Name: 1 F O ATPasi Vesicle Preparazione e tecnica per permettere Bloccare Registrazioni patch di membrane delle vescicole submitocondriali (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 21 s
Description: Impara a isolare vescicole submitocondriali contenenti F1FO ATPasi da cervello di ratto per registrazioni patch clamp. Questo metodo consente di studiare l'attività dell'ATP sintasi mitocondriale e la sua modulazione elettrofisiologica.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

1. Cervello mitocondriale Isolamento (Adattato da Brown MR et al. 9) <ol><li> Sacrifica il topo utilizzando metodi approvati dalla cura degli animali e del Comitato Istituzionale Usa (IACUC). </li><li> Tagliare la testa dell&#39;animale per decapitazione, tagliare la pelle ed esporre il cranio. </li><li> Aprire delicatamente il cranio, tagliando con una forbice o rongeur. Rimuovere il cervello. </li><li> Tritate finemente il cervello senza cervelletto in isolamento Buffer (vedi tabella 1) e trasferirlo in un ml di vetro / teflon omogeneizzatore 5 (vedi elenco attrezzature). </li><li> Omogeneizzare tessuti delicatamente 10 volte (senza bollicine), circa 5 min. </li><li> Centrifugare campione a 1500 xg per 10 min a 4 ° C in una centrifuga da banco. </li><li> Salvare il surnatante (mitocondriale e sinaptosomi) e scartare il pellet (materiale nucleare e detriti cellulari). Centrifugare a 16.000 xg per 10 min a 4 ° C in una centrifuga da banco. </li><li> Scartaresurnatante e risospendere pellet in 500 ml di tampone di isolamento. Disrupt sinaptosomi con una nave distruzione cellulare (vedere inventario). Applicare una pressione di 1200 psi per 10 minuti, seguita da una rapida decompressione. </li><li> Strato il composto su Ficoll gradienti (vedi Tabella 2), posto in SW-50.1 rotore e centrifugare a 126.500 g per 20 minuti a 4 ° C in un ultracentrifuga (vedi elenco attrezzature). Il pellet è mitocondri purificato, lo strato tra le diverse densità Ficoll è sinaptosomi undisrupted. </li><li> Lavare pellet mediante centrifugazione in isolamento Tampone a 16.000 xg per 10 min a 4 ° C in una centrifuga da banco. </li></ol> 2. Submitocondriali vescicole (SMV) Isolamento (Adattato da Chan et al. 10) <ol><li> Risospendere mitocondri in 200 microlitri di buffer di isolamento combinato con un uguale volume di 1% digitonina e lasciar riposare in ghiaccio per 15 min. </li><li> Aggiungere più Isolamento Buffer e centrifugare a 16.000 xg per 10 min a 4 ° C in una centrifuga da banco. Fate questo due volte. </li><li> Risospendere pellet in 200 microlitri di buffer di isolamento e aggiungere 2 ml di 10% Lubrol PX (C12E9). Mescolare e lasciar riposare in ghiaccio per 15 min. </li><li> Miscela strato sul buffer di isolamento, posto in SW-50.1 rotore e centrifugare a 182.000 xg a 4 ° C per 1 ora. </li><li> Lavare pellet finale mediante centrifugazione in una centrifuga da tavolo in isolamento Tampone a 16.000 xg per 10 min a 4 ° C. </li></ol> 3. Registrazione elettrofisiologica <ol><li> Un tipico impianto di elettrofisiologia include un amplificatore, un computer PC dotato di un Digidata 1440A interfaccia convertitore analogico-digitale in combinazione con il software pClamp10.0, manipolatori, un microscopio, un tavolo isolamento dalle vibrazioni, gabbia di Faraday. </li><li> Borosilicato capillari di vetro sono inserite in un Flaming / Brown Micropipetta Puller modello P-87. Un programma di pipetta-estrattore è ottimizzato pergenerare pipette con resistenze tra 80 a 100 MW. </li><li> SMVs vengono poste in una soluzione fisiologica intracellulare (ATP viene aggiunto al momento opportuno durante la registrazione) (Tabella 3). Patch pipette clamp sono riempite con la stessa soluzione (senza ATP). Le registrazioni sono fatte da formare una guarnizione giga-ohm sul SMVs a temperatura ambiente. Le vescicole sono visualizzabili al microscopio a contrasto di fase con un microscopio invertito Nikon o Zeiss. </li><li> Il potenziale di membrana è mantenuta una tensione da -100 mV a + 100 mV per periodi di 10 secondi. Registrazioni vengono filtrati a 5 kHz utilizzando il circuito dell&#39;amplificatore. Livelli di rumore elettrico o non specifici stray inferiore a 1 pA sono desiderabili per la registrazione di successo. </li><li> Dati vengono analizzati con il software Clampfit 10,0 per esempio per determinare la frequenza e l&#39;ampiezza di eventi singolo canale. Dipendenza di tensione è determinato tracciando un rapporto di tensione di corrente. </li></ol>

