Name: Profiling di microRNA regolati dagli estrogeni in cellule di carcinoma mammario (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-21T14:30:00.000+00:00
Duration: 16 min 24 s
Description: Scopri il profilo dei microRNA regolati dagli estrogeni nelle cellule di carcinoma mammario. Questo metodo utilizza microarray microfluidici e QPCR per analizzare l'espressione genica e comprendere i meccanismi del cancro al seno.

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Siamo grati al Dr. Xiaolian Gao, Università di Houston, per fornire consulenza alla piattaforma microarray LC Scienze miRNA, il dottor Karin Edvardsson, Karolinska Institute, in Svezia, e il dottor Eylem Aydogdu, Università di Houston, per condividere la loro esperienza miRNA . Ricerca riportata in questa pubblicazione è stato sostenuto dal National Cancer Institute dei National Institutes of Health nel quadro Premio Numero R01CA172437. Il contenuto è di esclusiva responsabilità degli autori e non rappresentano necessariamente il punto di vista ufficiale del National Institutes of Health. Questo lavoro è stato supportato anche da sovvenzioni dal Texas Emerging Technology Fund, ai sensi dell&#39;accordo di no. 300-9-1958.

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Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Determinazione del meccanismo di regolazione ormonale del miRNA in cellule di cancro al seno in grado di fornire una piattaforma per la comprensione di questa malattia e può fornire un potenziale trattamento per il cancro al seno. Coltura di tali cellule per fornire la condizione ottimale per l&#39;azione ormonale è molto importante. Qui, un protocollo che garantisce che l&#39;ormone di interesse (estrogeni) è stata esclusa prima del trattamento e che la dose ottimale di E2 è stato utilizzato per un tempo adeguato durante il trattamento è stato descritto. Altri effetti dei fattori ormonali e di crescita sono stati mantenuti al minimo riducendo gradualmente i livelli sierici e utilizzando DCC-FBS, che è FBS che sono stati privati ​​della maggior parte del suo ormone, citochine e fattori di crescita. Fenolo mezzi privi di rosso è stato ulteriormente utilizzato per ridurre altri effetti non ormonali, dato che il fenolo rosso è stato segnalato per avere attività estrogenica e influenzare alcune funzioni in linee cellulari 20,21. Il tempo di esposizione delle cellule alla ormone è di grande importanza. Per la regolazione degli estrogeni associati dei geni, è stato precedentemente dimostrato che 24-hrexposure produrre risposta significativa di geni bersaglio diretti in cellule di carcinoma mammario 1,18. Poiché miRNA sono trascritti dalla RNA polimerasi II, come mRNA, è ipotizzabile che questo è un punto di tempo idoneo a rilevare regolamentazione diretta anche dei miRNA. E &#39;ancora da definire se e come questi miRNA influenzano l&#39;espressione di questi obiettivi ER noti in cellule di carcinoma mammario. miRNA profili di espressione può essere difficile a causa della piccola dimensione relativa del miRNA, il fatto che la sequenza matura miRNA possono essere trovate anche nella pri-miRNA e pre-miRNA, ea causa della eterogeneità nel loro contenuto GC 22. Diverse tecniche di profilazione e chimiche sono state impiegate per superare questa difficoltà. Tra questi sono diversi approcci di microarray e analisi qPCR (Figura 2). Anche se microarray è ampiamente accettato per intero anale genomalisi, può fornire falsi negativi e sono presenti differenze tra le piattaforme disponibili, che vanno dalla chimica alla tecnologia di stampa 23. Anche il processo di normalizzazione rappresenta una sfida quando si analizzano i relativamente pochi geni miRNA, che si contano in migliaia, rispetto alle decine di migliaia di trascritti di mRNA. qPCR, d&#39;altra parte, è più sensibile, ed è meglio applicato quando meno geni sono da considerare. Tuttavia, quando eseguito in piastre da 384 pozzetti grandi, con solo un replicato tecnica per piastra, piastre multiple devono essere analizzati per ciascun campione che rende l&#39;analisi costosa. Inoltre, nelle nostre mani, molti più risultati falsi negativi sono stati ottenuti usando l&#39;analisi DLP-LDA rispetto al microarray. Dato che la sequenza matura miRNA è presente nel pri-miRNA e le sequenze pre-miRNA, è di interesse per distinguere tra queste trascrizioni utilizzando tecniche di PCR 24. Sonde DLP sono anche disponibili per il pre-miRNA, e spprimer ecific possono anche essere progettati per escludere diverso maturi o precursore varianti usando Cyanine colorante tecnologia qPCR. qPCR è uno standard d&#39;oro per la convalida di espressione differenziale di profilazione risultati. L&#39;efficacia del qPCR, tuttavia, dipende da vari parametri tra cui l&#39;estrazione di RNA, integrità dell&#39;RNA (qualità), sintesi di cDNA, progettazione di primer, metodo di rilevamento (chimica), e il gene di riferimento per la normalizzazione dei dati 1,22,25. Le opzioni per la progettazione di primer per l&#39;analisi dei miRNA è molto limitata, dal momento che a breve miRNA lunghezza della sequenza non dà spazio a molto il design fondo alternativo, e solo un innesco possono essere nutrito in questa breve sequenza. Di qui, la necessità di manipolazioni alternativi come illustrato nella Figura 2. Replicati tecnici sono importanti per convalidare robustezza del metodo di amplificazione e il procedimento usato. Repliche biologiche sono necessari per una rappresentazione della variatio biologico generalen, compresa la risposta variabile al ligando del trattamento, e per dimostrare che gli effetti osservati in una cella sono riproducibili. Sulla base della nostra esperienza, possono verificarsi variazioni di espressione di miRNA tra colture cellulari. Solitamente queste differenze sono meno di 1,3 volte, e la media dei valori e corrispondenti SD identifica la variazione naturale e tecnologico. Questa variazione potrebbe derivare da vari fattori tra cui, densità cellulare e il fatto che le funzioni cellulari possono cambiare da passaggio per passaggio. Per identificare statisticamente significative espressioni derivanti dal trattamento ligando, un significato largamente accettata è quando il p-value è inferiore a 0.05. Qui, sono state utilizzate t-test di uno studente sulle replicati biologici e tecnici che utilizzano il due campioni parametri di varianza disuguale distribuzione a due code e. Esistono altri parametri t-test, e la scelta dipende dal setup sperimentale 26. Un protocollo dettagliato per valutare regolamenti ormonali maturo miRNA in cellule di cancro al seno è stato fornito. Importanti tecnologie e la chimica di profiling e la convalida di questi miRNA espressioni sono stati chiaramente spiegati. La tecnologia scelta per gli studi di miRNA in cellule di cancro al seno dipende in ultima analisi su ciò che esattamente è indagato.

