Name: Luso di cistometria in piccoli roditori: A Study of Chemosensation vescica (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-08-21T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 8 s
Description: Impara la cistometria in piccoli roditori per studiare la funzione vescicale in vivo. Questo metodo misura pressione intravescicale e volume urinario per analizzare l'effetto di composti chimici sulla minzione.

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Questo lavoro è stato supportato anche da finanziamenti del governo federale belga (IUAP P6/28), la Fondazione-Fiandre (FWO) (G.0565.07 e G.0686.09), la ricerca europea Astellas Foundation Award 2009 e il Consiglio di ricerca del KU Leuven (GOA 2009/07, e EF/95/010 PFV/10/006). PU e NOI siamo dottorandi della Research Foundation-Fiandre (FWO). MB è un borsista Marie Curie. DDR un fondamentale-clinica collega del FWO.

1. Animali da laboratorio <ol><li> Animali (topi, ratti) sono alloggiati in una struttura specializzata animale con un 12-hr ciclo luce-buio e ad libitum accesso all&#39;acqua e pellet cibo standard. Sia l&#39;età e il sesso degli animali sono parametri importanti che dovrebbero essere standardizzate in base alle esigenze. Noi di solito eseguire cistometria in 10 - 12 settimana animali vecchi femmine 5,6. </li><li> Tutti gli esperimenti sugli animali siano effettuati in conformità con le linee guida comunitarie dell&#39;Unione europea del Consiglio e approvato dal comitato etico locale. </li></ol> 2. Anestesia <ol><li> Anestesia isoflurano viene utilizzato per eseguire piccoli interventi chirurgici, poiché è facile da dosare a causa della sua breve emivita. Gas di scarico adeguata evacuazione è necessaria quando si utilizza l&#39;isoflurano. <ol class="lalpha"><li> Animali siano posti in una scatola chiusa, gasati con isoflurano 5% in ossigeno puro (1 l / min). </li><li> Dopo l&#39;induzione, l&#39;anestesia al l appropriatoevel è mantenuto da una piccola maschera (un taglio siringa da 10 ml) di 0,8 - 1 l / min di ossigeno con 1 - 1,5% di isoflurano. </li></ol></li><li> Per i topi, l&#39;anestesia uretano viene utilizzato durante le registrazioni funzionali (cfr. infra). Anestesia uretano viene utilizzato durante le registrazioni funzionali perché, a differenza di molti altri anestetici, il riflesso della minzione non è soppresso da questo agente anestetico 4. Uretano 1,2 g di peso corporeo / kg viene somministrato per via sottocutanea (sc) 60 min prima dell&#39;inizio delle registrazioni. Se necessario, la dose di uretano necessario per ottenere l&#39;anestesia adeguata può essere titolato con la somministrazione di dosi supplementari (0,1 g / kg) per via sottocutanea. Va notato, tuttavia, che l&#39;anestesia supplementare può alterare l&#39;efficienza svuotamento e di conseguenza la frequenza della minzione 7,8. Così, le registrazioni cistometrici devono essere attentamente monitorati ed eliminato ogni volta deviazioni significative dal comportamento di controllo siano rispettate. Anestetici non deve essere somministrato durante la provacomposti vengono applicati evitare errori di interpretazione dei dati. </li></ol> 3. Procedura chirurgica - Impianto catetere vescicale <ol><li> Strumenti chirurgici vengono sterilizzati in autoclave prima dell&#39;uso. Radere l&#39;addome dell&#39;animale, disinfettare con etanolo al 70% e di eseguire una laparotomia mediana bassa per esporre la vescica. </li><li> Sotto un microscopio operatorio, mettere una borsa di sutura nella cupola della vescica utilizzando un non-assorbibile, sutura monofilamento (dimensioni 6-0). </li><li> Eseguire una cistostomia piccola (preferibilmente usare un ago da 18 G) all&#39;interno della stringa borsa e inserire un catetere di polietilene PE 50, con un bracciale piccolo alla fine (ottenuta riscaldando cautamente il tubo) attraverso questo foro. Nelle nostre mani, sottili tubi PE (10) hanno una resistenza maggiore e più variabile. Il tubo può essere disinfettato mettendolo in una soluzione di etanolo al 70% o sterilizzati in autoclave. Prima dell&#39;impianto, il tubo deve essere lavata con soluzione salina. </li><li> Fissare la str borsazione attorno al tubo con un nodo di un chirurgo. Estrarre il catetere è posizionato delicatamente verso l&#39;esterno fino a campana punta destra sotto la sutura. Inserire un pezzo di 18 catetere G verso la sutura per evitare perdite. </li><li> Infondere un piccolo volume di soluzione fisiologica (100 - 200 pl) delicatamente per controllare eventuali perdite. Se le perdite sono presenti, una sutura supplementari vanno riportate. </li><li> Chiudere i muscoli addominali utilizzando monofilamento, lasciando un passaggio per il catetere nella parte superiore dell&#39;incisione. </li><li> Tunnel il tubo alla regione interscapolare utilizzando un&#39;asta cava di metallo, impedendo così agli animali di mordere il tubo durante l&#39;esperimento. </li><li> La pelle è chiuso con non assorbibili, monofilamento. Il catetere impiantato viene lavata con soluzione salina per verificare la permeabilità. </li><li> Prima di risvegliare gli animali, gli analgesici sono somministrate per via sottocutanea (buprenorfina, 0,05 mg / kg). </li></ol> 4. Installazione e cistometria <ol><li> A seconda della sperimentale Questi,su (e le specie utilizzate) cistometria viene eseguita in sveglio (di restrizioni o di sfrenatezza) o uretano-anestetizzato animali. Considerando che cistometria è perfettamente realizzabile nei ratti coscienti, che tendono a mantenere la calma in un ambiente sobrio, di solito eseguire in anestesia cistometria uretano (1,2 mg / kg per via sottocutanea) quando si utilizza topi 3,5,6,9. </li><li> In topi anestetizzati, temperatura corporea è costantemente monitorata e mantenuta a 36,5 ° C ± 0,2 ° C per mezzo di una sonda di temperatura ed una lampada di riscaldamento. </li><li> Il set-up è calibrato prima di ogni esperimento