Name: Generazione di Shear Adesione mappa usando SynVivo reti microvascolari sintetico (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-05-25T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 52 s
Description: Scopri come generare mappe di adesione al taglio in reti microvascolari sintetiche SynVivo. Questo metodo computazionale riduce tempi e reagenti rispetto alle camere di flusso tradizionali, migliorando lo studio dell'adesione cellulare.

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La tecnologia SynVivo è stato sviluppato sotto concessione # 2R44HL076034 dal NHLBI.

1. Adescamento del dispositivo Microfluidic SynVivo-SMN <ol><li> Ogni porta (ingresso / uscita) del dispositivo comprende due porte parallele - una per fluire in frazioni rivestimento superficiale (molecole di adesione, matrici di crescita, ecc) e / o cellule di semina e l&#39;altro per eseguire il test (Figura 1A ). </li><li> Immergere completamente il dispositivo microfluidica SynVivo-SMN (Figura 1B) in una capsula di Petri contenente deionizzata sterile (DI) e posizionare il piatto in un essiccatore a vuoto. Lasciare l&#39;essiccatore di eseguire fino a quando tutta l&#39;aria viene rimosso dai canali del dispositivo. Questo dovrebbe durare circa 15 min. </li><li> Prima di rimuovere il dispositivo dal acqua, mettere il tubo Tygon (diametro di 0,06 &quot;e ID di 0,02&quot;) innescato con acqua in ogni porta del dispositivo con una pinza a punta fine. Il tubo deve essere di circa 1 pollice. Il dispositivo può essere rimosso dall&#39;acqua. Figura 1C mostra immagine della devicoE Con ​​il tubo. </li></ol> 2. Rivestimento del dispositivo Microfluidic con la proteina desiderata (ad esempio, Avidin) <ol><li> Usando una pipetta, una goccia di acqua (circa 100 ml) intorno alla base del tubo una porta di ingresso. Rimuovere con cautela il tubo utilizzato per innescare il dispositivo. La goccia d&#39;acqua impedisce all&#39;aria di entrare dispositivo. </li><li> Preparare una siringa da 1 ml caricato con avidina ad una concentrazione di 20 ug / ml. Collegare la siringa un ago in acciaio inossidabile 24 G e tubi. Inserire il tubo ad una delle porte di ingresso del dispositivo. Bloccare la porta di ingresso non essere utilizzato con un morsetto mascella. </li><li> Iniettare avidina ad un flusso di 1 ml / min per 10 min per permettere la completa perfusione del dispositivo. Alla fine del tempo di flusso, bloccare il tubo con il morsetto mascella e posizionare il dispositivo a 4 ° C per una notte. </li></ol> 3. Scorrere la Particelle Biotinylated per gli esperimenti di adesione <ol><li> Lasciare il dispositivoa temperatura ambiente. Posizionare il dispositivo su un microscopio invertito a fluorescenza equipaggiato con un tavolino motorizzato e una telecamera ad alte prestazioni. </li><li> Preparare una soluzione di 2 micron particelle biotinilati ad una concentrazione di 5 x 10 6 particelle / ml in tampone fosfato salino (PBS). Caricare le particelle in una siringa da 1 ml. Preparare una seconda siringa da 1 ml di PBS solo. Caricare ogni siringa su una pompa a siringa e connettersi ago e tubo. </li><li> Usando una pipetta, una goccia di acqua (circa 100 ml) intorno alla base del tubo di entrata. Rimuovere con cautela il tubo utilizzato per rivestire il dispositivo. La goccia d&#39;acqua impedisce all&#39;aria di entrare dispositivo. </li><li> Inserire con cautela il tubo di particelle biotinilati e PBS dal punto 3.2 in ciascuna delle porte di ingresso. Figura 2A mostra l&#39;immagine del set-up. </li><li> Inizia iniettando particelle biotinilati ad una portata di 2,5 ml / min. Monitorare la porta di ingresso sul microscopio. Al primo segnodi particelle, avviare il timer e continuare flusso per 3 min. </li><li> Alla fine del 3 min, fermare il flusso di particelle biotinilati contemporaneamente fissando il flusso di PBS ad una portata di 2,5 ml / min. Lasciare PBS di fluire nel dispositivo per 3 minuti per lavare via le particelle non legate. </li></ol> 4. Acquisizione di immagini e Fare area di interesse (AOI) Misure Utilizzo del software di imaging (NIKON Elements) <ol><li> Utilizzare la funzione &quot;immagine di scansione grande&quot; nel software di imaging per acquisire l&#39;immagine dell&#39;intero dispositivo. </li><li> Numero sequenziale le biforcazioni nel dispositivo e creare una AOI circolare con due volte il diametro dei canali. In questo caso, impostare il diametro AOI a 200 micron in quanto il diametro del canale è di 100 micron. </li><li> Utilizzare la funzione di conteggio automatico del software di imaging per esportare il numero di particelle in ogni AOI ad un foglio di MS Excel. </li><li> Analogamente, utilizzare la funzione di conteggio automatico di esportare il numero di particelle nell&#39;interadispositivo. </li></ol> 5. Particelle Flux Analisi Uso Computational Fluid Dynamics (CFD) Modelli <ol><li> Simulazioni CFD vengono eseguiti utilizzando il software disponibile in commercio (CFD-ACE +, ESI Inc.) per la topologia dispositivo SynVivo-SMN. I risultati sono memorizzati in un database per analizzare osservazioni sperimentali. I risultati della simulazione memorizzare le informazioni sui tassi di parete di taglio, velocità, flusso di particelle, e l&#39;adesione nel dispositivo. </li><li> I risultati della simulazione vengono utilizzati per determinare il numero di particelle che entrano ogni AOI basato su una determinata concentrazione di particelle in ingresso. </li></ol> 6. Generazione Shear adesione Map <ol><li> Calcolo della% di aderenza dividendo le particelle attaccate nella biforcazione dalle particelle che fluiscono nella biforcazione come mostrato nell&#39;equazione 6.1. <img alt="Equazione 1" fo:content-width="3in" src="/files/ftp_upload/51025/51025eq1.jpg" /> dove il numero di particelle e le particelle aderiscono scorre sono ottenuti da protocol i punti 4.3 e 5.2, rispettivamente. </li><li> Tracciare la mappa adesione shear utilizzando il gradiente di velocità ad ogni biforcazione delle reti ottenuti dal database nella fase (5.1) ed i valori di adesione% ottenuti dall&#39;equazione 6.1. </li></ol>

