Name: Trasformazione genomica del Picoeukaryote Ostreococcus Tauri (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-07-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 45 s
Description: Impara la trasformazione genetica di Ostreococcus tauri mediante elettroporazione per generare linee transgeniche stabili. Questo metodo sfrutta la semplicità genomica di questo alga marina come modello per la biologia vegetale.

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SynthSys un Centro per Integrative Systems Biology e finanziato dalla BBSRC premio D019621 EPSRC. EU FP6 Network of Excellence borsa di studio &quot;Marine Genomics&quot; per Fyb ha finanziato lo sviluppo di metodi di trasformazione genetica.

1. Preparazione del materiale algale <ol><li> Ostreococcus cellule sono coltivate in acqua di mare artificiale (ASW). Sali marini (tipicamente circa 40 grammi per litro) vengono sciolti in acqua deionizzata ad una salinità di 30 ppt, come misurato utilizzando un misuratore salinità. Terreno di arricchimento 11,12, elementi metallici oligoelementi e le vitamine sono aggiunti, come descritto nelle tabelle 1-3. I mezzi di comunicazione è quindi sterilizzata con filtro attraverso un filtro di 0,22 micron. </li><li> Per la manutenzione, le cellule del ceppo Ostreococcus OTTH95 sono sub-colta in modo asettico ad una diluizione di 1/100 in fresco ASW ogni 7 giorni e cresciuto sotto la luce costante in un incubatore di crescita delle piante dotate di filtro blu chiaro di luna. L&#39;intensità della luce deve essere vicino a 20 pmol m -2 s -1 e la temperatura viene mantenuta a 20 ° C. Le cellule non richiedono agitazione costante, ma vengono agitate ogni 2 o 3 giorni per prevenire l&#39;aggregazione. </li><li> Per ogni trasformazione, 50 ml di cellule sono richiesti in una cella density di 20-30 x 10 6 ml -1, che dovrebbe essere raggiunto 5-7 giorni a seguito di sub-coltura. Densità approssimativa delle cellule e axeny può essere determinata utilizzando la citometria a flusso o un emocitometro ad un minimo di ingrandimento x40. </li></ol> 2. Elettroporazione <ol><li> Preparare DNA per la trasformazione. Per ogni trasformazione, 5 pg di pura, DNA plasmidico linearizzato è richiesto ad una concentrazione di 1 pg / pl in acqua deionizzata sterile. Per ottenere questo DNA, gli autori raccomandano utilizzando un kit Qiagen midi preparazione, anche se altri metodi potrebbe funzionare ugualmente bene. Digerire il prodotto con un enzima che taglia nella spina dorsale del vettore utilizzato, ma non nel transgene o gene di selezione. Ulteriori purificare e concentrare il DNA lineare risultante dalla precipitazione con etanolo, e risospendere il prodotto in volume appropriato di alta qualità acqua sterile deionizzata. </li><li> Preparare le provette per microcentrifuga DNA contenenti 5 mg per ogni trasformazione. A Control senza DNA è necessaria per ciascuna linea cellulare da trasformare. Conservare le provette su ghiaccio, unitamente ad una cuvetta elettroporazione 2 mm per ogni trasformazione. </li><li> Preparare 2,2 ml di tampone risospensione per la trasformazione. Sciogliere Sorbitolo di una soluzione 1 M in ddh 2 O, aggiungere 0,1% acido Pluronic F68 e filtro-sterilizzare. </li><li> Aggiungere acido Pluronic F68, ad una concentrazione finale di 0,1% per le cellule, e pellet per 10 minuti a 8000X g a 10 ° C in una provetta da 50 ml con fondo conico. Immediatamente risospendere le cellule in 1 ml di tampone di risospensione pipettando su e giù, e trasferire una provetta da microcentrifuga. Centrifugare per 10 minuti a 8000 xg a 10 ° C, e lavorare velocemente, ripetere questo passaggio di lavaggio ancora una volta. </li><li> Con una punta di taglio, risospendere ogni finale pellet in 40 microlitri di buffer di risospensione. Aggiungere 40 microlitri delle cellule risospese ad ogni tubo di DNA linearizzato su ghiaccio, mescolare delicatamente e trasferire nella cuvetta elettroporazione. </li><li> Mettere la cuvetta nel electroporazione macchina. Modificare le impostazioni a 6 kV cm -1, 600 Ω, e 25 uF. Elettroporare le cellule. </li><li> Incubare le cellule electoporated nelle cuvette a temperatura ambiente per 10 minuti, e usare questo tempo per preparare le fiasche di coltura di tessuto. Etichettare e aggiungere 30 ml di fresco ASW a ciascuno. Prendere 1 ml da ogni pallone e delicatamente aggiungere alla cuvetta corrispondente. Incubare per 2 