Name: Sostituzione ovariectomia e 17β-estradiolo in ratti e topi: A dimostrazione visiva (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-07T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 51 s
Description: Impara la sostituzione ormonale con ovariectomia in ratti e topi femmine usando capsule silastiche e Nutella orale. Questo metodo garantisce controllo stabile dei livelli di 17β-estradiolo sierico per studi endocrinologici.

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Lo studio è stato finanziato da Linköping University e il Consiglio della Contea di Östergötland.

1. Ovariectomia attraverso la via dorsale <ol><li> Anestetizzare la animale, ad esempio utilizzando 1,5% isoflurano (4% per l&#39;induzione) in ossigeno / ossido nitroso 30% / miscela di 70%. Posizionare l&#39;animale in posizione prona su una piastra riscaldante collegata ad un termometro rettale. È importante avere un sottile strato di isolamento tra l&#39;animale e la piastra, e che il feed-back termometro mantiene la temperatura corporea entro 37 ± 0,5 ° C. Applicare il gel per la protezione degli occhi e Rimadyl somministrare 5 mg / kg di peso corporeo, diluito in soluzione salina per via sottocutanea nella regione laterale del collo dell&#39;animale per alleviare il dolore post-operatorio. </li><li> Radere un 4 * 4 cm (3 * 3 cm per topi) area cephally dalla cresta iliaca. Lavarsi accuratamente rasata con per Jodopax esempio, prima di coprire l&#39;animale con un 4 4 * foglio di intervento chirurgico di apertura cm. </li><li> Eseguire un&#39;incisione 2-3 cm linea mediana e senza mezzi termini sezionare la cute dalla fascia sottostante. Uno cm lateralmente alla linea mediana, fare un altro thro incisioneugh la fascia. Schiettamente sezionare lateralmente sotto questa fascia superficialmente quanto possibile fino a raggiungere la cavità addominale. </li><li> Con una pinzetta, afferrare il tessuto adiposo che circonda l&#39;ovaio nella cavità addominale ed estrarla delicatamente. Identificare l&#39;ovaio e legare le corna uterine e dei vasi 0,5-1 cm prossimalmente di questa struttura. Tagliare il ovaie e tessuto adiposo ligato e rimettere il restante tessuto nella cavità addominale. Fai un&#39;altra incisione nella fascia controlaterale e ripetere la procedura. </li><li> Chiudere le ferite, preferibilmente utilizzando una sutura monofilamento, e lasciare che l&#39;animale sveglia dall&#39;anestesia. Posizionare l&#39;animale in una gabbia riscaldata (25-27 ° C) per almeno 2 ore dopo l&#39;intervento. Gli animali devono essere alloggiati separatamente i primi giorni dopo l&#39;intervento. E &#39;fondamentale che la gabbia è frequentemente pulite / sostituite durante la fase di recupero. Ventiquattro ore dopo l&#39;intervento, gli animali iniettare per via sottocutanea con un altro Rimadyl 5 mg / kg di peso corporeo, diluito insalina. </li></ol> 2. La somministrazione sottocutanea di 17β-estradiolo attraverso capsule silastic <ol><li> Mescolare la quantità desiderata di 17β-estradiolo in olio di sesamo. Per le concentrazioni fisiologiche in ratti e topi, si consiglia di 180 mcg / ml e 18-36 mg / mL, rispettivamente. Capsule di placebo sono riempiti con olio di sesamo