secondo le istruzioni del fabbricante. </li><li> Il catetere impiantato è collegata da un luer stub di un 3-way rubinetto, che è collegato al trasduttore di pressione (Edwards Lifesciences) su un lato e una pompa per infusione, dall&#39;altro (Harvard Apparatus). Il trasduttore di pressione è collegato tramite un amplificatore (78534c monitor, Hewlett Packard) al sistema di acquisizione dati (DI-730-USB, Dataq strumenti) e un computer. Windaq / Lite software può essere utilizzato per la registrazione. </li><li> La pompa di infusione viene avviata, consentendo l&#39;infusione di soluzione salina o PBS a, per esempio, 100 pl / min (nei ratti) e 20 microlitri / min (nei topi). Come tale la vescica viene riempita a velocità costante, mentre la pressione intravescicale viene registrato. </li><li> Figura 5 illustra una traccia tipica pressione: durante l&#39;infusione di fluido, vi è un accumulo di pressione lenta nella vescica, finché un certo volume / pressione viene raggiunto, la soglia di minzione. Una volta che viene raggiunta questa soglia, la vescica si contraggono e successivamente lo sfintere urinario si apre, consentendo il passaggio di urina attraverso l&#39;uretra. Come tale, la vescica si svuota, la contrazione si arresta e la pressione scende nuovamente al livello &quot;basale&quot;. </li><li> Come il ratto viene posto in una gabbia metabolica e sopra una bilancia digitale, il volume annullato possono essere misurati simultaneamente, fornendo informazioni riguardanti il ​​volume annullata. A causa dei piccoli volumi annullate in mice, può essere molto impegnativo tramite questo sistema. Pertanto, il volume svuotato è determinato utilizzando piccole carte da filtro pesati prima e dopo svuotamento. </li><li> Tipicamente, si lascia il sistema equilibrare per 30 minuti, seguito da un periodo di registrazione di 30 min. Quindi, i farmaci possono essere somministrati per via sistemica o per via endovescicale e altri 30 minuti vengono registrati. </li><li> I dati registrati possono essere esportati come file. Csv che possono essere importati in un software specializzato per l&#39;analisi quantitativa. Si utilizzano in genere di origine (OriginLab Corporation, MA, USA). </li><li> Dopo gli esperimenti, gli animali sono sacrificati mediante dislocazione cervicale (topi) o intossicazione da CO 2 (ratti). </li></ol> 5. Risultati rappresentativi <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3869/3869fig1.jpg" /> Figura 1. Panoramica laparotomia. A) Posizionare il ratto in posizione supina. B) Shave e asettico preparazione del sito chirurgico. C) incisione della pelle. D) Incisione of i muscoli addominali, e l&#39;esposizione della vescica. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3869/3869fig2.jpg" /> Figura 2. Una borsa di sutura. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/3869/3869fig3.jpg" /> Figura 3. L&#39;impianto del catetere. <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/3869/3869fig4.jpg" /> Figura 4. Tunnelling del catetere. Esempi di misure di pressione intravescicale ottenuta durante la perfusione di soluzione salina in un ratto cosciente e un mouse anestetizzato sono mostrati in Figura 5. Parametri multipli può essere estratto dal segnale di pressione (ad esempio l&#39;intervallo intercontractile, la pressione di riferimento e la pressione di soglia). Per una descrizione completa di questi parametri, vedere Andersson et al. (Rif. 4) e Yoshiyama et al. (<html> rif 10). Abbiamo recentemente cistometria utilizzato per identificare i bersagli molecolari di olio di senape (MO), un composto altamente reattivo che è stato a lungo utilizzato in modelli sperimentali di infiammazione ed iperalgesia di organi viscerali come la vescica urinaria 11,12. Infusione intravescicale di 10 mM MO indotto un forte aumento della frequenza di minzione (diminuzione nell&#39;intervallo intercontractile) in sorci di tipo selvatico (Figura 6A, B) e la diminuzione del volume annullata 6. È interessante notare che, MO indotto cambiamenti simili in topi deficienti del recettore TRPA1 MO. Al contrario, MO prodotto cambiamenti molto più deboli dei parametri cistometrici TRPV1 in topi KO rispetto ai topi WT ed è stato senza alcun effetto a Trpa1/Trpv1 topi KO. Insieme a misurazioni del rilascio del peptide correlato al gene della calcitonina (CGRP) 6, questi dati indicano che dimostrano TRPV1 può giocare un ruolo chiave nella irritazione viscerale indotta da MO. ve_content &quot;&gt; <img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/3869/3869fig5.jpg" /> Figura 5. Tracce rappresentativi di pressione intravescicale registrata in un ratto conscio femmina (A) e in un mouse anestetizzato femmina (B). La pressione minima è definita come la &quot;pressione basale&quot; (frecce rosse). La pressione alla fine della fase di riempimento è contrassegnata con frecce blu. Il volume del liquido infuso tra questi punti, diviso per la differenza di pressione, permette di calcolare la compliance della parete della vescica (compliance = infuso volume / (pressione di soglia -. Pressione basale) Il &quot;intervallo intercontractile&quot; (ICI) è il tempo tra due contrazioni svuotamento. <img alt="Figura 6" src="/files/ftp_upload/3869/3869fig6.jpg" /> Figura 6. Effetti dell&#39;applicazione intravescicale di olio di senape sul modello cistometria in wild type e topi knockout TRPA1, TRPV1 e Trpa1/Trpv1.(A) gli esempi rappresentativi di variazioni di pressione intravescicale registrate nel WT, KO TRPA1, TRPV1 KO e Trpa1/Trpv1 topi KO in risposta alla infusione di soluzione fisiologica e 10 mM MO. (B) Naturalmente il tempo della frequenza media di svuotamento istantaneo, prima e durante l&#39;infusione intravescicale di MO. Per tutti i topi, i dati sono stati normalizzati alla frequenza media ottenuta durante l&#39;infusione salina. Questi dati sono adattato da Everaerts et al. (Rif 6), con il permesso di Elsevier.

