Name: Tecnica semplice ed efficace per la preparazione delle sospensioni cellulari testicolari (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 15 min 33 s
Description: Impara a preparare sospensioni cellulari testicolari da roditori in soli 15 minuti con un metodo meccanico senza enzimi. Questo protocollo preserva l'integrità degli acidi nucleici per analisi di espressione genica e citometria a flusso.

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Questo lavoro è stato in parte sostenuto dal CSIC (I + D progetto C022) e PEDECIBA. Gli autori desiderano ringraziare Mariela Bollati e Valentina Porro dall&#39;Unità Biologia Cellulare (Institut Pasteur de Montevideo) per la loro generosa collaborazione concernente il cell sorter MoFlo e Merial-Montevideo per fornire delicatamente tutti gli esemplari cavia utilizzati in questo progetto. Figura 1 è stato riprodotto con il permesso di BioMed Central, figure 2 e 3, e la Tabella 1 con il permesso di S. Karger AG, Basilea, e figure 4 e 5 sono stati riprodotti o adattati con il permesso di John Wiley &amp; Sons, Inc (copyright di proprietà di Wiley- Blackwell, 2011).

1. Preparazione delle sospensioni cellulari <ol><li> Sacrifica il campione da utilizzare secondo le raccomandazioni delle commissioni specializzate, come IACUC o equivalente (in Uruguay, Commissione nazionale per la sperimentazione animale [CNEA]). Nel nostro caso, una overdose di pentobarbital è stato somministrato. </li><li> Sezionare i testicoli seguenti procedure approvate standard e metterli in un bicchiere Petri 96 millimetri sul ghiaccio, contenente 10 ml di ghiacciata DMEM supplementato con siero fetale di vitello al 10%. </li><li> Rimuovere la tunica albuginea e tagliare i testicoli decapsulati in pezzi quadrati di 2-3 mm su ogni lato. </li><li> Quei pezzi vengono poi trattati in un Medimachine, un macinino meccanico automatizzato in cui il tessuto è disaggregato all&#39;interno di una unità monouso contenente uno schermo di acciaio inossidabile perforato e un rotore metallo. Per fare ciò, posto 1 ml di DMEM integrato freddo e 4-5 di questi pezzi in una unità di 50 micron e getta, interruttore sul disaggregator, e il processo di<html> per 50 sec seguendo le semplici istruzioni del produttore. </li><li> Recuperare la sospensione risultante cellula dall&#39;unità utilizzando una disaggregazione 3-5 ml siringa senza ago. </li><li> Filtrare su un 50 micron nylon mesh, precedentemente ammollato con 0,5 ml DMEM integrato. </li><li> Filtrare nuovamente la sospensione con una inzuppato 25 micron nylon mesh, e posto sul ghiaccio. </li><li> Contare in una camera di Neubauer e regolare la concentrazione cellulare di 1-2 x 10 7 cellule / ml con DMEM integrato. Almeno 4 x 10 7 cellule / grammo di materiale testicolo sono solitamente ottenuti. </li><li> Infine, aggiungere NDA (2-naftolo-6 ,8-disolfonico acido, sale dipotassico) ad una concentrazione finale di 0,2%, al fine di evitare grumi cella. </li><li> Optional: verificare la vitalità cellulare delle sospensioni di cellule testicolari con un kit disponibile in commercio per la vitalità delle cellule animali, seguendo le istruzioni del produttore. </li></ol> 2. Mediante citometria a flusso ve_content &quot;&gt; Abbiamo utilizzato un Becton-Dickinson FACSVantage citofluorimetro dotato di un laser a ioni argon Coherent sintonizzati per emettere a 488 nm per l&#39;analisi di cellule colorate con elevate concentrazioni di ioduro di propidio (PI). (La questione di ingresso PI in unfixed cellule sotto stress è stato affrontato altrove 9,10). <ol><li> Per PI colorazione, aggiungere fluorocromo ad una concentrazione finale di 50 mg / ml di sospensione cellulare, e incubare per 10 min a 0 ° C al buio. </li><li> Potenza del laser è impostato a 100 mW e un filtro passa-banda 575/26 viene utilizzato per raccogliere PI-emessa fluorescenza in FL2. </li><li> Eseguiamo misurazioni FC con un ugello di 70 micron. Per l&#39;ordinamento popolazioni spermatociti, impostare la modalità di ordinamento in Normal-R o Normal-C, con 3 gocce classificate come busta. Mantenere campione e tubi di raccolta a 3 - 4 ° C utilizzando una unità di refrigerazione. Regolare differenziale campione da analizzare le cellule ad una velocità di 500 a 1500 per secondo. </li><li> Utilizzare software CellQuest (BD) per analizzarei seguenti parametri: forward scatter (FSC-H); side scatter (SSC-H); fluorescenza totale emessa o impulso-zona (FL2-A), e la durata di emissione di fluorescenza o di larghezza di impulso (FL2-W). </li></ol> Alternativamente, abbiamo impiegato il colorante vitale Hoechst 33342 per una concentrazione finale di 5 pg / ml e incubate per 10 min a 37 ° C al buio. Analisi delle cellule è stata eseguita mediante un citometro MoFlo (Dako) provvisti di eccitazione UV di lunghezza d&#39;onda del laser funzionante a 25 mW e utilizzando un ugello di 70 micron. Manipolazione dei dati è stata effettuata con il software Summit v4.3 (Dako).

