Name: Estrazione di antigeni dei tessuti per test funzionali (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 32 s
Description: Scopri come preparare estratti di tessuto umano per saggi immunologici funzionali. Questo metodo senza solventi tossici consente di misurare con precisione le risposte delle cellule T in vitro.

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Questo lavoro è supportato da sovvenzioni dal Australian National Health and Medical Research Council (NHMRC # 559007) e la Juvenile Diabetes Research Foundation (JDRF 4-2006-1025) e il progetto di infrastruttura operativa del Governo del Victoria. Ringraziamo i membri del Team Tom Mandel Islet Programma di trapianto di isole di isolamento per fornire i tessuti umani. I tessuti umani sono stati raccolti ed utilizzati con il locale approvazione etica (St. Vincent Hospital HREC-A 011/04 e Salute San Vincenzo HREC-A 135/08).

1. Preparazione del tessuto Spleen <ol><li> Nota-tutto il materiale umana dovrebbero essere considerati come potenzialmente infettivi e le procedure devono essere condotte in una cabina a flusso laminare di classe II. Utilizzando forbici sterili e pinze, rimuovere il tessuto grasso e fibroso dalle sezioni milza (~ 1-2 cm di dimensione) e tagliare la maggior quantità di materiale capsula esterna possibile. </li><li> Tagliare un pezzo di piccole dimensioni (1-2 cm 3) del tessuto della milza e posizionare ogni pezzo in una sterile tubo da 50 ml Falcon. </li><li> Snap-congelare i pezzi di tessuto per immersione in liquido N 2. </li><li> Conservare a -80 ° C. Un protocollo simile è adatto per altri tessuti (s). </li></ol> 2. Preparazione Islet umano per l&#39;archiviazione <ol><li> Isolotti cultura nei media CMRL. Raccogliere isolotti in un tubo 10 ml fondo conico e lavare due volte in PBS mediante centrifugazione a 1500 rpm per 5 min. Eliminare il PBS e svuotare il buffer residuo ponendo la provetta capovolta brevemente su un tovagliolo di carta. Fare attenzione a nonper rimuovere gli isolotti. </li><li> Una volta svuotato, ri-tappare la provetta e snap-congelamento in azoto liquido e conservare a -80 ° C. </li></ol> 3. Preparazione estratto <ol><li> Preparare BAW mix (10:30:60% v / v) e conservare a 4 ° C. </li><li> Rimuovere il tubo da -80 ° C. Scongelare a temperatura ambiente. </li><li> Aggiungere un quantitativo sufficiente ghiacciata BAW per coprire il pezzo di tessuto. Per utilizzare isolotti 3-5 ml. Per tessuto della milza utilizzare 10-20 ml a seconda della dimensione del pezzo di tessuto. </li><li> Montare il tessuto omogeneizzatore. Pulire da &#39;omogeneizzazione&#39; 10-20 ml di etanolo 70% / acqua. </li><li> Omogeneizzare il tessuto in lampi, dopo aver posizionato la sonda omogeneizzatore nella provetta con il tessuto e la soluzione BAW. Tenere il tubo in un secchio di ghiaccio in seguito. </li><li> Pulire accuratamente l&#39;omogeneizzatore tra i campioni, omogeneizzando 10-20 ml di etanolo 70% / acqua e poi tampone BAW. Questo impedisce la contaminazione incrociata di tessuto tra samples.Dismantleand pulita con 70% etanolo / acqua dopo noie. </li><li> Se un estratto contenente solo materiale solubile è richiesto, centrifugare estratto omogeneizzata tessuto a 4000 rpm a temperatura ambiente per 10 min. Se un estratto grezzo è più