puro. </li><li> Tagliare 3 cm (2 cm per topi) la lunghezza dei tubi silastic e 5 mm (3 mm per i topi) lunghezze di bastoncini di legno per collegare applicatori. Utilizzando pinze, stringere un tappo di legno nella capsula silastic prima di iniettare la soluzione 17β-estradiol/sesame olio per riempire l&#39;intera lunghezza. Delicatamente tappare la capsula silastic alla fine aperta con un altro tappo di legno (i tappi sono tenuti a restare permanentemente nella capsula). Incubare le capsule restanti 17β-estradiolo soluzione durante la notte prima dell&#39;impianto. </li><li> L&#39;impianto della capsula può essere eseguita durante l&#39;anestesia utilizzato a ovariectomia nei ratti. Per mice, tuttavia, un periodo di 14 giorni di recupero dopo ovariectomia Si raccomanda di minimizzare il rischio della capsula sporgente attraverso la pelle fragile. </li><li> Dopo i preparativi chirurgici come in 1.1, o dopo la chiusura l&#39;incisione ovariectomia, barba e lavare a * 2 2 zona centimetri sulla parte dorsale del collo dell&#39;animale. Eseguire un&#39;incisione 1 cm e senza mezzi termini sezionare una tasca sottocutanea caudolaterally, con ampio spazio per la capsula. Pulire la capsula silastic (che fino a questo punto temporale è stato incubato nella 17β-estradiolo soluzione) e delicatamente installare attraverso l&#39;incisione, che viene successivamente chiusa da una sutura. È fondamentale per assicurarsi che i ceppi capsula la pelle il meno possibile, in particolare nella zona vicino alla ferita. Da produzione di capsule per l&#39;impianto, è importante che sia evitata la contaminazione. </li></ol> 3. Somministrazione orale di 17β-estradiolo tramite il Nut-crema Nutella <ol><li> Accuratamente sciogliere 17β-estradiolo in olio di sesamo, e poi mescolare l&#39;olio di sesamo con la Nutella. Si raccomanda che ogni porzione giornaliera contiene 28 mcg 17β-estradiolo, 5 olio di sesamo e 1 pl Nutella g per chilogrammo di peso corporeo per i ratti e 1,12 mcg 17β-estradiolo, 0,312 olio di sesamo e 60 microlitri Nutella mg per ogni 30 g mouse. Placebo nut-crema è preparata in modo identico, tranne senza il 17β-estradiolo. </li><li> Formare gli animali a mangiare senza ormoni nut-crema per cinque giorni precedenti l&#39;esperimento. I primi tre giorni di formazione, i topi devono essere formati in modo ottimale in gruppi (circa 0,5 g di Nutella 2-5 animali), nelle loro gabbie a casa. Nei giorni in quarta e quinta della formazione, gli animali vengono messi in gabbie separate prima di ricevere la quota giornaliera per assomigliare alla situazione sperimentale. </li><li> Durante l&#39;esperimento, gli animali vengono messi in gabbie separate per ogni occasione alimentazione, dopo che la porzione Nutella viene servita su piccole piastrelle ceramiche. Se la formazione è stata effettuata come sopra, our esperienza è che oltre il 95% dei ratti e topi accettare il dado-crema, e una volta completamente abituato, la maggior parte degli animali che consumano in pochi secondi. </li></ol> 4. Risultati rappresentativi Fisiologici siero concentrazioni di 17β-estradiolo, che i metodi attuali mirano a riprodurre, sono circa 5-140 pg / mL per topi e 5-35 pg / mL per i topi 4,6. Le capsule