7 giugno 2013
Riportiamo un metodo semplice ed efficace per isolare gli embrioni nelle prime fasi di sviluppo da Arabidopsis thaliana Semi. Fino a 40 embrioni possono essere isolati in 1 ora a 4 ore, a seconda dell'applicazione a valle. La procedura è adatta per transcriptome, metilazione del DNA, l'espressione del gene reporter, immunostaining e fluorescenza In situ Analisi di ibridazione.
L'obiettivo generale di questa procedura è isolare gli embrioni di giovani piante. Ciò si ottiene sezionando prima i semi. Il secondo passo consiste nel frantumare delicatamente i semi in un tampone di isolamento.
Successivamente, gli embrioni vengono sottoposti a screening e quindi raccolti mediante microaspirazione al microscopio invertito. La fase finale consiste nel raccogliere tutti gli embrioni in un volume minimo dopo il lavaggio e trasferirli nel tampone di destinazione. In definitiva, gli embrioni possono essere utilizzati per l'estrazione di RNA o DNA per analizzare il trascrittoma o l'epigenoma, o utilizzati per analisi citologiche, come i saggi di reporter genico o l'ibridazione fluorescente in situ.
Il vantaggio principale di questa tecnica è quello di essere in grado di isolare gli embrioni delle piante in massa e in specifiche fasi di sviluppo. In generale, le persone che non conoscono questo metodo non avranno problemi ad applicarlo in modo rapido ed efficiente. Per iniziare, seleziona i capillari dalla forma migliore sotto uno stereomicroscopio che sono stati precedentemente siliconati, tirati e tagliati.
Come descritto nel protocollo di testo, l'apertura dovrebbe essere liscia e intorno ai 50-100 micron. Quindi, lavare i vetrini da microscopio in vetro siliconato a più pozzetti in barattoli di coplin per 10 minuti in SDS al 10% dopo il lavaggio con detersivo. Lavare i vetrini due volte per due minuti.
In acqua priva di nucleasi per due minuti in etanolo al 70% per due minuti in etanolo al 100% e poi asciugare all'aria. Quindi distribuire circa 0,5 microlitri di 10 milligrammi per millilitro, albumina sierica bovina o BSA con una pipetta su tutta la superficie di ciascun pozzetto e asciugare all'aria. Quindi, prepara il microscopio per l'isolamento degli embrioni.
Utilizzare un microscopio invertito con un obiettivo di ingrandimento 10x e 20x. Collegare il capillare di vetro a un microiniettore per rivestire il micro capillare. Prendi circa sei microlitri di BSA e rilascialo.
Raccogli gli sleeks allo stadio di sviluppo desiderato, seguendo incroci o suole di autofecondazione. 2,5 giorni dopo l'impollinazione vengono utilizzati qui e contengono da due a quattro embrioni cellulari. Rimuovere i semi da 10 a 15 LIC sotto uno stereomicroscopio con pinza e insulina. Aghi.
Immergere i semi in 20 microlitri di tampone isolante in un tubo rotondo da due millilitri posto sul ghiaccio. Schiaccia delicatamente i semi con un pestello di plastica pre-pulito come descritto nel protocollo di testo per rilasciare gli embrioni fino a quando l'estratto di semi non è torbido. La forza da applicare deve essere determinata da ogni utente al momento della prova.
Sciacquare il pestello con 300 microlitri di tampone isolante per lavare il pestello e diluire il campione. Centrifugare l'estratto a 5.000 chi per cinque secondi dopo la centrifugazione. Risospendere delicatamente l'estratto pellettato pipettandolo su e giù due o tre volte.
Filtrare l'estratto con una rete di nylon da 30 micron montata su adattatori per tubi e far oscillare il tubo. Risciacquare la rete con altri 200 microlitri di isolamento, tampone e oscillazione. Di nuovo. Per preparare i vetrini per l'isolamento degli embrioni, posizionare un vetrino multipozzetto pulito rivestito in BSA e siliconato sul tavolino del microscopio invertito.
Posizionare il capillare sopra il vetrino e regolare la posizione per avere l'apertura nel campo visivo. Dopo Resus, sospendere l'estratto di semi filtrato pipettando delicatamente su e giù due goccioline da 40 a 50 microlitri di estratto di semi in uno o due pozzetti. Lo screening di una o due gocce alla volta, impedisce l'evaporazione del campione, collocare 50 microlitri di tampone di isolamento fresco in un pozzetto di un vetrino diverso preparato come in precedenza.
