Name: Superare blocco nel encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE) ceppi di topi resistenti dal trasferimento adottivo e uno stimolo antigenico (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 38 s
Description: Scopri come indurre l'encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE) in ceppi di topi resistenti mediante trasferimento adottivo di cellule dei linfonodi e stimolo antigenico. Questo metodo consente di studiare i meccanismi immunologici delle malattie autoimmuni.

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Sostenuto in parte da sovvenzioni da parte del National Institutes of Health (R01 NS37253 e N01 NS055167) e la National Multiple Sclerosis Society (RG 3288-A6).

1. Preparazione CFA-emulsionato Antigen <ol><li> Sciogliere cavia MBP (preparato secondo il metodo di Swanborg1 e conservate in forma liofilizzata a 4 ° C) in tampone fosfato (PBS) ad una concentrazione di 2 mg / mL. Se peptidi sintetizzati MBP (MBP 60-80, SHHAARTTHYGSLPQKSQR) 2 vengono utilizzati, preparare un 2 mg / mL di soluzione. Redigere una quantità appropriata di soluzione antigene (0.1 mL per mouse per essere immunizzati) in una siringa di vetro con luer-lok. </li><li> Disegnare un volume di adiuvante completo di Freund H37Ra (0.1WT%) (CFA, Difco Laboratories) pari alla soluzione di antigene in un&#39;altra siringa di vetro munito Luer-Lok. </li><li> Collegare i due siringhe di vetro con una valvola a tre vie. Miscelare la soluzione MBP con il CFA spingendo gli stantuffi e indietro. Mantenere il movimento fino a quando si forma un&#39;emulsione. </li><li> Per testare se si forma un&#39;emulsione, spingere tutta la miscela in una siringa. Staccare la siringa vuota, tirare tegli stantuffo un po &#39;e scaricare una goccia di residuo emulsione in un bicchiere di acqua a temperatura ambiente. Se la caduta di emulsione rimane intatto sulla superficie dell&#39;acqua, si forma un&#39;emulsione. Se la caduta di emulsione disperde, ricollegare le siringhe e continuare il movimento di miscelazione. </li><li> Utilizzare una siringa di plastica 1 mL per il processo di immunizzazione per garantire la fornitura di una dose precisa di antigene. Per trasferire l&#39;emulsione antigene alla siringa plastica, estrarre ed inserire lo stantuffo della siringa vuota plastica nell&#39;apertura della valvola a tre vie in cui è stato scollegato la siringa di vetro precedente come in 1,4. </li><li> Riempire la siringa di plastica al bordo premendo lo stantuffo della siringa di vetro. Inserire lo stantuffo della siringa di plastica e spingere indietro emulsione in eccesso fino a raggiungere il 1,2 mL segno sulla siringa di plastica. Questa manovra assicura che nessuna bolla d&#39;aria intrappolata all&#39;interno della siringa plastica. </li><li> Rimuovere la siringa plastica dalla valvola a tre vie. Atta# ch un ago calibro 26 alla siringa plastica. Premere lo stantuffo al contrassegno 1 mL modo che l&#39;emulsione ora riempie il volume di vuoto dell&#39;ago. </li></ol> 2. Immunizzazione dei topi donatori Nota: topi femmina C57BL / 6 sono in genere iniettato con l&#39;emulsione di antigene in quattro siti nei fianchi, secondo le modalità originariamente progettati dal gruppo di McFarlin a 3 presso i National Institutes of Health. Per un ricercatore esperto, una persona può svolgere il compito insieme. Per i principianti, l&#39;aiuto può essere sollecitato in modo che una persona tiene il mouse e l&#39;altra persona fa l&#39;iniezione. In alternativa, il mouse può essere anestetizzati per l&#39;iniezione. <ol><li> Tenete il mouse saldamente la pelle del collo e trattenere la coda tra le dita ° 4 ° e 5 tali che il torace e l&#39;addome sono facilmente accessibili. </li><li> Posizionare l&#39;ago della siringa 1 ml di plastica in un sito nel torace leggermente sopra l&#39;ascella destra (del mouso) e iniettare 0,05 ml di emulsione antigene sottocutanea. Un po &#39;di rigonfiamento