Name: Separazione dei Plasmodium falciparum Fine Stage-eritrociti infettati da mezzi magnetici (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 20 s
Description: Scopri la separazione magnetica di eritrociti infettati da Plasmodium falciparum in stadio avanzato. Questo metodo sfrutta le proprietà paramagnetiche dell'emozoina per isolare i parassiti con purezza quasi totale, preservandone la capacità invasiva.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Questo lavoro è stato finanziato dalla sovvenzione PRB-009 per CS e una borsa di studio di dottorato di LC, dal Nacional Secretaría de Ciencia y Tecnología (SENACYT), Panama.

Tutte le fasi del protocollo, tranne per centrifugazioni, deve essere effettuato all&#39;interno di una cappa di mantenere il campione sterile. 1. Fase tardiva isolamento di P. falciparum con infezione da Eritrociti Tutte le fasi tardive di eritrociti infettati dal Plasmodium possono essere separati con questa metodologia, in quanto emozoina, che conferisce paramagnetismo sul parassita, è un metabolita comune al genere. Una parassitemia elevata (3-10%) nella cultura si consiglia di ottenere i migliori rendimenti con questo protocollo, anche se una cultura tipica conterrà 2-4% dell&#39;ematocrito (percentuale in volume dei globuli rossi) e 1-8% parassitemia (percentuale di infetti globuli rossi). I parassiti possono essere coltivate come descritto da Trager e Jansen 1. <ol><li> Un semplice, multi-parte di setup deve essere montato per ogni procedura di isolamento schizonte. Per questo, le colonne LS, un separatore magnetico MidiMACS e un MultiStand MACS da Miltenyi Biotec (Figura 1 </strong&gt;) vengono utilizzati. In primo luogo, collegare il separatore magnetico per il supporto metallico e poi posto la colonna magnetica sul separatore. </li><li> In un tubo separato (utilizzare 50 ml conicals tutta), miscelare 23,2 ml di RPMI 1640 e 750 ml di bicarbonato di sodio 7,5% per creare la soluzione di lavoro. Hanno tubi aggiuntivi a disposizione per scartare e raccolta del flusso passante della cultura parassita. </li><li> Aggiungere 3 ml della soluzione di lavoro per equilibrare la colonna per esso, e scartare il flusso passante in un tubo. </li><li> Aggiungere 8 ml di P. falciparum cultura alla colonna, facendo in modo che non appena l&#39;ultima parte della soluzione di lavoro è stato spinto fuori della colonna dalla cultura, il tubo di ricezione è sostituito da quello di raccolta per iniziare il recupero della cultura non legato. Ciò è necessario per evitare di diluire la cultura ulteriormente. </li><li> Una volta che il flusso della cultura attraverso la colonna è cessato, aggiungere 1 ml della soluzione di lavoro per spingere gli RBC rimanenti su colonna. </li><li> Fase di lavaggio: aggiungere un&#39;altra 3 ml della soluzione di lavoro alla colonna e raccogliere il liquido scorre nel tubo &quot;scarto&quot; per evitare di diluire la coltura viene salvato come flusso passante nel tubo altra. </li><li> Eluizione: Dopo il 3 ml sono passati attraverso la colonna, staccare quest&#39;ultimo dal supporto e posizionarlo sopra un tubo 15 ml. </li><li> Nuovamente, aggiungere 3 ml di soluzione di lavoro per la colonna. Questo passaggio eluisce gli eritrociti infettati da parassiti fase avanzata che sono stati intrappolati nelle sfere della colonna. </li></ol> Nota: A questo punto, a seconda della quantità di parassiti necessario avviare un altro giro / s di raccolta, ovviamente nei limiti della parassitemia nella cultura originale. La colonna può essere riutilizzato finché il flusso mantiene uno stato stazionario. <ol start="9"><li> Concentrazione dei parassiti raccolti: Centrifugare la provetta 15 ml contenente l&#39;eluato per 5 min a 150 xg a temperatura ambienteper formare un pellet scuro dagli eritrociti parassitati. </li><li> Rimuovere il surnatante lasciando abbastanza liquido per prendere un campione molto piccolo e determinare la concentrazione e il rendimento totale mediante microscopia (vedere il punto 2 riportato di seguito). </li><li> In questo momento, se l&#39;isolamento e la cattura dei parassiti fase avanzata si realizza in modo soddisfacente, incubare la coltura raccolto nuovamente con mezzi freschi. </li><li> Diluire i parassiti raccolti nel volume e soluzione necessaria per successivi esperimenti. </li></ol> 2. Purezza e Analisi Rendimento <ol><li> Controllare la concentrazione di parassiti ottenuti utilizzando un emocitometro e conteggio al microscopio ottico. Per contare, aggiungere 10 microlitri della miscela dei parassiti raccolti e il supporto sotto il vetrino del emocitometro. Contare il numero di parassiti nei quattro quadranti della emocitometro e dividere il numero totale di 4. Moltiplicare quel numero per 10 4 per ottenere la concentrazione di posta infettorythrocytes per ml. </li></ol> Note: a) La concentrazione della miscela sarà deciso dall&#39;utente al momento della risospensione del pellet, aggiungendo più o meno media. Una concentrazione suggerito di lavoro è 5,5 x 10 4 schizontes per microlitri (si tratta in genere ottenuto con l&#39;aggiunta di 100-300 pl ai parassiti raccolti). Se 20 pl di questa concentrazione viene aggiunto ad un volume finale di 100 microlitri mix di media ed eritrociti, una parassitemia di circa 1% in una tipica cultura ematocrito 4% sarà ottenuta. b) sotto il conteggio emocitometro deve essere veloce, dal momento che gli eritrociti iniziare lisi come si asciuga del campione all&#39;interno della camera. Eritrociti infetti, che dovrebbe essere la maggior parte, mostra un interno macchie scure, che li differenzia da quelli non infetti. <ol start="2"><li> Eseguire un sottile strato Giemsa per valutare la purezza della collezione fissando i vetrini molto rapidamente in 10% metanolo, essiccazione, e immergendo torlo in una soluzione al 20% di Giemsa diluita con acqua distillata. Colorare i vetrini per 10 min, dopo di che può essere essiccato con aria ed esaminate al microscopio. Un parassitemia ben al di sopra del 70% dovrebbe essere realizzabile. </li></ol>