necessario, centrifugare a 1000 rpm a temperatura ambiente per 5 min. La tecnica più appropriata per estrarre i BAW-proteine ​​insolubili dipende dall&#39;analisi valle delle proteine. Per l&#39;uso in saggi immunologici funzionali si suggerisce di tentare di sciogliere la frazione insolubile in urea 8 M come abbiamo trovato che questo è ben tollerato 6. </li><li> Trasferire il surnatante in una provetta pulita e metterlo in ghiaccio. </li><li> Determinare la concentrazione di proteine ​​nell&#39;estratto utilizzando un saggio BCA o simili. </li></ol> 4. Congelare Estratti di essiccazione <ol><li> A seconda della massa della proteina desiderata (ad esempio, 100 mcg per provetta), diluire il omogenato di conseguenza e dispensare aliquote in etichettato 5,0 ml sterile, Falcon (12x75 mm) tubi. Si utilizzano spesso 100 mg / tubo. </li><li> Utilizzare un 18-20 ago da siringa sterile calibro di fare 3 fori nel tappo di ciascun tubo. </li><li> Congelare tubi o mettendo in ghiaccio secco per circa 10 minuti o in un congelatore a -80 ° C per&gt; 1 ora. Conservare a -80 ° C fino al momento di mettere sul liofilizzatore. </li><li> Accendere il freeze-asciutto e lasciarla stabilizzare (-100 ° C). Questa operazione richiede circa 30 minuti. </li><li> A seconda del volume, liofilizzazione può essere completato entro 3 ore, ma abbiamo lasciato i nostri campioni di routine durante la notte. </li><li> Dopo il completamento del ciclo di asciugatura, spegnere la pompa per vuoto e lentamente consentire pressione nella camera. Rimuovere rack. </li><li> In una cappa sterile, rimuovere i tappi forati dai tubi e sostituirli con quelli nuovi (Falcon 352032). </li><li> Conservare le provette a -20 ° C. I campioni possono essere ricostituiti in terreni di coltura, o altri buffer, ed utilizzati in funzione o saggi biochimici. </li></ol> 5. Risultati rappresentativi Figura 1 mostra la colorazione di una proteinagel caricato con estratto di milza e tessuto di isole pancreatiche impoverito (etichetta acinose) e purificato isole umane (isole etichettati). I risultati mostrano una buona rappresentazione di proteine ​​di peso molecolare diverso per ogni tessuto. La capacità di estratti di tessuto umano per stimolare la proliferazione di cellule T è stato testato utilizzando un saggio basato CFSE proliferazione 7 (Figura 2). PBMC utilizzato in questo saggio sono stati isolati da un individuo con diabete di tipo 1. L&#39;entità della risposta viene espressa come rapporto tra il numero di cellule per CFSE dim 5000 CD4 +, cellule CFSE luminosi senza antigene di cellule CFSE dim 5000 per CD4 +, cellule CFSE luminose con antigene di campioni in triplo 7. I risultati mostrano una debole, ma rilevabile, la proliferazione in risposta a acinose (CD1 = 3.5) e una risposta più forte per estratto isolotto (6.8). Virus influenzale inattivato (CDI = 142,6), è incluso comecontrollo positivo. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/4230/4230fig1.jpg" /> Figura 1. Gel proteico. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/4230/4230fig2.jpg" /> Risultati Figura 2. CFSE da un saggio basato su proliferazione contro acinose ed estratto isolotto. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4230/4230fig2large.jpg" target="_blank">Clicca qui per ingrandire la figura</a> .

