Name: Intubazione endotracheale in Mouse Via Laringoscopia diretta usando un otoscopio (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-04-05T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 58 s
Description: Impara l'intubazione endotracheale nei topi tramite laringoscopia diretta con otoscopio. Questa tecnica non invasiva consente misurazioni ripetute in esperimenti cronici e offre un'alternativa affidabile alla tracheotomia.

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Un merito Sovvenzione del Department of Veteran Affairs e una borsa T32-HL098062 dal NHLBI dei National Institutes of Health sostenuto questo lavoro. Vogliamo riconoscere con gratitudine i consigli di Randolph H. Hasting, MD, Ph.D. e la consulenza e il sostegno del Veterinary Medical Unità del Sistema Sanitario di VA San Diego.

1. Preparazione degli animali <ol><li> Ottenere i topi che sono più vecchi di 8 settimane e più di 20 g (i topi più piccoli possono essere intubati da un esperto). </li><li> Anestesia <ol><li> Iniettare topi con 20 mg / kg, ciascuno, di chetamina e xilazina intraperitoneale come preanesthetic. (Questa dose è sufficiente per anestetizzare completamente il mouse, ma facilita il trasferimento, dopo l&#39;intubazione, alla ventilazione meccanica.) Tuttavia, la regolazione dei dosaggi può essere necessario in base alla risposta anestetico in consultazione con il veterinario istituzionale.) </li><li> Indurre l&#39;anestesia nei topi con il 3,5% isoflurano / ossigeno in una camera di induzione per 90-120 sec. </li><li> Osservare attentamente la frequenza respiratoria. Si dovrebbe rallentare progressivamente a non meno di 45 bpm. </li></ol></li></ol> 2. Preparazione per l&#39;intubazione <ol><li> Rimuovere il mouse dalla camera di induzione e Scruff ermeticamente. </li><li> Utilizzare imbottiti pinza sottile a gently estendere la lingua dalla bocca. </li><li> Mantenere l&#39;estensione della lingua tenendo la lingua tra due dita e applicando la forza gentile. </li><li> Estrarre il mouse sulla speculum del otoscopio con un movimento verticale. </li><li> Guardare attraverso l&#39;oculare del otoscopio mentre scruffing strettamente e tirare il mouse verso l&#39;alto delicatamente la lingua e la collottola. </li><li> Guardate attentamente per le corde vocali. Essi dovrebbero essere facilmente visibile in questo momento. Il aditus laryngis (la struttura dell&#39;apertura laringeo) dovrebbe essere relativamente bianco. Dovrebbe esserci movimento delle cordicelle con ogni respiro. Se i cavi non si muovono o sono scarsamente visualizzate, ruotare leggermente l&#39;animale e iperestendersi delicatamente il collo. </li><li> Con la mano dominante, tenere il 20 G, 1 a catetere, con una lunghezza di 1 cm dalla tubazione PE10 estendentesi attraverso la punta del catetere, come una matita e inserirlo nel lato della speculum. Il tubo PE serve come uno stiletto o bougie. </li><li> Dirigere il tubi PE10ng (mandrino) attraverso le corde vocali e far avanzare il catetere G 20 (tubo endotracheale) sopra il tubo PE finché il mozzo è a livello dell&#39;incisivo inferiore. Rimuovi questo stiletto in fretta. </li><li> Estrarre delicatamente l&#39;animale fuori della speculum e verificare la posizione del tubo ponendo l&#39;animale in un ventilatore meccanico con continua 2% isoflurano per mantenere l&#39;anestesia generale tutto l&#39;esperimento. Visualizza aria espirata (bolle) passando attraverso una trappola PEEP per confermare l&#39;intubazione. Anche se l&#39;intubazione esofagea può causare alcune bolle, non sarà così pronunciati o coerente con intubazione endotracheale. Inoltre, osservare un tracciato pressione delle vie aeree per le deviazioni negative (Figura 1). Questi confermano il corretto posizionamento del tubo. In alternativa, mettere una piccola quantità di acqua nel tubo IV e collegarlo al tubo ET. Verifica circolazione con il mouse con respirazione 2. Nel caso di intubazione esofagea, il pressione tracciamento rivelerà pressioni significativamente più elevati e senza deviazioni negative. Sebbene end-tidal CO 2 sarebbe utile, tecnicamente questo sarebbe molto difficile visti i piccoli volumi correnti (~ 200 microlitri) e l&#39;attrezzatura per fare questo sarebbe molto costoso. Le semplici tecniche descritte sono pienamente sufficienti e molto meno costoso. Se l&#39;anestesia isoflurano non è disponibile, tutte le procedure possono essere effettuate utilizzando la ketamina 80-120 mg / kg in combinazione con xylazina 10-20 mg / kg per l&#39;anestesia generale. </li></ol> 3. Tecnica alternativa: laringoscopia diretta con la Tecnica otoscopio è facilmente utilizzate per altri scopi, principalmente per la diretta instillazione di sostanze di studio nei polmoni. <ol><li> Indurre anestesia negli animali con isoflurano solo per questa procedura al 3,5% per 90-120 secondi nella camera di induzione. </li><li> Scruff l&#39;animale saldamente alla base del cranio e prolungare la lingua delicatamentecon una pinza sottile. </li><li> Tenendo la lingua con delicatezza, tirare l&#39;animale verso l&#39;alto della speculum (non modificato) fino a quando l&#39;animale non può essere tirato ulteriormente. </li><li> Le corde vocali possono essere visualizzate più frequentemente questa tecnica da sola, ma ruotare l&#39;animale e iper-esteso il collo per portarli in piena vista. </li><li> Anticipo di una pipetta di caricamento del gel contenente il instillate alla glottide e infondere il liquido. Poiché la speculum fa un sigillo con nell&#39;ipofaringe il mouse aspirare qualsiasi liquido residuo che non passa attraverso le corde. Questo è facilmente verificabile dalla rhonchorous suoni il mouse ora fa quando il respiro fino a quando il liquido è distribuito pienamente nei polmoni. </li><li> In alternativa, collegare il tubo PE10 a una siringa da 0,5 ml contenente 50 ml di fluido con un bolo aria dietro il liquido. Far avanzare il tubo PE attentamente le corde vocali di 0,5 centimetri e scaricare il contenuto nelle vie aeree lentamente. Tuttavia, trauma occasionale alle vie aeree inferiori si verifica ucantare questa tecnica senza migliore consegna del campione. </li></ol>