<ol><li>Jensen, J. B., Trager, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmodium+falciparum+in+culture%3A+use+of+outdated+erythrocytes+and+description+of+the+candle+jar+method%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Parasitology%22%5BJournal%5D)">Plasmodium falciparum in culture: use of outdated erythrocytes and description of the candle jar method.</a> J. Parasitology. 63 (5), 883-886 (1977).</li>
<li>Guzman, I. Y., Francis, S. E., Oksman, A., Smith, C. E., Duffin, K. L., Goldberg, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Order+and+specificity+of+the+Plasmodium+falciparum+hemoglobin+degradation+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Order and specificity of the Plasmodium falciparum hemoglobin degradation pathway.</a> J. Clin. Invest. 93, 1602-1608 (1994).</li>
<li>Rosenthal, P. J., Meshnick, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemoglobin+catabolism+and+iron+utilization+by+malaria+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biochem.+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Hemoglobin catabolism and iron utilization by malaria parasites.</a> Mol. Biochem. Parasitol. 83 (2), 131-139 (1996).</li>
<li>Fitch, C. D., Chevli, R., Kanjananggulpan, P., Dutta, P., Chevli, K., Chou, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+ferriprotoporphyrin+IX+is+a+lytic+agent%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Intracellular ferriprotoporphyrin IX is a lytic agent.</a> Blood. 62 (6), 1165-1168 (1983).</li>
<li>Hebbel, R. P., Eaton, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathobiology+of+heme+interaction+with+the+erythrocyte+membrane%5BTitle%5D)+AND+%22Semin.+Hematol%22%5BJournal%5D)">Pathobiology of heme interaction with the erythrocyte membrane.</a> Semin. Hematol. 26 (2), 136-149 (1989).</li>
<li>Egan, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Haemozoin+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biochem.+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Haemozoin formation.</a> Mol. Biochem. Parasitol. 157 (2), 127-136 (2008).</li>
<li>Hempelmann, E., Marques, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+malaria+pigment+from+Plasmodium+falciparum%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Toxicol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Analysis of malaria pigment from Plasmodium falciparum.</a> J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 32 (1), 25-30 (1994).</li>
<li>Fitch, C. D., Kanjananggulpan, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+state+of+ferriprotoporphyrin+IX+in+malaria+pigment%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">The state of ferriprotoporphyrin IX in malaria pigment.</a> J. Biol. Chem. 262 (32), 15552-15555 (1987).</li>
<li>Moore, L. R., Fujioka, H., Williams, P. S., Chalmers, J. J., Grimberg, B., Zimmerman, P. A., Zborowski, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemoglobin+degradation+in+malaria-infected+erythrocytes+determined+from+live+cell+magnetophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Hemoglobin degradation in malaria-infected erythrocytes determined from live cell magnetophoresis.</a> FASEB J. 20 (6), 747-749 (2006).</li>
<li>Spadafora, C., Gerena, L., Kopydlowski, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+the+in+vitro+invasive+capabilities+of+Plasmodium+falciparum+schizonts+isolated+by+Percoll+gradient+or+using+magnetic+based+separation%5BTitle%5D)+AND+%22Malaria+J%22%5BJournal%5D)">Comparison of the in vitro invasive capabilities of Plasmodium falciparum schizonts isolated by Percoll gradient or using magnetic based separation.</a> Malaria J. 10, 96(2011).</li>
<li>Jackson, K. E., Spielmann, T., Hanssen, E., Adisa, A., Separovic, F., Dixon, M. W., Trenholme, K. R., Hawthorne, P. L., Gardiner, D. L., Gilberger, T., Tilley, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+permeabilization+of+the+host+cell+membrane+of+Plasmodium+falciparum-infected+red+blood+cells+with+streptolysin+O+and+equinatoxin+II%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+J%22%5BJournal%5D)">Selective permeabilization of the host cell membrane of Plasmodium falciparum-infected red blood cells with streptolysin O and equinatoxin II.</a> Biochem. J. 403, 167-175 (2007).</li>
<li>Goodyer, I. D., Johnson, J., Eisenthal, R., Hayes, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+of+mature-stage+Plasmodium+falciparum+by+gelatine+flotation%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Trop.+Med.+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Purification of mature-stage Plasmodium falciparum by gelatine flotation.</a> Ann. Trop. Med. Parasitol. 88 (2), 209-211 (1994).</li>
<li>Pasvol, G., Wilson, R. J., Smalley, M. E., Brown, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+viable+schizont-infected+red+cells+of+Plasmodium+falciparum+from+human+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Trop.+Med.+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Separation of viable schizont-infected red cells of Plasmodium falciparum from human blood.</a> Ann. Trop. Med. Parasitol. 72, 87-88 (1978).</li>
<li>Pertoft, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fractionation+of+cells+and+subcellular+particles+with+Percoll%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biochem.+Biophys.+Methods%22%5BJournal%5D)">Fractionation of cells and subcellular particles with Percoll.</a> J. Biochem. Biophys. Methods. 44 (1-2), 1-30 (2000).</li>
<li>Paul, F., Roath, S., Melville, D., Warhurst, D. C., Osisanya, J. O. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+malaria-infected+erythrocytes+from+whole+blood%3A+use+of+a+selective+high-gradient+magnetic+separation+technique%5BTitle%5D)+AND+%22The+Lancet%22%5BJournal%5D)">Separation of malaria-infected erythrocytes from whole blood: use of a selective high-gradient magnetic separation technique.</a> The Lancet. 318, 70-71 (1981).</li>
<li>Trang, D. T., Huy, N. T., Kariu, T., Tajima, K., Kamei, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((One-step+concentration+of+malarial+parasite-infected+red+blood+cells+and+removal+of+contaminating+white+blood+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Malar.+J%22%5BJournal%5D)">One-step concentration of malarial parasite-infected red blood cells and removal of contaminating white blood cells.</a> Malar. J. 3, 7(2004).</li>
<li>Nillni, E. A., Londner, M. V., Spira, D. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+for+separation+of+uninfected+erythrocytes+from+those+infected+with+Plasmodium+berghei+and+for+isolation+of+artificially+released+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22Z.+Parasitenkd%22%5BJournal%5D)">A simple method for separation of uninfected erythrocytes from those infected with Plasmodium berghei and for isolation of artificially released parasites.</a> Z. Parasitenkd. 64, 279-284 (1981).</li>
</ol>