sottocutanee silastic secondo le istruzioni di cui sopra, se somministrato a 300 g femmina Sprague-Dawley, producono lentamente diminuendo le concentrazioni sieriche 17β-estradiolo di circa 40 pg / mL giorno 2 al 10 pg / mL giorno 35. Tuttavia, subito dopo la somministrazione, un picco di concentrazione sierica circa 1000 pg / mL può prevedere, cadendo per l&#39;intervallo fisiologico entro 8 ore (Figura 1A) 4,5. Le capsule silastic per topi descritti in precedenza con 36 pg 17β-estradiol/mL, quando somministrato a 25 g femmina C57BL / 6 topi, rendono siero concentrations che lentamente diminuire da circa 90 pg / ml 2 giorni a 25 pg / mL 35 giorni. Questo è probabilmente preceduta da un picco simile è stata trovata nei ratti, anche se questo non è stato studiato (figura 1B) 6. Il metodo Nutella via orale con i dosaggi sopra descritto, quando somministrato a 300 g femmina Sprague-Dawley, rende livelli fisiologici di 17β-estradiolo con fluttuazioni giornaliere comprese tra 10-70 pg / ml (Figura 2A) 4. Per topi usando il dosaggio sopra, i livelli giornalieri oscillano tra circa 20 e 120 pg / mL (Figura 2B) 6. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/4013/4013fig1.jpg" /> <st<html> Rong.&gt; Figura 1 grafici stilizzati che presentano concentrazioni di 17β-estradiolo nel ratto (A; n = 10 punti in-time fino a 24 h, n = 15 in un momento successivo i punti) 4,5 e topi (B, n = 10) 6 capsula dopo l&#39;impianto. Le capsule silastic producono un breve picco iniziale di concentrazioni sieriche fino a 1000 pg / mL, ma calo in poche ore a livelli inferiori a 100 pg / mL. Per le prossime settimane 4-5, le capsule resa stabile, anche se in costante diminuzione, le concentrazioni sieriche. Le aree ombreggiate corrispondono a concentrazioni sieriche fisiologiche 17β-estradiolo in intatti femmine di ratto e nel topo, rispettivamente. Anche se non visivamente dimostrato nei grafici, non vi è variabilità inter-individuale nelle concentrazioni di 17β-estradiolo, rendendo coefficienti di variazione 27-183% nei ratti e dal 28 al 115% nei topi con il metodo della capsula silastic (media molto bassa concentrazioni spesso generano elevati coefficienti di variazione). iles/ftp_upload/4013/4013fig2.jpg &quot;/&gt; Figura 2 grafici stilizzati presentano 17β-estradiolo concentrazioni nei ratti (A, n = 15). 4 e topi (B, n = 10) 6 a seguito di somministrazione giornaliera di ormone Nutella. Il metodo Nutella perorale rende picchi giornalieri, ma non di gran lunga più alto prodotto da sottocutanea o endovenosa metodi. Questo imita la farmacocinetica della terapia ormonale sostitutiva umana, e il trattamento per via orale può procedere per il tempo necessario, anche se l&#39;esempio precedente solo presentare un primo 96 ore. Le aree ombreggiate corrispondono a concentrazioni sieriche fisiologiche 17β-estradiolo in intatti femmine di ratto e nel topo, rispettivamente. Anche se non visivamente dimostrato nei grafici, non vi è variabilità inter-individuale nelle concentrazioni di 17β-estradiolo, rendendo coefficienti di variazione 40-132% nei ratti e dal 13 al 219% nei topi con il metodo della Nutella (concentrazioni medie molto basse spesso generano altacoefficienti di variazione).