<ol><li>Cheng, W. C., Berman, S. B., Ivanovska, I., Jonas, E. A., Lee, S. J., Chen, Y., Kaczmarek, L. K., Pineda, F., Hardwick, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+factors+with+dual+roles+in+death+and+survival%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial factors with dual roles in death and survival.</a> Oncogene. 25, 4697-4705 (2006).</li>
<li>Duchen, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondria+and+calcium+in+health+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Calcium%22%5BJournal%5D)">Mitochondria and calcium in health and disease.</a> Cell Calcium. 44, 1-5 (2008).</li>
<li>Lemasters, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+mitochondrial+membrane+permeability+in+pathogenesis%2C+autophagy+and+control+of+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gastroenterol.+Hepatol%22%5BJournal%5D)">Modulation of mitochondrial membrane permeability in pathogenesis, autophagy and control of metabolism.</a> J. Gastroenterol. Hepatol. 22, Suppl 1. S31-S37 (2007).</li>
<li>Cox, G. B., Jans, D. A., Fimmel, A. L., Gibson, F., Hatch, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypothesis.+The+mechanism+of+ATP+synthase.+Conformational+change+by+rotation+of+the+beta-subunit%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">Hypothesis. The mechanism of ATP synthase. Conformational change by rotation of the beta-subunit.</a> Biochim. Biophys. Acta. 768, 201-208 (1984).</li>
<li>Cox, G. B., Fimmel, A. L., Gibson, F., Hatch, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mechanism+of+ATP+synthase%3A+a+reassessment+of+the+functions+of+the+b+and+a+subunits%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">The mechanism of ATP synthase: a reassessment of the functions of the b and a subunits.</a> Biochim. Biophys. Acta. 849, 62-69 (1986).</li>
<li>Cory, S., Huang, D. C., Adams, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Bcl-2+family%3A+roles+in+cell+survival+and+oncogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">The Bcl-2 family: roles in cell survival and oncogenesis.</a> Oncogene. 22, 8590-8607 (2003).</li>
<li>Vander Heiden, M. G., Thompson, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bcl-2+proteins%3A+regulators+of+apoptosis+or+of+mitochondrial+homeostasis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Bcl-2 proteins: regulators of apoptosis or of mitochondrial homeostasis.</a> Nat. Cell Biol. 1, 209-216 (1999).</li>
<li>Alavian, K. N., Li, H., Collis, L., Bonanni, L., Zeng, L., Sacchetti, S., Lazrove, E., Nabili, P., Flaherty, B., Graham, M., Chen, Y., Messerli, S. M., Mariggio, M. A., Rahner, C., McNay, E., Shore, G. C., Smith, P. J. S., Hardwick, J. M., Jonas, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bcl-xL+regulates+metabolic+efficiency+of+neurons+through+interaction+with+the+mitochondrial+F1FO+ATP+synthase%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Bcl-xL regulates metabolic efficiency of neurons through interaction with the mitochondrial F1FO ATP synthase.</a> Nat. Cell Biol. 13 (10), 1224-1233 (2011).</li>
<li>Brown, M. R., Sullivan, P. G., Dorenbos, K. A., Modafferi, E. A., Geddes, J. W., Steward, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nitrogen+disruption+of+synaptoneurosomes%3A+an+alternative+method+to+isolate+brain+mitochondria%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">Nitrogen disruption of synaptoneurosomes: an alternative method to isolate brain mitochondria.</a> Journal of Neuroscience Methods. 137, 299-303 (2004).</li>
<li>Chan, T. L., Greenawalt, J. W., Pedersen, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biochemical+and+ultrastructural+properties+of+a+mitochondrial+inner+membrane+fraction+deficient+in+outer+membrane+and+matrix+activities%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Biochemical and ultrastructural properties of a mitochondrial inner membrane fraction deficient in outer membrane and matrix activities.</a> J. Cell Biol. 45 (2), 291-305 (1970).</li>
<li>Young, H. K. o, Delannoy, M., Hullihen, J., Chiu, W., Pedersen, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+ATP+Synthasomes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial ATP Synthasomes.</a> J. Biol. Chem. 278 (14), 12305-12309 (2003).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