<ol><li>Meistrich, M. L. Separation of spermatogenic cells and nuclei from rodent testes. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMeistrich%2C+ML+%22Methods+of+Cell+Biology%22">Methods of Cell Biology</a>. Prescott, D. M. 15, Academic Press. New York. 15-54 (1977).</li>
<li>Lam, D. M. K., Furrer, R., Bruce, W. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+separation%2C+physical+characterization%2C+and+differentiation+kinetics+of+spermatogonial+cells+of+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">The separation, physical characterization, and differentiation kinetics of spermatogonial cells of the mouse.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 65, 192-199 (1970).</li>
<li>Romrell, L. J., Bellve, A. R., Fawcet, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+mouse+spermatogenic+cells+by+sedimentation+velocity%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Separation of mouse spermatogenic cells by sedimentation velocity.</a> Dev. Biol. 19, 119-131 (1976).</li>
<li>Geisinger, A., Rodríguez-Casuriaga, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+cytometry+for+gene+expression+studies+in+mammalian+spermatogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Cytogenet.+Genome+Res%22%5BJournal%5D)">Flow cytometry for gene expression studies in mammalian spermatogenesis.</a> Cytogenet. Genome Res. 128, 46-56 (2010).</li>
<li>Getun, I. V., Torres, B., Bois, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+cytometry+purification+of+mouse+meiotic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Flow cytometry purification of mouse meiotic cells.</a> J. Vis. Exp. (50), e2602(2011).</li>
<li>Meistrich, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+mouse+spermatogenic+cells+by+velocity+sedimentation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Separation of mouse spermatogenic cells by velocity sedimentation.</a> J. Cell Physiol. 80, 299-312 (1972).</li>
<li>Meistrich, M. L., Bruce, W. R., Clermont, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+composition+of+fractions+of+mouse+testis+cells+following+velocity+sedimentation+separation%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Cellular composition of fractions of mouse testis cells following velocity sedimentation separation.</a> Exp. Cell Res. 79, 213-227 (1973).</li>
<li>Malkov, M., Fisher, Y., Don, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+schedule+of+the+postnatal+rat+testis+determined+by+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Rep%22%5BJournal%5D)">Developmental schedule of the postnatal rat testis determined by flow cytometry.</a> Biol. Rep. 59, 84-92 (1998).</li>
<li>Rodríguez-Casuriaga, R., Geisinger, A., Santiñaque, F., López, B., Folle, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-purity+flow+sorting+of+early+meiocytes+based+on+DNA+analysis+of+guinea+pig+spermatogenic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">High-purity flow sorting of early meiocytes based on DNA analysis of guinea pig spermatogenic cells.</a> Cytometry A. 79, 625-634 (2011).</li>
<li>Davey, H. M., Hexley, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Red+but+not+dead%3F+Membranes+of+stressed+Saccharomyces+cerevisiae+are+permeable+to+propidium+iodide%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Red but not dead? Membranes of stressed Saccharomyces cerevisiae are permeable to propidium iodide.</a> Environ. Microbiol. 13, 163-171 (2011).</li>
<li>Rodríguez-Casuriaga, R., Geisinger, A., López-Carro, B., Porro, V., Wettstein, R., Folle, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultra-fast+and+optimized+method+for+the+preparation+of+rodent+testicular+cells+for+flow+cytometric+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Proced.+Online%22%5BJournal%5D)">Ultra-fast and optimized method for the preparation of rodent testicular cells for flow cytometric analysis.</a> Biol. Proced. Online. 11, 184-195 (2009).</li>
<li>Spanò, M., Evenson, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+cytometric+analysis+for+reproductive+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Cell%22%5BJournal%5D)">Flow cytometric analysis for reproductive biology.</a> Biol Cell. 78, 53-62 (1993).</li>
</ol>