minuti e rimuovere delicatamente il ASW, che ora contiene il globulo di cellule e delicatezza pipettare direttamente nel ASW nel pallone cultura. </li><li> Le cellule rimangono tipicamente in un globulo. Fare attenzione a non scuotere o disturbare le cellule aggregate in questo momento. Consentire alle cellule di recuperare in incubatrice per 1-2 ore, poi risospendere agitando le staffe. A questo punto, le cellule devono Risospendere liberamente e senza grumi dovrebbero essere visibili. Lasciare le culture per recuperare durante la notte in incubatrice. </li></ol> 3. Inclusione di Celle Piastre in terreno semisolido <ol><li&gt; Il giorno successivo, in autoclave una soluzione di 2,1% agarosio a basso punto di fusione in ddh 2 O in una bottiglia contenente una bacchetta. Mantenere fuso a 65-90 ° C in un becker contenente acqua maggiore su un agitatore magnetico riscaldamento. Per ogni trasformazione preparare 8 Petri (55 mm di diametro) e 8 x 15 ml ciascuna provette contenenti 9 ml di ASW e la selezione desiderata. Se si utilizza Nourseothricin o G418, usare 2 mg / ml. </li><li> Raccogliere le cellule trasformate dal termostato. Lavorando in uno flowhood sterile, aggiungere 1 ml di agarosio LMP bollente al ml 9 in uno dei tubi. Chiudere la provetta, e mescolare per inversione. Poi aggiungere 0,5 ml di cellule appena trasformate, mescolare velocemente e versare nel piatto. Ripetere questa operazione con i restanti 7 tubi e quindi procedere al pallone trasformazione successiva. </li><li> Lasciare le piastre aprono nella cappa a flusso per un&#39;ora, per l&#39;agarosio per impostare. Quindi chiudere le piastre e trasferirli ai grandi piatti quadrati Petri, che terrà la 4 piatti ciascuno. Sigillare l&#39;arguzia piazza piastreh parafilm. Si noti che le piastre non si imposta completamente, e come risultato, il gel è molto fragile. Si deve prestare attenzione a non rompere il gel durante la manipolazione delle lastre. Mettere tutti i piatti quadrati in incubatrice. </li></ol> 4. Selezione delle colonie trasformate <ol><li> Le colonie dovrebbe apparire dopo 10 a 21 giorni sulle piastre di trasformazione, ma non sui piatti finti trasformati. Per scegliere le colonie usare una pipetta 200 ml con cut-off suggerimenti. Basta selezionare le colonie libere e succhiare la colonia verde. Fare attenzione a non includere le cellule delle colonie vicine. </li><li> Trasferire le cellule a 2 ml di terreno liquido contenente la selezione, in una piastra a 24 pozzetti. Quando si utilizza Nourseothricin, utilizzare 1,75 mg / ml. Mescolare pipettando su e giù. Selezionare 24-50 colonie per la trasformazione. Sigillare le piastre con parafilm e trasferimento in incubatrice. </li><li> Dopo una settimana, trasferire 100 ul di ciascun pozzetto a 2 ml fresco ASW con selezione in una piastra a 24 pozzetti e crescere per un additional 7 giorni. Linee cellulari sopravvissuti può essere utilizzato per ulteriori studi. Integrazione stabile nel numero genoma e l&#39;inserimento devono essere analizzati mediante PCR e Southern Blot. Il DNA genomico può essere ottenuta per tali scopi utilizzando qualsiasi down-scala metodo standard per l&#39;estrazione del DNA vegetale. </li></ol> 5. Risultati rappresentativi Dividi celle 1/100 ha raggiunto una densità di 25 milioni di cellule per millilitro dopo essere cresciuto per 7 giorni. Elettroporazione delle cellule con le impostazioni appropriate comportato una costante di tempo tra 10 e 14 millisecondi. Quando le cellule sono trasferito su un supporto in fiasche di coltura, una pallina di cellule dovrebbero formare. Quando viene leggermente scosso dopo un&#39;ora, le cellule dovrebbero facilmente riportare in sospensione. L&#39;inclusione di 1 ml cellule trasformate in agar LMP 0,2% dovrebbe comportare in maniera coerente, ma solo semi-solido gel. Le colonie dovrebbe apparire dopo 10 a 21 giorni. Quando trasformando 5 pg di DNA linearizzato usando il protocollo sopra, 50-100 colonie per trasformazionepiastra sono state generalmente previsto, contro nessuno sulle piastre di controllo negativo. ~ 80% delle colonie sono state raccolte selezionate positivamente dalla resistenza agli antibiotici in terreno liquido e sono stati usati in studi successivi. