Name: Ischemia Photothrombotic: un modello fotochimico lesione corticale minimamente invasiva e riproducibile per mouse Studi Stroke (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-06-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 40 s
Description: Scopri il modello di ictus fototrombotico per indurre lesioni ischemiche focali nel cervello di topi usando il colorante Rose Bengal. Questa tecnica minimamente invasiva consente studi riproducibili sulla plasticità corticale.

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Ringraziamo Annalisa Buffo per penetranti suggerimenti e commenti, e Maurizio Grassano, Marina Boido e Ermira Pajaj per le riprese. Questo lavoro è stato finanziato dal 7 ° PQ-MC-214.003-2 (Marie Curie Initial Training Network AXREGEN) e la Compagnia di San Paolo, progetto gliarep.

1. Pre-chirurgia <ol><li> Pesare Rosa Bengala in una provetta da 1,5 ml e sciogliere in soluzione salina sterile fino a raggiungere una concentrazione finale di 15 mg / ml. Filtro sterilizzare attraverso un filtro 0,2 micron e conservare al buio a temperatura ambiente fino a due mesi. </li><li> Sterilizzare tutti gli strumenti chirurgici in autoclave. L&#39;area chirurgica deve essere sterilizzata meno di un&#39;ora prima di iniziare l&#39;intervento chirurgico. </li><li> Registrare il peso del corpo del mouse per regolare la dose di Rosa Bengala da iniettare. Abbiamo iniettato 10 ml / g di peso animale in topi femmina CD1 12 settimane nel presente protocollo. La quantità di Rosa Bengala necessario per produrre la dimensione desiderata lesione corticale può essere facilmente determinato in una serie separata di esperimenti preliminari testando diversi dosaggi (tipicamente 2 microlitri / g, 5 microlitri / go 10 ml / g di peso corporeo). Si noti che la quantità di Rosa Bengala da iniettare è fortemente dipendente dalle condizioni sperimentali, in particolare il tipo di sorgente luminosautilizzato e la durata di esposizione alla luce. In questo studio, 10 ml / g (150 mcg / g) della dose è risultato essere necessario per indurre photothrombosis con l&#39;esposizione alla luce per 15 minuti, mentre altri gruppi hanno riferito che o 50 mcg / g 6,8 e 100 mcg / g 10 iniezione intraperitoneale era sufficiente per indurre una lesione photothrombotic. </li></ol> 2. Procedura di Anestesia <ol><li> Anestetizzare topi con isoflurano in una camera di induzione trasparente (3,5-4% per l&#39;induzione, 1,5-2% per il mantenimento) in 50% (v / v) oxygen/50% (v / v) diazoto miscela di gas monossido. Anestesia gassosa permette un rapido risveglio degli animali e il livello di gas anestetico può essere regolata facilmente. Alternativamente, i topi possono anche essere anestetizzati con una miscela ketamina-xilazina. </li><li> Quando si raggiunge in profondità dell&#39;anestesia, rimuovere l&#39;animale anestetizzato dalla camera di induzione, posizionarlo nel frame stereotassico e mantenere l&#39;anestesia utilizzando una maschera viso. Regolare la isoflurane della dose per raggiungere un livello adeguato di anestesia. Monitorare la frequenza respiratoria durante tutta la procedura e assicurarsi che sia costante (40-60 respiri al minuto). </li><li> Utilizzare pizzichi punta in modo da garantire che l&#39;animale è profondamente anestetizzati. </li><li> Applicare pomate oftalmiche, al fine di evitare gli occhi si secchi. </li><li> Inserire delicatamente la sonda rettale per monitorare la temperatura durante le procedure chirurgiche. Impostare il pad riscaldamento