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</ol>

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.

In questo rapporto descriviamo una tecnica semplice e affidabile per intubare i topi che è traumatica e può essere utilizzato più volte nello stesso animale. Questa tecnica può essere realizzato con semplice laboratorio o dispositivo medico che può essere acquistato per una somma modesta. La tecnica di laringoscopia diretta, originalmente riportata da Hastings e colleghi 4, può anche essere utilizzato per una varietà di scopi, ma principalmente per fornire precisione sostanze in esame per il tratto respirator...

Il topo di laboratorio ha soppiantato quasi tutte le specie di mammiferi come il modello principale della biologia e patobiologia. Il topo di laboratorio è la più piccola specie di mammiferi che è stato chiaramente e ampiamente dimostrato di essere di valore come modello di malattia umana e si è dimostrato prezioso anticipi della nostra comprensione della biologia umana e della malattia. Il tempo di gestazione breve e un costo sostanzialmente inferiore ha permesso lo sviluppo e lo studio di topi nulli e transgenici come strumento comune nella ricerca biomedica. Tuttavia, la dimensione del topo di laboratorio media (20-25 g) ha limitato il loro studio in studi basati fisiologicamente o chirurgicamente e, di conseguenza, alcuni ricercatori studiano grandi mammiferi. Un ostacolo all&#39;utilizzo di topi in questi studi è la difficoltà incontrata con tecniche di intubazione che consentano misurazioni fisiologiche o estesi interventi chirurgici in anestesia profonda. Tracheostomia 1 è stato utilizzato come standard di TEchnique invece di intubazione per la maggiore facilità di esecuzione di questa tecnica e modesta abilità richiesto. Tuttavia, tracheostomia non è favorevole agli studi cronici o di recupero di chirurgia; quindi, è limitato agli esperimenti acuti. Tracheostomia può anche essere una variabile di confusione nella ricerca in cui l&#39;infiammazione o riflessi fisiologici sensibili sono importanti. Il nostro laboratorio ha provato più delle tecniche descritte da altri ricercatori e trovato inadeguate per una serie di motivi. Tracheostomia è troppo traumatico e induce sanguinamento e infiammazione delle vie aeree. Molto più problematico è che non possono in pratica essere ripetuto. Molte tecniche relativamente invasive che richiedono un modesto investimento in attrezzature non sono sufficientemente affidabili. Altre tecniche richiedono costose attrezzature che è difficile giustificare senza sapere se l&#39;apparecchiatura funziona in una specifica applicazione. Così, abbiamo cercato di sviluppare una tecnica non traumatica che ha richiesto non più than un modesto investimento in attrezzature specializzate, potrebbe essere realizzato in modo rapido e affidabile, potrebbe essere ripetuta in modelli cronici, e potrebbe essere utilizzata in un gran numero di animali. Qui riportiamo tale tecnica.