I metodi qui descritti permettono l&#39;isolamento di puro mitocondri alla fine del passaggio 1 e vescicole submitocondriali (SMVs) dopo il passo 2 dal cervello intero senza distinzione di cella phenotypes.SMVspurified da questo metodo sono essenzialmente esente da contaminazione da altri organelli subcellulari come mostrato nella figura 1 e nostro precedente lavoro (Alavian KN et al. 8) e mantengono la loro integrità strutturale e funzionale prima del congelamento. Dopo il congelame...

<table><tbody><tr><td>Macinatore per tessuti Potter-Elvehjem con pestello in PTFE</td><td>Krackeler Scientific, Inc.</td><td>1-7725T-5</td><td></td></tr><tr><td>Centrifuga Eppendorf 5424 </td><td>Eppendorf</td><td>5424 000.410</td><td></td></tr><tr><td>Recipiente per la rottura cellulare 4639</td><td>Parr Instrument Company</td><td>4639</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F5415</td><td></td></tr><tr><td>Provette per centrifuga in policarbonato</td><td>Beckman Coulter</td><td>P20314</td><td></td></tr><tr><td>Rotore SW-50.1 </td><td>Beckman Coulter</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ultracentrifuga L8-70M</td><td>Beckman Coulter</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Digitonina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5628</td><td></td></tr><tr><td>Lubrol PX (C12E9) </td><td>Calbiochem</td><td>205534</td><td></td></tr><tr><td>Axopatch 200B </td><td>Axon Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Digidata 1440A </td><td>Molecular Device</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pClamp10.0</td><td>Molecular Device</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Manipolatore</td><td>Sutter Instrument</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Capillare in vetro borosilicato</td><td>World Precision Instruments</td><td>1308325</td><td></td></tr><tr><td>Tiratore di micropipette Flaming/Brown modello P-87</td><td>Sutter Instrument</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

<sub&gt; 1</sub&gt; f<sub&gt; o</sub&gt; atpasi vesicle preparazione e tecnica per permettere bloccare registrazioni patch di membrane delle vescicole submitocondriali

F1FO ATPase Vesicle Preparation and Technique for Performing Patch Clamp Recordings of Submitochondrial Vesicle Membranes

I mitocondri sono coinvolti in molte importanti funzioni cellulari tra cui il metabolismo, la sopravvivenza a 1, di sviluppo e, di segnalazione di calcio 2. Due delle più importanti funzioni mitocondriali sono legati alla produzione efficiente di ATP, la moneta energetica della cellula, dalla fosforilazione ossidativa e la mediazione di segnali per morte cellulare programmata 3. L&#39;enzima principale responsabile della produzione di ATP sintasi è il F1FO-ATP, chiamato anche ATP sintasi 4-5. Negli ultimi anni, il ruolo dei mitocondri nella morte cellulare per apoptosi e necrotiche ha ricevuto notevole attenzione. In morte cellulare per apoptosi, Bcl-2 proteine ​​della famiglia come Bax entrare la membrana mitocondriale esterna, oligomerize e permeabile la membrana esterna, rilasciando fattori pro-apoptotici nel citosol 6. In classico necrosi cellulare, come quello prodotto da ischemia o eccitotossicità nei neuroni, un large, aumento insufficiente regolazione in matrice calcio contribuisce all&#39;apertura di un poro membrana interna, la permeabilità mitocondriale poro di transizione o mPTP. Questo depolarizza la membrana interna e provoca cambiamenti osmotici, contribuendo alla rottura della membrana esterna, rilascio di fattori pro-apoptotici, e disfunzione metabolica. Molte proteine ​​tra cui Bcl-xL 7 interagiscono con F1FO ATP sintasi, modulando la sua funzione. Bcl-xL interagisce direttamente con la subunità beta della F1FO ATP sintasi, e questa interazione decresce una conduttanza di perdita entro il F1FOATPasecomplex, aumentando il trasporto netto di H + da F1FO durante F1FO ATPasi 8 e aumentando quindi l&#39;efficienza mitocondriale. Per studiare l&#39;attività e la modulazione della ATP sintasi, abbiamo isolato dal cervello di roditori submitocondriali vescicole (SMVs) contenenti F1FO ATPasi. Le SMVs mantengono l&#39;integrità strutturale e funzionale del F1FO ATPasi come mostrato in Alavian et al. Qui, descriviamo un metodoche abbiamo usato con successo per l&#39;isolamento di SMVs da cervello di ratto e noi delineare la tecnica patch clamp per analizzare l&#39;attività del canale (conduttanza perdita ion) delle SMVs.

