Name: Generazione di immunoprecipitazione della cromatina Template DNA di alta qualità per high-throughput sequencing (ChIP-Seq) (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-04-19T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 52 s
Description: Impara la cromatina immunoprecipitazione per identificare le regioni di legame proteico-DNA usando TCF7L2. Questo metodo genera template di alta qualità per il sequenziamento ChIP-seq nello studio della regolazione genica.

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Il lavoro è supportato da un Premio Istituto per lo sviluppo da Ospedale Pediatrico di Filadelfia.

1. Cross-Link cromatina <ol><li> Crescere le cellule in piatti di coltura di cellule 100x20mm. La quantità di celle può variare da 1 a 10 milioni di cellule per piastra seconda del tipo cellulare. Circa 2 milioni di cellule è sufficiente per una immunoprecipitazione. </li><li> Cellule del legame incrociato a 1% di formaldeide per 10 minuti a temperatura ambiente con dondolo occasionale. </li><li> Quench reticolazione aggiungendo una concentrazione finale di 125 mM glicina e incubare per 5 min a temperatura ambiente. </li><li> Lavare le cellule con fosfato 1X Soluzione salina tamponata (PBS) due volte, decantare PBS e aggiungere 0,2 ml di PBS. </li><li> Celle di raccolta con un raschietto cellula di plastica in una provetta. </li><li> Centrifugare le cellule a 2000 rpm per 5 minuti a 4 ° C. </li><li> Aspirare il surnatante. Risospendere le cellule in SDS tampone di lisi (1% SDS, 10 mM EDTA, 50 mM Tris-HCl pH 8.1) per l&#39;intero lisato o tenerli come pellet per l&#39;estrazione nucleare. </li><li> Le cellule possono essere salvati a -80 ° C oppure si può procedere immediately con sonicazione. </li></ol> 2. Preparare Nuclei (Andare al punto 3.5 per intero lisato) <ol><li> Supplemento Cell Lysis Buffer (5 mM PIPES pH 8.0, 85 mM KCl, 0.5% NP-40) con 1X proteinasi ogni esperimento. </li><li> Risospendere scongelati pellet cellulare in circa 10 volte il volume di pellet con Cell Lysis Buffer. </li><li> Dounce-omogeneizzare 10 volte con pestello poi incubare in ghiaccio per 10 min. </li><li> Centrifugare campione a 4000 rpm per 5 minuti a 4 ° C, scartare il surnatante, e salvare pellet nucleare. </li></ol> 3. Sonicazione * <ol><li> Warm up SDS tampone di lisi e la quantità supplemento di tampone per essere utilizzato con proteinasi. </li><li> Risospendere il pellet nucleare in SDS Lysis Buffer (circa 0,5 ml di tampone per 1-10.000.000 cellule) </li><li> Incubare in ghiaccio per 10 min. </li><li> Aggiungere aliquote da 0,5 ml di campioni per provette da microcentrifuga. </li><li> Sonicare su ghiaccio bagnato utilizzando Misonix sonicator con 30 sec e 45 sec suoff in un ambiente ampiezza 2. Numero di cicli per dimensione ideale frammento può essere determinata prima provando varie numeri del ciclo (es. 2, 4, 8, 12, 16, e 20 o più cicli). Una diversa marca di sonicazione può essere utilizzato, tuttavia, le condizioni varieranno. La sperimentazione con il numero di cicli e la quantità