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</ol>

Tassa di pubblicazione per questo articolo sponsorizzato da CFD Research Corporation.

Camere di flusso piastra paralleli, fornendo spunti significativi in ​​interazioni cellula-cellula e cellula-particelle, soffrono di alcune limitazioni quali elevato consumo di reagenti e la necessità di molteplici prove sperimentali di generare una mappa adesione taglio. L&#39;uso delle reti microvascolari SynVivo-sintetiche (SynVivo-SMNs) consente la generazione di una mappa di adesione al taglio da un singolo esperimento in condizioni che mimano le condizioni in vivo. Inoltre, si ottiene anche un risparmio s...

Saggi attuali studiare per cellula-cellula e cellula-interazioni delle particelle tipicamente comportano statica formato pozzetti in cui le particelle o le cellule vengono incubate su matrici proteiche o cellule aderenti. Al termine del tempo di incubazione specificato, il numero di particelle aderenti o cellule vengono quantificati mediante microscopia 1. Anche se questi test forniscono informazioni significative sui processi biochimici che stanno dietro queste interazioni, una limitazione fondamentale è la mancanza di flusso del fluido fisiologico (tipico del microcircolo) e il suo impatto sulla adesione delle particelle. Per superare questa limitazione, camere di flusso in vitro sono stati sviluppati negli ultimi anni. Un elemento comune di queste camere di flusso è un apparecchio trasparente perfusione a bassi numeri di Reynolds per abbinare i tassi di taglio della parete osservati nei vasi sanguigni in vivo 2. La parete del serbatoio è modellato da uno strato di biomolecole o crescita di cellule su una superficie del flusso cHamber 3. Particelle 4-7 o 8-16 cellule vengono poi scorreva dentro al campo desiderato di portate di quantificare il numero di aderire particelle sotto vari gradienti di velocità. Tuttavia, l&#39;utilizzo di camere di flusso piastra paralleli per studiare e validare i fenomeni biochimici è piuttosto costoso e richiede tempo. Ciò è dovuto principalmente al fatto che esperimenti multipli devono essere realizzati per generare una mappa della fluidico taglio rispetto al numero di particelle / cellule aderito. Inoltre, camere di flusso piastra richiedono grandi volumi di reagenti causa delle loro grandi dimensioni (altezza&gt; 250 micron e larghezza&gt; 1 mm). Infine, questi dispositivi non modellare accuratamente caratteristiche geometriche (ad esempio, biforcazioni) e condizioni di flusso (ad esempio, convergenti vs divergenti flussi) che sono presenti in vivo. I recenti progressi nella litografia basata microfabbricazione 17-19 hanno accelerato il campo di lab-on-a-chipdispositivi di 20-21. Questi dispositivi hanno contribuito a sviluppare una versione miniaturizzata della camera di flusso a piatti paralleli con dimensioni in regime micrometro. La riduzione di dimensione produce anche vantaggi significativi in ​​termini di volumi di reagenti, cellule o particelle richiesta per esperimenti. Tuttavia, una limitazione chiave dei dispositivi attualmente disponibili è l&#39;uso di canali lineari per modellare microvasi, che non imitano il complesso microcircolo osservato in vivo. Abbiamo