Il primo passo del nostro protocollo consente l&#39;isolamento di mitocondri purificati come mostrato mediante Western blot in Figura 1. In figura 2 è mostrato un esempio di un derivato dal cervello submitocondriali registrazione cerotto vescicola. Utilizzando la configurazione di patch dentro-fuori dimostriamo attività del canale modulato da ATP. Il controllo (CTL) di registrazione (a sinistra) mostra l&#39;attività del canale multi-conduttanza con una conducibilità massima di 600 pS i...

Un metodo per isolare vescicole submitocondriali arricchiti in F1FO ATP sintasi complessi da cervello di ratto è descritto. Queste vescicole permettono lo studio dell&#39;attività del complesso F1FO ATPasi e la sua modulazione utilizzando la tecnica di patch clamp di.

<sub&gt; 1</sub&gt; F<sub&gt; O</sub&gt; ATPasi Vesicle Preparazione e tecnica per permettere Bloccare Registrazioni patch di membrane delle vescicole submitocondriali

I mitocondri sono coinvolti in molte importanti funzioni cellulari, tra cui il metabolismo, la sopravvivenza1, lo sviluppo e la segnalazione del calcio2. Due dei più ...

L'obiettivo generale di questa procedura è isolare vescicole F1 F zero APAs dal cervello di ratto per eseguire registrazioni mediante tecnica del patch clamp. Questo viene ottenuto innanzitutto rimuovendo il cervello da un ratto ed eseguendo l'omogeneizzazione. Il secondo passaggio consiste nel rompere le zone sinaptiche applicando pressione.Successivamente, i sinaptosomi vengono stratificati sui gradienti in provetta. L'ultimo passaggio consiste nell'incubare con digitonina e L per ottenere le vescicole finali da utilizzare per la registrazione mediante patch clamp. Una funzione importante dei mitocondri è la produzione di ATP mediante fosforilazione ossidativa.L'enzima responsabile della produzione di ATP è l'ATP sintasi localizzata nella membrana interna mitocondriale. Per studiare in dettaglio la funzione dell'ATP sintasi, isoliamo speciali vescicole sub-mitochondriali che chiamiamo SMV. Esse contengono l'enzima ATP sintasi in una configurazione invertita (a testa in giù).Registriamo quindi queste SMV mediante un elettrodo per la tecnica del patch clamp e determiniamo la permeabilità della loro membrana. Questo ci fornisce informazioni sull'efficienza della produzione di TP da parte dei mitocondri. Sylvia ti, ricercatrice postdottorato nel mio laboratorio presso la Yale University, dimostrerà oggi questa procedura.In questo procedimento, dopo aver ottenuto la testa di un ratto mediante decapitazione, tagliare la pelle per esporre il cranio, quindi aprire delicatamente il cranio praticandovi un'incisione con un paio di forbici o con le Rons. Successivamente, rimuovere il cervello, tritare il cervello senza il cervelletto finalmente in isolamento, tamponare, quindi trasferirlo in un omogeneizzatore in vetro e teflon da cinque millilitri e omogeneizzare delicatamente il tessuto 10 volte, per circa cinque minuti in totale. Dopodiché, centrifugare il campione a 1.500 ×g per 10 minuti a quattro gradi Celsius in una centrifuga da banco.Conservare il soprannatante con i mitocondri e i sinaptosomi e scartare il pellet. Quindi, centrifugare nuovamente a 16.000 ×g per 10 minuti a quattro gradi Celsius in una centrifuga da banco. Successivamente, scartare il soprannatante e risospendere il pellet in 500 microlitri di buffer di isolamento. Rompere i sinaptosomi utilizzando un dispositivo per la rottura cellulare applicando una pressione di 1.200 PSI per 10 minuti, seguita da una rapida decompressione. Applicare quindi le frazioni sinaptiche lisate sui tubi della centrifuga con due diverse concentrazioni di Ficoll che formeranno due strati.Successivamente, posizionare i tubi in un rotore SW 50.1 e centrifugare a 126.500 ×g per 20 minuti a quattro gradi Celsius. In un ultracentrifugo, il pellet corrisponde ai mitocondri purificati. Lo strato compreso tra le diverse densità del fial è il sinaptosoma non disturbato.In seguito, lavare il pellet centrifugando nell'isolamento. Buffer a 16.000 × g per 10 minuti a quattro gradi Celsius in una centrifuga