di tempo e spegnimento devono essere eseguite per determinare le condizioni ideali. </li><li> Raccogliere 20 ml di ogni campione per verificare i risultati sonicazione e di fare la quantificazione,. Il resto del campione può essere conservato a -80 ° C. </li><li> Diluire il 20 l di campione con l&#39;aggiunta di 30 ml di 0,1 X. tampone TE. </li><li> Trattare campione con 1 ml di RNasi A a 37 ° C per 1 ora si aggiunge 1 ml di proteinasi K e incubare a 62 ° C per 2 h. </li><li> Eseguire 20 microlitri del campione su un gel di agarosio al 2%. </li><li> Purificare l&#39;importo residuo del campione con il kit di purificazione PCR QIAquick poi quantificare con spettrofotometro NanoDrop. </li></ol> * Per i nativi CHIP, microccocal nucleasi digestione può essere usato in alternativa al taglio del DNA. 4. Block Beads agarosio * <ol><li> Se perle sono già bloccati, procedere al punto 5.1. </li><li> Utilizzare proteina A o proteina G agarosio. Per 5 immunoprecipitazione (IP), utilizzare 600 ml di 50% tallone liquami (300 ml tallone pellet) </li><li> Per lavare le perline, centrifugare giù a 800 rpm per 1 min a 4 ° C e scartare il surnatante. Aggiungere un po &#39;più di 2 ml di ChIP diluizione (0,01% SDS, 1.2 mM EDTA, 167 mM NaCl, 1.1% Triton X-100, 16,7 mM Tris-HCl pH 8.1) e mescolare lentamente capovolgendo la provetta 10 volte. Spin giù di nuovo a 800 rpm per 1 min a 4 ° C e scartare il surnatante. Ripetere il lavaggio altre due volte. </li><li> Bloccare perline ruotando a 4 ° C per una notte in una soluzione bloccante. Per la ricetta della soluzione di blocco, fare riferimento alla Tabella 1. </li></ol> 5. Pre-chiaro della cromatina <ol><li> Thaw sonicata cromatina sul ghiaccio. </li><li> Centrifugare a 12.000 rpm fo 10 minuti a 4 ° C poi messo in ghiaccio immediatamente per rimuovere SDS (bianco pellet). </li><li> Raccogliere il surnatante, scartare pellet, e combinare i campioni, se necessario. </li><li> Estrarre gli importi necessari per l&#39;esperimento sulla base di calcoli (1-10 ug della cromatina per IP). </li><li> Diluire cromatina 10X in ChIP tampone di diluizione integrato con inibitore della proteasi. </li><li> Aggiungere 100 ml di perline bloccate per IP. </li><li> Ruota a 4 ° C per 1 ora. </li></ol> 6. Immunoprecipitation <ol><li> Centrifugare i campioni a 800 rpm per 1 min e trasferire il surnatante in una nuova provetta. </li><li> Spin down surnatante a 800 rpm per 1 min e trasferimento in un&#39;altra provetta pulita. </li><li> Risparmiare 20 pl del supernatante, per servire come controllo di input, a -20 ° C. </li><li> Aliquota della cromatina per il numero di indirizzi IP da fare nell&#39;esperimento. </li><li> Aggiungere 2 ug di anticorpo per 1-10 ug di cromatina per ogni campione. </li><li> Incubare per una notte a 4 ° C con rotazione. </li><li> Aggiungere 100 ml di perline bloccate per ogni campione IP. </li><li> Incubare per 1 ora a 4 ° C con rotazione. </li><li> Pellet le perline riducendo la velocità a 800 rpm per 1 min e scartare la maggior quantità di surnatante possibile. </li><li> Lavare