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> Concentrazione finale </td><td> Soluzione madre </td><td> Volume per 1 litro </td></tr><tr><td> NaNO 3 </td><td> 8,83 x 10 -4 M </td><td> 75 g / L dH 2 O </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> NH 4 Cl </td><td> 3,63 x 10 -5 M </td><td> 2,68 g / L dH 2 O </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> β-glicerofosfato </td><td> 1 x 10 -5 M </td><td> 2,16 g / L dH 2 O </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> H 2 SeO 3 </td><td> 1 x 10 -8 M </td><td> 1,29 mg / L dH 2 O </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> Tris-base (pH 7,2) </td><td> 1 x 10 -3 M </td><td> 121,1 g / L dH 2 O </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> K metalli in tracce soluzione </td><td></td><td> Tabella 2 </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> f / 2 una soluzione di vitamine </td><td></td><td> Tabella 3 </td><td> 0,5 mL </td></tr></tbody></table> Tabella 1. Componenti medi per la crescita di O. Tauri 11, 12. Portare un volume totale di 1 litro di acqua di mare artificiale a una salinità di 30 ppt, e aggiungere i componenti di cui sopra da soluzioni madre come indicato. Filtro-sterilizzare il terreno e l&#39;uso entro una settimana. Gli stock di tutti i composti tranne la soluzione vitamina può essere mescolati per aggiungere 6 ml di questa soluzione per ogni litro di terreno. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> Concentrazione finale </td><td> Soluzione madre </td><td> Importo per 1 litro </td></tr><tr><td> Na 2 </sub&gt; EDTA • 2H 2 O </td><td> 1 x 10 M -4 </td><td></td><td> 41,6 g </td></tr><tr><td> FeCl 3 • 6H 2 O </td><td> 1 x 10 -5 M </td><td></td><td> 3,15 g </td></tr><tr><td> Na 2 Moo 4 • 2H 2 O </td><td> 1 x 10 -8 M </td><td> 6,3 g / L dH 2 O </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> ZnSO 4 • 7H 2 O </td><td> 1 M x 10 -9 </td><td> 22,0 g / L dH 2 O </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> • CoCl 2 6H 2 O </td><td> 1 M x 10 -9 </td><td> 10,0 g / L dH 2 O </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> MnCl 2 • 4H 2 O </td><td> 1 x 10 -8 M </td><td> 180,0 g / L dH 2 O </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> CuSO 4 • 5H 2 O </td><td> 1 x 10 -8 M </td><td> 9,8 g / L dH <sub&gt; 2 O </td><td> 1 mL </td></tr></tbody></table> Tabella 2. Tracciare una soluzione in metallo 11,12. Portare ad un totale di 1 litro, in dH 2 O, e il calore per sciogliere. Aliquotare la soluzione per lo stoccaggio e congelamento. Le concentrazioni finali indicati si riferiscono al mezzo finale, non la soluzione dei metalli in tracce. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> Concentrazione finale </td><td> Soluzione madre </td><td> Importo per 1 litro </td></tr><tr><td> La vitamina B 12 </td><td> 1 x 10 -10 M </td><td> 1 g / L dH 2 O </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> Biotina </td><td> 1 M x 10 -9 </td><td> 0,1 g / L dH 2 O </td><td> 10 mL </td></tr><tr><td> • Tiamina HCl </td><td> 1 x 10 -7 M </td><td></td><td> 200 mg </td></tr></tbody></table> Tabella 3. f / 2vitamina soluzione 11. portare a un totale di 1 litro in dH 2 O, filtro-sterilizzare, aliquotare e congelare. Le concentrazioni finali indicati si riferiscono al mezzo finale, non la soluzione di vitamine. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/4074/4074fig1.jpg" /> Figura 1. Visione grafica della procedura di trasformazione. Rappresentazione schematica della procedura per trasformare geneticamente Ostreococcus tauri mediante elettroporazione. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/4074/4074fig2.jpg" /> Figura 2. Crescita delle cellule della Cultura. Sono sub-colta in modo asettico ad una diluizione di 1/100 in fresco ASW ogni 7 giorni e cresciuto sotto la luce costante in un incubatore di crescita delle piante dotate di filtro blu chiaro di luna. L&#39;intensità della luce deve essere vicino a 20 pmol m -2 s -1 e la temperatura viene mantenuta a 20 ° C Le cellule non richiedono agitazione costante, ma sono shaken ogni 2 o 3 giorni per prevenire l&#39;aggregazione. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/4074/4074fig3.jpg" /> Figura 3. Formazione di colonie sul 0,2% di agarosio LMP. Transfer 4 piastre per un grande piatto quadrato Petri, e sigillare con parafilm (in alto a sinistra). Quando le colonie si sono formate, è sufficiente selezionare liberi (idealmente forma conica) colonie (in alto a destra) e succhiare fuori della piastra con una pipetta P200. Non ci dovrebbero essere le colonie per i controlli negativi (in basso a destra).