Il metodo qui descritto ottimizzato consente la preparazione di sospensioni di cellule da tessuto testicolare roditore in modo molto veloce e riproducibile, evitando enzima e detersivo trattamento e mantenere una buona integrità delle cellule e di tipo proporzioni. La brevità della procedura (il minimo campata 15 include la dissezione testicolo, il taglio dei tessuti, e la lavorazione), una minima manipolazione coinvolto, e l&#39;assenza di trattamenti enzimatici sono alcuni dei principali vantaggi. Tutti questi sarebbe...

<table><tbody><tr><td>Sistema Medimachine</td><td>BD</td><td>340587</td><td></td></tr><tr><td>Unità Medicon (50 &mu; m)</td><td>BD</td><td>340591</td><td></td></tr><tr><td>Unità Filcon (50 &mu; m)</td><td>BD</td><td>340603</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Gibco</td><td>430-2100</td><td></td></tr><tr><td>Siero fetale di vitello</td><td>PAA</td><td>A11-151</td><td></td></tr><tr><td>NDA</td><td>Chemos BmbH</td><td>277081</td><td></td></tr><tr><td>H&#8211; chst 33342</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>14533</td><td>Soluzione madre 5 mg/ml; usato ad una concentrazione finale di 5 &mu; g/ml</td></tr><tr><td>Ioduro di propidio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>287075</td><td>Soluzione madre 1 mg/ml; usato ad una concentrazione finale di 50 &mu; g/ml</td></tr></tbody></table>

tecnica semplice ed efficace per la preparazione delle sospensioni cellulari testicolari

Simple and Efficient Technique for the Preparation of Testicular Cell Suspensions