retroazione controllata associato per il mantenimento della temperatura corporea topo a 37 ± 0,5 ° C. </li></ol> 3. Chirurgia per illuminazione della zona di destinazione <ol><li> Shave il cuoio capelluto del mouse con un rasoio elettrico. </li><li> Fissare saldamente la testa e inserire le barre di auricolari in meato esterno. Siate attenti a non danneggiare i timpani. </li><li> Disinfettare la pelle in superficie con colpi di etanolo al 70% e betadine utilizzando tamponi di cotone alternati. </li><li> Utilizzare un bisturi per fare un&#39;incisione lungo la linea mediana dall&#39;occhio level fino al collo. Applicare divaricatori della pelle per mantenere il cranio esposto. </li><li> Ritrarre delicatamente il periostio ai bordi del cranio con un bisturi e lasciare la superficie del cranio asciugare utilizzando tamponi di cotone sterili. Identificare il bregma e lambda. Posizionare una micropipetta di vetro sul bregma come punto di riferimento, quindi spostarlo le coordinate della regione di interesse. La regione di interesse scelto per questo articolo è approssimativamente roundly sagomata, centrata circa 2 mm lateralmente al bregma, e copre una superficie di circa 30 mm 2, che comprende gran parte della corteccia sensomotoria secondo il topo cervello atlante da Franklin e Paxinos 11. </li><li> Segnare la posizione di interesse con punti di riferimento e di porre in fibra ottica a stretto contatto con la superficie del cranio per evitare dispersione della luce, ma attenzione a non esercitare una pressione su di esso. L&#39;area illuminata può essere limitata applicando sul cranio una maschera con piccola apertura o un tappo sulla punta della fibra ottica guide. </li></ol> 4. Rosa Bengala iniezione e attivazione <ol><li> Caricare la soluzione Rosa Bengala in una siringa da 1 ml e calcolare l&#39;importo da iniettare in base a una dose di 10 ml / g di peso corporeo. </li><li> Procedere ad una iniezione intraperitoneale lenta. </li><li> Lasciate che la diffusa colorante ed entrare nel flusso sanguigno. Dopo 5 minuti, accendere l&#39;illuminatore a luce fredda. Evitare l&#39;illuminazione dell&#39;animale da qualsiasi altra sorgente di luce. Abbiamo usato illuminatore da 150 W intensità in fibra ottica. </li><li> Dopo 15 min di illuminazione, interrompere l&#39;esposizione alla luce e suturare la ferita. Cinque minuti di illuminazione già producono miocardico e 10 min dovrebbe essere sufficiente per ottenere un effetto massimo 12. Per ridurre al minimo la variabilità, abbiamo scelto di illuminare per 15 min. </li></ol> 5. Suturare <ol><li> Rimuovere i divaricatori pelle e applicare la soluzione salina sterile per evitare la disidratazione. </li><li> Chiuda la ferita utilizzando inverso needl taglioE e seta o filo di sutura di nylon. </li><li> Interrompere per anestesia, rimuovere con attenzione il mouse dal apparato stereotassico e metterlo su un rilievo di riscaldamento pre-riscaldato fino a quando non è completamente sveglio, per poi tornare alla sua gabbia. La temperatura corporea deve essere monitorata attentamente tutta la procedura per limitare la variabilità dell&#39;estensione dell&#39;infarto. In funzione della concentrazione e la via di somministrazione, Rosa Bengala può ancora essere rilevato nel flusso sanguigno per diverse ore dopo l&#39;iniezione 13. Preferire la coperta di riscaldamento per il riscaldamento della lampada per evitare potenziali danni secondari (Rosa Bengala assorbimento di lunghezza d&#39;onda è nello spettro verde). </li></ol>