<ol><li>Derelle, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome+analysis+of+the+smallest+free-living+eukaryote+Ostreococcus+tauri+unveils+many+unique+features%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Genome analysis of the smallest free-living eukaryote Ostreococcus tauri unveils many unique features.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103, 11647-11652 (2006).</li>
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Non ci sono conflitti di interesse dichiarati.

Cellular axeny stato e la cultura è di cruciale importanza per la procedura di trasformazione. Sebbene le celle sono generalmente mantenute in cicli di 12 ore di luce, 12 ore buio, l&#39;efficienza della trasformazione in cellule coltivate in queste condizioni sono risultate insufficienti. Durante i ripetuti pellettatura / risospensione passi, le celle devono sempre risospendere facilmente. Se aggregato cellule, o una sostanza simile a muco è presente, è meglio per iniziare la procedura dall&#39;inizio di nuovo. Tipicamente, ~ 50 colonie può essere previsto su ciascuna piastra di trasformazione, rispetto nessuno sulla piastra di controllo negativo. In caso di scarsa efficienza di trasformazione, condizioni di coltura deve essere variato per garantire cellule sono nello stato ottimale. Le variabili che influenzano l&#39;efficienza della trasformazione includono la temperatura ambiente in laboratorio (dovrebbe essere prossima ai 20 ° C) e velocità di movimentazione (Procedura di pellet cellule [2,3] per il recupero [2.7] dovrebbe prendere ~ 1 ora). È altresì importante che tutte le soluzioni are preparato fresco prima di ogni trasformazione. Per l&#39;inclusione in piastre, la concentrazione di agarosio LMP è cruciale. Cellule Ostreococcus non crescerà in concentrazioni elevate di agarosio, e si diffonderà in basse concentrazioni. Tre vettori di trasformazione per Ostreococcus sono stati pubblicati in precedenza 6, e più vettori dovrebbero essere generato e pubblicato a breve. Il vettore esistente Pot-Luc 6 permette l&#39;utilizzo di un promotore di scelta in combinazione con un C-terminale tag lucciola, luciferasi permettendo la selezione della linea più veloce, più modelli di espressione transgenica trattabili, mentre il vettore Potox 6 porta la forte promotore inducibile 13 ricavati dal Ostreococcus alta affinità fosfato Transporter (HAPT) gene per la sovraespressione del gene di interesse. Il Potox-Luc vettore deriva da Potox, portando un marcatore addizionale luciferasi che può essere utilizzato per la selezione indiretta di linee sovraespressione <sup&gt; 14. Marcatori di selezione di successo su questi vettori sono Nourseothricin e G148. Tuttavia, le cellule Ostreococcus sono altamente resistenti a molti antibiotici, e le concentrazioni dei composti necessari per la selezione di cellule transgeniche Ostreococcus è più elevato che per sistemi modello convenzionale (2 mg / ml). Sebbene il processo risulta inefficiente, il numero di cellule e il DNA plasmide necessari per questa procedura non pone alcun ostacolo significativo. Una limitazione è più grande che ogni riga generato che è resistente al marcatore selezionabile deve essere analizzato singolarmente per verificare che l&#39;intero costrutto viene integrato nel DNA. Abbiamo osservato esempi in cui espressione riuscita del marcatore selezionabile non corrispondono all&#39;inserimento del gene di interesse effettivo; integrazioni cioè parziali possono verificarsi. Evidentemente, inserimento casuale nel genoma significa anche che non vi è alcun controllo del sito di inserimento utilizzando questo metodo, e metodi bulla base ricombinazione omologa sono attualmente in fase di sviluppo. Tuttavia, il metodo qui descritto è, a nostra conoscenza, attualmente l&#39;unico metodo caratterizzato per generare cellule Ostreococcus geneticamente modificate. Come Ostreococcus tauri solo recentemente è stata utilizzata come organismo modello sperimentale, la maggior parte dei metodi di lavoro con queste cellule è probabile evolversi ed essere perfezionato dalla comunità di ricerca sempre più coinvolta. Questo protocollo ha lo scopo di aiutare le persone con Ostreococcus avviare i lavori, ma in nessun modo pretende di descrivere tutto quello che c&#39;è da sapere su genomica trasformazione di questa microalga. La fiducia gli autori che i lettori saranno in grado di adattare questo protocollo per le proprie esigenze, come piccole differenze di incubatori (livelli di luce o la qualità) e di altri parametri esistono e probabilmente devono essere ottimizzati in ogni singolo laboratorio per ottenere le culture sane necessari per questo protocollo. Dopo aver imparato le tecniche descritte qui,vettori possono essere costruiti per generare luminescente, fluorescenti, o altre linee di fusione etichetta sotto il controllo di una serie di promotori. Questo entusiasmante piattaforma sperimentale romanzo sarà utile per studiare come biochimici complessi problemi sono risolti in un eucariote di complessità ridotta, in cui approcci farmacologici sono molto facilitati 3.

