Name: Stretching celle micropatterned su una membrana PDMS (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-22T13:45:00.000+00:00
Duration: 9 min 41 s
Description: Scopri come stirare cellule micropatterned su membrana PDMS per studiare la biomeccanica cellulare. Questa tecnica consente di applicare forze meccaniche controllate su cellule in mitosi.

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Questo lavoro è stato fondato da Institut Curie, Parigi, Francia. La barella meccanico è stato progettato da Damien Cuvelier (Institut Curie) ed è prodotto da GREM (mecanique-grem.com). Il patterning su PDMS è stato sviluppato da Ammar Azioune (Bordeaux II University).

1. Passivazione del PDMS <ol><li> Tagliare un pezzo di PDMS circa 35 mm x 20 mm da una lamiera pre fatta (per esempio, GelPak, come elencato nella tabella dei materiali). </li><li> Rimuovere la parte superiore e gli strati protettivi peggiori di plastica (se necessario) e usare pinzette per posizionare i PDMS in plastica (non COLTURA CELLULARE trattati) piastra Petri. </li><li> Lavare le PDMS con etanolo al 70% per 5 minuti su un agitatore a 30 oscillazioni / min. </li><li> Asciugare la superficie scorre aria su di esso. </li><li> Illuminare con profondo UV (λ = 180 nm) per 5 minuti a una distanza dalle lampade UV di circa 5 cm (vedi scheda Materiali per riferimento lampada; parametri variano per lampade diverse). </li><li> Preparare 200 ml di soluzione di EDC / NHS per ogni pezzo PDMS (deve essere preparata poco prima dell&#39;uso perché la reattività della soluzione decade in pochi hr). Per 1 ml di 0,05 M MES + 0,5 tampone M NaCl a pH 6,0, aggiungere 11,5 mg di Sulfo-SSN e 19,2 mg di EDC. </li><li> Trasferire ilPDMS fogli dal capsula di Petri al coperchio della scatola di Petri, che non è stata illuminata. Questo farà sì che i dintorni di PDMS sono molto idrofobiche e facilitare il passaggio successivo. </li><li> Aggiungere la soluzione di EDC / NHS e incubare per 15 min a temperatura ambiente. </li><li> Sciacquare EDC / NHS con acqua. </li><li> Aggiungere la soluzione PLL-g-PEG (0,5 mg / ml in HEPES 10 mM pH 8,6) e incubare dal 3 ore durante la notte a temperatura ambiente. </li><li> Sciacquare il PLL-g-PEG con acqua. PDMS passivato (funzionalizzati con PLL-g-PEG) possono essere conservati per diversi giorni a 4 ° C. </li></ol> 2. Patterning del PDMS <ol><li> Prendete un foglio PDMS e posizionarlo su una fotomaschera quarzo sintetico recante la microfeatures per patterning (vedi Figura 1). Posizionare il lato PDMS recante il PLL-g-PEG di fronte al lato di cromo del fotomaschera. </li><li> Illuminare per 7 min attraverso la fotomaschera ad una distanza dalle lampade UV di circa 5 cm.</li><li> Aggiungere acqua sulla maschera + PDMS e sbucciare le PDMS lentamente la maschera. </li><li> Incubare con soluzione fibronectina a 50 mg / ml in tampone HEPES a pH 8,6 per 1 ora a temperatura ambiente. E &#39;possibile utilizzare altri proteine ​​ECM, ma questi non sono stati testati con questo protocollo. </li><li> Risciacquare con PBS. </li></ol> 3. Montaggio del dispositivo <ol><li> Montare i PDMS precedenza passivate sul dispositivo di stretching (vedi la discussione per la risoluzione dei problemi). <ol><li> Attaccare un lato delle PDMS alla parte fissa della barella. </li><li> Fissare l&#39;altro lato per la parte mobile della barella senza bloccaggio troppo del foglio PDMS. </li></ol></li><li> Tagliare un rettangolo di PDMS (22 mm x 19 mm) in una spessa PDMS stab e tagliare un altro rettangolo interno in modo da avere una piscina (o frame) che manterrà le cellule e supporti (vedere Figura 2). </li><li> Aggiungere grasso al silicone sotto questo PDMS piscina e posizionarlo sulla parte superiore del foglio PDMS per creare un medium mantenendo piscina. Il grasso permetterà lo scorrimento della piscina sopra il foglio PDMS nella filatura. </li></ol> 4. Patterning celle <ol><li> Staccare le cellule da una confluenza pallone di coltura 50% con Versene. </li><li> Contare le cellule e risospendere alla concentrazione di 200.000 cellule / ml. </li><li> Aggiungere 1 ml di sospensione cellulare in piscina (vedi la discussione per ulteriori dettagli). </li><li> Lasciate che le cellule si legano ai modelli per 10-30 min (a seconda del tipo di cellula, RPE-1 le cellule avranno 10 min e cellule HeLa 20 min). </li><li> Lavare delicatamente le cellule galleggianti con medio equilibrato (equilibrare medio in incubatrice). </li><li> Lasciate che le cellule sparse per qualche ora sui modelli (RPE-1 avrà bisogno di almeno 2 ore; cellule HeLa avranno bisogno di 3 ore). </li><li> Aggiungere un coprioggetto sulla parte superiore della piscina per evitare l&#39;evaporazione e medie perdite nel caso in cui PDMS pause. </li><li> Mettere il dispositivo su un microscopio invertito e iniziare imaging. Evitare l&#39;uso di immersione in olio objectives in quanto non funziona a causa di problemi di messa a fuoco. </li></ol> 5. Allungamento <ol><li> Ruotare la vite micrometrica correggendo la posizione di fase del x-, y-e z-asse (principalmente x). La posizione di fase deve essere corretta per contrastare l&#39;allargamento delle PDMS e la perdita di concentrazione. (Vedere &quot;Durante il tratto&quot; paragrafo nella discussione). </li></ol>