<ol><li>Everaerts, W., Gevaert, T., Nilius, B., De Ridder, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+origin+of+bladder+sensing%3A+Tr%28i%29ps+in+urology%5BTitle%5D)+AND+%22Neurourol.+Urodyn%22%5BJournal%5D)">On the origin of bladder sensing: Tr(i)ps in urology.</a> Neurourol. Urodyn. 27, 264-2673 (2008).</li>
<li>Fry, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+and+their+use+in+understanding+lower+urinary+tract+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Neurourol.+Urodyn%22%5BJournal%5D)">Animal models and their use in understanding lower urinary tract dysfunction.</a> Neurourol. Urodyn. 29, 603-608 (2010).</li>
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<li>McMahon, S. B., Abel, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+model+for+the+study+of+visceral+pain+states%3A+chronic+inflammation+of+the+chronic+decerebrate+rat+urinary+bladder+by+irritant+chemicals%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A model for the study of visceral pain states: chronic inflammation of the chronic decerebrate rat urinary bladder by irritant chemicals.</a> Pain. 28, 109-127 (1987).</li>
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<li>Igawa, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cystometric+findings+in+mice+lacking+muscarinic+M2+or+M3+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Cystometric findings in mice lacking muscarinic M2 or M3 receptors.</a> J. Urol. 172, 2460-2464 (2004).</li>
<li>Schroder, A., Newgreen, D., Andersson, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detrusor+responses+to+prostaglandin+E2+and+bladder+outlet+obstruction+in+wild-type+and+Ep1+receptor+knockout+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Detrusor responses to prostaglandin E2 and bladder outlet obstruction in wild-type and Ep1 receptor knockout mice.</a> J. Urol. 172, 1166-1170 (2004).</li>
<li>Chen, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Function+of+the+lower+urinary+tract+in+mice+lacking+alpha1d-adrenoceptor%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Function of the lower urinary tract in mice lacking alpha1d-adrenoceptor.</a> J. Urol. 174, 370-374 (2005).</li>
<li>May, V., Vizzard, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bladder+dysfunction+and+altered+somatic+sensitivity+in+PACAP-%2F-+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Bladder dysfunction and altered somatic sensitivity in PACAP-/- mice.</a> J. Urol. 183, 772-779 (2010).</li>
<li>Thorneloe, K. S., Meredith, A. L., Knorn, A. M., Aldrich, R. W., Nelson, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Urodynamic+properties+and+neurotransmitter+dependence+of+urinary+bladder+contractility+in+the+BK+channel+deletion+model+of+overactive+bladder%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Renal.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Urodynamic properties and neurotransmitter dependence of urinary bladder contractility in the BK channel deletion model of overactive bladder.</a> Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 289, 604-610 (2005).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