biancastro CFA può essere visto attraverso la pelle pallida. Ripetere la stessa per il sito nel torace leggermente sopra l&#39;ascella sinistra. </li><li> Rilasciare la coda e afferrare il piede destro (del mouse), girarla e tenerla tra il 4 ° e 5 ° dito. Individuare il sito appena sotto il caso costola nel fianco destro e iniettare 0,05 ml dell&#39;emulsione antigene. </li><li> Rilasciare il piede destro, ruotare il mouse dall&#39;altra parte e tenere premuto il piede sinistro (del mouse) tra il 4 ° e 5 ° dito. Individuare il sito appena sotto il caso costola nel fianco sinistro e iniettare 0,05 ml dell&#39;emulsione antigene. </li><li> Cambiare un ago fresco dopo l&#39;iniezione di 10 topi, o se l&#39;ago diventa offuscato. </li></ol> 3. Isolamento di cellule dei linfonodi per il Tissue Culture 7 a 10 giorni dopo l&#39;immunizzazione <ol><li> Sette a 10 giorni dopo la vaccinazione, sacrificare i topie rimuovere i linfonodi drenanti. Il metodo preferito di eutanasia è di CO 2 per inalazione. Dopo il sacrificio, giaceva il mouse sul dorso su una tavola di dissezione con le gambe aperte e fissato alla scheda con perni. I topi sono bagnate con uno spruzzo di etanolo 70%. </li><li> Tagli una fenditura nella pelle longitudinalmente al centro dall&#39;estremità inferiore dell&#39;addome fino al mento con forbici sterili e pinze. </li><li> Tagliare la pelle dell&#39;addome dalla zona inguinale del basso per ogni gamba. Peel indietro e definire con precisione la pelle, esponendo i linfonodi inguinali. </li><li> Tagliare la pelle lungo il arti anteriori (sinistra e destra) in modo che la pelle può essere sfogliato indietro e immobilizzato per esporre i linfonodi ascellari vicino alle ascelle. </li><li> Con due paia di pinze lavorano insieme, tirare via il tessuto connettivo di copertura e intorno ai linfonodi inguinali. Quando i tessuti connettivi vengono cancellati, mettete un paio di pinze sotto il linfonodo e tirare fuori dal corpo. Posizionare illinfonodi in un piatto 35 millimetri Petri riempita con PBS sterile. </li><li> Sganciare i tessuti connettivi che coprono i due linfonodi ascellari con due paia di pinze. Isolare i linfonodi e metterli nella scatola di Petri. Fare molta attenzione a non rompere i vasi sanguigni che attraversano l&#39;area come sanguinamento fa identificare i linfonodi molto difficile. </li><li> Dopo che tutti i linfonodi sono raccolti, spostare la piastra di Petri di una cappa di biosicurezza. Break e provocare gli linfonodi distanza con le due coppie di pinze, macinazione uno contro l&#39;altro. In alternativa, i linfonodi può essere rotto mediante l&#39;estremità piatta dello stantuffo di una siringa di plastica 3 mL premendo contro i linfonodi sul fondo del piatto Petri. </li><li> Passare il nodo preso in giro sospensione linfa cellulare attraverso una rete di nylon per rimuovere le membrane e detriti. </li><li> Portare il nodo della sospensione delle cellule linfatiche a 50 ml con PBS sterile. Centrifugare a 1000 rpm per 10 minuti. Risospendere il pellet in terreno di coltura. Sei una valida cell contare e regolare la concentrazione di 4 x 10 6 cellule / mL. UseRPMI 1640 integrato con 10% siero fetale di vitello, 2 mM L-glutammina, 1 MEM mM piruvato di sodio, 0,1 mM MEM amminoacidi non essenziali, 100 U / ml penicillina, 100 pg / ml streptomicina, 10 mM di tampone Hepes e 5 x 10 -5 M 2-ME. Pre-riscaldare la cultura prima di risospendere le cellule. </li><li> Coltivare le cellule in piastre da 24 pozzetti di coltura con 2 mL di volume per pozzetto (concentrazione finale della cella 8 x 10 6 cellule / pozzetto). Aggiungere antigene a ciascun pozzetto ad una concentrazione finale di 100 pg / mL. Posizionare la piastra di coltura in un incubatore a 37 ° C con 5% di CO 2. Incubare le cellule per 5 giorni. </li></ol> 4. Raccolta coltivate cellule dei linfonodi 5 giorni dopo l&#39;inizio delle Culture <ol><li> Mescolare le cellule in ciascun