<ol><li>Strom, J. O., Theodorsson, A., Theodorsson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dose-related+neuroprotective+versus+neurodamaging+effects+of+estrogens+in+rat+cerebral+ischemia%3A+a+systematic+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cereb.+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">Dose-related neuroprotective versus neurodamaging effects of estrogens in rat cerebral ischemia: a systematic analysis.</a> J. Cereb. Blood Flow Metab. 29, 1359-1372 (2009).</li>
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<li>Saleh, T. M., Cribb, A. E., Connell, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estrogen-induced+recovery+of+autonomic+function+after+middle+cerebral+artery+occlusion+in+male+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Regul.+Integr.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Estrogen-induced recovery of autonomic function after middle cerebral artery occlusion in male rats.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 281, 1531-1539 (2001).</li>
<li>Bingham, D., Macrae, I. M., Carswell, H. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detrimental+effects+of+17beta-oestradiol+after+permanent+middle+cerebral+artery+occlusion%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cereb.+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">Detrimental effects of 17beta-oestradiol after permanent middle cerebral artery occlusion.</a> J. Cereb. Blood Flow Metab. 25, 414-420 (2005).</li>
<li>Carswell, H. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+effects+of+17beta-estradiol+upon+stroke+damage+in+stroke+prone+and+normotensive+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cereb.+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">Differential effects of 17beta-estradiol upon stroke damage in stroke prone and normotensive rats.</a> J. Cereb. Blood Flow Metab. 24, 298-304 (2004).</li>
<li>Yong, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((17beta-estradiol+potentiates+ischemia-reperfusion+injury+in+diabetic+ovariectomized+female+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">17beta-estradiol potentiates ischemia-reperfusion injury in diabetic ovariectomized female rats.</a> Brain Res. 1054, 192-199 (2005).</li>
<li>Theodorsson, A., Theodorsson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estradiol+increases+brain+lesions+in+the+cortex+and+lateral+striatum+after+transient+occlusion+of+the+middle+cerebral+artery+in+rats%3A+no+effect+of+ischemia+on+galanin+in+the+stroke+area+but+decreased+levels+in+the+hippocampus%5BTitle%5D)+AND+%22Peptides%22%5BJournal%5D)">Estradiol increases brain lesions in the cortex and lateral striatum after transient occlusion of the middle cerebral artery in rats: no effect of ischemia on galanin in the stroke area but decreased levels in the hippocampus.</a> Peptides. 26, 2257-2264 (2005).</li>
<li>Levin-Allerhand, J. A., Sokol, K., Smith, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safe+and+effective+method+for+chronic+17beta-estradiol+administration+to+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp.+Top+Lab+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">Safe and effective method for chronic 17beta-estradiol administration to mice.</a> Contemp. Top Lab Anim. Sci. 42, 33-35 (2003).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Le modalità di somministrazione sopra riportati in studi precedenti hanno dimostrato superiore al commerciali a lento rilascio pellets e le iniezioni in termini di produzione di fisiologiche concentrazioni sieriche di 17β-estradiolo. Mentre il pellets a lento rilascio producono molto elevati e prolungati picchi di concentrazione sierica, le iniezioni causano estreme, fluttuazioni ormonali giornaliere e richiedono ripetute stressante la gestione degli animali 4-6. L&#39;importanza di scegliere le modalità di s...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reattivo </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Comments </td></tr><tr><td> Rimadyl, 50 mg / mL </td><td> Pfizer </td><td> 462986 </td><td> Analgesia postoperatoria dopo ovariectomia. </td></tr><tr><td> Lubrithal eye gel </td><td> Leo Laboratories </td><td></td><td> Protezione degli occhi durante l&#39;intervento chirurgico. </td></tr><tr><td> Jodopax veterinario </td><td> Pharmaxim </td><td></td><td> Chirurgia disinfezione. </td></tr><tr><td> Vicryl filo di sutura 4-0 </td><td> Johnson &amp; Johnson </td><td></td><td> Ferita di sutura e legatura dell&#39;ovaio. </td></tr><tr><td> 17β-estradiolo,&gt; 98% </td><td> Sigma </td><td> E8875-1G </td><td> In olio di sesamo per le capsule silastic e Nutella. </td></tr><tr><td> Olio di sesamo </td><td> Sigma </td><td> S3547-1L </td><td> Dissolvere il 17β-estradiolo. </td></tr><tr><td> Tubazione di silastic, ID / OD: 1.575/3.175 millimetri </td><td> Dow Corning </td><td> 508-008 </td><td> Produzione di capsule silastic. </td></tr><tr><td> Applicatore bastone di legno </td><td> Selefatrade </td><td> 12-0783 </td><td> Riduzione delle capsule silastic. </td></tr><tr><td> Nutella </td><td> Ferrero </td><td></td><td> Media per via orale 17β-estradiolo. </td></tr></tbody></table>