Testicoli di mammiferi sono organi molto complessi che contengono più di 30 diversi tipi di cellule, tra cui le cellule somatiche testicolari e le diverse fasi di cellule germinali. Questa eterogeneità è un importante svantaggio riguarda lo studio delle basi della spermatogenesi mammiferi, poiché sono necessari popolazioni pure o arricchito di cellule in determinate fasi dello sviluppo sperma per la maggior parte delle analisi molecolari 1. Strategie diverse quali Staput 2,3, elutriazione centrifuga 1, e citometria a flusso (FC) 4,5 sono stati impiegati per ottenere popolazioni di cellule testicolari arricchiti o purificata per consentire studi di espressione genica differenziale. E &#39;necessario che le celle siano in sospensione per la maggior parte degli approcci arricchimento / purificazione. Idealmente, la sospensione cellulare sarà rappresentativo del tessuto originale, hanno una elevata percentuale di cellule vitali e poche multinucleates - che tendono a formare a causa dellanatura sinciziale dell&#39;epitelio seminifero 6,7 - e grumi di cellule mancanza 1. I rapporti precedenti hanno evidenziato che le sospensioni di cellule testicolari preparati da un metodo esclusivamente meccanico aggregata più facilmente di quelli trypsinized 1. D&#39;altra parte, trattamenti enzimatici con RNasi e / o disaggregazione enzimi come tripsina e collagenasi porterebbe al degrado macromolecole specifico, che è indesiderabile per determinate applicazioni a valle. Il processo ideale dovrebbe essere il più breve possibile e coinvolgere manipolazione minima, in modo da realizzare una buona conservazione delle macromolecole di interesse come mRNA. Protocolli attuali per la preparazione di sospensioni cellulari da tessuti solidi sono solitamente richiede tempo, fortemente operatore-dipendente, e possono danneggiare selettivamente alcuni tipi di cellule 1,8. Il protocollo presentato qui combina i vantaggi di una disaggregazione meccanica altamente riproducibile ed estremamente breve con l&#39;unabsence di trattamento enzimatico, portando a sospensioni cellulari di buona qualità che possono essere usati per l&#39;analisi di citometria di flusso e di smistamento 4, e ulteriori studi di espressione genica 9.

Un esempio di una sospensione cellulare ben disaggregata da testicoli di ratto preparate con il protocollo qui descritto è mostrato in Figura 1. In confronto ai trattamenti enzimatici 6,8 e precedentemente descritti metodi di disaggregazione meccanici 2, quello qui presentato è molto più veloce, comporta meno manipolazione, è facilmente riproducibile (non operatore-dipendente), e rende detriti cellulari scarsi (soprattutto rispetto ad altri meccanico me...

Un nuovo protocollo per la preparazione meccanica di sospensioni di cellule testicolari di materiale roditore, evitando enzimi e detergenti, è descritto. Il metodo è molto semplice, veloce, riproducibile, e rende sospensioni cellulari di buona qualità, che sono adatti per il flusso di smistamento e l&#39;estrazione di RNA.

Tecnica semplice ed efficace per la preparazione delle sospensioni cellulari testicolari

Mammalian testes are very complex organs that contain over 30 different cell types, including somatic testicular cells and different stages of germline ...

In questo video verrà presentato un protocollo estremamente semplice ed efficiente per ottenere una sospensione cellulare di materiale testicolare da roditori in soli 15 minuti. Il metodo è stato applicato ai testicoli di topo, ratto e criceto e utilizza un dispositivo meccanico per disaggregare il tessuto encapsulato. Dopo una filtrazione e la colorazione, la sospensione cellulare è pronta per la citofluorimetria.L'analisi citometrica o il sorting della popolazione cellulare omogenea sono prerequisiti per lo studio degli eventi biochimici e molecolari durante la differenziazione del gamete maschile. Pertanto, l'eterogeneità testicolare, con oltre 30 diversi tipi cellulari, rappresenta uno dei principali ostacoli nello studio della base molecolare della spermatogenesi nei mammiferi. Per questo motivo, sono stati impiegati diversi metodi per ottenere popolazioni cellulari testicolari arricchite o purificate, inclusi l'unità di purificazione e la centrifugazione in gradiente.Il primo passaggio per qualsiasi metodo di separazione cellulare è la preparazione di una sospensione cellulare. Tuttavia, i protocolli attuali richiedono solitamente molto tempo e possono comportare la perdita d

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Dissociare cellule di tipi di tessuto specifico richiede parametri specifici per aggitation tessuto per ottenere un elevato volume di vitali, cellule coltivabili. Il Miltenyi gentleMACS dissociatore ottimizza questa operazione con un semplice protocollo pratico. In questa pubblicazione l'utilizzo di questo apparecchio sul tessuto nerual è spiegato.