Per fungere da prima goccia di lavaggio. Conservare questo vetrino in una camera umida coperta per evitare l'evaporazione. Se necessario, setacciare le goccioline di estratto di semi per gli embrioni allo stadio desiderato con l'obiettivo di ingrandimento 10x.
Confermare il tavolino con l'ingrandimento 20x. Gli embrioni di solito affondano sul fondo del vetrino. L'aspetto più importante di questa procedura è raccogliere gli embrioni con il minimo di detriti.
Ciò può essere ottenuto pulendo con un ago di tungsteno, controllando attentamente la goccia di lavaggio per potenziali detriti di trasporto e ripetendo la caduta se necessario. Rimuovere manualmente i detriti intorno all'embrione con un ago di tungsteno, un ago da insulina o un'attrezzatura simile. Spostare il capillare di vetro vicino all'embrione utilizzando il micromanipolatore e prelevare l'embrione con la minor quantità di soluzione possibile.
Raccogli diversi embrioni e rilasciali al primo lavaggio. Goccia. Per le applicazioni molecolari per le applicazioni citologiche, gli embrioni possono andare direttamente al tampone di destinazione. Ogni giro di raccolta deve essere conservato entro 5-10 minuti e gli embrioni devono essere raccolti in un volume minimo.
Ripetere lo screening e la raccolta fino a quando la quantità desiderata di embrioni non viene raccolta nella prima goccia di lavaggio. Se i detriti vengono trasportati nella goccia di lavaggio, rimuoverli con un ago prima di raccogliere tutti gli embrioni contemporaneamente dalla goccia. Rilasciare gli embrioni in una seconda goccia di lavaggio da 50 microlitri e ripetere il ricordo.
Infine, rilascia gli embrioni nel buffer di destinazione. Il trasferimento deve comportare solo un contatto e non l'immersione della punta capillare mostrata. Qui ci sono diversi embrioni nell'ultima goccia dopo i lavaggi.
Gli embrioni di piante isolati possono ora essere utilizzati per varie applicazioni a valle per controllare il CD NA embrionale. Librerie prima del sequenziamento. Sono stati mostrati in modo amplificato i trascritti specifici dell'embrione. Ecco i risultati dell'amplificazione PCR su CD NA. Librerie da due a quattro embrioni cellulari lavati una sola volta, e sul DNA genomico l'isolamento dell'embrione si è dimostrato molto utile nei saggi del gene reporter con bassa espressione embrionale e dove il rivestimento del seme materno confonde il rilevamento mostrato qui è un embrione che esprime un gene reporter GUS sotto il controllo del promotore Madea.
Infine, l'ibridazione fluorescente in C 2 è stata applicata per studiare l'architettura nucleare in embrioni isolati incorporati in cuscinetti di acrilammide su vetrini. Qui viene mostrato un esempio che utilizza sonde contro le ripetizioni del centromero e le regioni organizzative nucleari inferiori. Una volta padroneggiata, questa tecnica consente l'isolamento di 30 embrioni in meno di un'ora per le applicazioni citologiche e in meno di tre ore per le applicazioni molecolari, comprese tutte le fasi di lavaggio.
Infatti, questa tecnica permetterà alla comunità di ricerca vegetale di esplorare i meccanismi genetici ed epigenetici nell'embriogenesi.
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Questo articolo presenta un metodo per isolare in modo efficiente embrioni in fase iniziale da semi di Arabidopsis thaliana. La procedura consente di isolare fino a 40 embrioni in 1-4 ore, rendendola adatta a diverse applicazioni successive.
L'isolamento di embrioni vegetali in stadio precoce permette un'analisi precisa dei meccanismi genetici ed epigenetici durante l'embriogenesi, sostenendo la validazione degli obiettivi nella scoperta di biotecnologie basate sulle piante. Questo metodo fornisce una fonte scalabile e riproducibile di embrioni specifici per stadio, destinati ad analisi molecolari e citologiche, riducendo le barriere tecniche nei processi di de-risking degli obiettivi. Supporta una maggiore affidabilità predittiva nell'identificazione dei candidati principali facilitando dati omici e di imaging di alta qualità provenienti da finestre di sviluppo ben definite.
Il metodo si inserisce nei flussi di lavoro della fase iniziale di scoperta, fornendo embrioni di stadio specifico per analisi omiche e di imaging che guidano la selezione dei bersagli e l'ottimizzazione dei composti promettenti prima della validazione preclinica.