<ol><li>Mannering, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+approaches+to+measuring+human+islet-antigen+specific+T+cell+function+in+type+1+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Exp.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Current approaches to measuring human islet-antigen specific T cell function in type 1 diabetes.</a> Clin. Exp. Immunol. 162, 197-209 (2010).</li>
<li>Beckhove, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+T+cell-based+identification+of+human+tumor+tissue+antigens+by+automated+two-dimensional+protein+fractionation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Rapid T cell-based identification of human tumor tissue antigens by automated two-dimensional protein fractionation.</a> J. Clin. Invest. 120, 2230-2242 (2010).</li>
<li>Mannering, S. I., Brodnicki, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+insights+into+CD4%2B+T-cell+specificity+and+function+in+Type+1+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Review+of+Clinical+Immunology%22%5BJournal%5D)">Recent insights into CD4+ T-cell specificity and function in Type 1 diabetes.</a> Expert Review of Clinical Immunology. 3, 557-564 (2007).</li>
<li>Mannering, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+A-chain+of+insulin+is+a+hot-spot+for+CD4%2B+T+cell+epitopes+in+human+type+1+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Exp.+Immunol%22%5BJournal%5D)">The A-chain of insulin is a hot-spot for CD4+ T cell epitopes in human type 1 diabetes.</a> Clin. Exp. Immunol. 156, 226-231 (2009).</li>
<li>Mannering, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+insulin+A-chain+epitope+recognized+by+human+T+cells+is+posttranslationally+modified%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">The insulin A-chain epitope recognized by human T cells is posttranslationally modified.</a> J. Exp. Med. 202, 1191-1197 (2005).</li>
<li>Moon, H. C., Joffe, M., Thomas, H. E., Kay, T. W. H., Mannering, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+extracting+tissue+proteins+for+use+in+lymphocyte+function+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunological+Methods%22%5BJournal%5D)">A method for extracting tissue proteins for use in lymphocyte function assays.</a> Journal of Immunological Methods. 359, 56-60 (2010).</li>
<li>Mannering, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+sensitive+method+for+detecting+proliferation+of+rare+autoantigen-specific+human+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol.+Methods%22%5BJournal%5D)">A sensitive method for detecting proliferation of rare autoantigen-specific human T cells.</a> J. Immunol. Methods. 283, 173-183 (2003).</li>
<li>Mannering, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD4%2B+T+Cell+Proliferation+in+Response+to+GAD+and+Proinsulin+in+Healthy%2C+Pre-diabetic%2C+and+Diabetic+Donors%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+N.Y.+Acad.+Sci%22%5BJournal%5D)">CD4+ T Cell Proliferation in Response to GAD and Proinsulin in Healthy, Pre-diabetic, and Diabetic Donors.</a> Ann. N.Y. Acad. Sci. 1037, 16-21 (2004).</li>
<li>Mannering, S. I., Purcell, A. W., Honeyman, M. C., McCluskey, J., Harrison, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+T-cells+recognise+N-terminally+Fmoc-modified+peptide%5BTitle%5D)+AND+%22Vaccine%22%5BJournal%5D)">Human T-cells recognise N-terminally Fmoc-modified peptide.</a> Vaccine. 21, 3638-3646 (2003).</li>
<li>Peakman, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+preparations+of+GAD65%2C+proinsulin%2C+and+the+islet+tyrosine+phosphatase+IA-2+for+use+in+detection+of+autoreactive+T-cells+in+type+1+diabetes%3A+report+of+phase+II+of+the+Second+International+Immunology+of+Diabetes+Society+Workshop+for+Standardization+of+T-cell+assays+in+type+1+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Characterization of preparations of GAD65, proinsulin, and the islet tyrosine phosphatase IA-2 for use in detection of autoreactive T-cells in type 1 diabetes: report of phase II of the Second International Immunology of Diabetes Society Workshop for Standardization of T-cell assays in type 1 diabetes.</a> Diabetes. 50, 1749-1754 (2001).</li>
<li>Honey, K., Rudensky, A. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lysosomal+cysteine+proteases+regulate+antigen+presentation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Lysosomal cysteine proteases regulate antigen presentation.</a> Nat. Rev. Immunol. 3, 472-482 (2003).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Questo protocollo è stato sviluppato perché volevamo per generare un estratto dal tessuto umano che è stato esente da sostanze chimiche tossiche come i detersivi. Specificamente abbiamo utilizzato per preparare estratti di tessuto umano che possono essere utilizzati in saggi di funzione immunitaria umana in vitro. Estratti preparati usando questo protocollo può ugualmente essere ricostituito in qualsiasi buffer e usato per molte analisi biochimiche, quali la cromatografia in western blotting o liquido. Ciò rend...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reagente </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Commenti </td></tr><tr><td> 5 ml 12 provette da 75 mm di polistirene sterili </td><td> BD Falcon </td><td> 352054 </td><td></td></tr><tr><td> Tappi per provette di polistirene tubi (di cui sopra) </td><td> BD Falcon </td><td> 352032 </td><td></td></tr><tr><td> Provette sterili da 50 ml </td><td> Becton Dickinson </td><td> 352070 </td><td></td></tr><tr><td> Acetonitrile </td><td> Mallinckradt Chimica </td><td> 2856-10 </td><td></td></tr><tr><td> Butan-1-olo </td><td> Sigma Aldrich </td><td> 537993-IL </td><td></td></tr><tr><td> Omogeneizzatore: PRO200 </td><td> Bio-strategia </td><td> 01-01200 </td><td> 10 x 115 mm a dente di sega generatore </td></tr><tr><td> Liofilizzatore </td><td></td><td></td><td> Virtis, da banco 4K </td></tr><tr><td> Sterile aghi calibro 18-20 </td><td> Becton Dickinson </td><td> REF 302032 </td><td></td></tr><tr><td> CMRL-1066 Media </td><td> Sigma </td><td> C0422 </td><td></td></tr><tr><td> PBS </td><td> Sigma </td><td> D8537 </td><td></td></tr></tbody></table> Tabella 1. Reagenti e attrezzature specifiche.