<ol><li>Vogel, V., Sheetz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local+force+and+geometry+sensing+regulate+cell+functions%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Local force and geometry sensing regulate cell functions.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 7, 265-275 (2006).</li>
<li>Terenna, C. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physical+mechanisms+redirecting+cell+polarity+and+cell+shape+in+fission+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Physical mechanisms redirecting cell polarity and cell shape in fission yeast.</a> Curr. Biol. 18 (22), 1748-1753 (2008).</li>
<li>Guillot, C., Lecuit, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanics+of+epithelial+tissue+homeostasis+and+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Mechanics of epithelial tissue homeostasis and morphogenesis.</a> Science. 340 (6137), 1185-1189 (2013).</li>
<li>Bosveld, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+control+of+morphogenesis+by+Fat%2FDachsous%2FFour-jointed+planar+cell+polarity+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Mechanical control of morphogenesis by Fat/Dachsous/Four-jointed planar cell polarity pathway.</a> Science. 336 (6082), 724-727 (2012).</li>
<li>Farhadifar, R., Roper, J. C., Aigouy, B., Eaton, S., Julicher, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+cell+mechanics%2C+cell-cell+interactions%2C+and+proliferation+on+epithelial+packing%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">The influence of cell mechanics, cell-cell interactions, and proliferation on epithelial packing.</a> Curr. Biol. 17, 2095-2104 (2007).</li>
<li>Rauzi, M., Verant, P., Lecuit, T., Lenne, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nature+and+anisotropy+of+cortical+forces+orienting+Drosophila+tissue+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Nature and anisotropy of cortical forces orienting Drosophila tissue morphogenesis.</a> Nat. Cell Biol. 10, 1401-1410 (2008).</li>
<li>Mitrossilis, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+single-cell+response+to+stiffness%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Real-time single-cell response to stiffness.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107 (38), 16518-16523 (2010).</li>
<li>Irimia, D., Charras, G., Agrawal, N., Mitchison, T., Toner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polar+stimulation+and+constrained+cell+migration+in+microfluidic+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Polar stimulation and constrained cell migration in microfluidic channels.</a> Lab Chip. 12, 1783-1790 (2007).</li>
<li>Fink, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((External+forces+control+mitotic+spindle+positioning%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">External forces control mitotic spindle positioning.</a> Nat. Cell. Biol. 13 (7), 771-778 (2011).</li>
<li>Azioune, A., Storch, M., Bornens, M., Théry, M., Piel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+and+rapid+process+for+single+cell+micro-patterning%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Simple and rapid process for single cell micro-patterning.</a> Lab Chip. 9 (11), 1640-1642 (2009).</li>
<li>Azioune, A., Carpi, N., Tseng, Q., Théry, M., Piel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+micropatterns%3A+A+direct+printing+protocol+using+deep+Uvs%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Protein micropatterns: A direct printing protocol using deep Uvs.</a> Methods Cell Biol. 97, 133-146 (2010).</li>
<li>Azioune, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Robust+method+for+high-throughput+surface+patterning+of+deformable+substrates%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Robust method for high-throughput surface patterning of deformable substrates.</a> Langmuir. 27 (12), 7349-7352 (2011).</li>
<li>Carpi, N., Piel, M., Azioun, A., Cuvelier, D., Fink, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropatterning+on+silicon+elastomer+%28PDMS%29+with+deep+UVs%5BTitle%5D)+AND+%22Protoc.+Exch%22%5BJournal%5D)">Micropatterning on silicon elastomer (PDMS) with deep UVs.</a> Protoc. Exch. , (2011).</li>
<li>Sinha, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cells+respond+to+mechanical+stress+by+rapid+disassembly+of+caveolae%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cells respond to mechanical stress by rapid disassembly of caveolae.</a> Cell. 144 (3), 402-413 (2011).</li>
</ol>