Non abbiamo nulla da rivelare.

Nelle culture in vitro di parassita della malaria P. falciparum mostrano una parassitemia limitata, con più della metà dei globuli rossi non infettate nel punto più alto proliferazione di cultura. Per esperimenti più ricerca, è desiderabile lavorare solo con gli eritrociti infetti. A tal fine, una tecnica di separazione è necessario dividere la coltura secondo l&#39;infezione. Metodi utili includono l&#39;uso di streptolisina O a permeabilize e Lyze gli RBC non infetti 11 e una seri...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reagente </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Commenti (opzionale) </td></tr><tr><td> RPMI 1640 Hepes modifica </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> R4130 </td><td> Supplementato con 10% di siero umano, 2% di glucosio, bicarbonato di sodio e 0,2% </td></tr><tr><td> MidiMACS separatore </td><td> MACS Miltenyi BioTec </td><td> 130-042-302 </td><td></td></tr><tr><td> MACS MultiStand </td><td> MACS Miltenyi BioTec </td><td> 130-042-303 </td><td></td></tr><tr><td> LS Colonne </td><td> MACS Miltenyi BioTec </td><td> 130-042-401 </td><td></td></tr><tr><td> Emocitometro </td><td> Grafco </td><td> Grafco Neubauer Camera </td><td> Può essere trovato in molti altri fornitori </td></tr></tbody></table>

separazione dei<em&gt; plasmodium falciparum</em&gt; fine stage-eritrociti infettati da mezzi magnetici

