Name: Ex Vivo Modello organotipiche corneale di acuta epiteliali Herpes simplex virus di tipo I Infezione (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 55 s
Description: Scopri la coltura ex vivo di cornee umane e di coniglio per studiare l'infezione da herpes simplex virus di tipo I. Questo modello organotipico offre un'alternativa rilevante alle colture cellulari tradizionali per la ricerca virologica.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Il sostegno della Banca degli Occhi Lions del Delaware Valley era preziosa per questo lavoro. Anticorpo di topo primario monoclonale contro ICP8 era un gentile dono del Dr. David Knipe (Harvard Medical School). Ringraziamo anche il dottor Stephen Jennings (Drexel University College of Medicine) e il Dr. Peter Laibson (Wills Eye Institute) per le discussioni utili e competenze.

Tutti i reagenti sono stati acquistati ed attrezzature sterili o sono stati sterilizzati prima della procedura. In questo articolo viene descritta la procedura di impostazione del modello ex vivo inizia con un pre-enucleato occhi. Nei nostri esperimenti, usiamo freschi bulbi oculari interi da giovani (8-12 settimane) conigli albini (Pel-Freez Biologicals, Rogers, AR). Inoltre, utilizziamo cornee umane ottenute dalla banca degli occhi locale. Se si esegue l&#39;enucleazione te stesso, fare attenzione a non danneggiare la cornea o il limbo nel corso della procedura. Protocolli di enucleazione Coniglio può essere trovato altrove 2. Parte 1: L&#39;escissione del pulsante corneosclerale <ol><li> Bagnare una stretta striscia di garza con PBS e avvolgerlo intorno al bulbo oculare per facilitare la presa durante il procedimento. </li><li> Utilizzare un bisturi affilato per fare una tangenziale incisione nella sclera, circa 0,5 cm di distanza dal limbus. </li><li> Paio di forbici affilate per estendere l&#39;incisione e completamente delle accise, la cpulsante orneoscleral. </li><li> Una volta che il pulsante corneosclerale è isolato, prendere in giro via il diaframma mentre si tiene il cerchio sclerale con una pinza. Evitare di danneggiare l&#39;endotelio o esercitare sollecitazioni eccessive sulla cornea. </li></ol> Parte 2: Introduzione di Cornea in Cultura organotipiche <ol><li> Cornee espiantate vengono coltivate in Medium minimo (MEM) supplementato con amminoacidi non essenziali (1X), L-glutammina (2 mM), penicillina (200 U / ml) e streptomicina (200 mcg / ml). Un agente antifungino, come amfotericina, possono anche essere aggiunti, se necessario. </li><li> Preparare una soluzione di 1% agarosio in mezzo di coltura e tenerlo pronto a 55 ° C. </li><li> Sciacquare la cornea in PBS sterile contenente penicillina (200 U / ml) e streptomicina (200 mcg / ml). </li><li> Posizionare il lato epiteliale della cornea giù in un pozzetto di una piastra sterile posto. </li><li> Aggiungere l&#39;agarosio mezzo contenente la concavità endoteliale della cornea quanto basta perriempirlo completamente. Permettono ~ 1 min per l&#39;agarosio a solidificare. </li><li> Posizionare la cornea con il terreno di coltura di supporto gel lato epiteliale scaffold su in un piatto di coltura tissutale 35 millimetri e aggiungere per coprire la superficie epiteliale. </li><li> La cornea può essere coltivato in questo modo per più di una settimana, con cambiamenti medi ogni 48 ore. </li></ol> Parte 3: L&#39;infezione da HSV-1 e il trattamento con farmaci sperimentali <ol><li> Aggiungere 1 ml di terreno contenente la quantità desiderata di virus in un piatto di coltura tissutale 35 millimetri. Di solito infettare con 1x10 4 PFU del ceppo KOS HSV-1 per cornea. I nostri titoli azionari sono determinati con saggi di placca sulla CV-1 monostrati. </li><li> Posizionare la cornea con il lato agarosio scaffold epiteliale giù nel terreno contenente virus. </li><li> Posizionare la cornea in una coltura tissutale incubatore di infettare per 1 ora con dondolo intermittente ogni 10-15 min. </li><li> Dopo 1 ora, aspirare il virus-conteNing medie e sciacquare 2-3 volte con PBS per rimuovere eventuali particelle residue virali. </li><li> Posizionare la cornea nella sua posizione precedente e aggiungere mezzo fresco coltura per coprire