Gli autori dichiarano interessi finanziari concorrenti.

Sebbene questa tecnica è stata utilizzata numerose volte e viene accuratamente testato, ci sono diversi passaggi critici che possono portare ad un esperimento fallito. Circa il PDMS: Per questo lavoro, GelPak, un foglio sottile PDMS disponibile in commercio, è stato utilizzato. In alternativa, i fogli di PDMS possono essere lanciate direttamente dalla miscela PDMS. Si consiglia di utilizzare GelPak perché è più riproducibile, ed è meno probabilità di rottura rispett...

Le cellule che compongono un tessuto in organismi superiori sono soggetti a tensioni meccaniche e forze traenti o provenienti dall&#39;ambiente esterno o da cellule circostanti 1,2. Cellule devono adattarsi e resistere a queste forze al fine di mantenere l&#39;integrità del tessuto. Tali forze sono importanti anche per i tessuti morfogenesi durante lo sviluppo 3,4. Applicando forze meccaniche su cellule coltivate è un modo di imitare ciò che potrebbe accadere in un tessuto, ma con un controllo quantitativo e indipendente di forma delle cellule e deformazione cella 5,6. Per questo, possono essere utilizzate diverse tecniche. Si può premere sulle cellule (cellula intera o parte di essa), ad esempio utilizzando AFM o derivati ​​7,8 o allungare il substrato le cellule crescono su. Il metodo descritto in questo documento dimostra come allungare un substrato piano placcato con cellule. Questa tecnica è stato originariamente sviluppato per valutare il ruolo delle forze esercitate su mcellule di mammifero itotic 9. Le cellule mitotiche rimanere connessi al substrato attraverso le fibre di retrazione e stretching membrana esercitata una forza su quelle fibre, che a loro volta hanno provocato la rotazione del fuso mitotico. L&#39;interesse di combinare microdisegnature adesivi e stretching è quello di raggiungere un controllo indipendente delle forze e forma delle singole celle. E &#39;per esempio possibile allungare una cella ovoidale in una forma rotonda perfettamente isotropa, mentre è applicata tratto monoassiale. Se le cellule non sono intrecciata su microdisegnature, stiramento uniassiale risultati in allungamento cellulare, con la maggior parte delle cellule avente un asse longitudinale allineato con l&#39;asse tratto. È poi difficile separare l&#39;effetto dell&#39;allineamento asse lungo e l&#39;effetto del tratto applicata alle cellule. Il dispositivo è adatto per qualsiasi imaging cellulare dal vivo, tra cui la microscopia a fluorescenza lasso di tempo, e la droga può essere aggiunto durante l&#39;esperimento. Il metodo UV micropatterning profondo 10è stato descritto in dettaglio nel Azioune et al. 11 patterning su PDMS è stata descritta in Azioune et al. 12 La presente allungamento protocollo è una versione video di Carpi et al. 13