<table border="1"><tbody><tr><td colspan="4"> Costituenti del terreno </td></tr><tr><td> Chimico </td><td colspan="2" > Numero di catalogo </td><td> Fornitore </td></tr><tr><td> Immediata Ocean Marine Salt </td><td colspan="3"> da <a href="http://amazon.co.uk" target="_blank">amazon.co.uk</a> o <a href="http://rocketaquatics.co.uk" target="_blank">rocketaquatics.co.uk</a> </td></tr><tr><td> NaNO 3 </td><td colspan="2"> S5506-250G </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> NH 4 Cl </td><td colspan="2"> A9434-500G </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> Glicerolo 2-fosfato sale disodico idrato </td><td colspan="2"> G9422-100G </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> H 2 SeO 3 </td><td colspan="2"> 84920-250G </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> Ultra puro tris </td><td colspan="2"> 15504-020 </td><td> Invitrogen </td></tr><tr><td> EDTA • Na 2 2H 2 O </td><td colspan="2"> BPE120-500G </td><td> Fisher Scientific </td></tr><tr><td> FeCl 3 • 6H 2 O </td><td colspan="2"> 157740 </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> Na 2 Moo 4 • 2H 2 O </td><td colspan="2"> 31439-100G-R </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> ZnSO 4 • 7H 2 O </td><td colspan="2"> Z0251 </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> • CoCl 2 6H 2 O </td><td colspan="2"> 31277 </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> MnCl 2 • 4H 2 O </td><td colspan="2"> 203734-5G </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> CuSO 4 • 5H 2 O </td><td colspan="2"> C8027 </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> La vitamina B 12 (cianocobalamina) </td><td colspan="2"> V2876 </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> Biotina </td><td colspan="2"> 47868 </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> • Tiamina HCl </td><td colspan="2"> T4625 </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> Ampicillin </td><td colspan="2"> A9518-25G </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> Neomicina </td><td colspan="2"> N6386 </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> Kanamicina </td><td colspan="2"> K4000 </td><td> Sigma </td></tr><tr><td colspan="4"> Materiali di consumo per la coltura </td></tr><tr><td colspan="2"> Voce </td><td> Numero di catalogo </td><td> Fornitore </td></tr><tr><td colspan="2"> Tissue Culture Flask T25 colture in sospensione ventilato con Versare Canale </td><td> 83.1810.502 </td><td> Starstedt </td></tr><tr><td colspan="2"> Tissue Culture Flask T75 colture in sospensione ventilato con Versare Canale </td><td> 83.1813.502 </td><td> Starstedt </td></tr><tr><td colspan="2"> Tissue Culture Flask T175 colture in sospensione ventilato con Versare Canale </td><td> 83.1812.502 </td><td> Starstedt </td></tr><tr><td colspan="2"> TPP bottiglie filtri top, 1L, completi </td><td> 99950T </td><td> Bioscience Helena </td></tr><tr><td colspan="2"> Filtri bottiglie TPP top, 500ml, </td><td> 99500T </td><td> Bioscience Helena </td></tr><tr><td colspan="2"> TPP bottiglie filtri migliori, 250ml, </td><td> 99250T </td><td> Bioscience Helena </td></tr><tr><td colspan="2"> TPP bottiglie filtri top, 150ml, </td><td> 99150T </td><td> Bioscience Helena </td></tr><tr><td colspan="2"> Misuratore di salinità per il Marine Aquarium </td><td> DSG-10 </td><td> Daeyoon </td></tr></tbody></table><table border="1"><tbody><tr><td colspan="3" > Prodotti chimici per la trasformazione </td></tr><tr><td> Chimico </td><td> Catalogonumero </td><td> Fornitore </td></tr><tr><td> D-Sorbitolo </td><td> S6021-1KG </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> Pluronic F-68 soluzione </td><td> P5556-100ML </td><td> Sigma </td></tr><tr><td> ClonNat </td><td> 51000 </td><td> Werner </td></tr><tr><td> Basso punto di fusione di agarosio </td><td> 16520-050 </td><td> Invitrogen </td></tr><tr><td colspan="3"> Materiali di consumo per la trasformazione </td></tr><tr><td> Voce </td><td> Numero di catalogo </td><td> Fornitore </td></tr><tr><td> Tissue Culture Flask T25 colture in sospensione ventilato con Versare Canale </td><td> 83.1810.502 </td><td> Starstedt </td></tr><tr><td> Tissue Culture