recentemente sviluppato una nuova metodologia per ricreare le reti microvascolari su substrati di plastica usa e getta con conseguente rappresentazione sintetica delle condizioni in vivo. Questi dispositivi chiamati reti microvascolari SynVivo-sintetiche (SMN), sono sviluppate utilizzando PDMS basate processo soft-litografia. Dispositivi SynVivo-SMN possono essere utilizzati per ottenere shear mappa adesione di cellule / particella adesione 22, studio mirato consegna della droga 23 e have stato validato con i dati in vivo 24-25. In questo articolo, vi presentiamo un protocollo che consente la generazione della mappa di adesione al taglio da un singolo esperimento in volumi piccoli come 1-5 microlitri un conseguente notevole risparmio di risorse e di tempo.

<table><tbody><tr><td>SynVivo-SMN</td><td>CFD Research</td><td>SMN-001</td><td>in esclusiva presso CFDRC</td></tr><tr><td>CFD-ACE+</td><td>ESI Inc.</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Avidin</td><td>Invitrogen</td><td>43-4401</td><td>Qualsiasi fonte di avidina funzionerà per questo test</td></tr><tr><td>Particelle biotinilate</td><td>Polysciences</td><td>24173-1</td><td>Qualsiasi fonte di particelle biotinilate funzionerà per il test</td></tr><tr><td>Tygon Tubing</td><td>VWR</td><td>63018-044</td><td>Le dimensioni sono tipiche per l'uso con SynVivo-SMN</td></tr><tr><td>NIKON Elements</td><td>NIKON Instruments</td><td>N/A</td><td>Qualsiasi altro imaging Il software può essere utilizzato</td></tr></tbody></table>

generazione di shear adesione mappa usando synvivo reti microvascolari sintetico

Generation of Shear Adhesion Map Using SynVivo Synthetic Microvascular Networks

Saggi di adesione cellulare / particelle sono fondamentali per comprendere le interazioni biochimiche coinvolte nella patofisiologia della malattia e avere importanti applicazioni nella ricerca per lo sviluppo di nuove terapie. I saggi che utilizzano condizioni statiche riescono a catturare la dipendenza di adesione su taglio, limitando la loro correlazione con l&#39;ambiente in vivo. Camere di flusso piastra paralleli che quantificano l&#39;adesione sotto il flusso del fluido fisiologico bisogno di più esperimenti per la generazione di una mappa adesione taglio. Inoltre, essi non rappresentano la scala in vivo e morfologia e richiedono grandi volumi (~ ml) di reagenti per esperimenti. In questo studio, abbiamo dimostrato la generazione di taglio mappa adesione da un singolo esperimento utilizzando una rete microvascolare basata dispositivo microfluidica, SynVivo-SMN. Questo dispositivo ricrea il complesso sistema vascolare vivo tra cui scala geometrica, elementi morfologici, le caratteristiche dei flussi e le interazioni cellulari in unformato in vitro, fornendo in tal modo un ambiente biologicamente realistico per ricerca di base e applicata nel comportamento cellulare, la consegna della droga, e la scoperta della droga. Il saggio è stato dimostrato studiando l&#39;interazione dei 2 micron particelle biotina-avidina rivestite con superfici rivestite del microchip. L&#39;intera gamma di taglio osservata nel microcircolo è ottenuta in un singolo saggio consenta adesione vs shear mappa per le particelle in condizioni fisiologiche.