L&#39;estrogeno è un ormone che è importante durante lo sviluppo della ghiandola mammaria. Gli estrogeni svolge anche un ruolo importante per lo sviluppo, la manutenzione, il rischio, e il trattamento del cancro al seno 1. Estrogeni esercita la sua funzione legandosi a ER, che sono fattori di trascrizione e regolano specifici geni bersaglio. Dei due varianti del recettore, ERa è essenziale per la proliferazione estrogeno-dipendente delle cellule di cancro al seno. La maggior parte dei tumori al seno sono ERa-positivi e dipende estrogeni per la crescita. Ciò ha reso segnalazione estrogeni e ERa un obiettivo per il trattamento di ormone-recettore cancro al seno positivo. Comprendere il meccanismo alla base della ERa è importante per migliorare i risultati del trattamento, superare la resistenza al trattamento, e capire come si sviluppa il cancro al seno. microRNA svolgono un ruolo critico in funzioni cellulari a causa del loro forte impatto nella regolazione genica post-trascrizionale. miRNA sono 19-24 nucleotidi a breve, a singolo filamento, RNA non codificanti che vengono prima trascritti dalla RNA polimerasi II in primarie trascrizioni miRNA (pri-miRNA). Essi sono trattati nel nucleo da Drosha in precursori-miRNA breve tornante (pre-miRNA) e poi elaborati dal Dicer e separati in singoli filamenti per formare miRNA maturi nel citoplasma. I miRNA maturi singolo filamento vengono trasferiti alle proteine ​​Argonaute per formare complessi RISC. Poi, i miRNA possono ibridare alle regioni 3 &#39;non tradotte (3&#39;-UTR) di un mRNA bersaglio, portando a regolazione post-trascrizionale bloccando traduzione o degradare l&#39;mRNA bersaglio 2. A causa del ruolo importante che sia gli estrogeni e miRNA svolgono nella progressione del tumore, individuando miRNA associati alla segnalazione normale o interrotto estrogeni è importante al fine di migliorare la nostra comprensione dello sviluppo e migliorare il trattamento del cancro al seno. Mentre vi è una buona comprensione di come ERa regola geni codificanti proteine, l&#39;estensionee dettagli di RNA non codificanti normativa deve ancora essere approfonditi. Gli studi iniziali volti a chiarire regolamentazione ERa di miRNA in linee cellulari di cancro al seno hanno dato risultati contrastanti, anche quando la stessa linea cellulare è stata analizzata 3-6. Questo può essere il risultato di trattamenti diversi, variazioni biologiche, l&#39;uso di tecniche diverse, e il fatto che le piccole dimensioni dei miRNA li rendono difficili da analizzare. Qui, un protocollo che controlla le variazioni e manufatti metodo è descritto. Per identificare quale miRNA sono regolati dagli estrogeni, profilatura di un modello di cancro al seno ben definito di attività ERa è un primo passo. Diverse linee cellulari sono stati generati da cancro al seno tumori umani ERa-positivo, che dipendono dagli estrogeni simile alla maggior parte dei tumori al seno clinici. Le proprietà molecolari di due di queste linee cellulari, T47D e MCF7, compresa la formulazione di ERa e il suo obiettivo finale,il recettore dell&#39;ormone progesterone (PR), una mancanza di espressione di recettori di membrana HER2, insieme con l&#39;espressione di geni di differenziazione estrogeno-sensibili e luminali-epiteliale, li rendono adatti come modelli per il sottotipo luminale dei tumori al seno 7-10. 17β-estradiolo (E2) è la forma dominante di estrogeni, e le concentrazioni e tempo-punti per l&#39;attivazione trascrizionale ottimale di ERa sono stati caratterizzati in studi multipli. In questo protocollo di trattamento 10 nM E2 per 24 ore viene utilizzato e T47D e MCF7 come modelli per l&#39;attività ERa in cellule di cancro al seno 1. Inoltre, regolamenti miRNA dipendenti dal tempo possono essere specificamente analizzati in un intervallo di tempo di esempio 1-72 ore. In secondo luogo, analizzando miRNA ha sfide separati, in parte a causa delle loro dimensioni brevi. miRNA non sono ben conservati nella preparazione di RNA totale quando vengono eseguite regolarmente Guanidinium thiocyanate-phenol/chloroform/isopropanol precipitazioni RNA, o quando stsono utilizzati purificazioni colonna Andard. Speciali precauzioni devono essere prese per mantenere o arricchire la frazione più piccola di RNA. Aumentando il volume di isopropanolo, abbassando la temperatura prima centrifugazione (-80 ° C), e omettendo il lavaggio in etanolo al 70%, il mantenimento di miRNA può essere migliorata durante la precipitazione. Oppure, possono essere usate colonne e tamponi specifici per una elevata qualità e robusta preparazione di RNA totale-miRNA contenente. Anche l&#39;analisi stessa, loro brevi dimensioni creano sfide. Per lo screening miRNA genome-wide, ci sono tre miRNA comuni tecniche da scegliere profilazione: microarrays, qPCR, e sequenziamento di prossima generazione. Ogni tecnica può essere eseguita utilizzando più piattaforme diverse, e sono necessarie diverse preparazioni del campione, ognuno con differenti rischi di introdurre artefatti. In miRNA microarray, una diapositiva è macchiato o sintetizzato con migliaia di oligonucleotidi. Questi oligonucleotidi sono utilizzati come sonde, e ciascuno della sondas è progettato per ibridare ad una particolare sequenza miRNA. La preparazione del campione per microarray, interpretato in questo studio, primo arricchisce di miRNA e poi introduce l&#39;etichettatura Cy5 e Cy3 sui miRNA. Microarray dà la possibilità di osservare i livelli di espressione relativi di un gran numero di geni contemporaneamente, è veloce e adatto per lo screening di un gran numero di campioni, ma può analizzare solo le sequenze presenti sul microarray e