la superficie epiteliale. </li><li> Trattamenti sperimentali può essere iniziata prima o dopo l&#39;infezione, a seconda della natura dell&#39;esperimento. </li><li> Terreno di coltura viene cambiato ogni ora 48. </li></ol> Parte 4: Raccolta dei campioni <ol class="lalpha"><li> Media per l&#39;analisi della placca dosaggio. Miscelare il mezzo di bene e utilizzarlo immediatamente per un saggio di placca o conservare a -80 ° C per un uso successivo, se il prelievo dei campioni in momenti diversi. </li><li> DNA, RNA, proteine, o cellule di epitelio corneale <ol><li> Rimuovere il patibolo agarosio e sciacquare bene la cornea con PBS. </li><li> Accise l&#39;anello di tessuto sclerale dalla cornea per garantire che solo i materiali corneale viene raccolto. </li><li> Ucantare un bisturi, raschiare le cellule epiteliali corneali nel buffer appropriata, a seconda del tipo di materiale da isolare. Per l&#39;isolamento di DNA e RNA, si usa il Kit DNeasy Blood &amp; Tissue e il kit RNeasy Mini, rispettivamente (Qiagen, Hilden, Germania). Per la raccolta dei lisati proteici, usiamo tampone Laemmli. Per l&#39;analisi di citometria a flusso di cellule epiteliali corneali, si pre-incubare le cornee in una piccola quantità di tripsina per allentare le cellule, e quindi rimuoverli in tripsina con un bisturi. Poiché raschiare l&#39;epitelio corneale non produce la stessa quantità di tessuto, è importante comprendere controlli appropriati quando si analizzano i campioni. Usiamo rRNA 18S come una trascrizione di riferimento in RT-PCR, GAPDH come gene di riferimento in qPCRs, e nucleolina come controllo di carico per Western blot. </li></ol></li><li> I campioni di tessuto per immunoistochimica o immunofluorescenza <ol><li> Rimuovere il patibolo agarosio e sciacquare il maissincerarsi bene con PBS. </li><li> Seconda obiettivo sperimentale, utilizzare la cornea per fare un blocco di tessuto paraffina o un blocco di tessuto congelato, come mostrato nel video. Seguiamo le procedure standard per la preparazione sezioni di tessuto corneale. </li></ol></li></ol> Risultati rappresentativi La maggior parte dei metodi disponibili per studiare le cellule in coltura tissutale può essere facilmente adattato per l&#39;uso in cornee infettati con HSV-1 ex vivo. Visualizzati sono risultati rappresentativi per alcune delle più comuni tecniche applicabili allo studio HSV-1 - qPCR (Figura 1D), qRT-PCR (Figura 1B), Western blot (figura 1F), saggio di placca (Figura 1C), e tessuto immunofluorescenza (Figura 1E). <img src="/files/ftp_upload/3631/3631fig1.jpg" alt="Figura 1" /> Figura 1. Analisi di cornee infettati con HSV-1 ex vIvo. (A) Rappresentazione schematica del modello ex vivo di acuta corneale HSV-1. (BF) Analisi delle cornee infette con il metodo descritto in questo articolo video. Cornee espiantate coniglio sono stati infettati con 1x10 4 PFU / cornea del ceppo KOS HSV-1 e coltivate in presenza (PAA) o assenza (Mock) di acido fosfonoacetico (400 mcg / ml), noto inibitore della replicazione di HSV. (B) RNA totale è stato raccolto nei punti temporali indicati, e trascrizione virale è stata valutata mediante RT-PCR con primer per HSV-1 polimerasi. Primers contro 18S rRNA sono stati utilizzati come riferimento. n = 3. Le barre di errore indicano ± SEM. (C) Il terreno di coltura è stato raccolto in 48 hpi, e la produzione di particelle infettive è stata valutata mediante saggio di placca su monostrati CV-1. (D) DNA totale è stato raccolto in 48 hpi, e la replicazione del genoma virale è stata valutata in un saggio qPCR con primer per il genoma HSV-1. Premporizzatori contro GAPDH sono stati utilizzati come riferimento. n = 3. Le barre di errore indicano ± SEM. (E) Mock-trattati cornee sono stati rapidamente congelati a 48 hpi, sezionato, e analizzati mediante immunofluorescenza indiretta per la presenza di una proteina virale precoce (ICP8) entro l&#39;epitelio infetto. Nuclei sono contrastate con Höchst 33.258. (F) lisati proteici sono stati raccolti a 48 hpi, e l&#39;espressione di una proteina virale (ICP0) è stata valutata mediante Western blot. BCA saggio è stato utilizzato per garantire caricamento parità di campioni. HPI = ore post infezione.