pozzetto pipettando su e giù con una pipetta Pasteur di vetro o una pipetta piccolo volume. Raccogliere le cellule ad una provetta da centrifuga da 50 mL. </li><li> Centrifugare le cellule a 1000 rpm per 10 minuti. Resuspend il pellet di cellule in un piccolo volume di PBS. </li><li> Contare le cellule e regolare la concentrazione di cellule vitali di 2,5 x 10 8 cellule / ml con PBS sterile. Disegnare le cellule in una siringa con un ago # 26 gauge. </li><li> Posizionare una lampada di calore sopra la gabbia dei topi riceventi per dilatare la vena della coda. </li><li> Utilizzando un supporto per mouse, estendere la coda del topo attraverso la fessura nel supporto. Tirare per estendere la coda. Individuare la vena. </li><li> Iniettare 0,2 ml / topo della sospensione cellulare, pari a 5 x 10 7 cellule. </li></ol> 5. Stimolo antigenico di topi riceventi 20 giorni cellulare vaglia postale e lo sviluppo dei sintomi della malattia <ol><li> Sfida topi riceventi non mostra segni di malattia con l&#39;antigene. Le procedure sono le stesse in sezione 2 &quot;immunizzazione di topi donatori&quot;. </li><li> Osservare lo sviluppo di malattia paralitica da 7 a 10 giorni dopo uno stimolo antigenico. <ol><li> Malattia inizia con la debolezza nella coda. La malattia è classificato come 1quando la coda diventa flaccida. La malattia è classificata come 2 quando il mouse è paralizzato in un arto posteriore. La malattia è classificato 3 quando entrambi gli arti posteriori sono paralizzate e il mouse trascina entrambi gli arti posteriori durante la scansione in avanti. La malattia è classificato 4 quando il mouse perde uso di entrambe le arti anteriori, lasciando il mouse completamente immobile. La malattia è classificato 5 quando il mouse è moribonda e il corpo si raggomitola. La morte è valutata come la malattia di grado 6 4. </li></ol></li><li> MBP-specifica EAE indotta in topi C57BL / 6 in seguito questo protocollo è monofasica. I topi possono recuperare dalla malattia, ma non subiscono ricadute spontanee. </li></ol> 6. Risultati rappresentativi I topi che hanno ricevuto innescato ed espanse in vitro cellule linfatiche donatore nodo non ha sviluppato sintomi della malattia EAE, riflettendo la loro resistenza a induzione della malattia. Tuttavia, malattia grave sviluppato dopo stimolo antigenico (Tabella I), dimostrando la capacità della stimolazione antigenicainvertire il meccanismo di resistenza. Due le caratteristiche particolari della sfida antigenica nota sono le dosi di antigene e la cinetica della sfida di indurre la malattia. Dosi molto basse di antigene è necessario, come mostrato nella Tabella III. Sorprendentemente, i topi che avevano ricevuto cellule del donatore di un anno prima potrebbe ancora sviluppare una grave malattia quando provocati con l&#39;antigene (Tabella IV). Queste due osservazioni suggeriscono il coinvolgimento di &quot;lunga durata&quot; cellule T nel mantenimento della resistenza EAE. Questo protocollo è applicabile a molti ceppi di topi EAE resistenti 4. <img alt="Figura 1." src="/files/ftp_upload/3778/3778fig1.jpg" /> Figura 1. Diagramma di flusso del disegno sperimentale per l&#39;induzione di EAE in fama ceppi di topi resistenti. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td colspan="3"> Clinical EAE dopo il trasferimento adottivo </td><td colspan="3"><strong&gt; Clinical EAE dopo stimolazione antigenica </td></tr><tr><td> Sforzo </td><td> Antigene </td><td> incidenza </td><td> Av. malattia di grado (Range) </td><td> Av. giorno di comparsa (Range) </td><td> Incidenza </td><td> Av. malattia di grado (Range) </td><td> Av. giorno di comparsa (Range) </td></tr><tr><td> SJL </td><td> MBP </td><td> 21/21 </td><td> 4.0 (3-5) </td><td> 8.0 (6-10) </td><td> ND </td><td> ND </td><td> ND </td></tr><tr><td> C57BL / 6 </td><td> MBP </td><td> 0/10 </td><td> - </td><td> - </td><td> 7/7 </td><td> 3.85 (3-5) </td><td> 9.28 (9-10) </td></tr><tr><td> Balb / c </td><td> MBP </td><td> 0/7 </td><td> - </td><td> - </td><td> 5/5 </td><td> 3.2 (3-4) </td><td> 7.0 (7) </td></tr><tr><td> C3H/HeJ </td&gt; <td> MBP </td><td> 0/7 </td><td> - </td><td> - </td><td> 4/4 </td><td> 3.2 (3-4) </td><td> 8.0 (8) </td></tr><tr><td> C57BL / 6 </td><td> MBP 60-80 </td><td> 0/4 </td><td> - </td><td> - </td><td> 4/4 </td><td> 2.75 (2-4) </td><td> 10.2 (9-11) </td></tr></tbody></table> Tabella I. Induzione di MBP-mediata EAE in topi C57BL / 6. Trasferimento adottivo di EAE e innescato espanse in vitro cellule donatrici non ha indotto in topi C57BL / 6. Stimolo antigenico vaglia postale cella reso i topi suscettibili di induzione della malattia. Av., Media. ND, non ha fatto. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td colspan="3"> EAE clinica dopo uno stimolo antigenico </td></tr><tr><td> Priming Antigen </td><td> Sfida antigene </td><td> Incidenza </td><td> Av. malattia di grado (Range)</td><td> Av. giorno di comparsa (Range) </td></tr><tr><td> MBP-CFA </td><td> CFA da sola </td><td> 0/3 </td><td> - </td><td> - </td></tr><tr><td> MBP-CFA </td><td> OVA-CFA </td><td> 0/3 </td><td> - </td><td> - </td></tr><tr><td> MBP-CFA </td><td> MBP-CFA </td><td> 3/3 </td><td> 4.0 (4.0) </td><td> 7.7 (7-9) </td></tr></tbody></table> Tabella II. Specificità di stimolazione antigenica. Topi riceventi sono stati stimolati con l&#39;antigene adescamento così come altri antigeni irrilevanti. Solo l&#39;antigene adescamento indotta malattia grave. OVA: ovalbumina pollo. Av., Media. <table border="1"><tbody&gt; <tr><td></td><td></td><td colspan="3"> EAE clinica dopo uno stimolo antigenico </td></tr><tr><td> Sfida dosi di antigene (mg / mouse) </td><td> Incidenza </td><td> Av. malattia di grado (Range) </td><td> Av. giorno di comparsa (Range) </td></tr><tr><td> 200 </td><td> 4/4 </td><td> 3.75 (3-4) </td><td> 8.25 (7-9) </td></tr><tr><td> 100 </td><td> 4/4 </td><td> 3.67 (3-4) </td><td> 7.5 (7-8) </td></tr><tr><td> 50 </td><td> 4/4 </td><td> 3.25 (3-4) </td><td> 8.25 (7-10) </td></tr><tr><td> 25 </td><td> 4/4 </td><td> 3.0 (3.0) </td><td> 8.25 (8-9) </td></tr><tr><td> 10 </td><td> 4/4 </td><td> 3.0 (3.0) </td><td> 8.76 (8-9) </td></tr><tr><td> 5 </td><td> 4/4 </td><td> 2.5 (2-3) </td><td> 9.75 (9-10) </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 2/4 </td><td> 1.0 (1.0) </td><td&gt; 16 (14-18) </td></tr><tr><td> 0 </td><td> 0/4 </td><td> - </td><td> - </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table> Tabella III. Sfida dosi di antigene necessaria per l&#39;induzione della malattia. Varie concentrazioni di MBP utilizzati per sfidare topi riceventi sono stati testati. Av., Media. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td colspan="3"> EAE clinica dopo uno stimolo antigenico </td></tr><tr><td> Sfida antigene </td><td> Giorno della Sfida </td><td> Incidenza </td><td> Av. Malattia di grado (Range) </td><td> Av. Giornata di esordio (Range) </td></tr><tr><td> MBP-CFA </td><td> 5 </td><td> 3/4 </td><td> 1.33 (1-2) </td><td> 9.67 (9-10) </td></tr><tr><td> MBP-CFA </td><td> 10 </td&gt; <td> 4/4 </td><td> 3.0 (3.0) </td><td> 8.25 (7-9) </td></tr><tr><td> MBP-CFA </td><td> 15 </td><td> 4/4 </td><td> 3.75 (3-4) </td><td> 7.25 (7-8) </td></tr><tr><td> MBP-CFA </td><td> 25 </td><td> 4/4 </td><td> 4.0 (4.0) </td><td> 8.0 (7-9) </td></tr><tr><td> MBP-CFA </td><td> 35 </td><td> 4/4 </td><td> 3.5 (3-4) </td><td> 7.5 (7-8) </td></tr><tr><td> MBP-CFA </td><td> 60 </td><td> 4/4 </td><td> 3.75 (3-4) </td><td> 9.0 (8-10) </td></tr><tr><td colspan="5"> -------------------------- </td></tr><tr><td> MBP-CFA </td><td> 343 </td><td> 3/3 </td><td> 3.0 (3.0) </td><td> 10.33 (10-11) </td></tr><tr><td> MBP-CFA </td><td> 445 </td><td> 3/3 </td><td> 3.0 (3.0) </td><td> 7.0 (7.0) </td></tr></tbody></table> Tabella IV. Cinetica di uno stimolo antigenico. Topi riceventi sono stati stimolati a livello post vari punto di tempo adottareive cell trasferimento. Av., Media.