La figura 1A mostra una immagine schematica campo chiaro e di dispositivo SynVivo-SMN. Figura 1B mostra il dispositivo SynVivo-SMN montato su un vetrino. Figura 1C mostra il dispositivo con la tubazione seguente priming con acqua in un essiccatore sotto vuoto. Figura 2A mostra un&#39;immagine della sperimentale-impostato. Figura 2B mostra un tipico dispositivo SynVivo-SMN avidina rivestite conseguente al leg...

Le camere di flusso utilizzate negli esperimenti di adesione sono tipicamente costituite da percorsi di flusso lineari e richiedono più esperimenti a diverse velocità di flusso per generare una mappa di adesione a taglio. SynVivo-SMN consente la generazione di mappe di adesione al taglio utilizzando un singolo esperimento che utilizza volumi di microlitri, con conseguente notevole risparmio di tempo e materiali di consumo.

Generazione di Shear Adesione mappa usando SynVivo reti microvascolari sintetico

Cell/particle adhesion assays are critical to understanding the biochemical interactions involved in disease pathophysiology and have important ...

L'obiettivo generale del seguente esperimento è ottenere una mappa della adesione al taglio tra cellule e particelle da un singolo esperimento, utilizzando reti microvascolari sintetiche. Questo risultato si ottiene innanzitutto rivestendo il dispositivo microfluidico con la proteina di interesse, in questo caso l'avadon. Come secondo passaggio, vengono iniettate nel dispositivo particelle biotinilate a velocità di taglio fisiologiche, le quali si legano al dispositivo rivestito con avadon mostrando schemi differenziali in base alle velocità di taglio locali.Successivamente, viene contato il numero di particelle legate al fine di generare una mappa dell'adesione al taglio delle particelle, utilizzando un database computazionale di valori di velocità di taglio nella rete. I risultati mostrano che una mappa dell'adesione al taglio può essere ottenuta da un singolo esperimento, comportando un risparmio significativo di tempo e reagenti rispetto alle camere di flusso a piastre parallele convenzionali. Il vantaggio principale di questa tecnologia rispetto ai metodi esistenti, come i canali di flusso lineari, è la possibilità di generare mappe condivise da un singolo esperimento, ottenendo così un notevole risparmio in termini di costi e tempo.Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo della somministrazione di farmaci, ad esempio riguardo alla capacità dei veicoli di somministrazione di legarsi ai bersagli desiderati. Abbiamo avuto per la prima volta l'idea di questo metodo quando stavamo utilizzando camere a flusso con piastre oscillanti per comprendere lesioni cellulari particolari. Tuttavia, in condizioni di fluido, l'obiettivo di questo saggio è fornire informazioni di base sull'adesione di particelle e cellule.La piattaforma syn vivo può essere applicata a diverse altre aree, come il cancro e il rilascio a livello del sistema nervoso centrale, infezione e infiammazione, trombosi e disfunzione della microcircolazione. La dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale poiché i passaggi che coinvolgono il dispositivo microfluidico sono difficili da apprendere, l'abituarsi a volumi campione ridotti e le migliori pratiche per evitare la formazione di bolle vengono trasmesse in modo più efficace attraverso una rappresentazione visiva. La procedura sarà dimostrata da Ashley Smith, scienziata ricercatrice del nostro laboratorio.Il dispositivo microfluidico SynVivo SMN è composto da due serie di porte parallele, una per il flusso di rivestimenti superficiali, gruppi funzionali e/o cellule per l'ancoraggio, e l'altra per l'esecuzione del saggio. Per iniziare, immergere completamente il dispositivo in una piastra di Petri contenente acqua deionizzata sterile e posizionare la piastra in vuoto. Disidratare, lasciando procedere la disidratazione fino a quando tutta l'aria è stata rimossa dai canali del dispositivo.Attendere circa 15 minuti prima di rimuovere il dispositivo dall'acqua. Utilizzare pinzette a punta fine per inserire un tubo tigon prerisciacquato con acqua in ciascuna porta del dispositivo. La lunghezza del tubo dovrebbe essere di circa 2,5 cm.Ora il dispositivo può essere rimosso dall'acqua utilizzando una pipetta o una siringa. Mettere una goccia d'acqua attorno alla base di un tubo del porto di ingresso. Rimuovere con attenzione il tubo.La goccia d'acqua impedirà all'aria di entrare nel dispositivo. Successivamente, preparare una siringa da un millilitro caricata con avadon a una concentrazione di 20 microgrammi per millilitro. Collegare la siringa a un ago in acciaio inossidabile da 24 gauge e bloccare con una pinza a ganascia il porto di ingresso non utilizzato.Inserire il tubo nel porto di ingresso del dispositivo. Iniettare avadon a una portata di un microlitro al minuto per 10 minuti per consentire una perfusione completa del dispositivo. Al termine del tempo di flusso.Stringare tutti i tubi con morsetti a ganascia e posizionare il dispositivo a quattro gradi durante la notte. Lasciare che il dispositivo raggiunga la temperatura ambiente. Successivamente, posizionare il dispositivo su un microscopio a fluorescenza invertito dotato di un palcoscenico motorizzato e di una telecamera ad alte prestazioni.Preparare una soluzione di particelle biotinilate di due micron a una