estrazione di antigeni dei tessuti per test funzionali

Extraction of Tissue Antigens for Functional Assays

Molti degli obiettivi di antigene risposta immunitaria adattativa, riconosciuti da cellule T e B, non sono stati definiti 1. Ciò è particolarmente vero per le malattie autoimmuni e il cancro 2. Il nostro obiettivo è quello di studiare gli antigeni riconosciuti dalle cellule T nel tipo di malattia autoimmune 1 diabete 1,3,4,5. Per analizzare umani risposte delle cellule T contro il tessuto in cui gli antigeni riconosciuti da cellule T non sono identificati abbiamo sviluppato un metodo per estrarre antigeni proteici da tessuto umano in un formato compatibile con saggi funzionali 6. Risposte precedentemente, cellule T ad estratti di tessuto non purificati non potevano essere misurati perché i metodi di estrazione produrre un lisato che conteneva detergenti tossiche per cellule mononucleari del sangue periferico. Qui si descrive un protocollo per estrarre proteine ​​da tessuti umani in un formato che non è tossico per le cellule T umane. Il tessuto è omogeneizzato in una miscela di butan-1-olo, acetonitrile e water (BAW). La concentrazione proteica nel tessuto estratto viene misurato e una massa nota di proteina è frazionato in provette. Dopo l&#39;estrazione, i solventi organici vengono rimossi mediante liofilizzazione. Estratti di tessuti liofilizzati possono essere memorizzati fino al momento. Per l&#39;uso in saggi di funzione immunitaria, una sospensione di cellule del sistema immunitario, in terreni di coltura appropriati, possono essere aggiunti direttamente al estratto liofilizzato. Proliferazione e produzione di citochine da PBMC, in risposta a estratti preparati utilizzando questo metodo, sono stati facilmente misurata. Quindi, il nostro metodo permette la rapida preparazione di lisati di tessuto umano che possono essere utilizzati come fonte di antigeni nell&#39;analisi delle risposte delle cellule T. Suggeriamo che questo metodo faciliterà l&#39;analisi delle risposte immunitarie adattative ai tessuti nei trapianti, cancro e malattie autoimmuni.

Un semplice protocollo per la preparazione di estratti di tessuto umano da utilizzare come fonte di antigeni a cellule T funzionali saggi è descritto. Questo metodo consente risposte delle cellule T al tessuto-antigeni derivati ​​da misurare<em&gt; In vitro</em&gt;.

Estrazione di antigeni dei tessuti per test funzionali

Molti dei target antigenici della risposta immunitaria adattativa, riconosciuti dalle cellule B e T, non sono ancora stati definiti 1. Ciò è particolarmente evidente nelle malattie autoimmuni...