sostituzione ovariectomia e 17β-estradiolo in ratti e topi: a dimostrazione visiva

Ovariectomy and 17&beta;-estradiol Replacement in Rats and Mice: A Visual Demonstration

Gli estrogeni sono una famiglia di ormoni sessuali femminili, con una gamma eccezionalmente ampia di effetti. Quando i ratti e topi sono utilizzati nella ricerca estrogeni sono comunemente ovariectomizzati al fine di asportare la produzione di ormoni a ciclo rapido, che sostituisce il 17β-estradiolo esogena. Vi è, tuttavia, la mancanza di consenso per quanto riguarda come l&#39;ormone deve essere somministrato per ottenere fisiologiche concentrazioni sieriche. Questo è fondamentale in quanto il livello di 17β-estradiolo / amministrazione metodo influenza profondamente i risultati sperimentali 1-3. Abbiamo in una serie di studi hanno caratterizzato i diversi modi di 17β-estradiolo amministrazione, scoprendo che sottocutanei silastic capsule per via orale e per-nut-crema Nutella sono superiori al disponibili in commercio a lento rilascio pellets (prodotto dalla società di ricerca innovativa d&#39;America) e iniezioni giornaliere in termini di produzione di fisiologiche concentrazioni sieriche di 17β-estradiolo 4-6. Tra le advantages del dado-crema metodo, che precedentemente è stato usato per la somministrazione di buprenorfina 7, che quando è utilizzato per somministrazione di estrogeni assomiglia perorale terapia di sostituzione ormonale e non è invasivo. Le capsule silastic sottocutaneo sono convenienti e producono più stabili le concentrazioni sieriche. In questo articolo video contiene step-by-step dimostrazioni di ovariectomia e 17β-estradiolo sostituzione ormonale da capsule silastic e Nutella per via orale in ratti e topi, seguiti da una riflessione su aspetti importanti delle procedure amministrative.

Ovariectomia e la sostituzione successiva di 17β-estradiolo per mezzo di capsule silastic e Nutella per via orale sono dimostrate in ratti e topi.

Sostituzione ovariectomia e 17β-estradiolo in ratti e topi: A dimostrazione visiva

Gli estrogeni sono una famiglia di ormoni sessuali femminili con uno spettro di effetti eccezionalmente ampio. Quando ratti e topi vengono utilizzati nella ricerca sugli estrogeni, essi sono...