Flask T75 colture in sospensione ventilato con Versare Canale </td><td> 83.1813.502 </td><td> Starstedt </td></tr><tr><td> Cultura Flask Tissue T175 Sospensione Cultures ventilato con Versare Canale </td><td> 83.1812.502 </td><td> Starstedt </td></tr><tr><td> Greiner provette da 50 ml </td><td> 227261 </td><td> GBO </td></tr><tr><td> Gene Pulser / MicroPulser cuvette da 0,2 cm, 50 gap </td><td> 165-2086 </td><td> Bio-Rad </td></tr><tr><td> Petri piatto tondo PS 3 VENTS H14.2 Φ55 </td><td> 391-0895 </td><td> VWR International </td></tr><tr><td> Petri quadrata con quattro prese d&#39;aria sterile in polistirolo da 120 millimetri irradiazione chiara </td><td> FB51788 </td><td> Fisher Scientific </td></tr><tr><td> Moonlight filtrano la luce blu </td><td> 183 </td><td> Lee Lighting </td></tr></tbody></table>

trasformazione genomica del picoeukaryote<em&gt; ostreococcus tauri</em

Genomic Transformation of the Picoeukaryote Ostreococcus tauri

I problemi più comuni che ostacolano rapidi progressi in Scienze della pianta includono cellulare, tissutale e la complessità intero organismo, e in particolare l&#39;alto livello di ridondanza genomica genetica che colpisce semplici piante superiori. Il nuovo modello di organismo Ostreococcus Tauri è il più piccolo a vita libera eucariote conosciuta fino ad oggi, e possiede una dimensione del genoma molto ridotto e 1,2 la complessità cellulare, si manifesta con la presenza di solo uno dei molti organelli (mitocondri, cloroplasti, pila del Golgi) per cella, e un genoma contenente soltanto ~ 8000 geni. Inoltre, la combinazione di unicellulari e della cultura semplice fornisce una piattaforma suscettibile di approcci di biologia chimica. Recentemente, Ostreococcus è stato impiegato con successo per studiare i meccanismi fondamentali alla base di indicazione dell&#39;ora circadiano 3-6. I risultati di questo organismo modello hanno avuto un impatto non solo la scienza delle piante, ma anche la biologia dei mammiferi 7. Questo esempio mette in luce come una rapida sperimentazione in uneucariote semplice dal lignaggio verde può accelerare la ricerca in organismi più complessi, generando ipotesi verificabili con metodi tecnicamente fattibile solo in questo contesto di complessità ridotta. La conoscenza del genoma e la possibilità di modificare i geni sono strumenti essenziali nelle varie specie di modello. Genomic 1, 8 trascrittomica, proteomica e 9 le informazioni per questa specie è liberamente disponibile, mentre i metodi precedentemente segnalati 6,10 per trasformare geneticamente Ostreococcus sono noti a pochi laboratori in tutto il mondo. In questo articolo, i metodi sperimentali per trasformare geneticamente questo nuovo organismo modello con una sovraespressione costruire mediante elettroporazione è descritta in dettaglio, come pure il metodo di inserimento di cellule trasformate in percentuale agarosio bassa per consentire la selezione delle linee trasformate proveniente da un singola cellula trasformata. Dopo il successo dell&#39;applicazione OstreocoCCU alla ricerca circadiano, l&#39;interesse crescente Ostreococcus si può aspettare da aree di ricerca diverse all&#39;interno e all&#39;esterno delle scienze vegetali, comprese le zone biotecnologiche. I ricercatori provenienti da una vasta gamma di scienze biologiche e mediche che lavorano su conservate vie biochimiche può prendere in considerazione la ricerca perseguendo in Ostreococcus, senza la complessità genomica e organismal di specie modello più grande.

Questo articolo descrive la trasformazione genetica della marina alga unicellulare<em&gt; Ostreococcus Tauri</em&gt; Mediante elettroporazione. Questo organismo eucariotico è una piattaforma modello efficace per le piante superiori, possesing notevolmente ridotto la complessità genomica e cellulare ed essere facilmente suscettibili di sia la cultura della biologia cellulare e chimica.

Trasformazione genomica del Picoeukaryote<em&gt; Ostreococcus Tauri</em

I problemi comuni che ostacolano i rapidi progressi nelle scienze vegetali includono la complessità cellulare, tissutale e dell'intero organismo e, in particolare, l'elevato livello di complessità genomica...