<ol><li>Kaye, S., Choudhary, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Herpes+simplex+keratitis%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Retin.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Herpes simplex keratitis.</a> Prog. Retin. Eye Res. 25, 355-380 (2006).</li>
<li>Holmberg, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enucleation+of+exotic+pets%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Exotic+Pet+Medicine%22%5BJournal%5D)">Enucleation of exotic pets.</a> Journal of Exotic Pet Medicine. 16, 88-94 (2007).</li>
<li>Remeijer, L., Osterhaus, A., Verjans, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+herpes+simplex+virus+keratitis%3A+the+pathogenesis+revisited%5BTitle%5D)+AND+%22Ocul.+Immunol.+Inflamm%22%5BJournal%5D)">Human herpes simplex virus keratitis: the pathogenesis revisited.</a> Ocul. Immunol. Inflamm. 12, 255-285 (2004).</li>
<li>Foreman, D. M., Pancholi, S., Jarvis-Evans, J., McLeod, D., Boulton, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+organ+culture+model+for+assessing+the+effects+of+growth+factors+on+corneal+re-epithelialization%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">A simple organ culture model for assessing the effects of growth factors on corneal re-epithelialization.</a> Exp. Eye Res. 62, 555-564 (1996).</li>
<li>Xu, K. P., Li, X. F., Yu, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Corneal+organ+culture+model+for+assessing+epithelial+responses+to+surfactants%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Corneal organ culture model for assessing epithelial responses to surfactants.</a> Toxicol. Sci. 58, 306-314 (2000).</li>
<li>Klausner, E. A., Peer, D., Chapman, R. L., Multack, R. F., Andurkar, S. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Corneal+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Control+Release%22%5BJournal%5D)">Corneal gene therapy.</a> J. Control Release. 124, 107-133 (2007).</li>
<li>Halford, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ICP0+antagonizes+Stat+1-dependent+repression+of+herpes+simplex+virus%3A+implications+for+the+regulation+of+viral+latency%5BTitle%5D)+AND+%22Virol.+J%22%5BJournal%5D)">ICP0 antagonizes Stat 1-dependent repression of herpes simplex virus: implications for the regulation of viral latency.</a> Virol. J. 3, 44(2006).</li>
<li>Bhattacharjee, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effective+treatment+of+ocular+HSK+with+a+human+apolipoprotein+E+mimetic+peptide+in+a+mouse+eye+model%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis.+Sci%22%5BJournal%5D)">Effective treatment of ocular HSK with a human apolipoprotein E mimetic peptide in a mouse eye model.</a> Invest Ophthalmol Vis. Sci. 49, 4263-4268 (2008).</li>
<li>Novitskaya, E. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Difficulties+imaging+herpes+simplex+keratitis+with+fluorescein+isothiocynate-labeled+anti-HSV-1+antibodies+in+an+ex+vivo+model%5BTitle%5D)+AND+%22Cornea%22%5BJournal%5D)">Difficulties imaging herpes simplex keratitis with fluorescein isothiocynate-labeled anti-HSV-1 antibodies in an ex vivo model.</a> Cornea. 28, 421-425 (2009).</li>
<li>Sharma, A., Shimeld, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+immunofluorescence+to+diagnose+herpes+simplex+virus+keratitis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">In vivo immunofluorescence to diagnose herpes simplex virus keratitis in mice.</a> Br. J. Ophthalmol. 81, 785-788 (1997).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