perle di una volta con sale tampone di lavaggio Complesso immunitario basso. Aggiungere 1 ml di tampone a ciascuna provetta; ruotare a temperatura ambiente per 5-8 min; centrifugare a 800 rpm per 1 minuto, quindi eliminare il surnatante. Ripetere il lavaggio una volta con Immune tampone di lavaggio ad alta Salt Complex e tampone di lavaggio complesso immune LiCl e due volte con tampone TE per un totale di 5 lavaggi (Tabella 2). </li></ol> 7. Eluizione <ol><li> Campioni di ingresso disgelo da giorno precedente per essere elaborati con i eluenti. </li><li> Fai tampone di eluizione fresco (Tabella 3). </li><li> Fare un master mix di abbastanza tampone di eluizione necessaria per IP e campioni di controllo di ingresso più 1-2 campioni extra. </li><li> Aggiungere 100 microlitri di buffer di eluizione per ogni campione IP e incubare a temperatura ambiente per 15 mcon rotazione. </li><li> Centrifugare a 800 rpm per 1 min e aggiungere surnatante in una nuova provetta. </li><li> Aggiungere altri 100 ml di buffer di eluizione a ciascuna provetta di perline e incubare a temperatura della camera per 15 minuti con rotazione. </li><li> Vortex per 15 secondi dopo l&#39;incubazione, centrifugare a 5000 rpm per 1 minuto, quindi unire il surnatante con il surnatante dalla prima eluizione. (Assicurarsi che non vi siano rimasti più di perline nel surnatante. Se non sei sicuro, spin down surnatante di nuovo a 5.000 rpm per 1 minuto e raccogliere il surnatante in una nuova provetta. </li><li> Aggiungere 180 ml di tampone di eluizione al 20 l di campioni di controllo di input. </li></ol> 8. Reverse Cross-Link <ol><li> Al 200 pl di eluenti e controlli di input, aggiungere 8 ml di NaCl 5 M. </li><li> Tubi di sigillare con parafilm e incubare in bagnomaria a 65 ° C durante la notte. </li></ol> 9. Purificazione del DNA <ol><li> Trattare ogni campione con 1 ml di RNasi A per 1 ora a 37 ° C. </li><li> Aggiungere 4 μl di 0,5 M EDTA, 8 microlitri 1M Tris-HCl, miscela, si aggiunge 1 ml di proteinasi K per ogni campione e incubare a 45 ° C per 2 h. </li><li> Purificare i campioni utilizzando kit di purificazione PCR QIAquick. I campioni possono essere conservati a -20 ° C e controllo PCR può essere fatto in una data successiva. </li></ol> * In alternativa, perle magnetiche ChIP-grado può essere usato al posto di agarosio per la porzione immunoprecipitazione. 10. Controllo PCR <ol><li> Per il controllo di PCR, utilizzare primer per regioni note per essere vincolati dalla proteina di interesse. Inoltre, utilizzare primer per le regioni non vincolanti come controlli negativi. </li><li> Miscelare i reagenti per la reazione. Diluire il campione di ingresso a 1:100 (Tabella 3). </li><li> Esegui reazione. Programma di PCR: </li></ol> Passo 1: 94 ° C 3 min Passo 2: 94 ° C 20 sec 59 ° C 30 sec 72 ° C 30 sec (Ripetere il passaggio 2 per almeno 30 cycles) Fase 3: 72 ° C 2 min <ol start="4"><li> Analizzare i campioni su 1% gel. </li><li> L&#39;arricchimento può anche essere determinato quantitativamente con real-time PCR. </li></ol>