verrà non es rilevare variazioni di sconosciuto o mutato miRNA. Analisi Microarray interpretato in questo protocollo richiede anche relativamente grandi quantità, circa 5 mcg, di RNA totale per campione per l&#39;analisi. Bassa densità qPCR miRNA profiling richiede meno materiale (700 ng / campione e replicare), e consente l&#39;individuazione e la quantificazione dei miRNA. Livelli di trascrizione possono essere determinati, e la quantità può essere un valore assoluto o relativo importo. analisi qPCR richiede prima conversione di miRNA in cDNA, qui usando un loopPrimer per ogni specifico miRNA assicurando che l&#39;analisi di un solo maturare miRNA. Questo genera un modello più che può essere amplificato utilizzando un primer forward specifici miRNA e un primer reverse universale complementare alla sequenza di loop, e può porto l&#39;inclusione di una sonda a doppio etichetta per specificità. qPCR può essere utilizzato in un formato a bassa densità dove centinaia di miRNA possono essere rilevati in parallelo utilizzando uno o più piastre a 384 pozzetti con singole coppie di primer in ciascun pozzetto 11. Sequenziamento di prossima generazione, d&#39;altra parte, è l&#39;unica di queste tecniche che consente la rivelazione di romanzo, miRNA mutati o modificati, come tutti gli RNA in un campione possono essere sequenziati 11. Questa tecnica, tuttavia, richiede più passaggi per arricchire piccoli RNA e produrre una piccola libreria di RNA utilizzando diversi passaggi di legature linker e purificazioni con conseguenti rischi migliorate di modulare i livelli di espressione relativi tra i campioni. Si richiede inoltre bioinformati significativianalisi cs. Date le varie tecniche di profiling miRNA, la tecnica più appropriata dipende dalle applicazioni. Microarray sono più adatte quando il materiale è relativamente abbondante e l&#39;interesse è quello di definire espressione differenziale dei miRNA già noti. Bassa densità qPCR array sono più adatto per una quantità limitata di campione è disponibile è richiesta una elevata sensibilità di miRNA low-espressi. Sequencing è più adatto quando è richiesta l&#39;analisi dei miRNA sconosciuti, mutati o diverse isoforme di miRNA. Nello studio dei miRNA regolati dagli estrogeni nel tumore della mammella, vengono utilizzate due linee cellulari modello, T47D e MCF7, dove sono facilmente disponibili grandi quantità di RNA. Ogni linea cellulare è stata analizzata in colture cellulari replicate utilizzando diversi passaggi, ognuno in replicati tecniche di trattamento. Questo permette robusto individuazione di riproducibile, miRNA ERa regolamentate. Relativi livelli di espressione di miRNA sono stati confrontati utilizzando sia miRNA microarray eSonde doppie etichettato - array a bassa densità (DLP-LDA) e convalidati i risultati con specifiche qPCR utilizzando sia colorante Cyanine e chimiche DLP. regolamenti miRNA sono stati poi analizzati ulteriormente nella serie temporali per definire la loro regolazione esatta nel tempo, che può aiutare a differenziare le variazioni casuali o circadiani da regolamenti estrogeno-indotta, e indicano effetti primari di effetti secondari. Confronti Bioinformatical con studi cromatina vincolante di ERa possono ulteriori aiuti nella differenziazione di primaria rispetto agli effetti secondari. Il test ha comportato una valutazione affidabile della normativa miRNA dove potrebbe essere stabilito che dopo 24 ore di trattamento E2 trascritti codificanti proteine ​​sono state prontamente regolati ma miRNA maturi non sono stati influenzati 1. Tuttavia, è possibile che miRNAs sono regolate a successivi punti temporali, come dimostrato nell&#39;analisi di serie temporali di miRNA selezionati 1. I dettagli devono essere ulteriormente esplorato e il protocollo presentato qui offre un robust modo per studiare regolazione ormonale dei miRNA maturi in linee cellulari di cancro al seno.

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Life Technologies</td><td>11885092</td><td></td></tr><tr><td>F12</td><td>Life Technologies</td><td>11765054</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F0926-500ML</td><td></td></tr><tr><td>Penicillina Streptomicina</td><td>Life Technologies</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>senza rosso fenolo DMEM&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>11054020</td><td></td></tr><tr><td>Acqua ultrapura</td><td>EMD Millipore</td><td>Attrezzatura</td><td></td>specifica</tr><tr><td>DCC-FBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F6765-500ML</td><td></td></tr><tr><td>100x L-glutammina</td><td>Life Technologies</td><td>25030081</td><td></td></tr><tr><td>PBS tablet</td><td>Medicago, Accurate Chemicals</td><td>Accurate (BF092051-100), Medicago (09-9400-100)</td><td></td></tr><tr><td>17&beta;- estradiolo</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E2758</td><td></td></tr><tr><td>ICI 182.780&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I4409</td><td></td></tr><tr><td>Etanolo</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E7023-600ML</td><td></td></tr><tr><td>T47D o linee cellulari MCF7</td> American <td>Type Culture Collection (ATCC)</td><td>T47D (ATCC HTB-133) e MCF7 (ATCC HTB-22)</td><td></td></tr><tr><td>Pallone T-75</td><td>VWR International LLC</td><td>BD353136 (tappo ventilato)</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA</td><td>Life Technologies</td><td>25300062</td><td></td></tr><tr><td>Pipetta sierologica</td><td>VWR International LLC</td><td>53300. Per 5mL (53300-421)</td><td></td></tr><tr><td>Camera di conteggio delle cellule Countess</td><td>Life Technologies</td><td>C10228</td><td></td></tr><tr><td>Contatore