La tecnica qui presentata cistometria permette di effettuare misure in vivo della funzione della vescica in modelli animali. I ratti sono probabilmente il modello animale più utilizzato. I topi sono più difficili da gestire, ma offrono il vantaggio di utilizzare animali geneticamente manipolati. A causa della difficoltà tecnica di utilizzare topi coscienti, che tendono ad essere molto attivo con conseguente allentamento del catetere impiantato e variazioni delle pressioni intra-addominale che possono influenzar...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reagente </td><td> Nome commerciale, società, </td><td> Numero di catalogo </td><td> Commenti </td></tr><tr><td> uretano </td><td> Uretano, Sigma-Aldrich </td><td> 315419 </td><td> cancerogeno del gruppo 2B </td></tr><tr><td> isoflurano </td><td> Isoba, Schering-Plough Animal Health </td><td></td><td></td></tr><tr><td> polietilene catetere </td><td> Intramedic tubi in polietilene PE50, Becton Dickinson </td><td> 427411 </td><td></td></tr><tr><td> microscopio chirurgico </td><td> Op-Mi 6, Carl Zeiss </td><td> Op-Mi sei </td><td></td></tr><tr><td> borsa di sutura </td><td> Prolene 6/0, Ethicon </td><td> 8610H </td><td></td></tr><tr><td> fascia e sutura della pelle </td><td> Ethilon 4/0 o 5/0, Ethicon </td><td> 662G o 661G </td><td></td></tr><tr><td> analgesici postoperatori </td><td> Temgesic, Schering-Plough Animal Health </td><td></td><td> dosaggio per i ratti: 0,05 mg / kg </td></tr><tr><td> amplificatore </td><td> 78534c monitor, Hewlett Packard </td><td></td><td></td></tr><tr><td> bilance analitiche e il bilancio di acquisizione dati software </td><td> FZ 300i, A &amp; D </td><td> FZ-300i </td><td></td></tr><tr><td> pompe per infusione </td><td> pompa 33, Harvard apparecchi </td><td> HA33 </td><td></td></tr><tr><td> cistometria Sistema di registrazione </td><td> Strumenti Dataq, DI-730 serie e Windaq / Lite </td><td> DI-730-USB Windaq / Lite </td><td></td></tr><tr><td> Temperatura di registrazione </td><td> Fluke 52 Termometro KJ </td><td> 52 KJ </td><td></td></tr><tr><td> Trasduttori di pressione </td><td> Edwards Lifesciences, monitoraggio pressione impostata </td><td> T322247A </td><td></td></tr></tbody></table>

