18 marzo 2013
Vettori virali per consentire la manipolazione genica mirata. Abbiamo dimostrato un metodo per l'espressione genica condizionale o ablazione nel midollo spinale topo, utilizzando iniezione stereotassica di un vettore virale nel corno dorsale, un luogo di rilievo di contatto sinaptico tra afferenze somatosensoriali primarie e neuroni del sistema nervoso centrale.
L'obiettivo generale di questa procedura è quello di ottenere un'espressione genica spazialmente ristretta nel midollo spinale del topo iniettando stereotassicamente un vettore virale nel corno dorsale lombare. Il primo passo della procedura consiste nell'individuare ed esporre la vertebra lombare. Il secondo passo consiste nel rimuovere la porzione dorsale della vertebra per rivelare il midollo spinale.
Una procedura chiamata laminectomia. Successivamente, una pipetta di vetro collegata a una micropompa a siringa viene posizionata sopra il corno dorsale e abbassata nel midollo spinale. Il passaggio finale consiste nell'iniettare lentamente la sospensione vettoriale.
Due settimane dopo, la trasfezione dei neuroni delle corna dorsali è dimostrata dall'espressione della proteina fluorescente verde, che consente di tracciare la distribuzione del virus. Questo metodo aiuta a chiarire la funzione dei neuroni in parte del percorso sensoriale. Lo usiamo in studi che si concentrano specificamente sullo sviluppo del dolore infiammatorio o neuropatico.
La dimostrazione visiva è fondamentale per imparare a posizionare il mouse nel frame stereotassico. È essenziale per il successo della procedura che la colonna vertebrale sia fissata correttamente perché la laminectomia è una tecnica così delicata. Martin Mole, uno studente laureato del mio laboratorio, dimostrerà la procedura.
John Wang, un assistente di ricerca, lo aiuterà uno o due giorni prima della procedura. Pul pipette in vetro per ottenere un diametro della punta di 40 micrometri e smussare la punta con un angolo di 20 gradi il giorno dell'intervento. Iniziare la procedura disinfettando l'attrezzatura chirurgica e preparando gli strumenti chirurgici sterili per impostare il telaio stereotassico.
Montare l'iniettore della micro siringa sul manipolatore e collegare il dispositivo. Collegare una delle pipette di vetro alla micro siringa utilizzando il raccordo a compressione. Ora rimuovi lo stantuffo dalla micro siringa.
Riempire la siringa con l'olio minerale, quindi reinserire lo stantuffo e spingerlo fino in fondo. Evitare accuratamente di creare bolle d'aria. Quindi inserire la micro siringa nel supporto sull'iniettore.
Quindi, rimuovere il virus dal congelatore e preparare la sospensione di particelle virali appena prima dell'uso diluendola con soluzione salina tamponata con fosfato sterile alla concentrazione di particelle desiderata. Pipettare cinque microlitri della sospensione virale su un piccolo pezzo di param. Quindi abbassare la punta della pipetta di vetro nella goccia e tirare lo stantuffo per riempire la micro siringa.
Alla fine. Creare una piccola bolla d'aria sulla punta della pipetta per evitare che si ostruisca. In questa fase, preparare l'area chirurgica strofinando la panca nel termoforo con disinfettante.
Quindi anestetizzare il topo mediante inalazione di fluoro. Successivamente, applicare il lubrificante su ciascun occhio per proteggerlo dall'essiccazione durante l'operazione Successivamente, radere la pelliccia dalla parte bassa della schiena al collo del topo. Disinfettare la pelle con salviette alternate di un antisettico topico, come clorexidina o iodio povidone, ed etanolo al 70%.
Quindi infiltrare il sito di incisione con bupivacaina allo 0,25% diluita da uno a 10 con soluzione fisiologica. Successivamente incisi la pelle all'estremità della gabbia toracica, da due a tre centimetri lungo la linea mediana e separare la fascia che copre la colonna vertebrale. Identificare la vertebra L uno, che si trova coccolata alla vertebra, tenendo l'ultimo paio di costole ed esporla rimuovendo i piccoli muscoli spinali e i legamenti attaccati alla sua superficie dorsale.
Quindi sollevare leggermente e tenere premuta la vertebra L uno con un paio di add e pinze. Successivamente, utilizzare una pinza per laminectomia dedicata per rimuovere la parte dorsale della vertebra, compreso il processo spinoso e la lamina per esporre il midollo spinale. Evitare di danneggiare la dura madre o il midollo spinale durante questa procedura.