In questo video articolo si descrive un metodo per lo studio acuta corneale HSV-1 in un modello ex vivo. Questo modello è un passo utile tra la in vitro e in vivo, perché permette di convalida fisiologicamente accurata dei risultati di coltura cellulare e, quindi, limita la quantità di sperimentazione animale che deve essere eseguita. Inoltre, il modello ex vivo offre un&#39;opportunità unica e preziosa per lo studio epiteliale infezione da herpes in intatti cornee umane. Rip...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reagenti / Materiali di consumo </td><td> Azienda </td><td> Catalogo # </td></tr><tr><td> Medium minimo (MEM) </td><td> Mediatech </td><td> 10-010-CV </td></tr><tr><td> Aminoacidi non essenziali (soluzione 100x) </td><td> Mediatech </td><td> 25-025-CI </td></tr><tr><td> L-Glutammina </td><td> Mediatech </td><td> 25-005-CI </td></tr><tr><td> Penicillina G sale di sodio </td><td> Sigma </td><td> P3032 </td></tr><tr><td> Streptomicina solfato di sale </td><td> Sigma </td><td> S9137 </td></tr><tr><td> Agarosio </td><td> Invitrogen </td><td> 15510-027 </td></tr><tr><td> Soluzione tampone fosfato (PBS) </td><td> Preparato in laboratorio </td><td> N / A </td></tr><tr><td> Tripsina EDTA (1x) &lt;/ Td&gt; <td> Mediatech </td><td> 25-053-CI </td></tr><tr><td> Sangue DNeasy e kit di tessuti </td><td> QIAGEN </td><td> 69504 </td></tr><tr><td> RNeasy Mini Kit </td><td> QIAGEN </td><td> 74104 </td></tr><tr><td> Laemmli buffer </td><td> Preparato in laboratorio </td><td> N / A </td></tr><tr><td> Temperatura ottimale di taglio (OCT) Composto </td><td> Tissue-Tek </td><td> 4583 </td></tr><tr><td> Occhi coniglio intero (Young) </td><td> Pel-Freez </td><td> 41211-2 </td></tr><tr><td> Le cornee umane e Occhi Whole </td><td> Eye Banca Locale </td><td> N / A </td></tr><tr><td> 12 Beh porcellana Piastra Spot </td><td> Lab di Avogadro di alimentazione </td><td> 1877 </td></tr><tr><td> 35 millimetri tessuto piatto Cultura </td><td> Falco </td><td> 353001 </td></tr><tr><td> 6 BeneColture Cellulari Piastra </td><td> Greiner Bio-One </td><td> 657160 </td></tr><tr><td> Cryomold Intermedio </td><td> Tissue-Tek </td><td> 4566 </td></tr></tbody></table>

ex vivo modello organotipiche corneale di acuta epiteliali herpes simplex virus di tipo i infezione

Ex Vivo Organotypic Corneal Model of Acute Epithelial Herpes Simplex Virus Type I Infection

Cheratite da herpes è una delle patologie più gravi associati al virus herpes simplex di tipo 1 (HSV-1). Cheratite Herpes è attualmente la principale causa di cecità sia cornea-derivata e associata ad infezione nel mondo sviluppato. Presentazione tipica di cheratite da herpes include infezione dell&#39;epitelio corneale e talvolta più profonda stroma corneale e endotelio, portando a tali patologie corneali permanenti come cicatrici, assottigliamento e opacità 1. Corneale HSV-1 infezione è tradizionalmente studiato in due tipi di modelli sperimentali. Il modello in vitro, in cui vengono coltivate infettato monostrati di cellule epiteliali corneali in una capsula di Petri, offre semplicità, elevato livello di replicabilità, esperimenti veloci e costi relativamente bassi. D&#39;altra parte, il modello in vivo, in cui vengono inoculati animali come conigli o topi direttamente nella cornea, offre una fisiologica altamente sofisticatosistema, ma ha costi più elevati, più lunghi esperimenti, per la cura degli animali necessari, e un maggior grado di variabilità. In questo articolo video, forniamo una dimostrazione dettagliata di un nuovo modello ex vivo di corneale HSV-1, che unisce i punti di forza sia in vitro e in vivo. Il modello ex vivo utilizza cornee intatte organotypically mantenute in coltura e infettati con HSV-1. L&#39;uso del modello ex vivo permette conclusioni altamente fisiologicamente basati, tuttavia è piuttosto costoso e richiede impegno di tempo paragonabile a quella del modello in vitro.