<table><tbody><tr><td>GelPak</td><td>GelPak</td><td>PF-60-X4</td><td>Sono disponibili diversi spessori/viscosità. Un'alternativa potrebbe essere quella di lanciare il tuo PDMS&nbsp; tu stesso.</td></tr><tr><td>Grasso siliconico</td><td>GE Bayer Siliconi</td><td>Baysilone-Paste</td><td>Questo è biocompatibile</td></tr><tr><td>Dispositivo di stiramento</td><td>GREM m&eacute; barella canique</td><td>2011</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>EDC (N-(3-Dimetilamminopropil)-N&prime;-etilcarbodiimmide cloridrato)</td><td>Sigma</td><td>3450</td><td>Stabile 6 mesi a -20 &deg; C</td></tr><tr><td>NHS (N-Idrossisulfosuccinimide sale sodico)</td><td>Sigma</td><td>56485</td><td>Proteggere dall'umidità</td></tr><tr><td>Pll-g-peg (PLL(20)-g[3.5]-PEG(2) 20 mg)</td><td>SurfaceSolutions (Zurigo)</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Fotomaschera al quarzo sintetico</td><td>Toppan</td><td></td><td>Prendi la fotomaschera binaria standard in Quarzo</td></tr><tr><td>Fibronectina dal plasma bovino</td><td>Sigma</td><td>F1141</td><td>&nbsp;</td></tr></tbody></table>

stretching celle micropatterned su una membrana pdms

Stretching Micropatterned Cells on a PDMS Membrane

Forze meccaniche esercitate sulle cellule e / o tessuti svolgono un ruolo importante in numerosi processi. Abbiamo sviluppato un dispositivo di allungare le cellule placcato su un polidimetilsilossano (PDMS) membrana, compatibile con le immagini. Questa tecnica è riproducibile e versatile. La membrana PDMS può essere micropatterned al fine di limitare cellule o tessuti di una geometria specifica. Il primo passo è stampare microdisegnature sulla membrana PDMS con una tecnica UV profondo. La membrana PDMS è poi montato su un telaio meccanico. Una camera è vincolata in cima alla membrana con grasso biocompatibile per consentire scivolare durante l&#39;allungamento. Le cellule vengono seminate e ha permesso di diffondere per diverse ore sui microdisegnature. Il campione può essere allungato e non deformato più volte con l&#39;uso di una vite micrometrica. Ci vuole meno di un minuto per applicare il tratto per tutta la sua estensione (circa il 30%). La tecnica qui presentata non include un dispositivo motorizzato, che è necessario per unapplying cicli tratto ripetuti rapidamente e / o computer controllato stretching, ma questo può essere attuato. Stretching di cellule o di tessuto può essere di interesse per le questioni relative alle forze cellulari, risposta cellulare allo stress meccanico o morfogenesi dei tessuti. Questa presentazione video mostra come evitare i problemi tipici che potrebbero sorgere quando si fa questo tipo di apparentemente semplice esperimento.

<html> La tecnica presentata in questo protocollo video consentiva l&#39;applicazione di forze sulle fibre di retrazione di cellule di mammifero mitotiche. Infatti, durante la divisione cellulare, allo stadio mitotico, cellule di mammifero ritraggono a prendere la forma di una sfera e di lasciarsi alle spalle i cavi di actina sottili circondate da una membrana che sono attaccati al substrato. Questi cavi (fibre di retrazione), sono la memoria della geometria della cella prima di andare in divisione. Fare microdisegnature...