L'obiettivo generale di questa procedura è preparare un estratto tissutale compatibile con saggi immunologici funzionali. Questo viene ottenuto innanzitutto raccogliendo un campione del tessuto di interesse. Successivamente, omogeneizzare il campione tissutale in una miscela di butanolo, acetone, nitrile e acqua, o BAW.Dopo aver determinato la concentrazione proteica, l'estratto viene aliquotato e liofilizzato per rimuovere i solventi. Infine, l'estratto ricostituito viene utilizzato come fonte di antigene in saggi di proliferazione delle cellule T umane o di secrezione di citochine. Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come la lisi con detergenti, è che l'estratto del deserto è privo di solventi e detergenti tossici.In questo protocollo, tutti i materiali di origine umana devono essere trattati come potenzialmente infettivi e tutte le procedure devono essere eseguite in un armadio a flusso laminare di classe due. Utilizzando forbici e pinze sterili, rimuovere il tessuto adiposo e fibroso da sezioni di milza di circa uno o due centimetri di dimensione. Eliminare la maggior quantità possibile del tessuto capsulare esterno.Tagliare piccoli pezzi di tessuto splenico e posizionare ciascun pezzo in una provetta sterile Falcon da 50 millilitri. Congelare i pezzi di tessuto immergendoli in azoto liquido e conservarli a meno 80 gradi Celsius. Per iniziare la procedura di preparazione delle iridi umane per la coltura di conservazione.Incubare i fragmenti oculari in mezzo CMRL a 37 gradi Celsius. Raccogliere i frammenti oculari in un tubo conico da 10 millilitri e centrifugare a 1.500 giri al minuto per cinque minuti. Scartare il mezzo e lavare due volte in PBS; dopo il secondo lavaggio.Versare il PBS e rimuovere il tampone residuo capovolgendo brevemente il tubo su un fazzoletto di carta. Prestare attenzione a non staccare gli occhielli. Dopo lo spurgo, richiudere il tubo, congelarlo rapidamente in azoto liquido e conservarlo a meno 80 gradi Celsius.Per preparare un estratto di tessuto, rimuovere innanzitutto un tubo contenente il tessuto da meno 80 gradi Celsius e lasciarlo raggiungere la temperatura ambiente. Il tessuto verrà omogeneizzato in una miscela di butanolo, acetonitrile e acqua, o BAW, precedentemente preparata e conservata a quattro gradi Celsius. Aggiungere una quantità sufficiente di BAW fredda di ghiaccio per coprire il pezzo di tessuto; per il tessuto splenico utilizzato in questa dimostrazione, utilizzare da 10 a 20 millilitri di BAW.Assemblare l'omogenizzatore di tessuti. Pulire l'omogenizzatore omogeneizzando 20 millilitri di etanolo al 70% in acqua. Successivamente, inserire la sonda dell'omogenizzatore nel tubo contenente il tessuto e la soluzione BAW ed omogeneizzare il tessuto in più impulsi.Mantenere il tubo in un contenitore pulito in seguito, per evitare contaminazioni incrociate tra i campioni di tessuto. Pulire accuratamente l'omogeneizzatore tra un campione e l'altro omogeneizzando da 10 a 20 millilitri di etanolo al 70% in acqua, seguito da centrifugazione con tampone BAW. L'estratto di tessuto omogeneizzato a temperatura ambiente.Se è richiesto un estratto contenente solo materiale solubile, centrifugare a 4.000 giri/min per 10 minuti. Se è richiesto un estratto più grezzo, dopo la centrifugazione, centrifugare a 1.000 giri/min per cinque minuti, trasferire il soprannatante in una provetta pulita e porre in ghiaccio. La concentrazione di proteine nell'estratto viene successivamente determinata mediante un saggio BCA o simile.Il passaggio più importante di questo protocollo consiste nel misurare con precisione la concentrazione proteica nell'estratto, in modo da poter liofilizzare un volume appropriato dell'estratto. Per ottenere la massa desiderata di proteina, diluire prima l'omogenato in base alla quantità di proteina richiesta e distribuire aliquote in provette sterili da cinque millilitri etichettate. In questo esempio, vengono assegnati 100 microgrammi di proteina per provetta.Utilizzando un ago sterile da 18 a 20 gauge, praticare tre fori nel coperchio di ogni tubo. Congelare i tubi ponendoli su ghiaccio secco per circa 10 minuti. Accendere il liofilizzatore e lasciarlo equilibrare a meno 100 gradi Celsius, operazione che richiederà circa 30 minuti. Quando il liofilizzatore è pronto, inserire i tubi nel liofilizzatore e accendere la pompa a vuoto.A seconda del volume dell'estratto, l'essiccazione sotto vuoto può essere completata entro tre ore. Sebbene i campioni siano solitamente lasciati tutta la notte. Al termine del ciclo di essiccazione, spegnere la pompa del vuoto e consentire lentamente l'ingresso della pressione nella camera.Rimuovere il supporto dei tubi in una cappa sterile. Rimuovere i tappi forati dai tubi e sostituirli con tappi nuovi. Conservare i tubi a meno 20 gradi Celsius.I campioni possono successivamente essere ricostituiti in coltura, in mezzi o in altri tamponi e utilizzati in funzione di saggi biochimici. Questa figura mostra la colorazione di un gel proteico caricato con estratti di tessuto pancreatico privo di isolotti splenici e con isolotti umani purificati. Questi risultati mostrano una buona rappresentazione di proteine con diversi pesi molecolari per ciascun tessuto; la capacità degli estratti di asana e di isolotti di stimolare la proliferazione dei linfociti T umani è stata valutata mediante un saggio di proliferazione in cui le cellule mononucleate del sangue periferico, o PBMC, sono state marcate con il colorante fluorescente CFSE; le cellule che hanno proliferato in risposta all'antigene, con conseguente riduzione dell'intensità del CFSE, sono state misurate direttamente mediante citometria a flusso.I PBMC utilizzati in questo esempio sono stati isolati da un individuo affetto da diabete di tipo 1. L'entità della risposta delle cellule T è stata espressa come rapporto tra il numero di cellule CFSE dim ogni 5.000 cellule CD4 positive CFSE bright senza antigene e il numero di cellule CFSE dim ogni 5.000 cellule CD4 positive CFSE bright con antigene, calcolato su campioni triplicati. I risultati mostrano una proliferazione debole ma rilevabile in risposta all'antigene Asana, con un indice di divisione cellulare (CDI) pari a 3,5.Si è osservata una risposta più intensa all'estrazione di occhiello con un CDI di 6,8. Il virus influenzale inattivato è stato incluso come controllo positivo seguendo questa procedura. Altri metodi come Ali Spot o e Iza possono essere utilizzati per rispondere a domande aggiuntive, ad esempio quali citochine vengono secrete in risposta ad antigeni derivati dai tessuti.