Separation of Plasmodium falciparum Late Stage-infected Erythrocytes by Magnetic Means

A differenza di altre specie di Plasmodium, P. falciparum possono essere coltivate in laboratorio, che facilita lo studio 1. Mentre la parassitemia ottenuto può raggiungere il limite ≈ 40%, l&#39;investigatore tiene normalmente la percentuale intorno al 10%. In molti casi è necessario isolare il parassita contenenti globuli rossi (RBC) da quelli non infetti, ad arricchire la cultura e procedere con un dato esperimento. Quando P. falciparum infetta il eritrociti, il parassita si degrada e si nutre da emoglobina 2, 3. Tuttavia, il parassita deve fare i conti con una molto tossica contenente ferro eme parte 4, 5. Il parassita sfugge sua tossicità trasformando l&#39;eme in un polimero a cristalli inerte chiamato haemozoin 6, 7. Questa molecola contenente ferro viene memorizzato nel suo vacuolo alimentare e il metallo in esso ha uno stato ossidativo che differisce da quella in eme 8. Stato ferrico di ferro nel emeozoin le conferisce una proprietà paramagnetica assente negli eritrociti non infetti. Come il parassita invade raggiunge la maturità, il contenuto di haemozoin aumenta anche 9, che conferisce paramagnetismo ancora di più le ultime fasi di P. falciparum all&#39;interno degli eritrociti. Sulla base di questa proprietà paramagnetica, le ultime fasi di P. falciparum infetto-globuli rossi possono essere separati facendo passare la cultura attraverso una colonna contenente biglie magnetiche. Queste perle diventare magnetico quando le colonne che li contengono sono disposti su un supporto magnetico. RBC infetti, a causa della loro paramagnetismo, verrà intrappolata all&#39;interno della colonna, mentre il flusso attraverso conterrà, per la maggior parte, eritrociti infetti e quelle contenenti fasi iniziali del parassita. Qui, descriviamo la metodologia per arricchire la popolazione di parassiti fase avanzata con colonne magnetiche, che mantiene una buona redditività parassita 10.Dopo aver eseguito questa procedura, la cultura distaccato può essere restituito ad un incubatore per consentire ai parassiti rimanenti per continuare a crescere.

In figura 2, la cultura passa attraverso la colonna magnetica viene mostrato, prima (A) e dopo il procedimento (B). Uno a due eritrociti infetti sono di solito visto su un campo ingrandimento 100X, come mostrato in figura 2, con le frecce rivolte verso eritrociti infetti in Figura 2A. In una tipica procedura, a partire da una coltura al 5% parassitemia (Figura 2A), le prestazioni di questo procedimento produce solitamen...

Le proprietà paramagnetiche di emozoina sono utilizzati per isolare fasi avanzate della<em&gt; Plasmodium falciparum</em&gt;-Infetti globuli rossi crescono in coltura. Il metodo è semplice e veloce e non influenza le capacità invasive successive dei parassiti.

Separazione dei<em&gt; Plasmodium falciparum</em&gt; Fine Stage-eritrociti infettati da mezzi magnetici

Unlike other Plasmodium species, P. falciparum can be cultured in the lab, which facilitates its study 1. While the parasitemia achieved can reach the ...

Plasmodium Falciparum è un parassita umano che vive esclusivamente all'interno dei globuli rossi. Nel processo di crescita, utilizza le molecole presenti negli eritrociti per nutrirsene; poiché le molecole di ferro contenute nell'emoglobina sarebbero tossiche per il parassita, quest'ultimo le rimuove e le incorpora in un cristallo inerte chiamato emina. Questo cristallo di emo conferisce ai parassiti una certa paramagnetismo.È questa proprietà paramagnetica che viene utilizzata per separare gli eritrociti infetti da quelli che non contengono un parassita al loro interno. Mediante l'uso di un magnete, una coltura con una percentuale molto bassa di parassiti può essere concentrata fino a raggiungere quasi il cento percento di parassitemia. Questa separazione degli eritrociti infetti da quelli non infetti è molto utile in numerosi esperimenti in cui è necessario studiare un particolare tratto del parassita senza i fattori di confondimento derivanti dagli eritrociti in eccesso.La metodologia qui mostrata è rapida, semplice e innocua per il parassita. Oggi descriveremo il procedimento di separazione dello stadio chizen di plasmodium falciparum. Questo apparecchio multifunzionale deve es

separation-plasmodium-falciparum-late-stage-infected-erythrocytes

Research

Ricerca

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologia e Infezioni

Analisi di Single-cell trascrizione del gene per l&#39;RNA fluorescente<em&gt; In Situ</em&gt; Ibridazione (FISH)