Questo manoscritto presenta una tecnica per applicare o liberare forze su cellule o tessuti aderenti usando allungamento unidirezionale.

Stretching celle micropatterned su una membrana PDMS

Mechanical forces exerted on cells and/or tissues  play a major role in numerous processes. We have developed a device to stretch  cells plated on a ...

L'obiettivo generale di questa procedura è allungare le cellule su un microdisegno realizzato su una membrana elastica di poli dimetil silossano o PDMS. Questo viene ottenuto attraverso l'azione di un foglio di PDMS, seguita dall'applicazione di un microdisegno sul PDMS. Il foglio di PDMS con microdisegno viene quindi montato sul dispositivo di stiramento e una camera per il mantenimento del mezzo viene posizionata sopra.Successivamente, le cellule vengono seminate sulla superficie del foglio in PDMS con microstrutturazione e lasciate aderire al pattern prima di un lavaggio per rimuovere le cellule non attaccate. L'ultimo passaggio consiste nell'applicare un allungamento al PDMS contenente le cellule, per stirarle. Infine, la microscopia video viene utilizzata per dimostrare che l'applicazione di forze sulle fibre di retrazione delle cellule mitotiche di mammifero durante lo stiramento cellulare provoca una deformazione della cellula.Questo metodo può aiutare a rispondere a domande fondamentali nel campo della biomeccanica, come ad esempio quali sono gli effetti delle forze esterne sui processi cellulari come la divisione? Abbiamo avuto l'idea iniziale di questo metodo quando abbiamo voluto applicare delle forze su una cellula in divisione per iniziare a tagliare un pezzo di PDMS di circa 35 per 20 millimetri da un foglio preesistente. In questo caso, viene utilizzato un foglio sottile di PDMS disponibile in commercio perché è più riproducibile e ha minori probabilità di rompersi rispetto al PDMS prodotto in laboratorio.Rimuovere gli strati protettivi di plastica superiore e inferiore e utilizzare pinzette per posizionare il PDMS in una piastra di Petri di plastica. Quindi lavare il PDMS con etanolo al 70% per cinque minuti su un agitatore rotante a 30 oscillazioni al minuto. Dopo il lavaggio, asciugare la superficie facendo passare dell'aria sopra di essa.Successivamente, illuminare il PDMS con luce ultravioletta profonda per cinque minuti a una distanza di circa cinque centimetri dalle lampade a ultravioletti. Nel frattempo, preparare una soluzione E-D-C-N-H-S come descritto nel protocollo testuale. La soluzione deve essere preparata immediatamente prima dell'uso poiché la reattività della soluzione decade nell'arco di poche ore.Trasferire i fogli di PDMS dalla piastra di Petri al coperchio della piastra di Petri, che non è stato illuminato. Questo garantirà che l'ambiente circostante il PDMS sia altamente idrofobico e faciliterà il passaggio successivo.Pipettare la soluzione E-D-C-N-H-S sopra il PDMS e incubare per 15 minuti a temperatura ambiente. Al termine dell'incubazione, rimuovere l'eccesso di E-D-C-N-H-S con acqua.Successivamente, aggiungere la soluzione di PEG grefato con PLL e incubare da tre ore a tutta la notte a temperatura ambiente. Dopo l'incubazione, risciacquare via con acqua l'eccesso di PEG grefato con PLL dal PDMS. Il PDMS è ora passivato o funzionalizzato con PEG grefato con PLL e può essere conservato per diversi giorni a quattro gradi Celsius. Per creare il pattern sul PDMS, posizionare il foglio di PDMS su una maschera fotolitografica in quarzo sintetico recante le microstrutture per il patterning.Posizionare il lato in PDMS con il PEG grafted con PLL affacciato sul lato cromato della fotomaschera. Quindi illuminare per sette minuti attraverso la fotomaschera a una distanza di circa cinque centimetri dalle lampade a raggi ultravioletti. Dopo l'illuminazione.Aggiungere acqua sulla maschera e sul PDMS, quindi staccare lentamente il PDMS dalla