Quindi trasferire il mouse su una piastra riscaldante nel telaio stereotassico e monitorare la temperatura del mouse durante l'operazione successiva. Ora usa le punte con tacca a V per stabilizzare la colonna vertebrale in modo che la vertebra non si muova durante la respirazione. Quindi, avvicinare la micro siringa in modo che la punta della pipetta si trovi sopra il sito della laminectomia.
Abbassare lo stantuffo fino a quando la sospensione virale non esce dalla pipetta. Rimuovere la gocciolina con una garza sterile. Quindi posizionare la punta della pipetta nella parte rostrale più ampia del midollo spinale esposto.
Centrare la pipetta sopra il solco mediano posteriore e spostare lateralmente il puntale di 500 micrometri. Dopodiché, abbassare la punta sulla superficie del cavo e forare la dura madre. Successivamente, abbassare la punta del bicchiere, pipettare 300 micrometri nel midollo spinale.
Iniettare un microlitro di sospensione virale alla velocità di 200 nanolitri al minuto. Al termine dell'iniezione, attendere almeno due minuti prima di ritrarre lentamente la pipetta. Ripetere la procedura di iniezione nella parte più grande del midollo spinale esposta per ottenere la distribuzione completa del vettore virale nel segmento spinale L quattro.
I due siti di iniezione sono situati rostralmente e coccolano il segmento L quattro. Per evitare danni ai tessuti nella regione bersaglio dopo il rilascio dell'iniezione, la vertebra L uno dalla tacca a V si blocca e rimuove il topo dal telaio stereotassico. Quindi, sutura la fascia con cinque oh Vicryl.
La fascia chiusa fornisce copertura per il sito della laminectomia. Quindi chiudere la pelle con punti di sutura in nylon o graffette chirurgiche. Fornire analgesia post-chirurgica per 72 ore con iniezioni sottocutanee giornaliere di carprofene a cinque milligrammi per chilogrammo.
Trasferisci il topo in una gabbia di recupero con lettiera morbida e non particolare. Posiziona il mouse su un lato per una respirazione confortevole. Quindi monitorare l'animale fino a quando non è completamente vigile.
Ambulanza e inizia a bere. Monitorare il recupero post-chirurgico mediante ispezione giornaliera per i primi tre giorni. Quindi a giorni alterni o tre giorni alla settimana fino al completamento dell'esperimento.
Da sette a 10 giorni dopo l'operazione, quando la guarigione della ferita è completa. Rimuovere le suture cutanee o le graffette. Questa figura mostra l'espressione della proteina reporter fluorescente verde potenziata o EGFP nel corno dorsale sinistro del midollo spinale L quattro.
Due settimane dopo l'iniezione stereotassica dei neuroni R-A-A-V-E-G-F-P sono stati immunocolorati per i nuclei neuronali Proteina mostrata in rosso Arrowhead. Indica le cellule gliali trasfettate sparse nella colonna dorsale. Circa l'80% dei neuroni nel corno dorsale mediale è stato infettato con la pratica.
La procedura può essere completata in 30-40 minuti e ricordarsi di mantenere le condizioni di sterilità durante la procedura. Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come eseguire iniezioni chimale intra pino nella dose ho del midollo spinale del topo. Stiamo utilizzando la tecnica per la manipolazione genetica, ma è possibile adattarla per altri scopi, come l'applicazione di farmaci intraspinali.
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Questo studio descrive un metodo per ottenere un'espressione genica spazialmente limitata nel midollo spinale del mouse mediante iniezione stereotassica di un vettore virale nel corno dorsale lombare. Questa tecnica consente una manipolazione genica mirata, in particolare nelle aree di contatto sinaptico tra afferenze somatosensoriali primarie e neuroni del sistema nervoso centrale.
La somministrazione stereotassica di vettori virali consente una manipolazione genica precisa e limitata a livello spaziale nel corno dorsale del midollo spinale del topo, una regione chiave per l'elaborazione sensoriale e la ricerca sui percorsi del dolore. Questo approccio supporta la validazione degli obiettivi e la riduzione del rischio meccanicistico nella scoperta nel campo delle neuroscienze, permettendo l'espressione genica condizionale o il silenziamento in popolazioni neuronali definite. Il metodo fornisce una piattaforma riproducibile per associare bersagli genetici a fenotipi funzionali nei modelli preclinici del dolore, fornendo indicazioni per decisioni di avanzamento o interruzione nella selezione dei bersagli.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla verifica dell'ipotesi sul bersaglio all'identificazione del composto promettente fino alla validazione preclinica, in particolare per bersagli del sistema nervoso centrale coinvolti nell'elaborazione delle informazioni sensoriali.