di cellule automatizzato Countess</td><td>Life Technologies</td><td>C10227</td><td></td></tr><tr><td>Piastre da 100 mm&nbsp;</td><td>VWR International LLC</td><td>25382-166</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione di tiocianato di guanidinio (TRizol)</td><td>Life Technologies</td><td>15596026</td><td></td></tr><tr><td>Raschietto per celle in gomma&nbsp;</td><td>VWR International LLC</td><td>82050-470</td><td></td></tr><tr><td>Metodo del tiocianato-fenolo-cloroformio di guanidinio (miRNeasy Mini Kit/Trizol)</td><td>Kit Qiagen</td><td>217004</td><td></td></tr><tr><td>DNasi senza RNasi (degradazione del DNA)</td><td>Qiagen</td><td>79254</td><td></td></tr><tr><td>Acqua priva di RNasi (acqua priva di nucleasi)</td><td>Spettrofotometro termoscientifico</td><td>SH30538.02</td><td></td></tr><tr><td>Nanodrop 1000</td><td>Thermoscientific</td><td>ND-1000</td><td></td></tr><tr><td>Agilent RNA 6000 Nano Assay kit</td><td>Agilent</td><td>5067-1512</td><td></td></tr><tr><td>Agilent 2100 Bioanalizzatore</td><td>Agilent</td><td>G2938C e per software (G2946)</td><td></td></tr><tr><td>Tutti i primer (eccetto i primer TaqMan)</td><td>Tecnologie DNA integrate</td><td>Specifico per ordine per ogni gene/miRNA</td><td></td></tr><tr><td>Tampone del primo filamento, DTT, dNTP, apice III (kit di sintesi del cDNA di Apice III)&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>18080085</td><td></td></tr><tr><td>Piastra di reazione a 96 pozzetti MicroAmp Quick&nbsp</td><td>Life Technologies</td><td>4346906</td><td></td></tr><tr><td>Coperture adesive ottiche rapide</td><td>Life Technologies Life Technologies</td><td>4311971</td><td></td></tr><tr><td>2x SYBR green PCR master mix (colorante cianonina)</td><td>Life Technologies</td><td>4385612</td><td></td></tr><tr><td>7500 Fast Real-Time PCR System e software</td><td>Life Technologies</td><td>4351106</td><td></td></tr><tr><td>&mu; Tecnologia del biochip microfluidico Paraflo&nbsp;</td><td>LCSciences</td><td>MRA-1001 e AS-2001 (per l'analisi dei risultati)</td><td></td></tr><tr><td>DLP-LDA (TLDA) Megaplex Pools Assay (primer Rt/Human pool set)</td><td>Life Technologies</td><td>4400928</td><td></td></tr><tr><td>Dual Labeled Probes (TaqMan) kit miRNA RT&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>4366596</td><td></td></tr><tr><td>GeneAmp PCR System 9700 termociclatore</td><td>Life Technologies</td><td>4310899</td><td></td></tr><tr><td>sonde a doppia marcatura (TaqMan) 2x Universal PCR Master Mix-No AmpErase UNG</td><td>Life Technologies</td><td>4324018</td> 7900HT Sistema di PCR in tempo reale veloce Life Technologies 4329001 <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Software di gestione SDS e RQ</td> Life <td>Technologies Life Technologies</td><td></td><td></td>4444202</tr><tr><td>NCode miRNA Sintesi di cDNA di primo filamento e kit qRT-PCR</td><td>Tecnologie di vita</td><td>Primer RT MIRC-50</td><td></td></tr><tr><td>10x DPL (TaqMan)</td><td>Tecnologie di vita</td><td>Specifico per ogni miRNA</td><td></td></tr><tr><td>20x DPL (TaqMan) primer per saggi in tempo reale&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>Specifico per ogni miRNA</td><td></td></tr></tbody></table>

profiling di microrna regolati dagli estrogeni in cellule di carcinoma mammario

Profiling of Estrogen-regulated MicroRNAs in Breast Cancer Cells

Gli estrogeni svolge un ruolo fondamentale nello sviluppo della ghiandola mammaria e la progressione del cancro al seno. Esso media la sua funzione legandosi e attivando i recettori degli estrogeni (ER), ERa e ERp. ERa è frequentemente iperespresso nel cancro al seno e spinge la proliferazione delle cellule del cancro al seno. I requisiti essenziali funzionano come fattori di trascrizione e di regolare l&#39;espressione genica. Considerando che la regolamentazione di ERa di geni codificanti proteine ​​è ben definito, la sua regolamentazione di non codificanti microRNA (miRNA) è meno esplorati. microRNA svolgono un ruolo importante nella regolazione post-trascrizionale di geni, inibendo la loro traduzione o degradante loro mRNA. miRNA possono funzionare come oncogeni o soppressori tumorali e sono anche promettenti biomarcatori. Tra i saggi miRNA disponibili, microarray e real-time PCR quantitativa (qPCR) sono stati ampiamente utilizzati per rilevare e quantificare i livelli di miRNA. Per identificare miRNA regolati dalla segnalazione estrogeni nel cancro al seno, thEIR espressione in linee cellulari di cancro al seno ERa-positivi sono stati confrontati prima e dopo gli estrogeni attivazione utilizzando sia i microarrays μParaflo-microfluidica e doppia etichetta Sonde-bassa densità array. I risultati sono stati convalidati usando specifici saggi qPCR, applicando sia Cyanine dye-based e doppia etichetta chimica a base di sonde. Inoltre, un saggio time-point è stato usato per identificare le normative nel tempo. I vantaggi dell&#39;approccio test miRNA utilizzato in questo studio è che permette uno screening veloce di regolamenti maturo miRNA in numerosi campioni, anche con quantità di campione limitato. Il layout, comprese le condizioni specifiche per coltura cellulare e trattamento con estrogeni, repliche biologiche e tecniche, e lo screening su larga scala seguita da conferme di approfondimento utilizzando tecniche distinte, assicura un rilevamento affidabile di regolamenti miRNA, ed elimina i falsi positivi e altri manufatti. Tuttavia, miRNA mutati o sconosciute, o regolamenti a leve trascritto primario e precursorel, non sarà rilevato. Il metodo qui presentato costituisce un esame approfondito della regolamentazione miRNA estrogeno-mediata.