concentrazione di 5 milioni di particelle per millilitro in soluzione salina tampone al fosfato o PBS. Caricare le particelle in una siringa da un millilitro. Preparare una seconda siringa da un millilitro contenente PBS.Caricare solo ogni siringa su una pompa per siringhe, quindi collegarle all'ago e al tubo utilizzando una siringa pipetta. Posizionare una goccia d'acqua attorno alla base del tubo del porto di ingresso e rimuovere con attenzione il tubo utilizzato per rivestire il dispositivo. Inserire con cura i tubi per le particelle biotinilate e per il PBS in ciascun porto di ingresso.Quindi iniziare a iniettare le particelle biotinilate a una portata di 2,5 microlitri al minuto. Monitorare il porto di ingresso al microscopio al primo segnale delle particelle. Avviare il cronometro e proseguire il flusso per tre minuti.Al termine dei tre minuti, arrestare il flusso delle particelle biotinilate interrompendo contemporaneamente il flusso di PBS a una velocità di 2,5 microlitri al minuto. Lasciare scorrere il PBS nel dispositivo per tre minuti al fine di rimuovere le particelle non legate. Per iniziare l'acquisizione, utilizzare la funzione di scansione dell'immagine grande nel software di imaging per acquisire l'immagine dell'intero dispositivo, quindi numerare in sequenza le biforcazioni nel dispositivo e creare un'area di interesse circolare con un diametro doppio rispetto a quello dei canali.In questo caso, impostare il diametro dell'area di interesse a 200 micron poiché il diametro del canale è di 100 micron. Utilizzare la funzione di conteggio automatico nel software di imaging per esportare il numero di particelle in ciascuna area di interesse in un foglio di calcolo. Analogamente, utilizzare la funzione di conteggio automatico per esportare il numero di particelle nell'intero dispositivo.Le simulazioni CFD vengono eseguite e i risultati sono archiviati in un database per ulteriori analisi. Le informazioni incluse nei risultati contengono i tassi di shear sulla parete, il flusso di particelle in velocità e l'adesione al dispositivo. Queste informazioni vengono utilizzate per determinare il numero di particelle che aderiscono in ciascuna area di interesse, data una concentrazione definita di particelle in ingresso.Per generare una mappa dell'adesione al taglio, calcolare la percentuale di adesione come specificato nel protocollo testuale come passaggio finale. Tracciare la mappa dell'adesione al taglio utilizzando la velocità di taglio in ciascuna biforcazione delle reti e i valori percentuali di adesione. Questa immagine mostra un tipico dispositivo SMN rivestito con avidina in condizioni syn vivo dopo il legame di particelle biotinilate di due micron.Si noti che le particelle aderiscono preferenzialmente nelle vicinanze delle biforcazioni della rete. Le biforcazioni numerate nella rete SMN syn vivo sono visibili qui. Questa immagine rappresenta la mappa del gradiente di sforzo tangenziale sulle pareti, generata dal modello CFD del dispositivo.Il tasso di taglio varia nel dispositivo da 250 secondi inversi a 15 secondi inversi, come osservato nella microvascolatura in vivo. Si noti che questi diversi tassi di taglio non possono essere ottenuti simultaneamente in canali microfluidici lineari, poiché forniscono un tasso di taglio costante per ogni portata. Il grafico mostrato qui dei valori del tasso di taglio in ciascuna delle biforcazioni della rete rivela che i modelli di tasso di taglio sono complessi e non possono essere ottenuti mediante una semplice relazione analitica, a differenza dei canali di flusso lineari.Inoltre, sono presenti molteplici biforcazioni nella rete che ricadono nello stesso intervallo di shear. Questo aumenta l'affidabilità statistica dei dati mostrati. Di seguito sono riportati risultati campione dell'analisi CFD relativi ai flussi di particelle nella rete, utilizzati per calcolare i flussi di particelle nei rami e nelle biforcazioni della rete sperimentale.La mappa dell'adesione tangenziale ottenuta da un singolo esperimento SMN syn vivo segue la relazione inversa osservata nelle mappe di adesione tangenziale ricavate da esperimenti con canali lineari. Tuttavia, utilizzando un saggio SynVivo, un singolo esperimento consente di generare questa mappa tangenziale, mentre con i canali lineari sono necessarie numerose ripetizioni sperimentali. Dopo aver visto questo video, dovreste avere una chiara comprensione di come utilizzare i dispositivi SynVivo SMN per generare la mappa di adesione condivisa a partire da un singolo esperimento.Quando si esegue questo esperimento, è importante ricordare di non introdurre bolle nel dispositivo microfluidico SynVivo SMN dopo il suo sviluppo. Questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nel campo dell'infiammazione per studiare l'interazione tra leucociti e endotelio a diverse velocità di taglio in un singolo esperimento. Nella prossima generazione di dispositivi, i ricercatori potranno studiare l'adesione di rotolamento e la migrazione dei leucociti in un singolo saggio, qualcosa che attualmente non è possibile.Seguendo questa procedura, è possibile eseguire altri metodi per studiare l'adesione di farmaci, veicoli di somministrazione e cellule, al fine di indagare aspetti come l'effetto fisiologico del flusso sull'adesione cellula-cellula, cellula-farmaco e farmaco-veicolo.