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</ol>

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.

E &#39;ora possibile effettuare un genoma profilo di proteina-DNA associazione interazioni utilizzando ChIP-Seq, come è stato di recente dimostrato con altri fattori di trascrizione 2,3. La chiave per un esito sequenziamento di successo è la generazione di un modello di alta qualità cromatina immunoprecipitazione DNA. Una volta che il DNA templato è stato generato e accertato essere opportunamente arricchito, si può poi prendere in preparazione per la successiva raccolta sequenzia...

Per molti anni c&#39;è stato un bisogno insoddisfatto per identificare l&#39;insieme di geni legati e regolata da una proteina determinato genoma, in particolare quelli della classe fattore di trascrizione. Odom et al. 1 usato immunoprecipitazione della cromatina (ChIP) in combinazione con microarrays promotore per identificare sistematicamente i geni occupati dai regolatori trascrizionali pre-specificati, in fegato umano e di isole pancreatiche. Successivamente, Johnson et al. 2 sviluppato un saggio di immunoprecipitazione della cromatina larga scala basata sul sequenziamento del DNA ultra high throughput diretto (ChIP-seq) per mappare completo interazioni proteina-DNA in interi genomi dei mammiferi. Come banco di prova, hanno mappato in vivo il legame del fattore silenziatore neurone-restrittivo (NRSF) a 1946 posizioni nel genoma umano. I dati visualizzati forte risoluzione di posizione di rilegatura (+ 50 paia di basi), che ha facilitato sia l&#39;isolation di motivi e l&#39;identificazione di motivi NRSF vincolanti. Questi dati di ChIP-Seq avevano anche elevata sensibilità e specificità e confidenza statistica (P &lt;10 -4), proprietà che sono importanti per inferire nuove interazioni candidati. Robertson et al. 3 utilizzato anche ChIP-seq, al fine di mappare STAT1 obiettivi in interferone-γ (IFN-γ)-stimolato e non stimolate le cellule HeLa S3 umane in vivo. Da Chip-Seq, con 15,1 e 12,9 milioni di sequenza mappata univocamente legge, e un tasso stimato falsa scoperta di meno di 0.001, hanno identificato 41.582 e 11.004 putative regioni STAT1 vincolanti in cellule stimolate e non stimolate, rispettivamente. Dei 34 loci noti per contenere STAT1 interferone-reattiva siti 4-8 vincolante, ChIP-seq trovato 24 (71%). Obiettivi di ChIP-Seq sono stati arricchiti in sequenze simili a note STAT1 motivi di legame. Confronti con due dati di ChIP-PCR esistenti set suggeritiche la sensibilità ChIP-seq era tra il 70% e il 92% e la specificità era almeno il 95%. Inoltre, era chiaro che ChIP-seq offre sia a bassa complessità analitica e la sensibilità che aumenta con la profondità di sequenziamento. Come tecnologie come, del genoma &quot;nuova generazione&quot; di sequenziamento forniscono 1-2 ordini di grandezza della quantità di sequenza che può essere costo-efficace generato più vecchie tecnologie 9. Metodi di ChIP-Seq quindi forniscono direttamente la copertura dell&#39;intero genoma per un efficace profiling delle interazioni proteina-DNA di mammifero 3. Nel 2006, una forte associazione di varianti del fattore di trascrizione 7-like 2 (TCF7L2) gene con diabete di tipo 2 è stato scoperto 10. Altri ricercatori hanno già replicato indipendentemente questo risultato in diverse etnie e, curiosamente, dai primi studi di associazione genome-wide di diabete di tipo 2 pubblicati su Nature 11,12 </sup&gt;, Scienza 13-15 e altrove 16,17, l&#39;associazione più forte era effettivamente con TCF7L2, questo è ormai considerata la più significativa scoperta genetica nel diabete di tipo 2 a data 18-20. Inoltre, TCF7L2 è stato collegato al rischio di cancro 21,22, anzi, questa connessione è diventato più evidente quando il locus 8q24 rivelato da genoma ampi studi di associazione di un certo numero di tumori, tra carcinomi colorettali, ha dimostrato di essere dovuto ad un estremo a monte elemento TCF7L2 vincolante guida la trascrizione di MYC 23,24. Come tale, non vi è un grande interesse per la determinazione dei geni a valle regolati da questo fattore di trascrizione chiave. Sulla base dell&#39;esperienza con TCF7L2 come un esempio della metodologia, questo documento descrive come generare modello di DNA chip ad alta qualità. Chip è stato effettuato nella linea cellulare di carcinoma colorettale, HCT116, per la successiva sequenza per costruire un alto risolution mappa dei geni legati da TCF7L2 25 nel tentativo di dare una visione più completa per il suo ruolo chiave nella patogenesi di tratti complessi.

<table><tbody><tr><td>Kit di purificazione PCR QIAquick</td><td>Qiagen</td><td>28104</td><td></td></tr><tr><td>Kit EZ-ChIP </td><td>Millipore</td><td>17-371</td><td></td></tr><tr><td>GoTaq Hot Start Polimerasi </td><td>Promega</td><td>M5001</td><td></td></tr><tr><td>Sonicatore Misonix Spettrofotometro</td><td>Qsonica</td><td>XL-2000</td><td></td></tr><tr><td> NanoDrop 1000 </td><td>Thermo-Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Sequenze di primer di controllo positivo (TCF7L2-1) Forward- 5'-TCGCCCTGTCAATAATCTCC-3' Reverse- 5'-GCTCACCTCCTGTATCTTCG-3' Sequenze di primer di controllo negative (CTRL-1) Forward-5'-ATGTGTGTGTGTGTGTGATGGGAAC-3' Reverse- 5'-CGAGCAATCGGTAAATAGGTCTGG-3'</td></tr></tbody></table>

generazione di immunoprecipitazione della cromatina template dna di alta qualità per high-throughput sequencing (chip-seq)

Generation of High Quality Chromatin Immunoprecipitation DNA Template for High-throughput Sequencing (ChIP-seq)