<table><tbody><tr><td>Testa per otoscopio operativo</td><td>Welch Allyn</td><td>21700</td><td>$188.98</td></tr><tr><td>Manico per otoscopio</td><td>Welch Allyn</td><td>71000</td><td>$112.20</td></tr><tr><td>Speculum riutilizzabile</td><td>Welch Allyn</td><td>22002</td><td>$3.98</td></tr><tr><td>Pinze fini</td><td>Miltex</td><td>18-779</td><td>$107.18</td></tr><tr><td>Piccolo supporto a morsetto per contenere l'otoscopio</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vaporizzatore di isoflurano (circuito multiplo con trattamento dei gas di scarico sottovuoto)</td><td>Summit Medical</td><td></td><td>$ 3.000</td></tr><tr><td>Flexivent (ventilatore per animali)</td><td>SCIREQ</td><td></td><td>$ 35.000</td></tr><tr><td>Catetere endovenoso (20 G, 1 pollice)</td><td>BD</td><td>381233</td><td>$ 9,62</td></tr><tr><td>Tubo in polietilene (PE10) (0,011 in ID, 0,024 in OD) 100 piedi</td><td>Intramedic, Clay-Adams</td><td>427401</td><td>$ 115,70</td></tr><tr><td>Ketamina 100 mg / ml (10 ml bottiglia)</td><td>Butler</td><td>23061</td><td>$10.00</td></tr><tr><td>Xilazina (flacone da 100 ml)</td><td>Vedco</td><td>24105</td><td>$20.00</td></tr><tr><td>Isoflurano (flacone da 250 ml)</td><td></td><td></td><td>$15.00</td></tr><tr><td>Vecuronio bromuro 10 mg/10 ml</td><td>Pfizer</td><td>NDC 0069-0094-01</td><td>$15.00</td></tr></tbody></table>

intubazione endotracheale in mouse<em&gt; via</em&gt; laringoscopia diretta usando un otoscopio

Endotracheal Intubation in Mice via Direct Laryngoscopy Using an Otoscope

Mice, sia di tipo selvatico e transgenici, sono il modello mammiferi principale nella ricerca biomedica attualmente. Intubazione e ventilazione meccanica sono necessari per gli esperimenti sugli animali integrali che richiedono un intervento chirurgico in anestesia profonde o misure della funzione polmonare. Tracheostomia è stato lo standard per intubazione delle vie aeree in questi topi per consentire la ventilazione meccanica. Intubazione orotracheale è stata riportata, ma non è stato usato con successo in molti studi per la difficoltà tecnica sostanziale o un requisito di apparecchiature altamente specializzate e costose. Qui riportiamo una tecnica di laringoscopia diretta utilizzando un otoscopio dotato di uno speculum 2,0 mm utilizzando un catetere venoso 20 G come un tubo endotracheale. Abbiamo utilizzato questa tecnica ampiamente e affidabile per intubare e condurre accurate valutazioni della funzione polmonare nei topi. Questa tecnica si è dimostrato sicuro, con essenzialmente senza perdita degli animali in mani esperte. Inoltre, questa tecnicapuò essere utilizzato per studi ripetuti di topi in modelli cronici.

Intubazione con la tecnica di cui sopra è affidabile e veloce. Il posizionamento appropriato del tubo endotracheale è più facilmente verificato osservando gorgogliare gas espirato dal espiratorio sommersa del del circuito di ventilazione (di solito in una trappola PEEP) e deviazioni negative su una pressione delle vie aeree tracciamento (Figura 1). Le deviazioni negative sulla pressione delle vie aeree tracciato sono i più affidabili. Altri hanno usato circolazione di una piccola goccia di fluido nel tu...