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Research

Ricerca

JoVE Journal

Bioengineering

Bioingegneria

Camere di flusso Microfluidic incisi da fotolitografia e fabbricati da PDMS sono applicate per sondare gli esiti funzionali associati alla disfunzione CE e l'infiammazione. In un esperimento rappresentativo, la capacità di sforzo di taglio differenziale di modulare l'adesione cellulare monocitica di citochina attivato CE monostrati è dimostrata.

On-Chip Fenotipizzazione Endothelial infiammatoria

Source: Claes, J., et al, In Vitro and In Vivo Model to Study Bacterial Adhesion to the Vessel Wall Under Flow Conditions. J. Vis. Exp. (2015).This video demonstrates an in vivo method for analyzing shear-dependent bacterial adhesion in a live mouse model. Following surgical preparation and catheterization, the mesenteric vasculature is exposed for real-time imaging under a fluorescence microscope. Perfusion with an ionophore and fluorescently labeled bacteria reveals how shear stress triggers...

An In Vivo Model to Study Shear-Dependent Bacterial Adhesion

Le cellule endoteliali primarie della vena ombelicale umana (HUVEC) sono state coltivate fino alla confluenza all'interno di un dispositivo di rete microfluidica. Sono state illustrate le distribuzioni della giunzione delle cellule endoteliali e della F-actina e sono stati quantificati in tempo reale a livello di singola cellula le variazioni della concentrazione intracellulare di calcio e della produzione di ossido nitrico in risposta all'adenosina trifosfato (ATP).

Sviluppo e caratterizzazione di<em&gt; In Vitro</em&gt; Microvasi Rete e misurazioni quantitative di endoteliale [Ca<sup&gt; 2+</sup&gt;]<sub&gt; i</sub&gt; E ossido nitrico Produzione

Questo manoscritto presenta un metodo di stampaggio ad iniezione di progettare microvasi che ricapitolano le proprietà fisiologiche di endotelio. Il processo di microfluidica-based crea reti vascolari brevetto 3D con condizioni tailorable, come il flusso, composizione cellulare, la geometria, e gradienti biochimici. Il processo di fabbricazione ed esempi di possibili applicazioni sono descritte.