(ChIP-seq) metodi di ChIP-sequencing offrono direttamente la copertura dell&#39;intero genoma, in cui combina immunoprecipitazione della cromatina (ChIP) e il sequenziamento massivamente parallelo può essere utilizzato per identificare il repertorio di sequenze di DNA di mammifero vincolati da fattori di trascrizione in vivo. &quot;Next-generation&quot; tecnologie di sequenziamento del genoma forniscono 1-2 ordini di grandezza della quantità di sequenza che può essere costo-efficace generato più vecchie tecnologie consentendo metodi di ChIP-Seq per fornire direttamente la copertura dell&#39;intero genoma per un efficace profiling dei mammiferi interazioni proteina-DNA. Per successo approcci ChIP-Seq, si deve generare DNA stampo circuito integrato di alta qualità per ottenere i migliori risultati di sequenziamento. La descrizione è basata attorno esperienza con il prodotto proteico del gene più fortemente implicato nella patogenesi del diabete di tipo 2, cioè il fattore di trascrizione fattore di trascrizione 7-like 2 (TCF7L2). Questo fattore è stato anche implicato in vari tumori. Delineato è come generare modello di DNA circuito integrato di alta qualità derivato dalla linea cellulare di carcinoma del colon-retto, HCT116, al fine di costruire una mappa ad alta risoluzione attraverso il sequenziamento di determinare i geni legati da TCF7L2, dando una visione più completa per il suo ruolo chiave nella patogenesi di tratti complessi.

Una volta che la cromatina è stato sonicato e sono stati trattati con RNasi e proteinasi, i campioni eseguiti sul gel di agarosio 2% dovrebbero presentare uno striscio con il grosso del DNA alla dimensione voluta. Se più cicli differenti vengono testati, una graduale diminuzione della dimensione dovrebbe essere visto come il numero di cicli di aumento (Figura 2). Dopo aver completato la porzione immunoprecipitazione del protocollo di arricchimento può sia essere controllato ...

La combinazione di immunoprecipitazione della cromatina e sequenziamento ultra-high-throughput (ChIP-seq) in grado di identificare e mappare le interazioni proteina-DNA in una determinata linea di tessuti o cellule. Delineato è come generare un modello di chip per la successiva sequenza di alta qualità, utilizzando l&#39;esperienza con il fattore di trascrizione TCF7L2 come esempio.

Generazione di immunoprecipitazione della cromatina Template DNA di alta qualità per high-throughput sequencing (ChIP-Seq)

ChIP-sequencing (ChIP-seq) methods directly  offer whole-genome coverage, where combining chromatin immunoprecipitation  (ChIP) and massively parallel ...

L'obiettivo generale di questa procedura è identificare le regioni di legame delle proteine tramite la cromatina. Questo viene ottenuto innanzitutto cross-linkando la proteina al DNA. Il secondo passaggio consiste nel frammentare il DNA.Successivamente, la proteina bersaglio legata al DNA viene immunoprecipitata e poi eluita. L'ultimo passaggio consiste nel reversare il cross-link e isolare il DNA. In definitiva, l'immunoprecipitazione della cromatina viene utilizzata per mostrare la localizzazione del legame proteico lungo il genoma.Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo della genomica funzionale, come l'identificazione e la mappatura delle interazioni proteina-DNA in un determinato tessuto o linea cellulare. Le cellule per questa procedura vengono coltivate in piatti per colture cellulari da 100 per 20 millimetri. La quantità di cellule può variare da uno a 10 milioni di cellule per piatto, a seconda del tipo cellulare. Circa 2 milioni di cellule sono sufficienti per un'immunoprecipitazione al fine di cross-linkare proteine e cromatina all'interno delle cellule.Aggiungere formaldeide fino a una concentrazione dell'1% e incubare per 10 minuti a

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L'Hi-C metodo consente l'identificazione imparziali, genoma delle interazioni della cromatina (1). Hi-C coppie legatura di prossimità e di sequenziamento massicciamente parallelo. I dati ottenuti possono essere usati per studiare architettura genomica alle scale multiple: risultati iniziali identificate caratteristiche come territori cromosoma, la segregazione della cromatina aperti e chiusi, e la struttura della cromatina alla scala megabase.

Hi-C: un metodo per studiare l&#39;architettura tridimensionale dei genomi.

In questo video, dimostriamo la tecnica di immunoprecipitazione della cromatina per identificare i siti di legame delle proteine su regioni specifiche del DNA genomico delle cellule precursori degli oligodendrociti attraverso l'immunoprecipitazione selettiva di frammenti di cromatina legati alle proteine. Questo metodo aiuta a studiare l'interazione di diverse proteine regolatrici, compresi i fattori di trascrizione coinvolti nella regolazione genica.