l&#39;uso di cistometria in piccoli roditori: a study of chemosensation vescica

The Use of Cystometry in Small Rodents: A Study of Bladder Chemosensation

<p class="jove_content"&gt; Le basse vie urinarie (LUT) funge da serbatoio dinamica che è in grado di immagazzinare l&#39;urina e di espellere efficacemente in un momento opportuno. Durante la memorizzazione urine, tuttavia, la vescica è esposto per periodi prolungati di prodotti di scarto. Agendo come una barriera a tenuta, il rivestimento epiteliale LUT, dell&#39;urotelio, evita il riassorbimento di sostanze nocive. Inoltre, le sostanze chimiche nocive stimolare innervazione nocicettiva della vescica e di avviare annullare contrazioni che espellere il contenuto della vescica. È interessante notare che la sensibilità della vescica a sostanze chimiche nocive è stato utilizzato con successo nella pratica clinica, per via endovescicale infondendo il TRPV1 capsaicina agonista per il trattamento della vescica neurogena iperattività<sup&gt; 1</sup&gt;. Ciò sottolinea il vantaggio di vedere la vescica come un organo chemiosensoriali e richiede ulteriori ricerche cliniche. Tuttavia, le questioni etiche limitano fortemente la possibilità di eseguire, su soggetti umani, le misure invasive che sono necessarie per svelare le basi molecolari della LUT farmacologia clinica. Un modo per superare questa limitazione è l&#39;uso di modelli animali<sup&gt; 2</sup&gt;. Qui si descrive l&#39;implementazione di cistometria in topi e ratti, una tecnica che permette di misurare la pressione intravescicale in condizioni di perfusione vescica controllata.</p&gt;<p class="jove_content"&gt; Dopo laparotomia, un catetere viene impiantato nella cupola vescica e tunnel per via sottocutanea nella regione interscapolare. Quindi la vescica può essere riempito a velocità controllata, mentre l&#39;uretra è lasciato libero per minzione. Durante i cicli ripetitivi di riempimento e svuotamento, la pressione intravescicale può essere misurata tramite il catetere impiantato. Come tale, le variazioni di pressione possono essere quantificati e analizzati. Inoltre, la misurazione simultanea del volume consente di distinguere le contrazioni annullata svuotamento di non svuotamento contrazioni<sup&gt; 3</sup&gt;.</p&gt;<p class="jove_content"&gt; Importante, a causa delle differenze di controllo della minzione tra roditori ed esseri umani, misurazioni cistometrici in questi animali hanno un limitato valore traslazionale<sup&gt; 4</sup&gt;. Tuttavia, sono abbastanza strumentale nello studio della fisiopatologia vescica e farmacologia sperimentali pre-clinici impostazioni. Recenti ricerche utilizzando questa tecnica ha rivelato il ruolo chiave di nuovi attori molecolari nelle proprietà meccano-e chemo-sensoriali della vescica.</p

Cistometria è una tecnica efficace per misurare la funzione della vescica di piccoli animali<em&gt; In vivo</em&gt;. La vescica è continuamente infuso a velocità controllate tramite un catetere intravescicale, mentre l&#39;uretra viene lasciata libera per la minzione. Questo permette ripetitiva riempimento e lo svuotamento della vescica, mentre la pressione intravescicale e volume annullato vengono registrati.

L&#39;uso di cistometria in piccoli roditori: A Study of Chemosensation vescica

Il tratto urinario inferiore (LUT) funziona come un serbatoio dinamico in grado di accumulare l'urina e di espellerla efficientemente in un momento opportuno. Mentre...

Lo scopo di questa procedura è determinare l'influenza di composti chimici sulle funzioni di stoccaggio e svuotamento della vescica. Questo obiettivo viene raggiunto impiantando innanzitutto un catetere nella vescica. Dopo un breve periodo di recupero, una soluzione controllo viene infusa attraverso il catetere per 30 minuti.Mentre la pressione intravesicale e il volume espulso vengono registrati per ulteriori 30 minuti, l'animale viene infuso con un composto di interesse. In definitiva, i risultati possono mostrare come sostanze irritanti influenzino anche il modello di minzione attraverso l'analisi della frequenza minzionale. Il vantaggio principale di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come la registrazione della contrattilità della vescica isolata, è che la funzione di questo organo può essere studiata in condizioni più fisiologiche.Ad esempio, vengono preservate le azioni regolatorie del sistema nervoso centrale. La dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale poiché i passaggi chirurgici sono difficili da apprendere, in quanto richiedono l'osservazione di numerosi dettagli tecnici e manovre per garantire il successo dell'esperimento. Per preparare il tubo da

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Fasi chirurgiche di aumento della vescica vengono descritte utilizzando 3-D scaffold in modelli murini e di ratto. Per verificare l'efficacia di configurazioni biomateriale per uso in aumento vescica, tecniche per cistometria sia sveglio e anestetizzati sono presentati.