Abbiamo sviluppato un metodo semplice, affidabile e relativamente poco costoso per l&#39;intubazione endotracheale nei topi mediante laringoscopia diretta con un otoscopio con un speculum 2,0 millimetri. Questa tecnica è atraumatica e può essere utilizzato per misurazioni ripetute in esperimenti cronici. Troviamo superiore a tracheostomia o riportato in precedenza tecniche non chirurgiche.

Intubazione endotracheale in Mouse<em&gt; Via</em&gt; Laringoscopia diretta usando un otoscopio

Mice, both wildtype and transgenic, are the principal mammalian model in biomedical research currently. Intubation and mechanical ventilation are ...

L'obiettivo generale di questa procedura è intubare in modo affidabile i topi per via orale. Questo viene raggiunto posizionando innanzitutto con attenzione l'animale anestetizzato nell'orientamento corretto. Successivamente, con l'otoscopio, si visualizzano le corde vocali e si introduce il tubo endotracheale in gola utilizzando un filo guida.Successivamente, il mouse intubato viene posizionato su un ventilatore per verificare il corretto posizionamento del tubo. In alternativa, l'otoscopio può essere utilizzato per somministrare sostanze di prova al polmone. Infine, è possibile misurare con precisione le relazioni pressione-volume nel polmone.I principali vantaggi di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come la tracheostomia, sono che è rapida, non provoca sanguinamento, non causa traumi e può essere ripetuta. La dimostrazione visiva di questa tecnica è fondamentale poiché i passaggi dell'intubazione sono difficili da apprendere e le istruzioni scritte risultano poco chiare senza una contemporanea visualizzazione dell'anatomia e della meccanica dell'intubazione. Per eseguire un'intubazione endotrachea utilizzando un otoscopio, prima afferrare la nuca di un topo anestetizzato di otto settimane e poi usare pinzette fini con superficie imbottita per estendere delicatamente la lingua fuori dalla bocca.Mantenere l'estensione tenendo la lingua con la pinzetta ed esercitando una forza delicata, quindi sollevare il topo sul bocchino dell'otoscopio con un movimento verticale. Guardare attraverso l'oculare dell'otoscopio continuando a tenere saldamente il collo del topo e tirare delicatamente il topo lungo tutta la lunghezza del bocchino dell'otoscopio mediante la lingua e il collo. Cercare attentamente le corde vocali, che dovrebbero essere facilmente visibili e muoversi con ogni respiro, osservando la struttura dell'apertura laringea.Le unità anatomiche della laringe dovrebbero apparire relativamente bianche. Se le corde vocali non si muovono o sono scarsamente visibili, ruotare leggermente l'animale e iperestendere delicatamente il collo. Quindi, con la mano dominante, prendere un catetere da 20 gauge, lungo un pollice, dotato di un'estensione di un centimetro di tubo PE 10 che sporge attraverso la punta del catetere, e tenerlo come una matita.Quindi inserire il catetere nel lato dello specillo. Far passare il tubo PE 10 attraverso le corde vocali e avanzare il catetere lungo il tubo fino a quando il mozzo si trovi all'altezza dell'incisivo inferiore. Successivamente, rimuovere rapidamente il tubo.Successivamente, trasferire delicatamente l'animale dallo specillo a un ventilatore meccanico e verificare la posizione del tubo osservando le bolle d'aria espirata che passano attraverso il trappola di peep. Osservare un tracciato della pressione delle vie aeree per deflessioni negative al fine di confermare il corretto posizionamento del tubo. In caso di intubazione esofagea, il tracciato della pressione mostrerà pressioni significativamente più elevate e l'assenza di deflessioni negative.In alternativa, versare una piccola quantità di acqua in un pezzo di tubo per fleboclisi e collegare il tubo al tubo di intubazione, verificando il movimento dell'acqua in entrata e in uscita dal topo in corrispondenza della respirazione. Un altro utilizzo del metodo dell'otoscopio consiste nel somministrare sostanze di prova al topo. Utilizzare lo speculum per inserire una pipetta per caricamento gel fino alle corde vocali e instillare fino a 50 microlitri del trattamento di interesse.Il mouse aspirerà il liquido attraverso i cordoni, verificato dall'ous. Si sentiranno i rumori respiratori finché il fluido non sarà completamente distribuito nei polmoni. Dopo aver somministrato il trattamento, rimuovere delicatamente la pipetta e posizionare il mouse su un tappetino riscaldante.In alternativa, posizionare l'animale all'interno di una gabbia posta su un tavolo riscaldante con controllo della temperatura. Una volta che l'animale si è completamente ripreso, riposizionarlo nella sua gabbia. L'intubazione attraverso l'otoscopio è affidabile e rapida.In questo tracciato rappresentativo della pressione delle vie aeree, la linea blu riflette la pressione delle vie aeree, mentre la linea rossa riflette il tracciato del volume corrente nel topo immediatamente dopo l'intubazione. Le deflessioni negative verso il basso della curva di pressione indicano la generazione di una pressione intratoracica negativa nel topo dovuta allo sforzo respiratorio spontaneo e alla corretta posizione del tubo endotracheale. Per questa curva pressione-volume rappresentativa, il topo è stato intubato con un catetere endovenoso di calibro 20, come appena dimostrato, paralizzato con pantopril e ventilato meccanicamente.Le curve mostrano che il catetere non perde fino a una pressione di 30 centimetri di colonna d'acqua e può quindi essere utilizzato per effettuare misurazioni accurate delle relazioni pressione-volume nel topo. In questa figura è riportata una curva rappresentativa di risposta alla dose. In questo esperimento, l'animale di controllo ha mostrato una risposta minima alla metacolina fino a 25 milligrammi per millilitro, mentre il topo immunizzato e stimolato con albumina ha dimostrato iperreattività al trattamento.Le misurazioni sono state effettuate con topi intubati mediante un catetere da 20 gauge, come appena dimostrato, e sono risultate indistinguibili da quelle ottenute in topi sottoposti a tracheostomia mediante laringoscopia diretta. Il rilascio quantitativo nel polmone è sia più affidabile che più uniforme. Ad esempio, come illustrato in questa immagine, la tecnica di somministrazione diretta può essere utilizzata per consegnare con precisione l'antigene alle vie respiratorie inferiori in un modello di infiammazione allergica.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come utilizzare un otoscopio per eseguire un'intubazione laringoscopica diretta in un topo.