da banco. Ora risospendere i mitocondri in 200 microlitri di buffer di isolamento, combinati con un volume uguale di 1% digitonina.Collocarlo sul ghiaccio per 15 minuti. Successivamente, aggiungere ulteriore tampone di isolamento e centrifugare a 16.000 ×g per 10 minuti a quattro gradi Celsius. Ripetere questa procedura due volte, quindi risospendere il pellet in 200 microlitri di tampone di isolamento e aggiungere due microlitri di 10% Laemmli buffer, mescolare e collocare sul ghiaccio per 15 minuti.Dopo di ciò, stratificare la miscela in tampone di isolamento all'interno delle provette per centrifuga. Posizionare le provette in un rotore SSW 50.1 e centrifugare a 182.000 ×g a quattro gradi Celsius per un'ora. Trascorsa un'ora.Lavare la paletta finale centrifugandola in tampone di isolamento a 16.000 × g per 10 minuti a quattro gradi Celsius. Un apparato tipico per elettrofisiologia comprende un amplificatore, un computer PC dotato di un'interfaccia digitale 1.440, un convertitore da analogico a digitale in combinazione con il software P clamp 10.0, manipolatori, un microscopio, un tavolo di isolamento dalle vibrazioni e una gabbia di Faraday. Per prima cosa, tirare una pipetta da un capillare in vetro borosilicato utilizzando un tiratore di micropipette Flame/Brown.La resistenza ottimale della pipetta deve essere compresa tra 80 e 100 mega ohm. Aggiungere le vescicole sub-mitochondriali in una soluzione intracellulare fisiologica. Successivamente, riempire una pipetta per patch clamp con la stessa soluzione.Visualizzare le vescicole in contrasto di fase. Microscopia dopo che le SMV sono state sigillate a temperatura ambiente. Registrare l'attività quando il potenziale di membrana è mantenuto al voltaggio compreso tra -100 millivolt e +100 millivolt per 10 secondi ogni periodo.I dati registrati vengono filtrati a cinque kilohertz utilizzando l'elettronica dell'amplificatore e analizzati con il software ClampFit 10.0. Questa figura mostra la macchia di lisato preparata da citosol e mitocondri. Il pannello superiore mostra una immunomacchia utilizzando un anticorpo contro la proteina citosolica GA dh.Il pannello inferiore mostra una blot utilizzando un anticorpo contro la proteina della membrana interna mitocondriale. Cox quattro Qui sono riportate due registrazioni rappresentative di patch clamp prima e dopo l'aggiunta di un millimolare di ATP. Il potenziale di clamping è di +70 millivolt. La linea tratteggiata rappresenta zero picoampere.Ogni traccia viene registrata per 10 secondi e vi sono 10 secondi tra una traccia e l'altra. Di seguito sono riportate le tracce di esempio delle variazioni di intensità di fluorescenza dell'indicatore CMA nel tempo in presenza di vescicole mitocondriali (SMVs) e in assenza o presenza di ATP. Dopo aver visionato questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione della procedura per isolare i mitocondri e delle vescicole sub-mitocondriali contenenti la sintasi F1 FO ATP. Inoltre, si dovrebbe comprendere come formare un sigillo resistente di tipo I con un elettrodo sulla membrana della vescicola al fine di analizzare l'attività del canale del complesso ATP sintasi.

f1fo-atpase-vesicle-preparation-technique-for-performing-patch-clamp

Research

Ricerca

JoVE Journal

Neuroscience

Neuroscienze

Questo è inteso come una introduzione alla registrazione di patch clamp da ovociti di Xenopus laevis. Esso copre la rimozione della membrana vitellina, la formazione di un sigillo gigaohm (gigaseal), e la conversione facoltativa delle patch al di fuori-out topologia.

Patch di registrazione pinza dei canali ionici Espressa in ovociti di Xenopus

Corrente ionica dei canali BK è registrato utilizzando tecniche di patch clamp. Canali BK sono espressi...

Patch clamp e Tecniche di perfusione per la valutazione dei canali ioni Espresso in Xenopus Ovociti

Questo protocollo descrive una tecnica chiamata elettrofisiologia del patch clamp a cellula intera, che è un metodo per studiare le proprietà elettriche dei neuroni di Mauthner e di altre cellule reticolospinali negli embrioni di zebrafish.