In questo video articolo si descrive l&#39;uso di una nuova<em&gt; Ex vivo</emModello&gt; di infezione acuta da herpes simplex virus di tipo I infezione corneale epiteliale.

Ex Vivo Modello organotipiche corneale di acuta epiteliali Herpes simplex virus di tipo I Infezione

La cheratite erpetica è una delle patologie più gravi associate al virus herpes simplex di tipo 1 (HSV-1). La cheratite erpetica è attualmente la principale...

Sono Jane Clifford, economista. Sono professoressa e presidente di biochimica e biologia molecolare presso il College of Medicine della Drexel University, e il mio nome è Ola Iv e sono uno studente in medicina e dottorato di ricerca nel laboratorio della dottoressa Clifford. Il video che Oli e io abbiamo preparato per voi illustra la coltura ex vivo di cornee ottenute da conigli e da donatori umani.Abbiamo utilizzato queste cornee per lo studio dell'infezione da virus dell'herpes e sono certamente applicabili ad altre malattie della cornea per lo studio di altre patologie corneali; si tratta di un modello ex vivo particolarmente rilevante rispetto alle cellule in coltura monostrato. La cheratite erpetica è una delle patologie più gravi associate al virus dell'herpes simplex di tipo 1 ed è attualmente la principale causa di cecità derivante da infezione corneale nei paesi sviluppati.La cheratite erpetica è tradizionalmente studiata in due tipi di modelli sperimentali. Il modello in vitro, in cui monostrati coltivati di cellule epiteliali corneali vengono infettati in una piastra di Petri, offre semplicità, un elevato grado di riproducibilità, esperimenti rapidi e costi relativamente contenuti. D'altro canto, il modello in vivo della cheratite erpetica, in cui animali come conigli o topi vengono inoculati direttamente nella cornea, offre un sistema fisiologico altamente sofisticato, ma comporta costi maggiori, esperimenti più lunghi, necessità di cure agli animali e un grado maggiore di variabilità.In questo articolo video, forniamo una dimostrazione dettagliata di un nuovo modello ex vivo di infezione acuta da HSV di tipo uno nell'epitelio corneale, che combina i punti di forza sia dei modelli in vitro che di quelli in vivo. Il modello ex vivo utilizza cornee intatte, organi generalmente mantenuti in coltura e infettati con HSV. L'uso del modello ex vivo permette di trarre conclusioni fortemente basate su condizioni fisiologiche, pur essendo piuttosto economico e richiedendo un impegno STEM paragonabile a quello del modello in vitro.Preparare quanto segue prima di iniziare la procedura: piastra di Petri, soluzione salina tamponata al fosfato, mezzo per colture corneali e per scaffold, piastra a pozzetti, striscia di garza, bulbo oculare fresco, bisturi, pinze e forbici affilate. Inumidire una striscia stretta di garza con PBS e avvolgerla intorno al bulbo oculare per tenerlo saldamente. Durante la procedura, utilizzare un bisturi affilato per effettuare un'incisione tangenziale nella sclera a circa mezzo centimetro dal limbus. Usare le forbici per escindere completamente il tasto corneo-sclerale. Man mano che l'incisione viene estesa, la pressione all'interno del bulbo oculare diminuirà, rendendo difficile tenere e manipolare il tessuto.Per questo motivo, si raccomanda di utilizzare in questo passaggio un paio di forbici affidabili e ben affilate. Una volta isolato il tasto corneo-sclerale, separare delicatamente l'iride tenendo il margine sclerale con la pinzetta. Evitare di danneggiare l'endotelio o di esercitare uno stress eccessivo sulla cornea.Preparare una soluzione al 1% di agarosio nel mezzo e tenerla pronta. A 55 gradi Celsius, risciacquare accuratamente la cornea in PBS sterile contenente penicillina e streptomicina. Posizionare la cornea con il lato epiteliale verso il basso nel pozzetto di una Spotlight sterile.Aggiungere l'agarosio