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</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Le modifiche e sostituzioni A causa del suo picco di assorbimento a 562 nm, un laser a luce verde da una lampada ad arco allo xeno filtrato è stato originariamente scelto per irradiare la fotosensibile Rosa Bengala. Sebbene eccitazione laser-mediata è stato ancora utilizzato recently5, esso può essere sostituito da lampada a luce fredda che anche garantire eccitazione colorante 10,15. Fibre ottiche a luce fredda sono più facili da manipolare e meno costoso di sorgenti laser. Tuttavia...

Agli inizi del secolo 21 °, ictus ischemico è una malattia devastante che rappresenta la seconda causa di disabilità a lungo termine 1 e la seconda causa di mortalità in tutto il mondo, nei quali ictus rappresentato circa 5,7 milioni di morti nel 2004 2. Nonostante i numerosi sforzi che sono stati messi in, non vi è ancora alcun trattamento efficace disponibile per migliorare il recupero funzionale dopo ictus. I modelli animali di ictus sono ampiamente utilizzati nel campo della ricerca ictus in quanto consentono la modellazione della fisiopatologia del danno ischemico e testare l&#39;efficacia di differenti strategie di neuroprotezione in vivo. La maggior parte di questi modelli mirano a indurre infarto esteso da interrompere (temporaneamente o definitivamente) il flusso di sangue all&#39;interno dell&#39;arteria cerebrale media, mentre altri modelli sono stati sviluppati per studiare le lesioni di piccole dimensioni in settori specifici, in genere il motore e la corteccia somatosensoriale. Tuttavia, diversi fattori possono contribuire a generare corrente alternataalune grado di variabilità in studi sperimentali ictus, compreso il mouse ceppo utilizzato, l&#39;età e il sesso degli animali inclusi nello studio e, soprattutto, la tecnica adottata per indurre il danno ischemico. Con riferimento a quest&#39;ultimo punto, la durata e invasività della chirurgia (cioè la necessità di una craniotomia), così come l&#39;abilità chirurgica richiesta all&#39;operatore di indurre attendibilmente una lesione ischemica sono fattori determinanti per il successo di uno studio imparziale nella corsa in vivo . Il concetto di photothrombosis stato inizialmente proposto da Rosenblum e El-Sabban nel 1977 3 e divenne celebre per la sua applicazione nel cervello di ratto da Watson et al nel 1985, 4 nel quale la tecnica è stata ampiamente migliorata e ha posto le basi del modello attuale 3. - 6. L&#39;approccio photothrombotic mira a indurre un infarto corticale attraverso la foto-attivazione di un colorante fotosensibile precedentemente consegnata nel sistema sanguigno, which provoca trombosi dei vasi locale nelle aree esposte alla luce. Quando il colorante circolante è illuminato alla lunghezza d&#39;onda appropriata da una sorgente di luce fredda, rilascia energia a molecole di ossigeno, che a loro volta generano una grande quantità di prodotti altamente reattive dell&#39;ossigeno singoletto. Questi intermedi dell&#39;ossigeno inducono perossidazione endoteliali membrana cellulare, portando ad adesione e l&#39;aggregazione piastrinica, e infine alla formazione di trombi, che determinano il flusso locale interruzione cerebrale 7. Photothrombosis è un modello ischemico non canonico che non occlude o rompere una sola arteria come accade di solito in tempi umani, ma induce lesioni in vasi più superficiali, che provoca l&#39;interruzione selettiva del flusso sanguigno nelle zone esposte alla luce. Per questo motivo, questo approccio può essere adatto per gli studi cellulari e molecolari della plasticità corticale. Il vantaggio principale di questa tecnica risiede nella sua semplicità di esecuzione.Inoltre, photothrombosis può essere facilmente effettuata in circa 40 minuti per animale, compreso venti minuti di attesa (3 min per anestesia, 1 min a radere il cuoio capelluto, 3 per 5 min per posizionare l&#39;animale sul apparato stereotassico; 2 min per fregare la cuoio capelluto con soluzione antisettica, fare un&#39;incisione e pulire il cranio; 2-4 min per posizionare la fibra di luce fredda; 1 min per iniettare la soluzione di rosa del Bengala; 5 minuti di attesa per la diffusione intraperitoneale; 15 min di illuminazione, e 5 min a pulire la ferita e suturare l&#39;animale). Inoltre, nessuna perizia chirurgica è necessaria per eseguire questa tecnica come la lesione è indotta mediante semplice illuminazione del cranio intatto. A differenza di occlusione arteriosa classica, questo metodo determina occlusione selettiva del microcircolo piale e intraparenchimale all&#39;interno della zona irradiata e riduce la variabilità tra le lesioni come nessuna nave garanzia è lasciato per la fornitura di ossigeno nella zona di mira. Nonostante la sua particolare natura, ilazioni danni photothrombotic meccanismi essenziali che si verificano nel cervello ictus. Similmente a occlusione dell&#39;arteria in corsa umana, l&#39;aggregazione piastrinica e la formazione di coagulo determinano interruzione del flusso sanguigno nella zona irradiata 7. Allo stesso modo, questo modello condivide anche le risposte infiammatorie essenziali come in occlusione dell&#39;arteria cerebrale media 8. Tuttavia, a causa dei limiti ben delimitato, la zona di penombra, che corrisponde ad un campo di metabolismo parzialmente conservata, è molto ridotta o inesistente dopo una lesione photothrombotic. Questo confine chiaro può facilitare lo studio delle risposte cellulari all&#39;interno dell&#39;area corticale ischemica o intatto. Modello di topo Photothrombosis è particolarmente adatto per studi di ictus in una varietà di animali transgenici. Infatti i modelli classici non possono adattarsi a tutti i ceppi e studi lungo periodo in C57BL / 6 ceppo di topi riferito un alto rapporto di mortalità che può causare pregiudizi 9.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Soluzioni e prodotti chimici</td></tr><tr><td>Rose Bengal </td><td>Sigma, Italy</td><td>330000</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane Vet </td><td>Merial</td><td>103120022</td><td></td></tr><tr><td>Betadine </td><td>Asta Medica</td> Paraformaldehyde <td></td><td></td></tr><tr><td> </td><td>Sigma-Aldrich</td><td>158127</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Materiale e attrezzature chirurgiche</ Filtro Havard > forte 340415</td></tr><tr><td> </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Illuminatore a fibre ottiche da 150 W</td> Regolatore di temperatura <td>Photonic</td><td>PL3000</td><td></td></tr><tr><td>per piastra TCAT-2DF </td><td>Apparecchio Havard</td><td>727561</td><td></td></tr><tr><td>Strumento stereotassico </td><td>Stoelting</td><td>51950</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio operatorio </td><td>Takagi</td><td>OM8</td><td></td></tr><tr><td>Cuscinetto </td><td></td><td></td><td></td>riscaldante</tr> <tr><td>Ossigeno e azoto gassoso</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Strumenti per la chirurgia Strumenti</td> di <td>precisione</td><td></td> mondiale <td>I rubinetti e la maschera in fibra ottica sono realizzati su misura </td></tr></tbody></table>