Una panoramica dell&#39;approccio è presentata nella Figura 1 e un confronto tra i vari campioni preparati e modifiche di acido nucleico richieste per ogni tecnica viene visualizzato in Figura 2. La condizione e l&#39;ambiente delle cellule prima del trattamento con un ormone è importante per determinare gli effetti reali dell&#39;ormone 16. Alcuni medio e siero contengono fattori di crescita che possono influenzare i risultati, così cellule sono affamate di siero per garantire che tutti gli effetti ormonali sono stati ridotti al minimo. Pertanto, quando il trattamento con E2, c&#39;è più certezza che gli effetti osservati sono E2-associati. Un fattore importante è la confluenza di cellule, che influenza contatto e comportamenti come segnale e la proliferazione cellula-cellula cellula-cellula. Le cellule sono stati autorizzati a essere 80% confluenti (Figura 3A) e ben collegata a consentire la crescita ed evitare la perdita di cellule durante il successivo lavaggio e supporti change. Le condizioni durante l&#39;estrazione dell&#39;RNA e stoccaggio sono importanti per la qualità del RNA e successiva analisi. È anche noto che il numero di cellule, il metodo di estrazione, e il contenuto di GC del miRNA possono influenzare la resa e la qualità di mRNA e miRNA 17. Pertanto, è necessario effettuare l&#39;estrazione di RNA in condizioni RNase-free e controlla la qualità dell&#39;RNA prima di procedere con esperimenti. Dopo l&#39;estrazione, la quantificazione del RNA fornisce informazioni sulla concentrazione dell&#39;RNA totale (contenente sia mRNA e miRNA), che permette l&#39;osservazione dei rendimenti. Esso fornisce anche una rappresentazione grafica dei risultati come mostrato nella figura 3B, e questo permette l&#39;osservazione della purezza del campione (tipicamente indicato con un picco, pannello superiore). Scarso rendimento di RNA produrrebbe alcun assorbimento specifico a 260 nm (figura 3B, pannello inferiore). Per determinare se l&#39;RNA è di alta qualità, RNAintegrità è stata misurata. Un numero integrità dell&#39;RNA (RIN) compresa tra 9-10 assicura che l&#39;RNA non è degradato ed è di ottima qualità. Inoltre, la rappresentazione grafica del RNA deve essere osservato, e il 18S e 28S rRNA dovrebbe avere picchi come mostrato nella Figura 4 (pannello centrale). Il confronto con la scala (figura 4, pannello superiore) identifica la dimensione dei picchi. Un RNA degradato avrebbe picchi meno chiare e una quantità relativamente ridotta del 18S e 28S rRNA (figura 4, pannello inferiore). La frazione di piccoli RNA può essere ulteriormente garantita utilizzando il Kit Agilent Small RNA. Si raccomanda di convalidare risposta estrogeni dopo il trattamento, nelle condizioni sperimentali specificate, prima di procedere allo screening miRNA. Un qPCR può essere eseguita su un noto ER gene bersaglio come PS2 o SPINK4 18, utilizzando cDNA. Tali geni sono di solito sovraregolati entro 1-24 ore dopo il trattamento E2. Una volta che la qualità dell&#39;RNA e la risposta estrogeniè stato valutato, ulteriore esperimento può essere condotto. Microarray è ancora una tecnica largamente usata per lo screening su larga scala per miRNA nelle cellule. Ad esempio, il microarray miRNA, una volta utilizzato conteneva 894 miRNA maturi e 50 controlli sonde uniche in quartine 1. Ibridazioni sono state eseguite in duplicato con procedura di scambio colorante. I risultati microarray miRNA sono generalmente rappresentati graficamente con mappe di calore. Figura 5A mostra una mappa di calore, che rappresenta i dati da un confronto microarray miRNA tra il veicolo e E2 campioni trattati. Il rosso indica che il miRNA è upregulated nel campione E2-trattato (espressione superiore), mentre il verde indicato downregulation del miRNA (espressione inferiore). La selezione miRNA di solito dipende dalla loro importanza nella espressione, e di solito un p-value inferiore a 0.05 è considerato significativo. I miRNA che sono indicate per essere espresso in modo differenziale dovrebbero essere ulteriormente validati wesimo qPCR, per distinguerli dai falsi positivi. La matrice DLP-LDA, invece, utilizza un metodo basato qPCR per schermare per miRNA regolamentati in un formato 384 pozzetti. Di solito due piastre da 384 pozzetti (carte) sono forniti, piscine A e B. Girone A di solito contiene meglio caratterizzati e più altamente espresso miRNA rispetto alla piscina B. Il livello relativo di ciascun miRNA sono determinati da qPCR, dove si miRNA viene analizzato per pozzo (Figura 5B). Una maggiore Ct-valore indica l&#39;espressione dei miRNA minore. Molto simile al microarray miRNA, i risultati raggiunti dal DLP-LDA devono essere ulteriormente convalidato per garantire l&#39;accuratezza. Convalide possono essere eseguite utilizzando qPCR. Qui, due metodi di rilevazione qPCR sono descritti per prevenire metodo pregiudizi e per consentire la conferma completa e indagine dei regolamenti miRNA. La chimica di rilevamento Cyanine dye fabbrica diversa da DLP che il profiling DLP-LDA si basa su, ed è adatto per confermafini di cooperazione. Può essere meno specifici come rileva tutto il DNA a doppio filamento amplificato, ma l&#39;omogeneità del campione può essere valutata mediante un&#39;analisi fusione curva. Figura 6A (pannello di sinistra) mostra l&#39;analisi di fusione curva di un miRNA, e picco uniforme chiaramente definito può essere visto. Picchi multipli sarebbero stati rispettati se il primer è importi non specifici o significative di primer-dimero si forma (figura 6A, pannello di destra). Saggi DLP miRNA invece, è più specifico come solo l&#39;amplificazione del bersaglio viene rilevato miRNA. Trame di amplificazione di ogni target di miRNA possono essere osservate, come esemplificato nella figura 6B. La possibilità di controllare il verificarsi di molteplici prodotti di amplificazione usando l&#39;analisi della curva di fusione è, tuttavia, non disponibile con questa chimica e Cyanine colorante qPCR è meno costoso. Cyanine tintura e DLP qPCR saggi possono a volte generare risultati leggermente diversi. Per entrambi i saggi qPCR, rispetto ad un refegene renza è necessaria per determinare l&#39;espressione di geni tra due campioni. Il gene di riferimento, indicato anche come gene housekeeping, dovrebbe essere un gene la cui espressione non è cambiata e che è espressa a livelli simili a quelli