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Studi di EAE nei topi utilizzano spesso le neuroantigens e proteina basica della mielina (MBP), proteine ​​proteolipidica (PLP) o di proteine ​​della mielina degli oligodendrociti (MOG). Studi precedenti in gran parte utilizzato MBP. PLP stimola risposte forti e coerenti dai topi SJL. Più di recente, MOG è la neuroantigen comunemente usato B6, perché i topi sono suscettibili di induzione della malattia con questo antigene. Molti ceppi mirati geni di topo sono su sfondo genetico B6. È interessante notare, B6 topi sono su...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reattivo </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Comments </td></tr><tr><td> Cavia midollo spinale </td><td> Rockland Immuno-chimici, Inc. Gilbertsville, PA 19525 <a href="http://www.rockland-inc.com" target="_blank">www.rockland-inc.com</a> </td><td> GP-T065 </td><td> congelati </td></tr><tr><td> Adiuvante di Freund completo H37Ra </td><td> Difco Laboratories Detroit, MI </td><td> 231131 </td><td></td></tr><tr><td> Multifit intercambiabili in grado di siringa </td><td> BD <a href="http://www.bd.com/us" target="_blank">www.bd.com / us</a> </td><td> 512133 </td><td></td></tr><tr><td> RPMI 1640 </td><td> MediatechInc. Manassas, VA <a href="http://www.cellgro.com" target="_blank">www.cellgro.com</a> </td><td> 10-040-CM </td><td></td></tr><tr><td> OVA </td><td> Sigma-Aldrich <a href="http://www.sigmaaldrich.com" target="_blank">www.sigmaaldrich.com</a> </td><td> A5503 </td><td></td></tr><tr><td> Mice </td><td> Jackson Laboratory Bar Harbor, Maine </td><td> B6 topi: 0000664 </td><td></td></tr></tbody></table>