ischemia photothrombotic: un modello fotochimico lesione corticale minimamente invasiva e riproducibile per mouse studi stroke

Photothrombotic Ischemia: A Minimally Invasive and Reproducible Photochemical Cortical Lesion Model for Mouse Stroke Studies

Il modello di ictus photothrombotic mira a indurre un danno ischemico entro una data area corticale mediante foto-attivazione di un colorante fotosensibile precedentemente iniettato. Seguendo illuminazione, il colorante viene attivato e produce ossigeno singoletto che danneggia i componenti delle membrane cellulari endoteliali, con successiva aggregazione piastrinica e la formazione di trombi, che alla fine determina l&#39;interruzione del flusso sanguigno locale. Questo approccio, inizialmente proposto dal Rosenblum e El-Sabban nel 1977, è stato successivamente migliorato da Watson nel 1985 nel cervello di ratto e ha posto le basi del modello attuale. Inoltre, l&#39;aumento della disponibilità di linee di topi transgenici ha ulteriormente contribuito ad aumentare l&#39;interesse sul modello photothrombosis. Brevemente, un colorante fotosensibile (Rosa Bengala) viene iniettato per via intraperitoneale e entra nel flusso sanguigno. Quando illuminata da una sorgente luminosa fredda, il colorante diventa attivato e induce danno endoteliale con l&#39;attivazione piastrinica e trombosi, causando localeinterruzione del flusso sanguigno. La sorgente luminosa può essere applicato sul cranio intatto senza bisogno di craniotomia, che permette il targeting di qualsiasi area corticale di interesse in modo riproducibile e non invasivo. Il mouse viene poi suturata e ha permesso di svegliarsi. La valutazione del danno ischemico può essere rapidamente realizzato da cloruro trifenil-tetrazolium o cresile colorazione viola. Questa tecnica produce infarto di piccole dimensioni e confini ben delimitati, che è molto vantaggioso per la caratterizzazione delle cellule precise o studi funzionali. Inoltre, è particolarmente adatto per studiare risposte cellulari e molecolari alla base della plasticità cerebrale in topi transgenici.