contenente il mezzo nella concavità endoteliale della cornea. In quantità sufficiente a riempirla completamente. Attendere circa un minuto per consentire all'agarosio di solidificare.Posizionare la cornea con il supporto in agros con il lato epiteliale rivolto verso l'alto in una piastra per coltura cellulare e aggiungere mezzo MEM integrato per coprire la superficie epiteliale. La cornea può essere coltivata in questo modo per oltre una settimana, con cambi del mezzo ogni 48 ore. Aggiungere un millilitro di mezzo contenente la quantità desiderata di virus in una piastra per coltura cellulare.Posizionare la cornea con il lato epiteliale del supporto di agar verso il basso nel mezzo contenente il virus. Collocare la cornea nell'incubatore per colture cellulari per infettarla per un'ora, agitando periodicamente ogni 10-15 minuti. Dopo un'ora, aspirare il mezzo contenente il virus e risciacquare da due a tre volte con PBS per rimuovere eventuali particelle virali residue.Quando si esegue il risciacquo con PBS, prestare attenzione a non staccare la cornea dallo scaffold agro. Aggiungere mezzo fresco per coprire la superficie epiteliale. I trattamenti sperimentali possono essere iniziati prima o dopo l'infezione, a seconda della natura dell'esperimento.Il mezzo di coltura viene cambiato ogni 48 ore. Mescolare bene il mezzo e utilizzarlo immediatamente per un saggio di placa oppure conservarlo a meno 80 gradi Celsius per un uso successivo. Se si raccolgono campioni in diversi punti temporali, risciacquare bene la cornea con PBS.Rimuovere l'innesco agro, staccare l'anello di tessuto sclerale dalla cornea per garantire che venga raccolto solo materiale epiteliale corneale. Utilizzando un bisturi, raschiare le cellule epiteliali corneali nel tampone appropriato, in base al tipo di materiale da isolare. La rimozione del margine sclerale permette alla stroma corneale di gonfiarsi rapidamente assorbendo acqua.Poiché il rigonfiamento potrebbe complicare il prelievo, raccomandiamo di eseguire rapidamente questa fase, risciacquando la piastra di Petri per assicurarsi che l'intero campione sia stato raccolto. Rimuovere l'impalcatura di agarosio e risciacquare accuratamente la cornea con PBS.Utilizzare la cornea per preparare un blocco di tessuto in paraffina o un blocco di tessuto congelato, come illustrato qui, a seconda dell'obiettivo sperimentale. Includere la cornea in un composto ottimale per la temperatura di taglio all'interno di uno stampo per campioni. Congelare rapidamente la cornea in un bagno di etanolo e ghiaccio secco. Quanto mostrato in questo video comprende la preparazione delle cornee, la dissezione della cornea, il posizionamento in coltura ex vivo e l'infezione delle cornee con il virus dell'herpes.Questa tecnica ha fornito un modello che si è rivelato molto utile per lo studio dell'infezione da virus herpes in espianto, e speriamo che possa essere utile anche ad altri per i loro esperimenti con cellule corneali.

ex-vivo-organotypic-corneal-model-acute-epithelial-herpes-simplex

Research

Ricerca

JoVE Journal

Neuroscience

Neuroscienze

La maggior parte degli studi sulla malattia erpetica corneale utilizzare un modello di infezione primaria. Tuttavia, l'infezione primaria con HSV-1 non tipicamente portare a malattie umane. Qui si descrive un modello ricorrente della malattia erpetica corneale, che più da vicino imita malattia umana.

Ricorrente cheratite erpetica Stromal in Mouse, un modello per lo studio HSK umano

Questo video descrive un protocollo per impostare un modello ex vivo per la cheratite batterica utilizzando un bottone corneosclerale sezionato dall'occhio suino. I batteri inoculati attraversano le incisioni epiteliali corneali per invadere lo stroma sottostante e stabilire un'infezione all'interno dei tessuti corneali che imita l'infezione in vivo.