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Un protocollo per la preparazione di robusti, piccoli estratti HeLa nucleari viene descritto. Questo protocollo è importante per i saggi che richiedono l'uso di piccole popolazioni di cellule, come cellule trattate con farmaci o RNAi. Il metodo dovrebbe essere applicabile ad un'ampia varietà di analisi di espressione genica e altri tipi cellulari, incluse cellule del paziente.

Estratti nucleari di piccole dimensioni per saggi funzionali di espressione genica Macchinari

Questo video dimostra l'uso del test ELISpot per valutare la funzione delle cellule B che secernono anticorpi, ASC. Gli anticorpi secreti dalle ASC interagiscono con i frammenti di anticorpi policlonali legati alla membrana, che vengono rilevati dagli anticorpi IgG o IgM coniugati con enzimi. La macchia colorata prodotta in ogni pozzetto indica la presenza dell'isotipo dell'anticorpo specifico, che è correlato all'attività secretoria delle cellule B.

Valutazione funzionale delle cellule B secernenti anticorpi mediante saggio ELISpot

Presentiamo qui un protocollo ottimizzato e dettagliato per la doppia immunocolorazione in sezioni di tessuto del sistema nervoso centrale (SNC) e dei linfonodi periferici (LN) di ratto fissate in formalina e incluse in paraffina.

Analisi immunoistochimica nel Sistema Nervoso Centrale e Periferico Rat linfa nodo del tessuto Sezioni

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Lavorare con tessuti umani per Translational Cancer Research

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Rilevamento e l&#39;arricchimento di Rare antigene-specifiche cellule B per l&#39;analisi del fenotipo e funzione

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In Situ MHC-tetramero macchiatura e analisi quantitativa per determinare la posizione, l'abbondanza e fenotipo di cellule T antigene-specifiche CD8 nei tessuti

Mancate corrispondenze nelle sequenze (HLA) l'antigene umano del leucocita tra donatore di organi e destinatario coppie sono la principale causa di rigetto anticorpo-mediato nel trapianto dell'organo. Qui presentiamo l'uso di matrici di antigene personalizzati che si basano su sequenze di singoli donatori HLA per sondare gli alloanticorpi di anti-donatori HLA nei destinatari dell'organo.

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Descriviamo un metodo di colorazione rapida per eseguire l'imaging multispettrale sui tessuti congelati.

Un metodo rapido per l'imaging della fluorescenza multispettrale delle sezioni dei tessuti congelati

I test immunologici basati su sangue intero forniscono uno strumento semplice ed efficiente in termini di risorse per analizzare l'immunità antigene-specifica a fini diagnostici e di ricerca. Questo articolo fornisce un protocollo ottimizzato basato su sangue intero con doppia co-stimolazione per un'analisi completa dell'immunità dell'ospite ai patogeni fungini e virali, inclusa una versione a basso volume per pazienti pediatrici e piccoli animali.

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