8 dicembre 2012
L'auto-somministrazione per via endovenosa (IVSA) paradigma è considerato il gold standard nella esaminando le proprietà di rinforzo delle sostanze d'abuso nei roditori. Questo manoscritto descrive le procedure sperimentali e le tecniche chirurgiche necessarie per ottenere dati affidabili IVSA. In particolare, l'impianto del catetere meticolosa e la manutenzione sono evidenziati.
Ciao, mi chiamo Elizabeth Kotick e sono qui dal laboratorio della dottoressa Katherine Gill dell'unità delle dipendenze del McGill University Health Center. Oggi vi mostrerò come eseguire l'intervento di cateterizzazione necessario per condurre studi di auto-somministrazione endovenosa. Vi mostrerò come inserire il catetere e alcuni consigli per mantenere la pervietà del catetere.
Durante le sessioni di auto-somministrazione endovenosa di nicotina, gli animali vengono collegati al Tai mediante tubi di plastica e le infusioni di nicotina vengono somministrate tramite pompe per infusione collegate. Le scatole operante sono state acquistate da Med Associates. Ogni scatola è dotata di due leve per topo ad alta sensibilità.
Prima dell'intervento chirurgico per inserire il catetere nella vena, è necessario preparare alcuni strumenti. Un ago da 20 gauge deve essere modificato per far scorrere il tubo all'interno della vena. Rasare circa due centimetri della parte superiore del fusto dell'ago, creando un canale che verrà utilizzato per guidare il tubo del catetere nella vena.
Successivamente, preparare le siringhe per il lavaggio e il controllo del catetere. Un tubo lungo 12 centimetri è collegato a un'estremità all'ago da 26 gauge della siringa, mentre l'altra estremità è distesa su un ago da 23 gauge. Per facilitare il fissaggio del tubo al cannula del catetere, saranno necessarie due siringhe di questo tipo: una riempita con soluzione di T carcin eparinizzata, l'altra con soluzione salina.
Infine, preparare il tappo per la cannula del catetere. La cannula del catetere deve essere chiusa con un tappo per evitare l'ingresso di detriti. Questi tappi vengono realizzati allungando un tubo di plastica su aghi da 23 gauge.
Il tubicino viene tagliato a un centimetro dalla punta dell'ago e l'estremità aperta viene fusa per sigillare il tubicino; quindi si spinge soluzione salina attraverso l'ago per verificare che non vi siano perdite nei tappi. I cateteri per topo sono stati ottenuti da Cam Cs nel Regno Unito. Rimuovere il tubicino in eccesso dal catetere in modo che rimanga 1,2 centimetri dall'estremità della bulbo del catetere.
Successivamente, collegare la siringa contenente soluzione salina al cannula metallica esterna del catetere ed eseguire un lavaggio per verificare la presenza di perdite. I topi vengono anestetizzati mediante gas isoflurano miscelato con ossigeno e mantenuti sotto anestesia per tutta la durata dell'intervento chirurgico. Mediante un tubo endotracheale, i livelli sia di ossigeno che di isoflurano vengono impostati in base al peso corporeo dell'animale e aggiustati secondo necessità durante l'intervento; assicurarsi che l'animale sia adeguatamente anestetizzato pizzicando le zampe posteriori con la pinzetta e monitorare il topo per tutta la durata dell'intervento per rilevare segni di difficoltà respiratorie e valutare la profondità dell'anestesia.
Dato che l'intervento chirurgico dura tra i 20 e i 30 minuti, applicare un lubrificante oculare su entrambi gli occhi. Il topo viene rasato prima dell'intervento chirurgico. Preparare uno spazio per la base del catetere sul dorso dell'animale.
Sollevare delicatamente la pelle sul dorso dell'animale ed effettuare una piccola incisione longitudinale a livello inter-scapolare, lunga circa due centimetri. L'incisione deve partire dal punto centrale del dorso ed estendersi appena al di sotto del collo. Allargare con forza il tessuto connettivo per creare spazio alla base del catetere e applicare soluzione salina sull'incisione.
Tirare delicatamente la pelle su entrambi i lati dell'incisione avvicinandola e girare l'animale. La vena tegolare destra si trova superficialmente sotto la pelle del collo ed è possibile esporla praticando un'incisione superficiale. Effettuare un taglio diagonale lungo circa uno o due centimetri, partendo dalla zona della clavicola destra e dirigendosi verso la mascella dell'animale.
Il tubo alla base del catetere deve essere fatto passare attraverso l'incisione ventrale del collo per renderlo accessibile all'inserimento nella vena. Guidare la pinzetta sotto la pelle delle spalle e attraversare il tessuto connettivo. Per raggiungere l'incisione dorsale, tirare il tubo attraverso la pelle fino all'apertura ventrale intorno al collo dell'animale.
Afferrare l'estremità del tubo con pinze emostatiche e lasciarla pinzata sul lato destro dell'animale. Applicare soluzione salina sull'incisione ed isolare la vena giugulare destra. Rimuovere con estrema delicatezza qualsiasi tessuto connettivo o adiposo che possa ostacolare la visuale, quindi individuare la vena.
Sollevare delicatamente la vena intorno alla parte superiore ed utilizzare la pinza curva per separare il tessuto adiposo e quello connettivo intorno e sotto la vena. Posizionare la pinza curva sotto la vena e aprirla con la mano libera. Far passare una barretta di plastica sterile sotto la vena.
Una volta sollevata la vena, rimuovere solo il grasso sufficiente per ottenere una visione chiara e ininterrotta della vena. A intervalli regolari, far cadere gocce di soluzione salina sulla vena esposta per mantenerla umida. Preparare dei nodi di sutura intorno alla vena in modo da poter fissare il tubo del catetere una volta inserito nella giugulare.