superare blocco nel encefalomielite autoimmune sperimentale (eae) ceppi di topi resistenti dal trasferimento adottivo e uno stimolo antigenico

Overcoming Unresponsiveness in Experimental Autoimmune Encephalomyelitis (EAE) Resistant Mouse Strains by Adoptive Transfer and Antigenic Challenge

Encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE) è una malattia infiammatoria del sistema nervoso centrale (CNS) ed è stato usato come modello animale per lo studio della malattia demielinizzante umano, sclerosi multipla (MS). EAE è caratterizzata da patologica infiltrazione di cellule mononucleari nel sistema nervoso centrale e da manifestazione clinica di malattia paralitica. Simile al MS, EAE è sotto controllo genetico in alcuni ceppi di topi che sono suscettibili di induzione della malattia, mentre altri sono resistenti. In genere, C57BL / 6 (H-2 b) i topi immunizzati con proteina basica della mielina (MBP) non riescono a sviluppare segni di paralisi. Questa mancanza di risposta non è certamente dovuti a difetti di lavorazione dell&#39;antigene o presentazione dell&#39;antigene di MBP, come un protocollo sperimentale descritto qui era stato usato per indurre EAE grave in topi C57BL / 6, nonché altri ceppi resistenti reputato topo. Inoltre, cloni di cellule T encefalitogeniche da C57BL / 6 e topi Balb / c reattivi per MBP stata successocompletamente isolato e propagato. Il protocollo sperimentale comporta l&#39;uso di un sistema cellulare in cui il trasferimento adottivo MBP-primer (200 pg / topo) C57BL / 6 donatori cellule dei linfonodi sono isolati e coltivati ​​per cinque giorni con l&#39;antigene per espandere il pool di MBP-cellule T specifiche. Al termine del periodo di coltura, 50 milioni di cellule vitali sono trasferite in naive riceventi singenici attraverso la vena della coda. Destinatari topi così trattati normalmente non si sviluppano EAE, riaffermando così il loro status resistenti, e possono rimanere normale a tempo indeterminato. Dieci giorni dopo il trasferimento delle cellule, topi riceventi sono sfidati con adiuvante di Freund completo (CFA)-MBP emulsionato in quattro siti nei fianchi. EAE grave inizia a svilupparsi in questi topi dieci a quattordici giorni dopo la sfida. I risultati hanno mostrato che l&#39;induzione della malattia era antigenica specifica come una sfida con gli antigeni irrilevanti non ha indotto sintomi clinici della malattia. Significativamente, una titolazione della dose di antigene utilizzato persfidare i topi riceventi hanno dimostrato che potrebbe essere il più basso 5 mg / mouse. Inoltre, uno studio cinetico della temporizzazione di stimolazione antigenica mostrato che sfida di indurre la malattia era efficace come già 5 giorni dopo stimolazione antigenica e fintantoché oltre 445 giorni dopo la stimolazione antigenica. Questi dati puntano fortemente verso il coinvolgimento di una &quot;lunga durata&quot; popolazione di cellule T nel mantenimento assenza di reazione. Il coinvolgimento delle cellule T regolatorie (Tregs) in questo sistema non è definito.

Alcuni ceppi di topi sono in grado di resistere induzione di encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE) con proteina basica della mielina. Qui descritto è un protocollo di immunizzazione semplice che inverte la mancanza di risposta e induce malattia paralitica in diversi tipiche macchie resistenti EAE del mouse.

Superare blocco nel encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE) ceppi di topi resistenti dal trasferimento adottivo e uno stimolo antigenico

L'encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE) è una malattia infiammatoria del sistema nervoso centrale (SNC) ed è stata utilizzata come modello animale per...

L'obiettivo generale di questa procedura è indurre in modo costante e semplice l'EAE in qualsiasi ceppo di topo, inclusi quelli considerati resistenti all'induzione dell'EAE. Questo risultato si ottiene innanzitutto immunizzando topi donatori con proteine specifiche della mielina o antigeni peptidici, emulsionati in adiuvante completo di Freund. Dieci giorni dopo, i linfonodi dei topi donatori vengono isolati e le cellule linfonodali vengono nuovamente stimolate in vitro coltivandole con lo stesso antigene per quattro o cinque giorni.Le cellule vengono quindi trasferite in modo adottivo in topi ricettori naïve. I ceppi di topi suscettibili svilupperanno EAE in otto-quattordici giorni per indurre EAE in un ceppo resistente. Quattordici giorni dopo il trasferimento adottivo, i topi ricettori sono stati quindi immunizzati con l'antigene in CFA.Utilizzando questo metodo, l'EAE può essere indotta in ceppi di topi resistenti. Il principale vantaggio del protocollo di trasferimento e sfida adattativo per l'induzione dell'EAE è che consente un'induzione affidabile della malattia. Di rado osserviamo un tasso di malattia clinica inferiore al 100%.È possibile adattare il protocollo per indurr

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Questo video dimostra un'efficiente tecnica di omogeneizzazione per generare un'emulsione antigene-adiuvante per indurre l'encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE) in un modello murino. L'emulsione contiene un autoantigene - la glicoproteina oligodendrocitaria della mielina (MOG) - in fase acquosa, circondata da una fase oleosa continua comprendente un batterio patogeno inattivato. L'emulsione garantisce un rilascio prolungato di antigeni per una risposta immunitaria prolungata.

Preparazione di un'emulsione antigene-adiuvante per indurre l'encefalomielite autoimmune

Il video dimostra l'induzione dell'encefalomielite autoimmune sperimentale in un modello murino iniettando una combinazione di glicoproteine oligodendrocitarie mieliniche e Mycobacterium tuberculosis inattivato. Il modello consente ai ricercatori di studiare i meccanismi della malattia e testare gli interventi terapeutici.