L'obiettivo generale di questo procedimento è generare e selezionare linee stabili di trasformanti dell'organismo modello innovativo Austria Occus Tori, una specie di alga picoeucariotica marina. Questo viene realizzato innanzitutto ottenendo pellet cellulari da 50 millilitri di coltura densa di ALG per ogni trasformazione. Il secondo passaggio consiste nel mescolare le cellule con DNA linearizzato e quindi effettuare l'elettroporazione.Dopo aver diluito le cellule trasformate in mezzo fresco e averle incubate durante la notte, aggiungere 0,2% di agarosio a basso punto di fusione e un agente selettivo, quindi versare la miscela in piastre di Petri di piccole dimensioni. L'ultimo passaggio consiste nel selezionare le colonie risultanti, che saranno cresciute dopo un'incubazione di due o tre settimane in luce blu costante. Infine, la selezione in mezzo liquido e analisi molecolari successive, come PCR e southern blot, vengono utilizzate per dimostrare l'integrazione riuscita del costrutto nel genoma delle linee transgeniche ottenute.Il principale vantaggio nell'utilizzo di questo organismo rispetto a organismi modello esistenti come Arabidopsis è la notevole riduzione della complessità genomica, che permette lo studio di reti regolatorie in un contesto con praticamente nessuna ridondanza genetica. Sebbene nel mio laboratorio abbiamo utilizzato osteo occus per studiare l'orologio circadiano delle piante, esso può essere impiegato per studiare molte altre reti cellulari complesse. Le implicazioni di questa tecnica si estendono quindi ben oltre il campo della biologia vegetale.La dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale perché, sebbene i singoli passaggi possano apparire piuttosto semplici, un'adeguata manipolazione delle cellule e un flusso di lavoro efficiente sono essenziali per ottenere un buon risultato. Parti di questa procedura saranno dimostrate da Culin Kish, un assistente di ricerca di un laboratorio. Le cellule Austria Occus vengono adattate in acqua marina artificiale o in SW per preparare una soluzione SW disciogliendo 40 grammi per litro.Sal marina in acqua deionizzata fino a una salinità di 30 parti per mille o PPT, come misurato. Utilizzando un salinometro, aggiungere l'arricchimento, gli elementi metallici in tracce del mezzo e le vitamine, quindi filtrare sterilizzando attraverso un filtro da 0,22 micron cellule grezze di Austria cocus ceppo O TT H 95 in un SW sotto luce costante. In un incubatore per crescita vegetale dotato di filtro blu lunare, l'intensità luminosa dovrebbe essere vicina a 20 micromoli per metro quadrato al secondo e la temperatura mantenuta a 20 gradi Celsius. Le cellule non richiedono agitazione continua, ma vengono agitate una volta ogni due o tre giorni per prevenire l'aggregazione.Per il mantenimento, effettuare il passaggio delle cellule asetticamente con un diluizione di uno a 100 in a SW fresco ogni sette giorni. Ogni trasformazione richiede 50 millilitri di cellule con una densità cellulare compresa tra 20 e 30 × 10⁶ cellule per millilitro. Tale densità deve essere raggiunta da cinque a sette giorni dopo il passaggio.La densità cellulare approssimativa e l'axe possono essere stimate mediante emocitometro con un ingrandimento minimo di 40 volte. L'ingrandimento o, preferibilmente, può essere determinato mediante citometria a flusso. Qui viene mostrato un esempio di colture sane rispetto a quelle non sane.Ogni grafico bio-parametrico mostra lo scatter laterale o SSC sull'asse y rispetto alla fluorescenza rossa per cellula o FL3 sull'asse x. FL3 rappresenta la fluorescenza rossa della clorofilla, mentre l'SSC è indicativo della dimensione cellulare relativa. Le cellule sane rientrano nella finestra Austria Occus, mentre le cellule morenti o i batteri contaminanti si trovano al di fuori di questa finestra.In condizioni ideali, oltre il 99% delle cellule dovrebbe trovarsi nella finestra Austria Occus. Per una trasformazione genetica efficiente, ogni trasformazione richiede cinque microgrammi di plasmide lineare puro, di DNA con una concentrazione di un microgrammo per microlitro. In acqua deionizzata sterile, il plasmide è stato lineato da un enzima che taglia nel tratto portante del vettore utilizzato, ma non nel transgene o nel gene di selezione.Mantenere il tubo da microcentrifuga contenente il DNA sul ghiaccio insieme a un vete di elettroporazione da due millimetri per ogni trasformazione. È necessario un controllo senza DNA per ciascuna linea cellulare da trasformare. Per ogni trasformazione, trasferire 50 millilitri di cellule in un tubo con fondo conico, aggiungere l'acido F 68 allo 0,1% e centrifugare per 10 minuti a 8.000 ×g a 10 gradi Celsius.Per pellettizzare immediatamente le cellule, scartare il sopranatante e aggiungere un millilitro di buffer di sospensione Resus alle cellule. Sospendere le cellule mediante pipettaggio su e giù, trasferirle in una provetta microcentrifuga e centrifugare per 10 minuti a 8.000 ×g a 10 gradi Celsius; lavare rapidamente le cellule un’altra volta dopo la seconda centrifugazione.Tagliare