Questo protocollo produrrà una lesione corticale che è già visibile sulla dissezione della corteccia ad occhio nudo (Figure 1A-1C). La lesione photothrombotic sviluppa in superficiali e profondi strati corticali in cui il tessuto è sufficientemente trasparente da consentire foto-attivazione del Rosa Bengala. Misurare l&#39;entità di infarto cerebrale può essere eseguita rapidamente mediante colorazione istologica con cloruro di trifenil-tetrazolio (TTC) su tessuto fresco o violetto cresolo dopo fissazio...

Photothrombosis è una tecnica rapida, mini-invasiva per indurre le piccole e ben delimitate del miocardio in aree di interesse in modo altamente riproducibile. È particolarmente adatto per studiare risposte cellulari e molecolari alla base della plasticità cerebrale in topi transgenici.

Ischemia Photothrombotic: un modello fotochimico lesione corticale minimamente invasiva e riproducibile per mouse Studi Stroke

The photothrombotic stroke model aims to induce an ischemic damage within a given cortical area by means of photo-activation of a previously injected ...

L'obiettivo generale di questa procedura è indurre una trombosi vascolare e un danno ischemico in un'area corticale specifica mediante l'attivazione luminosa di un colorante fotosensibile precedentemente iniettato. Questo viene ottenuto praticando innanzitutto un'incisione cutanea al fine di esporre il cranio. Successivamente, un colorante fotosensibile, il rose bengal, viene iniettato per via intraperitoneale.Cinque minuti dopo, l'area corticale bersaglio viene esposta a una sorgente di luce fredda per 15 minuti. Il Rosso Bengal entra in circolo nei vasi sanguigni. Quando illuminato, il Rosso Bengal si attiva e produce ossigeno singoletto.Il danno riguarda i componenti delle membrane delle cellule endoteliali che, a loro volta, formano trombi su tutta la superficie illuminata, causando un'interruzione locale del flusso sanguigno nell'arteria renale. Al termine della procedura, la cute viene suturata per chiudere l'incisione. L'identificazione delle aree ischemiche può essere eseguita più rapidamente mediante colorazione con TTC o cristalli di C.Ciao, sono v Abes. Ciao, mi chiamo Mon Maze. La foto-trombosi è una tecnica rapida e non invasiva per indurre lesioni ischemiche corticali riproducibili nei topi.È adatto a numerosi studi sperimentali sull'ictus, in particolare per la valutazione della plasticità corticale in risposta a lesioni cerebrali a livello cellulare e molecolare. Gli esperimenti vengono solitamente condotti su ratti, che sono più facili da manipolare rispetto ai topi. Tuttavia, i topi sono meno costosi e sono disponibili numerose linee congeneiche.I modelli che stiamo utilizzando sono tecnicamente facili da eseguire, quindi ora vi mostreremo come indurre un Romble Deion. Nei topi, abbiamo sciolto il Rose Bengal in un tubo OV con soluzione cellulare sterile fino a raggiungere una concentrazione finale di 15 milligrammi per millilitro. Conservare al buio a temperatura ambiente per un massimo di due mesi e registrare il peso corporeo del topo.La dose di Rose Bengal che utilizzeremo è di 10 microlitri per grammo di peso corporeo. Per eseguire la foto-trombosi, è necessario un apparato stereotassico e una sorgente di luce fredda. Suggeriamo inoltre di monitorare la temperatura dell'animale durante l'intervento mediante un termometro rettale abbinato a un tappetino riscaldante.Per la preparazione chirurgica, sono necessari un paio di pinze, un bisturi, alcuni retractor per la cute, un paio di forbici, un kit CI, Betadine in etanolo e bastoncini di cotone per la disinfezione, nonché una coperta riscaldante per il recupero post-chirurgico. Sanificare l'area chirurgica in caso di perdita di sterilità durante l'intervento; interrompere immediatamente la procedura e ricominciare da capo per evitare il rischio di infezione. Anestetizzare i topi con vapori di isoflurano somministrati in una miscela di 50% ossigeno e 50% ossido di azoto, quindi posizionare il topo nella camera di