L'obiettivo generale di questa procedura è ottenere un controllo rigoroso sulle concentrazioni sieriche di estrogeni, normalmente fluttuanti, nei ratti e nei topi femmina. Questo risultato si ottiene innanzitutto rimuovendo le ovaie mediante l'approccio dorsale. Successivamente vengono preparate capsule elastiche di cel e una miscela di Nutella.Infine, una capsula viene inserita per via sottocutanea oppure la miscela di Nutella viene somministrata per via orale. In definitiva, i risultati possono essere ottenuti mediante radioimmunoanalisi, che mostra concentrazioni sieriche stabili o fluttuanti di 17 beta-estradiolo rispettivamente per il metodo della capsula e per quello della Nutella. Il vantaggio principale di queste tecniche rispetto ai metodi esistenti, come i pellet a rilascio lento, è che si è dimostrato che producono concentrazioni fisiologiche di estradiolo per periodi prolungati di tempo.Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo degli estrogeni, come le differenze negli effetti tra somministrazione, vie e dosaggi. Dopo aver anestetizzato l'animale, posizionarlo in posizione prona su una piastra riscaldata collegata a un termometro rettale. Applicare IGEL e per il sollievo postoperatorio sulla faccia laterale del collo dell'animale per via sottocutanea.Somministrare cinque milligrammi per chilogrammo di IL in soluzione salina in una zona anteriore rispetto alla cresta iliaca, di dimensioni quattro per quattro centimetri. Quindi disinfettare l'area con un antisettico prima di coprire l'animale con un telo chirurgico dotato di un'apertura di quattro per quattro centimetri. Eseguire un'incisione mediana lunga da due a tre centimetri ed effettuare una dissezione ottusa della cute dalla fascia sottostante, a un centimetro di distanza laterale rispetto alla linea mediana.Eseguire un'altra incisione attraverso la fascia. Quindi, nel modo più superficiale possibile, dissezionare in modo ottuso lateralmente sotto questa fascia fino a raggiungere la cavità addominale. Utilizzando una pinzetta, afferrare il tessuto adiposo che circonda l'ovaio nella cavità addominale ed estrarlo delicatamente.Identificare l'ovaio e legare le corna uterine e i vasi. Da 0,5 a un centimetro prossimalmente rispetto a questa struttura. Asportare l'ovaio e il tessuto adiposo legato e riposizionare il tessuto rimanente nella cavità addominale.Eseguire un'altra incisione nella fascia controlaterale ed asportare l'altro ovaio. Chiudere le ferite e, se non si somministra immediatamente 17 beta estradiolo, lasciare che l'animale si risvegli dall'anestesia.Posizionare l'animale in una gabbia riscaldata per almeno due ore dopo l'intervento chirurgico. Alloggiare il ratto separatamente per i primi giorni dopo l'intervento. 24 ore dopo l'intervento, per via sottocutanea.Iniettare negli animali altri cinque milligrammi per chilogrammo di IL per somministrare 17 beta-estradiolo mediante capsule di silastic. Mescolare accuratamente la quantità desiderata in olio di sesamo. Tagliare pezzi di tubo di silastic lunghi tre centimetri e pezzi di bastoncini di legno lunghi cinque millimetri per tappare utilizzando pinzette.Inserire un tassello di legno nella capsula scolastica prima di iniettare la soluzione di 17 beta-estradiolo in olio di sesamo. Per riempire l'intera lunghezza, chiudere delicatamente l'estremità aperta della capsula scolastica con un altro tassello di legno. Incubare le capsule nella soluzione rimanente di 17 beta-estradiolo durante la notte prima dell'impianto.Dopo aver chiuso le incisioni dell'ectomia, rasare e disinfettare un'area quadrata di due per due centimetri sulla faccia dorsale del collo del ratto. Praticare un'incisione di un centimetro e dissezionare lateralmente e in modo ottuso. Creare una tasca sottocutanea, assicurando spazio sufficiente per la capsula.Pulire delicatamente la capsula scolastica e inserirla con cautela attraverso l'incisione. Chiudere quindi l'incisione con un punto di sutura. Assicurarsi che la capsula solleciti il tessuto cutaneo il meno possibile, in particolare intorno alla ferita.Per utilizzare la crema di noci Nutella come mezzo di somministrazione di estrogeni, sciogliere completamente l'17 beta-estradiolo nell'olio di sesamo, quindi mescolare l'olio di sesamo con la crema di noci. Preparare una crema di noci placebo senza l'17 beta-estradiolo per cinque giorni prima dell'esperimento. Addestrare i ratti a mangiare la crema di noci priva di ormoni nei giorni uno, due e tre.Addestrare gli animali in gruppi il quarto e il quinto giorno. Nutrirli con la crema di noci in gabbie separate per tutta la durata degli esperimenti. Posizionare gli animali in gabbie separate quando vengono somministrati la crema di noci e il siero fisiologico.Le concentrazioni di estradiolo 17 beta, che i metodi attuali mirano a riprodurre, sono approssimativamente da cinque a 140 picogrammi per millilitro nei ratti e da cinque a 35 picogrammi per millilitro nei topi. Come mostrato qui. Quando somministrate a ratti femmina di 300 grammi della linea Sprague Dawley.Le capsule elastiche sottocutanee producono concentrazioni sieriche di 17 beta-estradiolo in lenta diminuzione, da circa 40 picogrammi per millilitro al secondo giorno fino a 10 picogrammi per millilitro al giorno 35. Tuttavia, immediatamente dopo la somministrazione, si può osservare un picco di concentrazione sierica di circa 1000 picogrammi per millilitro, che rientra nel range fisiologico entro otto ore, quando le capsule vengono somministrate a topi femmine C57 Black Six del peso di 25 grammi.La concentrazione sierica è diminuita lentamente da circa 90 picogrammi per millilitro al secondo giorno a 25 picogrammi per millilitro al giorno 35 quando somministrata tramite la crema di noci a 300 grammi. Spra di ratti. I livelli fisiologici di 17 beta-estradiolo oscillavano giornalmente tra 10 e 70 picogrammi per millilitro nei topi.I livelli di 17 beta estradiolo oscillavano tra 20 e 120 picogrammi per millilitro. Una volta acquisita, la tecnica di ectomia e impianto della capsula può essere eseguita in 10 minuti se effettuata correttamente. Durante il tentativo di questa procedura, è importante ricordare di aderire rigorosamente alle linee guida igieniche.