del gene di interesse. Un esempio di un gene di riferimento adatto in queste linee cellulari di cancro al seno è ARHGDIA, un PIL Rho-Dissociazione Inhibitor che funziona reazioni di scambio GDP / GTP delle proteine ​​Rho. Come osservato nella Figura 6C (alto), il livello di mRNA ARHGDIA non viene modificato tra il veicolo ed i campioni trattati con ligando. Il 18S rRNA può anche essere utilizzato, anche se la sua alta espressione richiede una diluizione 1:500 separata del cDNA magazzino ed è pertanto meno opportuno. Per l&#39;analisi miRNA, c&#39;è ancora una discussione su un gene di riferimento ben definita. Finora, l&#39;U6 snRNA è un gene di riferimento che è ampiamente accettato per l&#39;analisi miRNA. U6 snRNA è il ~ lungo 110 nucleotidi, codificante piccolo RNA nucleare che funzionano in nucleare pre-mRNA splglassa 19. Come osservato nella Figura 6C (in basso), i livelli di espressione U6 sono circa gli stessi in tutti i campioni indicati, permettendo così di calcolo dei livelli variabili di miRNA. Una rappresentazione grafica di un risultato miRNA qPCR per un confronto tra il veicolo e le cellule trattate con E2 che sono stati normalizzati alla U6 riferimento può essere osservato nella Figura 6D. Questo illustra un miRNA che sono stati rilevato come sregolata dopo il trattamento 24 ore E2, ma che porti ER-cromatina siti di legame vicino alla sua posizione genomica e analisi delle serie temporali identificato regolamentazione significativo 72 ore dopo il trattamento. <img alt="Figura 1" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51285/51285fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51285/51285fig1.jpg" /> Figura 1. Una panoramica del metodo impiegato per il rilevamento della regolazione ormonale del miRNA in cellule di cancro al seno. </strong&gt; processo inizia con la cultura e il trattamento delle cellule, seguita da larga scala miRNA profiling per identificare miRNA possibilmente differenzialmente espresse, e termina con qRT-PCR convalide dei risultati di matrice. <img alt="Figura 2" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51285/51285fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51285/51285fig2.jpg" /> Figura 2. Il confronto tra le varie preparazioni del campione e manipolazioni di acidi nucleici per ogni tecnica di rilevamento miRNA. (A) miRNA microarray utilizzando il metodo tecnologia μParaflo comprende arricchimento, poly-A tailing ed etichettatura legatura. (B) preparazione del campione tecnologia DLP e metodo di rilevazione comprende un loop cDNA sintesi di primer che si estende dopo la fase di denaturazione e offre un frammento più lungo ospitante il preparazione del campione inverse primer e sequenza di sonda. (C) tecnologia Cyanine colorantee metodo di rilevazione comprende poli A-tailing, e la sintesi cDNA con un primer oligo-dT tra cui una sequenza universale 5 &#39;. <img alt="Figura 3" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51285/51285fig3highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51285/51285fig3.jpg" /> Figura 3. Coltura cellulare e l&#39;estrazione di RNA. (A) le cellule coltivate per illustrare l&#39;80% di confluenza necessario prima del trattamento con ligando. (B) Rappresentazione grafica della concentrazione dell&#39;RNA e la purezza dopo l&#39;estrazione. Ogni picco rappresenta un campione e un processo di estrazione con successo produce RNA puro (pannello superiore). Un RNA estratto male non mostra alcun picco di assorbimento chiara a 260 nm (pannello inferiore). <img alt="Figura 4" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51285/51285fig4highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51285/51285fig4.jpg" /> Figura 4. &amp; #160; controllo di qualità RNA risultati di analisi dell&#39;integrità dell&#39;RNA mostra la rappresentazione grafica per la scala (in alto), un RNA di buona qualità (al centro) e un campione di RNA degradato (in basso).. <img alt="Figura 5" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51285/51285fig5highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51285/51285fig5.jpg" /> Figura 5. L&#39;illustrazione di miRNA risultati profiling. (A) Una rappresentazione mappa termica di miRNA risultati di microarray per miRNA differenzialmente espressi. miR-A, B, C sono upregulated in-campione trattato E2 come indicato in rosso, mentre miR-D, E, F, G sono smorzati nel campione E2-trattate a verde. (B) Trame amplificazione per ciascun miRNA dai risultati DLP-LDA. miRNA rilevati sono amplificati come indicato dalla incremento del valore Rn. <img alt="Figura 6" fo:content-width="5in" fo: src = &quot;/ files/ftp_upload/51285/51285fig6highres.jpg&quot; src = &quot;/ files/ftp_upload/51285/51285fig6.jpg&quot; /&gt; Figura 6. analisi qPCR dei regolamenti miRNA. (A) Analisi di fusione curva per un miRNA analizzati utilizzando il rilevamento Cyanine colorante, mostrando l&#39;omogeneità di tutti i campioni esaminati (a sinistra) e l&#39;amplificazione di frammenti multipli (a destra). (B) appezzamenti di amplificazione per ogni campione per un miRNA. Questo può essere sia da Cyanine tintura o DLP metodi di rilevamento. (C) rappresentazione grafica Bar di geni di riferimento adeguati per l&#39;mRNA analisi ARHGDIA (in alto) e per l&#39;analisi dei miRNA snRNA U6 (in basso), che non mostrano espressione differenziale significativo tra i campioni. (D) risultati miRNA qPCR per illustrare il confronto dei livelli di espressione relativi di miR-135a nel corso di un corso di tempo. Figura 6D è stato ristampato da Katchy et al. 1 con il permesso di Elsevier. I valori sono di solito la media di compe separatoiments (duplicati biologici) ± SD. T-test di Student serve a dimostrare significato: * p &lt;0,05.

Molecular segnalazione sia attraverso gli estrogeni e microRNA sono fondamentali nello sviluppo del cancro al seno e la crescita. Estrogeni attiva i recettori degli estrogeni, che sono fattori di trascrizione. Molti fattori di trascrizione in grado di regolare l&#39;espressione dei microRNA, e microRNA regolati dagli estrogeni possono essere profilato utilizzando diverse tecniche su larga scala.

Profiling di microRNA regolati dagli estrogeni in cellule di carcinoma mammario

Estrogen plays vital roles in mammary gland development and breast cancer progression. It mediates its function by binding to and activating the estrogen ...