Elettrofisiologia del Patch Clamp a cellula intera: un metodo per studiare le proprietà elettriche dei neuroni

Abbiamo sviluppato una preparazione intatto midollo cerebrale-spinale per registrare e monitorare l'attività elettrica tramite registrazione patch clamp da neuroni e altre cellule Mauthner reticulospinal in embrioni di zebrafish. Quindi, siamo in grado di registrare le correnti sinaptiche eccitatorie e inibitorie, attività del canale voltaggio-dipendente e potenziali d'azione dai neuroni chiave in un embrione in via di sviluppo.

Bloccare Registrazioni patch da cellule embrionali Zebrafish Mauthner

Per completare i metodi comunemente usati per studiare TRPV4 di, sono descritti due metodi: la sua mechanosensitivity può essere studiato da Ca 2 + luminometria-aequorina in lievito transgenico upon sfida ipo-osmotico. Può pure esaminato TRPV4-RNA oociti di Xenopus iniettati da cellula intera clamp a due elettrodi tensione o Patch Clamp on-cella o modalità asportato.

Lievito luminometrici e Xenopus ovocita elettrofisiologiche Esami del mechanosensitivity molecolare del TRPV4

La ricostituzione della proteina transmembrana, KvAP, in giganti vescicole unilamellari (GUVs) è dimostrato per due metodi di disidratazione, reidratazione - electroformation, e gonfiore gel assistita. In entrambi i metodi, piccole vescicole unilamellari contenenti la proteina sono fusi insieme per formare GUVs che possono poi essere studiate mediante microscopia a fluorescenza e patch-clamp elettrofisiologia.

Ricostituzione di una proteina transmembrana, la tensione gated canali ionici, KvAP, in Giant unilamellari vescicole per la microscopia e Patch Clamp Studies

Questo articolo sul metodo descrive in dettaglio i passaggi principali nella misurazione della perdita di H + attraverso la membrana mitocondriale interna con la tecnica patch-clamp, un nuovo approccio per studiare la capacità termogenica dei mitocondri.

L'uso della tecnica Patch-Clamp per studiare la capacità termogenica dei mitocondri

Nonostante i recenti progressi, molte proteine mitocondriali del lievito rimangono ancora con le loro funzioni completamente sconosciute. Questo protocollo fornisce un metodo semplice e affidabile per determinare la localizzazione sottocondriale delle proteine, che è stato fondamentale per la delucidazione delle loro funzioni molecolari.

Valutazione della localizzazione della proteina submitocondriale nel lievito in erba Saccharomyces cerevisiae

Questo metodo sfrutta il contributo del poro di transizione della permeabilità mitocondriale alla perdita di protoni a bassa conduttanza per determinare la soglia di tensione per l'apertura dei pori nei topi neonatali con sindrome dell'X fragile con aumento del contenuto di coenzima Q mitocondriale dei cardiomiociti rispetto al controllo wildtype.

Valutazione della probabilità aperta del poro di transizione della permeabilità mitocondriale nel setting dell'eccesso di coenzima Q

I siti di contatto mitocondriali sono complessi proteici che interagiscono con le proteine della membrana interna ed esterna mitocondriale. Questi siti sono essenziali per la comunicazione tra le membrane mitocondriali e, quindi, tra il citosol e la matrice mitocondriale. In questo articolo, descriviamo un metodo per identificare i candidati che si qualificano per questa specifica classe di proteine.

Un metodo migliorato per isolare i siti di contatto mitocondriali

Questo protocollo descrive in dettaglio un metodo per misurare direttamente l'attività dei canali ionici sulle vescicole intracellulari utilizzando un sistema manuale di patch-clamp endolisosomiale. Illustriamo il metodo che prevede l'ingrandimento degli endolisosomi e l'isolamento manuale di queste vescicole. Questo approccio garantisce che i ricercatori possano replicare e applicare accuratamente la procedura.

Tecniche di patch-clamp per l'analisi di singole vescicole endolisosomiali

Impara a isolare vescicole submitocondriali contenenti F1FO ATPasi da cervello di ratto per registrazioni patch clamp. Questo metodo consente di studiare l'attività dell'ATP sintasi mitocondriale e la sua modulazione elettrofisiologica.

1 F O ATPasi Vesicle Preparazione e tecnica per permettere Bloccare Registrazioni patch di membrane delle vescicole submitocondriali (Video) | JoVE Journal

Esplora altri video