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Qui, presentiamo un protocollo per l'imaging di vivere di frammenti endometriali umane fluorescente contrassegnati innestate nei topi. Il metodo permette di studiare gli effetti dei farmaci di scelta sulla dimensione della lesione endometriotic attraverso il monitoraggio e la quantificazione della fluorescenza emessa dal reporter fluorescente in tempo...

Monitoraggio non invasivo della dimensione della lesione in un modello murino eterologo di endometriosi

Clinicamente, carenza di estrogeni nelle donne in menopausa può aggravare l'incidenza di perturbazione dei lipidi e aterosclerosi. Abbiamo stabilito un modello di carenza di estrogeni in vivo mediante ovariectomia bilaterale attraverso una doppia incisione dorsale-laterale nei topi apoe-/-. Il modello murino è applicabile per lo screening dei trattamenti estrogeni esogeni della disfunzione cardiovascolare dopo la menopausa.

Un modello di topo a carenza di estrogeni in vivo per lo screening dei trattamenti estrogeni esogeni della disfunzione cardiovascolare dopo la menopausa

In questo articolo viene descritto come eseguire test di comportamento sessuale nei topi maschi.

Valutazione del comportamento sessuale dei topi maschi

Questo protocollo descrive la costruzione di un sistema di microiniezione a basso costo, il suo impianto stereotassico in strutture cerebrali profonde e la procedura per microiniezioni tempori di tetrodotossina in ratti svegli e sfrenati. L'obiettivo è quello di rivelare la partecipazione delle strutture ipotalamiche nella regolazione dell'ovulazione inibendo la loro attività neurale.

Svelare il ruolo delle aree discrete del cervello del ratto nella regolazione dell'ovulazione attraverso l'inattivazione reversibile da microiniezioni di tetrodotossine

Questo manoscritto descrive un modo coerente per eseguire rapidamente orchiectomie e ovariectomie di sopravvivenza nei roditori.

Orchiectomia murina e ovariectomia per ridurre la produzione di ormoni sessuali

L'instaurazione della gravidanza è un processo dinamico che coinvolge l'embrione complesso e la diafonia uterina. I contributi precisi dell'ambiente uterino materno a questi processi rimangono un'area attiva di indagine. Qui, vengono forniti protocolli dettagliati per aiutare a progettare modelli animali in vivo per affrontare queste domande di ricerca.

Metodi per studiare i contributi uterini all'instaurazione della gravidanza in un modello murino ovariectomizzato

Qui viene presentato un protocollo per dimostrare che la capsula di Bazi Bushen (BZBS) può regolare la via di segnalazione RANKL/OPG nel modello di roditore ovariectomizzato attraverso il suo effetto estrogeno-simile.

Effetto estrogeno-simile della capsula di Bazi Bushen nei ratti ovariectomizzati

L'ormone follicolo-stimolante (FSH) in vari tessuti e organi extragonadici è associato alla patogenesi di molteplici malattie. Il modello murino ovariectomizzato e trattato con FSH (OVF) può essere utilizzato per esplorare le azioni extragonadiche di FSH.

Esplorazione degli effetti indipendenti dell'ormone follicolo-stimolante in vivo in un modello murino

Questo protocollo introduce una tecnica per indurre modelli di sindrome dell'ovaio policistico (PCOS) nei topi attraverso il rilascio controllato di letrozolo utilizzando mini-pompe. In anestesia adeguata, la mini-pompa è stata impiantata per via sottocutanea e la PCOS è stata indotta con successo nei topi dopo un certo periodo di rilascio della mini-pompa.

Una tecnica modificata per indurre la sindrome dell'ovaio policistico nei topi

Impara la sostituzione ormonale con ovariectomia in ratti e topi femmine usando capsule silastiche e Nutella orale. Questo metodo garantisce controllo stabile dei livelli di 17β-estradiolo sierico per studi endocrinologici.

Sostituzione ovariectomia e 17β-estradiolo in ratti e topi: A dimostrazione visiva

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