Induzione di encefalomielite autoimmune sperimentale in un modello murino

Questo video mostra il metodo per indurre l'encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE) iniettando peptidi derivati dalla mielina con un adiuvante per attivare le cellule T autoreattive, che migrano verso il cervello. La tossina della pertosse viene somministrata per aumentare la permeabilità della barriera emato-encefalica, consentendo a queste cellule T e ad altre cellule immunitarie di entrare nel cervello. Queste cellule immunitarie causano demielinizzazione, portando a una compromissione...

Generazione di encefalomielite autoimmune sperimentale in un modello murino

In questo video, un modello murino di sclerosi multipla viene stabilito utilizzando l'encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE). Al topo viene iniettata un'emulsione contenente un peptide neuronale e un adiuvante, innescando una risposta immunitaria che attiva le cellule T autoreattive. Questo è seguito da un'iniezione di tossina della pertosse (PTX) per aumentare la permeabilità della barriera emato-encefalica, consentendo alle cellule T autoreattive di infiltrarsi nel cervello. Questa...

Encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE) è un modello animale di sclerosi multipla. C57BL / 6 topi sono immunizzati con mielina oligodendrociti glicoproteina (MOG) peptide 35-55 (MOG 35-55), con un conseguente paralisi flaccida ascendente causata da cellule immunitarie autoreattive nel sistema nervoso centrale. Saranno discussi protocolli per l'induzione della malattia e monitoraggio.

Mielina Oligodendrocyte glicoproteina (MOG<sub&gt; 35-55</sub&gt;) Indotta encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE) in C57BL / 6 Mice

Questo manoscritto descrive i metodi per l'induzione e il punteggio del modello sperimentale di encefalomielite autoimmune (EAE), insieme alla valutazione della distribuzione delle cellule immunitarie e dei livelli di citochine mRNA nei linfonodi, nella milza, nel sangue e nel midollo spinale utilizzando la citometria a flusso e la PCR quantitativa, rispettivamente, in varie fasi della malattia.

Induzione di encefalomielite autoimmune sperimentale nei topi e valutazione della distribuzione delle malattie-dipendente delle cellule immunitarie in vari tessuti

Qui, presentiamo protocolli per studiare danno dell'unità neurovascolare durante l'encefalomielite autoimmune sperimentale in vivo. Ci rivolgiamo in particolare come determinare la permeabilità della barriera emato - encefalica e attività della gelatinasi coinvolti nella migrazione dei leucociti attraverso la limitans glia.

Visualizzazione di danno delle barriere endoteliali e gliali dell'unità neurovascolare durante l'encefalomielite Autoimmune Sperimentale In Vivo

Il presente protocollo descrive l'induzione dell'encefalomielite autoimmune sperimentale in un modello murino utilizzando glicoproteina oligodendrocitaria mielinica e monitorando il processo della malattia utilizzando un sistema di punteggio clinico. I sintomi sperimentali correlati all'encefalomielite autoimmune vengono analizzati utilizzando l'analisi della tomografia microcomputerizzata del femore di topo e il test in campo aperto per valutare il processo della malattia in modo completo.

Induzione e diversi indicatori di valutazione dell'encefalomielite autoimmune sperimentale

Per indurre l'encefalomielite autoimmune sperimentale, un modello animale di sclerosi multipla, i topi vengono immunizzati con un'emulsione acqua-in-olio contenente un autoantigene e un adiuvante completo di Freund. Mentre esistono diversi protocolli per la preparazione di queste emulsioni, qui viene presentato un protocollo di omogeneizzazione rapido, semplice e standardizzato per la preparazione dell'emulsione.

Un metodo di omogeneizzazione rapido, semplice e standardizzato per preparare emulsioni antigene/adiuvanti per indurre l'encefalomielite autoimmune sperimentale

L'encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE) è un modello animale di sclerosi multipla (SM), che condivide con la malattia umana una robusta risposta autoimmune umorale. Qui, riportiamo un protocollo ELISA semplice e flessibile per quantificare gli autoanticorpi nel siero di topi immunizzati con EAE.

Quantificazione degli anticorpi autoreattivi nei topi dopo encefalomielite autoimmune sperimentale

Scopri come indurre l'encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE) in ceppi di topi resistenti mediante trasferimento adottivo di cellule dei linfonodi e stimolo antigenico. Questo metodo consente di studiare i meccanismi immunologici delle malattie autoimmuni.

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Superare blocco nel encefalomielite autoimmune sperimentale (EAE) ceppi di topi resistenti dal trasferimento adottivo e uno stimolo antigenico

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