita di neuroni nel midollo spinale embrionale pulcino...

Decifrare Percorsi assonale di gruppi geneticamente definito di neuroni nel tubo neurale Chick Utilizzando In ovo Elettroporazione

Questo test valuta la capacità di una molecola di segnalazione, qui proteina morfogenetica dell'osso 7 (BMP7), di riorientare gli assoni commissurali. Un espianto di midollo embrionale dorsale spinale è colta adiacente a un aggregato di cellule secernenti COS i fattori di crescita candidato. Riorientato assoni commissurali crescita all'interno del espianto sono visualizzati mediante immunoistochimica.

Capacità di analizzare il diffusibili molecole di segnalazione per l&#39;orientamento embrionali assoni spinali commissurali

Espianti dal sistema dopaminergico mesencefalo e striato sono utilizzati in un saggio per la matrice di...

Dissezione e Cultura del mouse dopaminergici e striatali Espianti di saggi di collagene matrice tridimensionale

Questo video mostra il processo per isolare gli espianti di ganglio spirale dall'orecchio interno e co-coltivarli con l'organo di Corti su un array multielettrodo. I gangli spirale vengono accuratamente estratti e sezionati in sezioni di tessuto più piccole o espianti. Questi espianti vengono coltivati sull'area attiva dell'array multielettrodo per promuovere la crescita del processo neuronale.

Coltura di espianti di neuroni gangliari a spirale murina su array multielettrodi

Questo video dimostra la costruzione di un sistema di coltura cellulare a tre compartimenti utilizzando collagene e grasso non reattivo. Questo sistema viene utilizzato per osservare le interazioni tra le cellule di glioma e gli assoni in tempo reale.

Preparazione di piastre di coltura compartimentate rivestite di collagene per colture cellulari neuronali

Questo video mostra il modello di cocoltura di un espiante di ganglio della radice dorsale e cellule di Schwann. In condizioni di cocoltura, l'acido ascorbico promuove la differenziazione delle cellule di Schwann in forme mielinizzanti. Le cellule mielinizzanti di Schwann avvolgono gli assoni più volte per creare una guaina mielinica, essenziale per la funzione nervosa.

Co-coltura di un espiante di ganglio della radice dorsale con cellule di Schwann per la mielinizzazione dei neuroni

Qui descriviamo una delle cellule di Schwann (SC) saggio transizione, in cui SC sono in grado di sviluppare lungo gli assoni si estendono.

Analizzando lo sviluppo delle cellule di Schwann Murine lungo gli assoni in crescita

Modelli di coltura cellulare forniscono un controllo dettagliato sulle condizioni ambientali e quindi forniscono una potente piattaforma per chiarire numerosi aspetti della biologia delle cellule neuronali. Descriviamo un metodo rapido, economico e affidabile per isolare, dissociare, e la cultura neuroni sensoriali da embrioni di pollo. Sono forniti anche i dettagli di preparazione substrati e immunocitochimica.

Isolamento e Cultura della dissociato neuroni sensoriali da embrioni di gallina

Presentiamo un protocollo per la coltura di espianti di neuroni gangliari murini a spirale primaria su array multi-elettrodi per studiare i profili di risposta neuronale e ottimizzare i parametri di stimolazione. Tali studi mirano a migliorare l'interfaccia neurone-elettrodo degli impianti cocleari a vantaggio dell'udito nei pazienti e del consumo energetico del dispositivo.

Ganglio spirale Neuron Espianto cultura e Elettrofisiologia su Multi Electrode Array

I gangli ciliari (CG) fanno parte del sistema nervoso parasimpatico. Le colture neuronali dei neuroni CG del pulcino hanno dimostrato di essere modelli cellulari efficaci nello studio delle interazioni nervose del nervo. Descriviamo un protocollo dettagliato per la dissezione, la dissociazione e la cultura in vitro dei neuroni CG da embrioni di pulcino.

Isolamento e cultura dei neuroni del Ganglione Ciliario

Nel sistema di cocoltura dei gangli della radice dorsale e delle cellule di Schwann, può essere studiata la mielinizzazione del sistema nervoso periferico. Questo modello offre opportunità sperimentali per osservare e quantificare la mielinizzazione periferica e per studiare gli effetti dei composti di interesse sulla guaina mielinica.

Mielinizzazione in vitro di assoni periferici in una cocoltura di espianti di ganglio di radice dorsale di ratto e cellule di Schwann

Impara a dissezionare e coltivare gangli statoacustici e midollo spinale di pollo in gel di collagene 3D per studiare la crescita dei neuriti in risposta a fattori di crescita.

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