Un<em&gt; In vitro</em&gt; Co-infezione da modello per lo studio<em&gt; Plasmodium falciparum</em&gt;-HIV-1 in Interazioni umane Le cellule immunitarie primarie derivate da monociti

Questo metodo indaga la piastrinica mediata fenotipo aggregazione...

Un semplice protocollo per Clumping piastrinica mediata da<em&gt; Plasmodium falciparum</emEritrociti&gt; infette in una risorsa Povero Setting

Questo video mostra un test di fagocitosi basato sulla citometria a flusso che coinvolge eritrociti infettati da Plasmodium falciparum marcati e opsonizzati da monociti. La citometria a flusso identifica la fluorescenza nei monociti, confermando il successo dell'identificazione degli eritrociti opsonizzati attraverso la fagocitosi.

Un test per quantificare la fagocitosi mediata da anticorpi di eritrociti infetti da parassiti

Funzione di misura anticorpo è la chiave per comprendere l'immunità a malaria da Plasmodium falciparum. Questo metodo descrive la purificazione di merozoiti vitali, e la misurazione di opsonizzazione-dipendente fagocitosi mediante citometria di flusso.

High Yield Purificazione di<em&gt; Plasmodium falciparum</em&gt; Merozoiti Per l&#39;uso in opsonizzante anticorpo saggi

I microRNA umani traslocano dagli eritrociti dell'ospite ai parassiti Plasmodium falciparum. Qui vengono descritte le tecniche utilizzate per trasfettare i microRNA sintetici negli eritrociti dell'ospite e isolare tutti gli RNA da P. falciparum.  Inoltre, questo articolo descriverà in dettaglio un metodo di isolamento dei polisomi in P. falciparum per determinare l'occupazione ribosomiale e il potenziale traduzionale dei trascritti dei parassiti.

Metodi per studiare il ruolo di regolamentazione dei piccoli RNA ribosomiale e di occupazione<em&gt; Plasmodium falciparum</em

Qui, presentiamo un protocollo per la rilevazione e la quantificazione del Plasmodium falciparum in acquosi globuli rossi infetti utilizzando un spettrometro a infrarossi riflessione totale attenuata e analisi multivariata dei dati.

Rilevazione e quantificazione del Plasmodium falciparum in acquoso globuli rossi da attenuato spettroscopia infrarossa totale riflessione e l'analisi multivariata dei dati

In questo lavoro descriviamo protocolli per studiare il ruolo delle vescicole extracellulari (SVE) rilasciato dagli eritrociti Plasmodium falciparum infettati. In particolare, ci concentriamo sulle interazioni con le cellule endoteliali del SVE.

Valutazione della funzione delle vescicole extracellulari durante l'infezione malarica

L'obiettivo generale di questo protocollo è quello di fornire istruzioni su come misurare la capacità degli anticorpi presenti nella sera o nel plasma degli individui, naturalmente esposti all'infezione da Plasmodium falciparum, di opsonizzare e indurre la fagonitosi degli etriciti infettati da parassiti (IE).

Misurazione di anticorpi che inducono la fagonenza acquisita naturalmente ai parassiti Plasmodium falciparum mediante un'analisi basata sulla citometria del flusso

Utilizzo della fresatura a fascio ionico focalizzato per produrre lamelle vetrose su griglia da campioni biologici congelati a immersione per la tomografia crioelettronica.

Preparazione di lamelle da campioni biologici vitreali utilizzando un microscopio elettronico a scansione a doppio raggio per la tomografia crioelettronica

Qui descriviamo un nuovo metodo per aiutare a chiarire i meccanismi dell'immunità cellulare al Plasmodium durante la fase ematica dell'infezione. Questo è un test in vitro che misura l'uccisione dei globuli rossi infetti da parte dei linfociti citotossici.

In vitro Saggio dell'uccisione dei globuli rossi infetti da plasmodio da parte di linfociti citotossici

Scopri la separazione magnetica di eritrociti infettati da Plasmodium falciparum in stadio avanzato. Questo metodo sfrutta le proprietà paramagnetiche dell'emozoina per isolare i parassiti con purezza quasi totale, preservandone la capacità invasiva.

Separazione dei

Esplora altri video