Immunoprecipitazione della cromatina per identificare i siti di legame delle proteine bersaglio sul DNA genomico

I metodi per mappare le interazioni proteina-DNA in vivo stanno diventando cruciali per ogni aspetto della ricerca genomica, ma sono laboriosi, costosi e richiedono tempo. Qui viene presentato un sistema robotico di manipolazione dei liquidi disponibile in commercio che automatizza l'immunoprecipitazione della cromatina per mappare le interazioni proteina-DNA in vivo con quantità limitate di cellule.

Automatizzare esperimenti ChIP-seq per generare profili epigenetici su 10.000 cellule HeLa

Vi presentiamo un'immunoprecipitazione della cromatina native modificate sequenziamento (ChIP-seq) metodologia per la generazione di sequenza DataSet adatto per un quadro analitico di densità ChIP-seq nucleosoma integrando l'accessibilità nucleasi di micrococcal (MNase) con misure di modifica dell'istone.

Generazione di immunoprecipitazione della cromatina nativo sequenziamento librerie per analisi di densità del nucleosoma

Qui, descriviamo un'immunoprecipitazione della cromatina (ChIP) e il protocollo di preparazione libreria ChIP-seq per generare profili epigenomic globale da campioni di embrionali di pollo di basso-abbondanza.

Protocollo di immunoprecipitazione (ChIP) della cromatina per campioni embrionali bassa-abbondanza

Qui, descriviamo un protocollo di ChIP-sequenziamento high throughput ottimizzato e pipeline di analisi computazionali per la determinazione dei modelli di stato della cromatina genoma da tessuti tumorali congelati e linee cellulari.

Una piattaforma integrata per la mappatura di genoma degli Stati di cromatina usando High-throughput ChIP-sequencing nei tessuti del tumore

Qui presentiamo un protocollo che è stato progettato per analizzare l'associazione genoma del fattore di trascrizione del oligodendrocyte 2 (Olig2) in cellule del precursore del oligodendrocyte cervello acutamente purificato (OPCs) eseguendo immunoprecipitazione della cromatina basso-cella (ChIP) , libreria preparazione, high throughput sequenziamento e analisi bioinformatica dei dati.

Identificare i siti di fattore di trascrizione Olig2 associazione genomico in acutamente purificato PDGFRα + cellule di immunoprecipitazione della cromatina Low-cella ordinamento dell'analisi

Descriviamo un protocollo passo-passo per la cromatina tandem immunoprecipitazione sequenziamento (tChIP-Seq) che permette l'analisi di modifica dell'istone di genoma di cellula-tipo-specifico.

TChIP-Seq: Cellula-tipo-specifico Epigenome profilatura

Qui descriviamo un protocollo per immunoprecipitazione efficiente della cromatina (ChIP) seguito da sequenziamento del DNA di alto-rendimento (ChIP-seq) del tessuto adiposo marrone (pipistrello) isolato da un mouse. Questo protocollo è adatto sia per mappatura modificazioni istoniche e indagando genoma localizzazione delle proteine non istoniche di interesse in vivo.

Immunoprecipitazione della cromatina del tessuto adiposo marrone murino

Questo articolo descrive un protocollo ChIP-Seq semiautomatico e microscalato di regioni del DNA associate a una specifica modificazione degli istoni (H3K27ac) utilizzando una piattaforma di gestione dei liquidi ChIP, seguita dalla preparazione della libreria utilizzando la tagmentazione. La procedura comprende la valutazione del controllo ai fini della qualità e della quantità e può essere adottata per altre modificazioni istoniche o fattori di trascrizione.

Una procedura ChIP-Seq semiautomatica per studi epigenetici su larga scala

Questo protocollo descrive il metodo Capture Hi-C utilizzato per caratterizzare l'organizzazione 3D di regioni genomiche mirate di dimensioni megabased ad alta risoluzione, compresi i confini dei domini topologicamente associati (TAD) e le interazioni cromatiniche a lungo raggio tra elementi regolatori e altri elementi di sequenza del DNA.

Decifrare l'organizzazione della cromatina 3D ad alta risoluzione tramite Capture Hi-C

Impara la cromatina immunoprecipitazione per identificare le regioni di legame proteico-DNA usando TCF7L2. Questo metodo genera template di alta qualità per il sequenziamento ChIP-seq nello studio della regolazione genica.

Generazione di immunoprecipitazione della cromatina Template DNA di alta qualità per high-throughput sequencing (ChIP-Seq)

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