Valutazione di Biomateriali per l&#39;ampliamento vescicale con analisi cistometrici in modelli di roditori vari

In questo video, descriviamo una procedura basata su catetere per svuotare e risciacquare la vescica urinaria di un modello murino. Il topo preparato può quindi essere utilizzato per ulteriori procedure sperimentali.

Deplezione delle urine e risciacquo della vescica in un modello murino: una procedura basata su catetere per svuotare e lavare la vescica urinaria murina

I circa 3-8 milioni di persone negli Stati Uniti soffrono di sindrome interstiziale dolore cistite / vescica (IC / BPS), una condizione debilitante caratterizzata in parte da dolore pelvico. Per studiare contributi del sistema nervoso alla condizione, un modello fisiologico di dolore vescica urinaria è utilizzato in topi e ratti.

Vescica urinaria Distensione Evocati visceromotoria Risposte come un modello per il dolore della vescica nei topi

Il modello stabilito di cateterizzazione transuretrale dei topi permette lo studio delle patologie della vescica, compreso l'infezione delle vie urinarie, ma può essere eseguito solo nelle femmine. Un nuovo modello di maschio instillazione transuretrale, qui presentato, consentirà la ricerca in un'area segnata da forti differenze cliniche ed epidemiologiche tra i sessi.

Infezione di apparato urinario in un modello animale piccolo: cateterizzazione transuretrale di topi maschi e femmine

Questo studio descrive le procedure chirurgiche e le tecniche sperimentali per eseguire la cistometria sveglia in un mouse in movimento. Inoltre, fornisce prove sperimentali per sostenere la sua ottimizzazione e standardizzazione.

Valutazione della procedura per eseguire la cystometria sveglia in un modello di mouse

Questo protocollo descrive prima la procedura chirurgica di impianto permanente di un catetere vescicale combinato con elettrodi dello sfintere uretrale esterno e la seconda, la misurazione della funzione della vescica urinaria e uretra esterno sfintere in animali svegli impiantati.

Cistometrici ed esterni misure dello sfintere uretrale in ratti svegli con catetere impiantato ed elettrodi consentendo misurazioni ripetute

Descriviamo l'uso di ultrasuoni ad alta frequenza con imaging a contrasto come un metodo per misurare il volume della vescica, lo spessore della parete della vescica, la velocità delle urine, il volume del vuoto, la durata del vuoto e il diametro uretrale. Questa strategia può essere utilizzata per valutare la disfunzione di vuoto e l'efficacia del trattamento in vari modelli murini di disfunzione del tratto urinario inferiore (LUTD).

Ultrasonografia del tratto urinario maschile adulto per test funzionali urinari

Questo protocollo descrive la procedura per misurare le concentrazioni di ATP nel lume della vescica in un roditore anestetizzato.

In vivo Misurazione luminale del rilascio uroteliale di ATP evocato dalla distensione nei roditori

Questo articolo descrive un nuovo metodo per studiare il comportamento di minzione del topo incorporando il monitoraggio video nel test convenzionale del punto vuoto. Questo approccio fornisce informazioni temporali, spaziali e volumetriche sugli eventi di svuotamento e sui dettagli del comportamento del mouse durante le fasi di luce e buio del giorno.

Saggio spot del vuoto in tempo reale

Questo protocollo fornisce una guida per impermeabilizzare la pelle con cianoacrilato per prevenire l'assorbimento dell'urina da parte del pelo e della pelle. Include le istruzioni per l'applicazione della colla sulla pelle, l'impianto di un catetere vescicale ed elettrodi per la cistometria e le registrazioni elettromiografiche dello sfintere uretrale esterno nei topi svegli.

Ottimizzazione delle tecniche urodinamiche del topo per una maggiore precisione 

Impara la cistometria in piccoli roditori per studiare la funzione vescicale in vivo. Questo metodo misura pressione intravescicale e volume urinario per analizzare l'effetto di composti chimici sulla minzione.

L'uso di cistometria in piccoli roditori: A Study of Chemosensation vescica

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