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Un modello chirurgico murino per creare lesioni da ischemia polmonare sinistra (IR) mantenendo la ventilazione ed evitando l'ipossia.

Un modello murino di intubazione orotracheale e chirurgia ventilata di ischemia polmonare riperfusione

Qui, proponiamo un protocollo per la somministrazione di lipopolisaccaridi intratracheali (LPS) tramite intubazione endotracheale orofaringea non invasiva. Questo metodo riduce al minimo il trauma della procedura chirurgica per l'animale e fornisce accuratamente LPS alla trachea e quindi ai polmoni.

Instillazione di lipopolisaccaridi intratracheali non invasivi nei topi

Questo protocollo descrive un approccio di laringoscopia transorale seriale per topi e ratti che consente l'imaging video ravvicinato e senza ostacoli della laringe durante la respirazione e la deglutizione utilizzando un regime anestetico ottimizzato e tecniche di manipolazione endoscopica finemente sintonizzate.

Laringoscopia murina minimamente invasiva per l'imaging ravvicinato del movimento laringeo durante la respirazione e la deglutizione

Qui introduciamo una procedura standardizzata per l'intubazione endotracheale tramite tracheotomia seguita da toracotomia nei ratti, volta a migliorare la precisione e la riproducibilità delle applicazioni non di sopravvivenza che richiedono ventilazione invasiva ed esposizione di organi toracici in modelli di ratto in vivo .

Intubazione endotracheale tramite tracheotomia e successiva toracotomia nei ratti per applicazioni non di sopravvivenza

Questo protocollo mostra come il posizionamento ottimale di un topo e l'inserimento transorale di un otoscopio basato su telecamera consentano la visualizzazione della glottide, l'intubazione rapida con un trauma tissutale minimo e l'erogazione costante di liquidi ai polmoni.

Metodologia migliorata per l'erogazione di liquidi al polmone di topo: intubazione con un otoscopio consumer

Impara l'intubazione endotracheale nei topi tramite laringoscopia diretta con otoscopio. Questa tecnica non invasiva consente misurazioni ripetute in esperimenti cronici e offre un'alternativa affidabile alla tracheotomia.

Intubazione endotracheale in Mouse

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