Micropatterning e montaggio dei microvasi 3D

Questo protocollo delinea l'implementazione della degradazione dell'idrogel basata su laser guidata da immagini per fabbricare reti microfluidiche biomimetiche di derivazione vascolare incorporate in idrogel di poli(etilenglicole) diacrilato (PEGDA). Questi sistemi microfluidici biomimetici possono essere utili per applicazioni di ingegneria tissutale, generazione di modelli di malattie in vitro e fabbricazione di dispositivi avanzati "on-a-chip".

Immagine-guidate, Fabrication laser a base di reti microfluidici vascolare-derivati

I progenitori endoteliali derivati da cellule staminali pluripotenti indotte (iPSC-EP) hanno il potenziale di rivoluzionare i trattamenti delle malattie cardiovascolari e di consentire la creazione di modelli di malattie cardiovascolari più fedeli. Qui, vengono descritti l'incapsulamento di iPS-EP in microambienti tridimensionali di collagene (3D) e un'analisi quantitativa del potenziale vasculogenico di queste cellule.

Un modello 3D in vitro e una pipeline computazionale per quantificare il potenziale vasculogenico dei progenitori endoteliali derivati da iPSC

I tessuti ingegnerizzati si affidano fortemente a reti vascolari adeguate per fornire nutrienti e gas vitali e rimuovere i rifiuti metabolici. In questo lavoro, un protocollo di semina graduale di cellule endoteliali e cellule di supporto crea reti vascolari altamente organizzate in una piattaforma ad alta produttività per lo studio dello sviluppo del comportamento dei vasi in un ambiente 3D controllato.

Semina cellulare graduale su impalcature tassellate per studiare i vasi sanguigni germogliati

Qui forniamo un chip microfluidico e un sistema microfluidico di circolazione automaticamente controllato e altamente efficiente che ricapitola il microambiente iniziale della neovascolarizzazione, consentendo alle cellule endoteliali (EC) di essere stimolate da elevate sollecitazioni di taglio luminali, livello fisiologico di flusso transendoteliale e distribuzione simultanea di vari fattori di crescita endoteliali vascolari (VEGF).

Modello microfluidico per imitare l&apos;evento iniziale di neovascolarizzazione

L'obiettivo di questo protocollo è quello di descrivere la generazione e l'analisi volumetrica di equivalenti cutanei umani vascolarizzati utilizzando tecniche accessibili e semplici per la coltura a lungo termine. Per quanto possibile, viene descritta la logica dei passaggi per consentire ai ricercatori la possibilità di personalizzare in base alle loro esigenze di ricerca.

Generazione di equivalenti di pelle umana vascolarizzata auto-assemblati

In questo protocollo, un test microfluido biomimetico, in grado di riprodurre un ambiente microvascolare fisiologicamente rilevante e riprodurre l'intera cascata di adesione/migrazione leucocitaria, viene impiegato per studiare le interazioni leucocitaria-cellula endoteliale nella malattia infiammatoria.

Un sistema microfisiologico per studiare l'interazione leucocitaria-cellula endoteliale durante l'infiammazione

L'angiogenesi da germoglio, fondamentale per lo sviluppo e la malattia, coinvolge complessi processi molecolari e meccanici. Presentiamo un versatile modello ex vivo 2.5D che analizza la germinazione cellulare dalle arterie carotidi suine, rivelando l'angiogenesi rigida-dipendente e la distinta meccanica delle cellule leader-follower. Questo modello aiuta a far progredire le strategie di ingegneria tissutale e gli approcci alla terapia del cancro.

Modello 2.5D per la caratterizzazione meccanica ex vivo dell'angiogenesi da germogliamento in tessuto vivente

Scopri come generare mappe di adesione al taglio in reti microvascolari sintetiche SynVivo. Questo metodo computazionale riduce tempi e reagenti rispetto alle camere di flusso tradizionali, migliorando lo studio dell'adesione cellulare.

Generazione di Shear Adesione mappa usando SynVivo reti microvascolari sintetico

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