Modello di cornea suina ex vivo di cheratite batterica: una tecnica per stabilire l'infezione batterica nelle cellule epiteliali corneali

Questo video mostra il metodo per eseguire un test della placca utilizzando un virus ottenuto da cornea suina infetta. La cornea suina viene utilizzata per testare l'efficacia antivirale di farmaci sperimentali.

Determinazione dell'efficacia antivirale di farmaci sperimentali attraverso un test a placca

Abbiamo stabilito un protocollo di ibridazione fluorescente in situ per la rilevazione di un genoma del virus DNA persistente all'interno di sezioni tissutali di modelli animali. Questo protocollo permette studiando processo di infezione da codetection del genoma virale, i suoi prodotti di RNA e proteine ​​virali o cellulari all'interno delle cellule singole.

La rilevazione del genoma e Trascrizioni di un virus DNA persistente in tessuti neuronali da fluorescente In situ Ibridazione In combinazione con Immunostaining

La pelle è un tessuto bersaglio del virus dell'herpes simplex umano di tipo 1 (HSV-1). Per esplorare la via di invasione dell'HSV-1 nei tessuti, abbiamo stabilito un modello di infezione ex vivo di fogli epidermici murini che rappresentano lo strato più esterno della pelle.

Ex Vivo infezione di Murine epidermide con Herpes Simplex Virus di tipo 1

Un protocollo per un ex vivo modello di cultura di organo corneale utile per studi di guarigione della ferita è descritto. Questo sistema modello può essere utilizzato per valutare gli effetti degli agenti per promuovere la guarigione rigenerativa o tossicità della droga in un ambiente organizzato di pluricellulare 3D.

Ex Vivo modello di cultura di organo corneale per la guarigione delle ferite studi

Questo articolo descrive un protocollo passo-passo per impostare un modello suino ex vivo di cheratite batterica. Pseudomonas aeruginosa è usato come organismo prototipico. Questo modello innovativo imita l'infezione in vivo in quanto la proliferazione batterica dipende dalla capacità del batterio di danneggiare il tessuto corneale.

Stabilire un modello di Cornea ex vivo suina per lo studio dei trattamenti farmacologici contro la cheratite batterica

Descriviamo l'uso di una cornea suina per testare l'efficacia antivirale dei farmaci sperimentali.

Espianto di tessuto corneale suino per studiare l'efficacia degli antivirali Herpes Simplex Virus-1

Qui, viene descritto un protocollo per la creazione di una ferita da abrasione epiteliale corneale centrale nel topo usando una trefina e uno spud smussato della mazza da golf. Questo modello di guarigione delle ferite corneali è altamente riproducibile e viene ora utilizzato per valutare la guarigione delle ferite corneali compromesse nel contesto delle malattie.

Un modello di abrasione epiteliale per lo studio della guarigione delle ferite corneali

Qui, vengono sviluppati modelli animali basati su topo e coniglio per il danno meccanico e chimico dell'epitelio corneale per lo screening di nuove terapie e del meccanismo sottostante.

Modelli animali ex vivo e in vivo per lesioni meccaniche e chimiche dell'epitelio corneale

Abbiamo sviluppato un modello di ratto di grave infiammazione corneale attraverso il curettage dell'epitelio corneale combinato con suture corneali. Lo studio ha valutato i modelli di infiammazione corneale, la proliferazione epiteliale e i cambiamenti nelle cellule staminali limbari in condizioni infiammatorie.

Definizione di un modello di grave infiammazione corneale nei ratti basato sul curettage dell'epitelio corneale combinato con suture corneali

Scopri la coltura ex vivo di cornee umane e di coniglio per studiare l'infezione da herpes simplex virus di tipo I. Questo modello organotipico offre un'alternativa rilevante alle colture cellulari tradizionali per la ricerca virologica.

Ex Vivo Modello organotipiche corneale di acuta epiteliali Herpes simplex virus di tipo I Infezione

Esplora altri video