maschera. Montare il PDMS precedentemente passivato sul dispositivo di stiramento. Fissare un lato del PDMS alla parte fissa dello stiratore. Bloccare l'altro lato alla parte mobile dello stiratore senza stringere eccessivamente il foglio di PDMS.Se il PDMS viene serrato eccessivamente, diventa più corto e ciò può portare alla rottura, poiché la tensione sarà maggiore per la stessa distanza di allungamento. Assicurarsi che le viti siano ben strette, altrimenti il foglio di PDMS scivolerà non appena inizia l'allungamento o successivamente durante l'esperimento. Successivamente, incubare il PDMS con la soluzione di fibronectina per un'ora.A temperatura ambiente, è possibile utilizzare altre proteine della matrice extracellulare, ma queste non sono state testate con questo protocollo. Come passaggio finale, sciacquare il PDMS con soluzione salina tamponata al fosfato. Successivamente, tagliare un rettangolo di PDMS da un blocco spesso di PDMS.Quindi ritagliare un altro rettangolo all'interno. Per ottenere una vaschetta in grado di trattenere le cellule e il mezzo, aggiungere grasso siliconico sotto questo ritaglio rettangolare in PDMS e posizionarlo sulla superficie del foglio di PDMS per creare una vaschetta contenitiva per il mezzo. Il grasso permetterà lo scorrimento della vaschetta sul foglio di PDMS durante lo stiramento, consentendo il patterning delle cellule.Per prima cosa, staccare le cellule da una fiasca di coltura al 50% di confluenza. Una volta che le cellule sono in sospensione, pipettarle più volte con una punta da 200 microlitri per rompere gli aggregati, in modo da garantire che le singole cellule si leghino al pattern. Successivamente, aggiungere un millilitro della sospensione cellulare nella vasca.Lasciare che le cellule si attacchino ai modelli per 10-30 minuti, a seconda del tipo cellulare, in un incubatore a 37 gradi Celsius. Una volta che le cellule si sono fissate ai modelli, rimuovere delicatamente le cellule non aderenti con del mezzo equilibrato.Rimuovere il mezzo con una pipetta aspirante aggiungendo contemporaneamente del mezzo fresco. È fondamentale mantenere un flusso sufficiente per lavare via le cellule non aderenti, garantendo al contempo che le cellule rimangano immerse nel mezzo. Successivamente, posizionare un vetrino coprioggetto sulla superficie del pozzetto per evitare l'evaporazione e la fuoriuscita del mezzo nel caso in cui il PDMS si rompa, e lasciare che le cellule si espandano per alcune ore sui modelli.Quindi posizionare il dispositivo su un microscopio invertito e iniziare l'acquisizione delle immagini. Evitare l'uso di obiettivi a immersione in olio poiché non funzioneranno a causa di problemi di messa a fuoco. Per stirare le cellule del micro-pattern, ruotare la vite micrometrica correggendo contemporaneamente la posizione della piastra lungo gli assi x, y e Z.La posizione dello stadio deve essere corretta per contrastare l'allargamento del PDMS e la perdita di messa a fuoco. La tecnica presentata in questo protocollo video ha permesso l'applicazione di forze sulle fibre di retrazione di cellule mitotiche di mammifero allungando il substrato all'inizio della metafase. Alcune di queste fibre di retrazione sono state tirate lontano dal corpo cellulare, generando una forza meccanica applicata sulla corteccia delle cellule mitotiche prima dell'allungamento; per ottenere questo risultato, la cellula viene seminata su un modello ovale.La definizione dei modelli avviene stendendo il PDMS durante l'impressione di modelli rotondi attraverso la maschera fotolitografica. Dopo lo stiramento, il substrato viene allungato in modo che il modello diventi un cerchio. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come sia possibile seminare cellule su modelli macroscopici ed esercitare successivamente forze di stiramento sul substrato.

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