L'obiettivo generale di questa procedura è definire i microRNA che i recettori degli estrogeni potrebbero regolare. Questo viene raggiunto innanzitutto preparando le cellule per una risposta massimale agli estrogeni, coltivandole fino a una confluenza ottimale e deplezionando l'attività estrogenica. Il secondo passaggio consiste nell'indurre l'attività trascrizionale dei recettori degli estrogeni mediante trattamento con estradiolo per il numero richiesto di punti temporali.Vengono inclusi controlli appropriati per i confronti. Successivamente, l'RNA, compresa la popolazione di microRNA, viene estratto e convertito in CD NA noto per essere regolato dagli estrogeni. I geni bersaglio vengono quindi misurati mediante QPCR per confermare che il protocollo di trattamento sia stato efficace.L'ultimo passaggio consiste nel determinare il profilo di espressione del micro RNA a livello genomica mediante tecnologie di screening su larga scala. Infine, viene effettuata un'analisi di conferma mediante QPCR. Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo del cancro al seno, come se e in che modo gli estrogeni influenzano l'espressione del micro RNA.Sebbene questo metodo possa fornire informazioni sul cancro al seno, può essere applicato anche ad altri sistemi, come altri tipi di cancro o linee cellulari che esprimono il recettore degli estrogeni alfa o il recettor amaro. Le cellule MC seven utilizzate in questo studio vengono preparate cinque giorni prima del trattamento in un'area sterile. Rimuovere il mezzo di coltura dalla fiala T 75 utilizzando una pipetta Pasteur sterile collegata a un vuoto.Lavare delicatamente le cellule aderenti due volte con PBS e staccare le cellule mediante tripsina. Contare le cellule utilizzando un contatore cellulare seguendo il protocollo del produttore. Etichettare sei piastre da 100 millilitri e aggiungere 10 millilitri di mezzo di coltura a ciascuna piastra.Piattiare circa 2 milioni di cellule per piastra e distribuire le cellule agitando delicatamente la piastra. Incubare le cellule per 24-48 ore a 37 gradi Celsius e 5%CO2 fino a quando le cellule non raggiungono una confluenza di circa l'80%. Due o quattro giorni dopo, rimuovere le cellule dall'incubatore a 37 gradi Celsius ed esaminarle al microscopio per verificare che siano circa all'80% confluenti.La confluenza cellulare è un fattore importante perché influenza il contatto tra cellule e comportamenti come la segnalazione intercellulare e la proliferazione. Lavare le cellule due volte con PBS, quindi aggiungere il mezzo appropriato con FBS al 5%, precedentemente filtrato per rimuovere composti estrogenici. Incubare le cellule con FBS trattato al carbone attivo, o D-C-C-F-B-S, per 24 ore a 37 gradi Celsius e 5%CO2 il giorno successivo.Lavare le cellule due volte con PBS e aggiungere il corretto mezzo 0.5%D-C-C-F-B-S; incubare le cellule per ulteriori 48 ore nel giorno del trattamento. Preparare i reagenti per il trattamento cellulare in un tubo conico da 50 millilitri. Aggiungere innanzitutto 30 millilitri del corretto mezzo 0.5%D-C-C-F-B-S, seguiti da tre microlitri di un campione stock di E due ligando 0,1 millimolare; lavare le cellule due volte con PBS.Assicurarsi di rimuovere la maggior quantità possibile di PBS. Mescolare delicatamente il contenuto di ogni provetta e aggiungere 10 millilitri alle cellule in ogni piastra. Deve essere presente un ligando per ogni piastra.Incubare le cellule a 37 gradi Celsius e 5%CO2 per un periodo di tempo scelto compreso tra zero e 72 ore. Sostituire il mezzo, se necessario, al termine del trattamento per il periodo di tempo desiderato. Rimuovere le piastre dall'incubatore e trasferirle in una cappa chimica.Poiché questa procedura utilizza una soluzione tossica di tiocianato di guanidinio e fenolo, indossare un'adeguata protezione individuale, lavare le cellule due volte con PBS. Quindi aggiungere da uno a due millilitri di soluzione di tiocianato di guanidinio e fenolo alle cellule in ogni piastra. Assicurarsi che il volume delle cellule non superi il 10% del volume della soluzione di tiocianato di guanidinio e fenolo e che la piastra sia completamente ricoperta dalla soluzione.Lasciare riposare le cellule per un minuto. Successivamente, utilizzare una spatola di gomma per raschiare le cellule e trasferirle in una microcentrifuga. I campioni possono essere conservati in questa soluzione a meno 80 gradi Celsius per settimane.L'estrazione di RNA di alta qualità è molto importante per il successo di questa procedura. Pertanto, i passaggi successivi devono essere eseguiti in condizioni prive di RNA. Per estrarre l'RNA totale da ogni trattamento, vortexare una miscela cellulare per un minuto e centrifugare rapidamente.Aggiungere 200 microlitri di cloroformio per ogni millilitro di soluzione di tiocianato di guanidina e fenolo. Eseguire il vortex per 15 secondi e incubare da due a tre minuti a temperatura ambiente, quindi centrifugare a 11.000 giri al minuto e a quattro gradi Celsius per 15 minuti. Trasferire la fase acquosa superiore in un nuovo tubo da microcentrifuga.Aggiungere 1,5 volumi di etanolo al 100% e mescolare mediante pipettaggio. Trasferire la soluzione su una colonna da centrifuga e purificare l'RNA mediante purificazione con colonna da centrifuga per micro RNA, seguita da degradazione del DNA a singolo filamento secondo il protocollo del produttore. Successivamente, eluire l'RNA in 60 microlitri di acqua libera da RNasi, utilizzare da uno a due microlitri di RNA per la quantificazione e l'analisi della qualità e conservare il resto dell'RNA a meno 80 gradi Celsius.Dopo aver confermato che il trattamento delle cellule ha determinato la regolazione di noti bersagli sensibili agli estrogeni, come mRNA, si esegue il profilo di micro RNA utilizzando sia il microfluido a basso consumo, microarray e sonde con doppia etichetta, array a bassa densità o D-L-P-L-D-A per effettuare il profilo di micro RNA utilizzando D-L-P-L-D-A, rimuovere le piastre D-L-P-L-D-A dal frigorifero e lasciarle acclimatare a temperatura ambiente durante l'esecuzione della reazione di trascrizione inversa per generare CDNA dai campioni di RNA. Quando le piastre D-L-P-L-D-A hanno raggiunto la temperatura ambiente, aggiungere 100 microlitri di CDNA mescolato con le sonde a doppia etichetta e master mix per PCR in ciascuna delle otto porte di riempimento di una piastra.Centrifugare le piastre dell'array. Aprire brevemente il sistema Q-R-T-P-C-R e verificare che il blocco sia per una piastra a 384 pozzetti. Impostare il ciclo.Utilizzando il software SDS, selezionare la quantificazione relativa. Selezionare il numero della pozzetta e il tipo di array e inserire le descrizioni del campione per definire le pozzette. Eseguire l'array utilizzando le condizioni di termociclaggio predefinite.Al termine dell'esecuzione, salvare i risultati, esportarli in Microsoft Excel e conservarli per ulteriori analisi. Un metodo per confermare