induzione, erogando isoflurano a una dose iniziale del 3,5%. Quando si raggiunge l’anestesia profonda, rimuovere l’animale dalla camera di induzione e posizionarlo nel telaio stereotassico.Mantenere la concentrazione di oph floran al 2% per tutta la durata dell'intervento chirurgico. Utilizzare pinzature dei piedi per assicurarsi che l'animale sia adeguatamente sedato. Applicare un unguento oculare per prevenire che gli occhi dell'animale si secchino.Inserire una sonda rettale collegata a un tappetino riscaldante con controllo a feedback e mantenere la temperatura del mouse a 37 gradi. Posizionare saldamente il capo del mouse sull'apparato stereotassico inserendo le aste auricolari nel condotto uditivo esterno. Disinfettare la cute del cranio alternando passate di Etanolo al 70% e Betadine, quindi praticare un'incisione con il bisturi.Eseguire un'incisione lungo la linea mediana per esporre completamente l'osso. Posizionare i retrattori cutanei per mantenere esposto il cranio. Ritrarre il periostio con il bisturi e asciugare la superficie ossea utilizzando bastoncini di cotone sterili.Identificare il BMA e l'agnello. Posizionare una micropipetta di vetro sul osso di riferimento del BMA e spostarla alle coordinate della regione di interesse. Contrassegnare le posizioni con quattro punti di riferimento per garantire l'allineamento della fibra ottica con l'area di interesse.Prima dell'illuminazione, applicare una maschera con un foro sulla superficie del cranio per limitare la regione di interesse e impedire la dispersione della luce, oppure applicare direttamente un cappuccio sulla punta della fibra per ridurre la turbolenza. Utilizzando i punti di riferimento, posizionare una fibra ottica il più vicino possibile alla faccia S del cranio, prestando attenzione a non esercitare pressione su di essa. Caricare la soluzione di rosa bengala in una siringa da un millilitro e calcolare il volume da iniettare in base al peso corporeo.Considerando una dose di 10 microlitri per grammo, procedere con l'iniezione intraperitoneale di Rosa Bengala. Dopo cinque minuti, iniziare l'illuminazione con fibre di luce al carbone. Dopo 15 minuti, sostituire le fibre e suturare la sonda. Applicare una soluzione cellulare sterile sulla superficie del cranio per reidratare.Rimuovere i retrattori per la pelle. Chiudere quello utilizzando ago con tagliente inverso e filo di sutura in seta o nylon. Rimuovere con attenzione la sonda rettale e le barre per le orecchie.Rimuovere il topo dall'apparato stereotassico e posizionarlo su una coperta riscaldata pre-riscaldata fino a quando non si sarà completamente sveglio. Quindi riportarlo nella sua gabbia. La misurazione dell'estensione dell'infarto cerebrale può essere eseguita mediante colorazione istologica con RIF, cloruro di tealio o TTC su lisi cerebrale fresca, che evidenzia in rosso.Il tessuto integro, grazie alla reazione idrogenosa, appare tipicamente pallido. L'assenza di colorazione è dovuta alla mancanza di attività deidrogenasica e rivela la perdita di integrità cellulare nelle aree danneggiate. In alternativa, il danno ischemico può essere rivelato dalla colorazione con violetto di cresile su sezioni cerebrali fissate.È possibile utilizzare diversi software sia per la misurazione che per la ricostruzione tridimensionale dell'area infartuata, tra cui nma J e neuro elucidate. Abbiamo illustrato come eseguire foto-trombosi nei topi, in cui qualsiasi area corticale specifica può essere colpita con riproducibilità. Inoltre, questo modello è non invasivo e facile da eseguire, poiché non richiede colectomia.Tuttavia, una serie di esperimenti preliminari dovrebbe essere eseguita inizialmente al fine di determinare la quantità minima di dieta da iniettare per produrre una lesione che interessi esclusivamente l'area bersaglio o per indurre un deficit comportamentale significativo. Grazie per aver guardato. Se hai domande, contattaci e buona fortuna per il tuo esperimento. Arrivederci.

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