Suture sotto la vena alle due estremità e fate un nodo aperto molto allentato a ciascuna estremità. Fate passare il tubo del catetere attraverso il nodo superiore e fatelo passare sopra il filo di sutura, lasciando il resto oltre la spalla destra. Spingete la soluzione salina attraverso il catetere per appesantire il tubo e inserire il tubo del catetere nella vena giugulare.
L'ago modificato da 20 gauge viene utilizzato per perforare la vena, bagnare sia la vena che l'ago di inserzione con soluzione salina per ridurre l'attrito durante l'inserimento, tirare delicatamente indietro la barretta di plastica e inserire l'ago più vicino alla parte inferiore della vena. Giusto abbastanza da far entrare mezzo centimetro di ago. Far scivolare il tubo del catetere lungo l'ago e dentro la vena.
Non dovrebbe esserci resistenza. Una resistenza indicherebbe che ci si trova nel tessuto connettivo. Per accertarsi di essere all'interno della vena, provare ad aspirare tirando indietro lo stantuffo della siringa collegata al catetere per verificare se è possibile prelevare sangue.
Una volta posizionato il tubo, rimuovere l'ago e spingere la bolla del catetere fino al punto di inserimento. Fare il nodo inferiore e assicurarsi che il tubo del catetere sia ben aderente alla barra prima di fare il secondo nodo subito sopra la bolla. Questo garantirà il fissaggio del catetere in posizione.
Rimuovere la barretta e fare un secondo nodo a ciascuna estremità. Ripiegare il tubo del catetere e i fili di sutura sotto la pelle prima di eseguire la sutura. Utilizzare la pinza per arterie per guidare l'ago da sutura attraverso la pelle e chiudere l'incisione.
Il numero di punti varierà in base alla dimensione dell'incisione. Con l'animale in posizione prona, posizionare la base del catetere sul dorso dell'animale. Applicare soluzione salina sull'incisione e far scorrere la base del catetere sotto la pelle.
Assicurarsi che il tubo sia il meno possibile a loop e posizionato sotto la base per ridurre al minimo il rischio di perforazioni. Suturare la pelle intorno alla base del catetere. Il numero di punti di sutura dipenderà dalle dimensioni dell'incisione.
Di solito sono sufficienti tre o quattro punti di sutura. Assicurarsi che sia ancora possibile prelevare sangue dal catetere. Infine, sciacquare il catetere con la soluzione di teina eparinizzata per prevenire infezioni e la formazione di coaguli sanguigni.
Allentare il tubo collegato alla cannula del catetere. Successivamente, rimuovere il tubo di soluzione salina e sostituirlo rapidamente con il tubo della siringa contenente la soluzione eparinizzata T Carin. Sciacquare il catetere con 0,03-0,05 cc di soluzione.
Anche in questo caso, allentare il tubo collegato alla cannula. Afferrare il tappo del catetere con la pinza e, con un unico movimento, rimuovere il tubo dalla cannula e sostituirlo con il tappo del catetere. Questo passaggio deve essere eseguito rapidamente per impedire che il sangue risalga.
Avvitare il coperchio bianco del catetere, assicurandosi che sia ben fissato senza perforare la punta della cannula. Somministrare al topo iniezioni sottocutanee di analgesico e antibiotico. Iniettare l'analgesico ketoprofene su un lato a una dose di cinque milligrammi per chilogrammo e l'antibiotico amikacina sull'altro lato a una dose di 10 milligrammi per chilogrammo.
Dopo l'interruzione dell'anestesia, lasciare che il topo si riprenda in una gabbia pulita con facile accesso a cibo e acqua. Dati affidabili di auto-somministrazione endovenosa possono essere ottenuti seguendo le tecniche presentate in questo video. Tuttavia, è fondamentale mantenere la pervietà del catetere.
Questo si ottiene mediante un accurato posizionamento del catetere nell'atrio destro, il lavaggio quotidiano del catetere prima e dopo le sessioni operatorie e assicurandosi che la cannula del catetere sia sempre chiusa con un tappo per prevenire l'ingresso di detriti.
In questo articolo viene descritto il paradigma dell'autosomministrazione endovenosa (IVSA), un metodo standard per lo studio del rinforzo farmacologico nei roditori. Vengono sottolineate le tecniche chirurgiche e le procedure necessarie per ottenere dati IVSA affidabili, con particolare attenzione all'impianto e alla manutenzione del catetere.
L'amministrazione endovenosa auto-somministrata (IVSA) nei modelli murini fornisce una piattaforma preclinica fondamentale per valutare le proprietà rinforzanti di composti, consentendo la validazione di bersagli nel campo della scoperta di farmaci per le dipendenze e le patologie neuropsichiatriche. Permettendo agli animali di auto-somministrarsi sostanze sperimentali, questo metodo riduce il bias sperimentale e fornisce dati quantitativi sui modelli di assunzione della droga, sostenendo la riduzione del rischio meccanicistica e aumentando la previsione affidabile nella valutazione precoce dei bersagli. L'approccio facilita la continuità traslazionale dall'interazione con il bersaglio all'output comportamentale, orientando le decisioni di avanzamento o interruzione nello sviluppo di terapie per il sistema nervoso centrale.
IVSA si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione del bersaglio all'identificazione dei composti promettenti fino alla valutazione preclinica, fungendo da saggio funzionale per il potenziale di rinforzo, complementare al profilo farmacocinetico in vitro e in vivo.