le regolazioni del micro RNA è l'analisi cyanide D-Q-P-C-R. Il primo passo consiste nel progettare i primer per la sequenza del micro RNA maturo, della quale la sequenza del primer forward può essere ottenuta da mere based.org.Convertire innanzitutto tutti i UES in ts, quindi preparare il CD NA mettendo un microgrammo di RNA totale in un tubo da centrifuga da 1,5 millilitri. Includere un controllo negativo con acqua al posto dell'RNA totale. Seguire le istruzioni per la poliadenilazione e la sintesi del primo filamento di CD nna.Sintesi di micro RNA a partire da una sintesi del primo filamento di cDNA di micro RNA e protocollo Q-R-T-P-C-R. Diluire il CD NA risultante da uno a 10 con acqua purificata e conservare a meno 20 gradi Celsius. Ottenere una piastra di reazione da 96 pozzetti.Preparare il mix master A-Q-P-C-R. Per ogni pozzetto micro R-N-A-Q-P-C-R master, aggiungere due picamoli di ciascun primer specifico forward e del primer universale. Cinque microlitri di mix master due X-Q-P-C-R e acqua purificata.Aliquotare la miscela in ciascun pozzetto. Aggiungere infine 16 nanogrammi di poli a CD NA per ogni campione ed includere controlli negativi. Il volume finale della reazione deve essere di 10 microlitri per pozzetto. Assicurarsi che vi siano tre pozzetti replicati per ogni campione, per ciascun micro RNA, per i replicati tecnici, nonché per i controlli negativi.Inoltre, includere uno o più geni di riferimento, solitamente U six s nrp, RNA e/o un micro RNA che non presenta variazioni nel software del sistema Q-R-T-P-C-R. Assegnare il reporter e il bersaglio. Inserire il volume della reazione. Selezionare il metodo del ciclo soglia comparativo e definire le pozzette del campione.Eseguire le piastre utilizzando le impostazioni predefinite per l'esecuzione. Assicurarsi che un'analisi della curva di denaturazione venga effettuata per tutte le corsie con il colorante ciano al termine dell'esecuzione. Salvare i risultati ed esportare tutti i dati, inclusi i valori di CT, su Microsoft Excel.L'estrazione efficiente di RNA di alta qualità dai campioni è un fattore importante per il successo di questo studio. Dopo l'estrazione, le concentrazioni di RNA vengono misurate con uno spettrofotometro, come mostrato in questo risultato rappresentativo. Ogni picco illustrato nel pannello superiore rappresenta un campione e un'estrazione avvenuta con successo che produce RNA puro.Al contrario, un Rna estratto in modo inadeguato, illustrato nel pannello inferiore, non mostra un picco di assorbimento chiaro a 260 nanometri. Per il controllo di qualità del Rna, è stata misurata l'integrità del Rna e i risultati sono stati confrontati con una scala molecolare di Rna. Nel campione di Rna di buona qualità, i prodotti di 18 s e 28 S-R-R-N-A dovrebbero presentare picchi, come mostrato in questo caso.Un campione di RNA degradato presenterebbe picchi meno definiti e una quantità relativa ridotta di rRNA 18S e 28S, come mostrato qui. L'analisi della popolazione di microRNA può essere eseguita separatamente. I risultati della microarray per microRNA derivanti dal confronto tra campioni trattati con veicolo e con E2 sono rappresentati graficamente da questa mappa termica.La mere a, la mere B e la mere C sono regolate positivamente nei due campioni trattati E, come indicato in rosso, mentre la mere D, la mere e, la mere F e la mere G sono regolate negativamente nel campione trattato E, come indicato in verde. La selezione dell'RNA microscopico dipende dalla loro significatività e espressione. Un valore P inferiore a 0,05 è generalmente considerato significativo e deve essere selezionato per una ulteriore convalida mediante QPCR.I microarray con sonde a doppia etichetta utilizzano il metodo basato su A-Q-P-C-R per analizzare i microRNA regolati. Qui vengono mostrati i grafici di amplificazione in formato 384 pozzetti per microRNA derivati dai risultati di D-L-P-L-D-A. L'amplificazione dei microRNA espressi è indicata dall'aumento dei valori RN.Le validazioni possono essere eseguite utilizzando due metodi di rilevamento QPCR per prevenire il bias del metodo e consentire una conferma accurata e un'indagine approfondita delle regolazioni delle micro-NA. Il primo metodo utilizza il rilevamento con colorante cianico per analizzare la curva di denaturazione di un micro RNA come controllo per l'amplificazione. Specificità. L'amplificazione del frammento previsto produrrà un picco uniforme ben definito, come mostrato nel pannello a sinistra.Verrebbero osservati picchi multipli se il primer non fosse specifico o se si formassero quantità specifiche di dimeri di primer, come illustrato nel pannello destro. Se ciò accade, i dati non possono essere utilizzati per l'analisi dell'espressione. Il secondo metodo, l'analisi mediante sonde con doppia etichetta (QPCR), è più specifico poiché viene rilevata solo l'amplificazione del micro RNA bersaglio, come mostrano i grafici di amplificazione di ciascun bersaglio.Il micro RNA può essere osservato come mostrato qui per entrambi i saggi di QPCR. È necessario un confronto con un gene di riferimento per determinare l'espressione relativa dei geni tra due campioni. Un esempio di gene di riferimento adatto in queste linee cellulari di cancro al seno è A-R-H-G-D-I-A-A RO GDP dissociation inhibitor.Come osservato in questa figura, il livello di mRNA di A-R-H-G-D-I-A non cambia tra i campioni trattati con il veicolo e quelli trattati con il ligando. Un gene di riferimento ampiamente accettato per l'analisi di micro RNA è U six snrp, RNA. L'RNA nucleare piccolo non codificante, lungo circa 110 nucleotidi, che svolge funzioni nel prem. nucleareUn processo di splicing osservato in questa figura mostra che i livelli di espressione di U6 sono pressoché costanti tra i campioni analizzati, consentendo così il calcolo dei livelli variabili del micro RNA. Questa ultima figura mostra una rappresentazione grafica dei risultati di micro RNA QPCR ottenuti da cellule trattate con veicolo e con E2, con il confronto dei livelli di espressione relativi di un particolare micro RNA, miR-135a, in un corso temporale. Questo micro RNA è risultato non regolato fino a 24 ore dopo il trattamento con E2, ma è stata rilevata una regolazione significativa a 72 ore dal trattamento, seguendo questa procedura.Altri metodi, come l'immunoprecipitazione della cromatina del recettore SDR N, possono essere eseguiti per rispondere a ulteriori domande, ad esempio se il microRNA è regolato direttamente dal recettore attraverso il legame a regioni cis-regolatorie della cromatina. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come analizzare in modo rigoroso la regolazione mediata dagli estrogeni dei microRNA. È molto importante eseguire i vari controlli e ripetere i passaggi come indicato in questo protocollo, al fine di assicurarsi di rilevare vere regolazioni e non variazioni biologiche o tecniche.

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