Generazione di Single-Cell Sospensioni dal tessuto neurale del mouse

Questo video dimostra la procedura di isolamento delle cellule di Sertoli dai tubuli seminiferi di topo, un componente dei testicoli. La digestione enzimatica e i lavaggi ripetuti favoriscono il rilascio di cellule di Sertoli nella soluzione, che possono essere ulteriormente coltivate per la proliferazione e la crescita.

Isolamento delle cellule di Sertoli immunoregolatorie dai tubuli seminiferi di topo

Il video dimostra la preparazione di una sospensione unicellulare di cellule immunitarie da un tessuto cerebrale murino. Prevede la digestione enzimatica per rilasciare le cellule dal tessuto cerebrale, seguita dalla centrifugazione in gradiente di densità per isolare le cellule immunitarie in base alla loro densità per ottenere la sospensione di una singola cellula.

Preparazione di una sospensione unicellulare di cellule immunitarie da tessuto cerebrale murino

Un metodo semplice per ottenere e mantenere spermatogoni staminali e linee di cellule progenitrici da topi adulti è presentato qui. Il metodo utilizza cellule di alimentazione provenienti dal compartimento delle cellule somatiche del testicolo di topo adulto. Questa tecnica è applicabile ai ceppi di topi comuni, tra cui transgenici, knock-out e knock-nei topi.

Arricchimento di serie staminali spermatogoni e cellule progenitrici (SSC) in Cultura per la derivazione di lungo termine Lines topo adulto SSC

Il metodo STA-PUT consente la separazione delle diverse popolazioni di cellule spermatogenesi in base alle dimensioni e densità.

Separazione di tipi di cellule della spermatogenesi Usando STA-PUT velocità di sedimentazione

Il materiale qui descrive un metodo sviluppato per preservare la struttura tridimensionale della cromatina delle cellule germinali testicolari. Questo è stato definito il metodo di scorrimento tridimensionale (3D). Questo metodo migliora la sensibilità per il rilevamento di strutture subnucleari ed è applicabile per l'immunofluorescenza, il DNA e la fluorescenza dell'RNA nell'ibridazione in situ (FISH).

Metodo di preparazione delle diapositive per preservare l'architettura tridimensionale della cromatina delle cellule germinali testicolari

pile Sertoli sono necessari per lo studio testicolo-immunitario privilegio, trasduzione del segnale durante l'infiammazione o infezione, e l'utilizzo delle loro proprietà immunoprotettivi. Qui si descrive un protocollo a base di enzimi per l'isolamento delle cellule di Sertoli primaria altamente purificate e cellule peritubulari da testicoli di ratto.

Isolamento delle cellule di Sertoli e peritubulari cellule da Rat testicoli

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Un approccio standardizzato per la depurazione multispecie di cellule germinali maschili di mammiferi mediante dissociazione tissutale meccanica e citometria del flusso

Presentato qui è un protocollo per arricchire gli spermatociti pachytene, gli spermatidi rotondi e gli spermatidi allunganti dei testicoli del topo adulti utilizzando un gradiente didiscontinuo di densità di albumina del siero bovino con attrezzature di laboratorio standard.

Arricchimento di spermatociti pachytene e Spermatidi da test del mouse utilizzando attrezzature di laboratorio standard

Qui vengono descritti quattro metodi per generare organoidi testicolari da cellule testicolari murine neonatale primarie, cioè matrice extracellulare (ECM) e ambienti di coltura 2D e 3D senza ECM. Queste tecniche hanno molteplici applicazioni di ricerca e sono particolarmente utili per studiare lo sviluppo testicolare e la fisiologia in vitro.

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Isolamento delle cellule spermatogeniche murine utilizzando un colorante legante del DNA permeabile alle cellule violetto

Impara a preparare sospensioni cellulari testicolari da roditori in soli 15 minuti con un metodo meccanico senza enzimi. Questo protocollo preserva l'integrità degli acidi nucleici per analisi di espressione genica e citometria a flusso.

Tecnica semplice ed efficace per la preparazione delle sospensioni cellulari testicolari

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