la punta di una pipetta P200 per risospendere ogni pellet in 40 microlitri di sospensione di risospensione. Aggiungere 40 microlitri di cellule risospese in ogni provetta contenente DNA linearizzato su ghiaccio. Mescolare delicatamente e trasferire nella cuvetta di elettroporazione.Inserire il vete nella macchina di elettroporazione. Regolare le impostazioni a sei chilovolt per sensore reciproco, 600 ohm e 25 microgiorni. Eseguire l'elettroporazione sulle cellule dopo l'elettroporazione.Incubare le cellule nelle cuvette a temperatura ambiente per 10 minuti. Durante questo periodo, etichettare le fiasche per coltura cellulare e aggiungere 30 millilitri di a SW fresco a ciascuna fiasca. Prelevare un millilitro di a SW da ciascuna fiasca e aggiungerlo delicatamente al corrispondente vete, quindi incubare per due minuti.Successivamente, rimuovere delicatamente una SW che contiene ormai l'aggregato di cellule e versare lentamente e con delicatezza direttamente in un'altra SW. Nel flacone di coltura, le cellule di solito rimarranno in un grande aggregato. È importante non agitare né disturbare le cellule aggregate in questo momento. Lasciare le cellule riprendersi nell'incubatrice per uno o due ore.Infine, risospendere le cellule agitando manualmente il pallone. A questo punto, le cellule dovrebbero risospendersi facilmente e non dovrebbero essere visibili grumi. Lasciare le colture a ripristinare tutta la notte nell'incubatrice nel giorno successivo all'elettroporazione. Autoclavare una soluzione di 2,1% di agarosio a basso punto di fusione in acqua bidistillata in un contenitore contenente una barretta magnetica.Mantenere fuso a 65-90 gradi Celsius in un becher più grande contenente acqua su un agitatore magnetico riscaldante. Per ogni trasformazione, preparare otto piastre di Petri da 50 millimetri e otto provette da 50 millilitri contenenti ciascuna nove millilitri di un SW più. La selezione richiesta.Raccogliere le cellule trasformate dall'incubatrice. La parte più difficile di questa procedura consiste nell'inserire le cellule trasformate in gel di agarosio a bassa percentuale senza compromettere l'integrità delle cellule esponendole a temperature eccessive. È quindi fondamentale eseguire rapidamente ed efficientemente i prossimi passaggi della procedura all'interno di una cappa a flusso sterile.Aggiungere un millilitro di agarosio a basso punto di fusione quasi bollente ai nove millilitri di SW. In uno dei tubi, chiudere il tubo e capovolgerlo per mescolare. Successivamente, aggiungere 0,5 millilitri di cellule appena trasformate. Chiudere rapidamente e capovolgere il tubo per mescolare, quindi versarne il contenuto nella piastra di Petri.Ripetere questo processo con i rimanenti sette tubi, quindi passare al successivo flacone di trasformazione. Lasciare le piastre aperte nell'incubatore a flusso laminare per un'ora affinché l'agar si solidifichi. Quindi coprire le piastre e trasferirle con attenzione in piastre di Petri quadrate grandi, ciascuna delle quali contiene quattro piastre rotonde.Poiché le piastre non erano completamente solidificate, il gel è molto fragile. Avere cura di non rompere il gel durante la manipolazione delle piastre. Sigillare le piastre quadrate con paraform e collocarle nell'incubatrice.Una volta comparse le colonie, utilizzare una pipetta da 200 microlitri con punte tagliate. Per prelevare le colonie in un'area sterile, selezionare semplicemente colonie isolate e aspirare una colonia verde. Avere cura di non includere cellule provenienti da colonie adiacenti.Trasferire le cellule in due millilitri di mezzo liquido contenente l'antibiotico selettivo. In una piastra a 24 pozzetti, mescolare aspirando e dispensando più volte. Dopo aver selezionato 24 o 48 colonie per trasformazione, sigillare le piastre con pellicola parafilm e trasferirle nell'incubatore.Dopo una settimana, trasferire 100 microlitri di ogni pozzetto in due millilitri di a SW fresco con selezione. Coltivare in una piastra a 24 pozzetti per ulteriori sette giorni. Le linee cellulari sopravvissute possono quindi essere utilizzate per ulteriori studi durante la trasformazione di cinque microgrammi di DNA linearizzato.Utilizzando questo protocollo, dovrebbero apparire da 20 a 60 colonie per piastra di trasformazione dopo due o tre settimane. Circa l'80% delle colonie selezionate è risultato positivo per la resistenza all'antibiotico in mezzo liquido ed è stato utilizzato negli studi successivi seguendo questa procedura.Altri metodi come la PCR o il Southern blot possono essere successivamente eseguiti per verificare il numero e la posizione dell'inserzione del gene trench dopo lo sviluppo. Questa tecnica ha permesso ai ricercatori nei campi dell'orologio circadiano e del ciclo cellulare di comprendere i complessi componenti e comportamenti dei rispettivi sistemi in questo nuovo organismo modello, Austria Caucus. Tori, dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come generare linee transgeniche di Austria caucus.

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