Name: Eccitotossica stimolazione del cervello Microslices come In vitro Modello di Corsa (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-04T14:45:00.000+00:00
Duration: 7 min
Description: Scopri la stimolazione eccitotossica su microfette cerebrali per studiare lesioni cerebrali in vitro. Questo metodo preserva il tessuto maturo e riduce l'uso di animali mantenendo la viabilità cellulare per almeno due ore.

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Questo lavoro è stato sostenuto da fondi di ricerca dalla Salute e medicina Consiglio Nazionale delle Ricerche of Australia, Hunter Medical Research Institute, e l&#39;Università di Newcastle.

Tutte le procedure vengono eseguite con l&#39;approvazione presso l&#39;Università di Newcastle cura degli animali e Comitato Etico, nonché in conformità con le linee guida e regolamenti pertinenti, tra cui il NSW Animal Research Act, il regolamento sugli animali NSW, e il Codice australiano di condotta per l&#39; Cura e uso degli animali per fini scientifici. 1. Dissezione del tessuto cerebrale <ol><li> Sacrifica dodici settimane vecchi ratti maschi per decapitazione. I ratti possono sia essere sacrificati da una splendida e decapitazione, oppure possono essere prima anestetizzati con isoflurano (5% induzione, 1,5-2% di manutenzione) nel 70% N 2 e il 30% O 2, e poi decapitati. </li><li> Rimuovere il cervello dal cranio più rapidamente possibile (idealmente, questa deve essere eseguita in meno di 2 minuti). </li><li> Rimuovere la corteccia dalla dissezione a mano libera. La dissezione deve essere eseguito nel minor tempo possibile, con il minor danno al cervello più possibile in modo da Maintain l&#39;integrità delle fette. </li><li> Al fine di eliminare qualsiasi residuo pelle, pellicce, sangue, ecc, immergere il cervello in una piccola quantità (3-5 ml) di 37 ° C tampone Krebs (118 mM cloruro di sodio, cloruro di potassio 4,7 mM, 1,3 mM di cloruro di calcio, 1.2 mM di potassio fosfato monobasico, solfato di magnesio 1,2 mM, 25 mM carbonato acido di sodio, 11,7 mM di glucosio, sodio 0,03 mM acido etilendiamminotetraacetico (EDTA), equilibrati con il 95% di ossigeno / anidride carbonica del 5% (CarboGen), pH 7,4). </li></ol> 2. Preparazione di Microslices <ol><li> Posizionare il cervello sul palco di un elicottero McIlwain su cui sono stati collocati e inumidito con tampone caldo Krebs due fette di carta da filtro. Mantenere il cervello e carta da filtro inumidita con tampone Krebs caldo, ma non così bagnato che c&#39;è liquido libero sulla superficie della carta che può causare il cervello a scivolare. </li><li> Tagliate il cervello in 250 micron sezioni coronali. Come nutrienti, ossigeno e materiali di scarto °a normalmente scambiate con l&#39;apporto di sangue sono scambiati con un fluido che circonda il tessuto isolato tessuto neurale, la dimensione delle fette non deve essere superiore a 400 pm di spessore per consentire un&#39;adeguata ossigenazione e nutrienti scambio avvenga. </li><li> Girare la fase McIlwain 90 °. </li><li> Tagliate cervelli in 250 micron fette sagittali. Qui, queste sezioni cerebrali (250 micron x 250 micron fette di lunghezza variabile a seconda dello spessore del tessuto) sono indicati come microslices. </li><li> Posizionare i microslices in un tubo fondo rotondo con 10-15 ml 37 ° C tampone Krebs (la quantità di tampone Krebs utilizzato dipenderà dalla quantità di tessuto). </li></ol> 3. Equilibrazione di Microslices <ol><li> Agitare delicatamente fino a quando i singoli microslices sono sospese, e poi permettere loro di stabilirsi per gravità. </li><li> Rimuovere con attenzione il surnatante, che sarà nuvoloso a causa di detriti cellulari sospeso, e aggiungere 10 ml di fresco a 37 ° CKrebs tampone al tubo. </li><li> Ripetere questa procedura quattro successivi lavaggi, che provocherà la rimozione della maggior parte dei detriti. </li><li> Successivamente, equilibrare le microslices a 37 ° C agitando delicatamente / inversione, e cambia il tampone Krebs ogni 15 minuti per 1 ora in totale. </li><li> A questo punto, aggiungere 2 ml di tampone fresco 37 ° C Krebs, e trasferire 15-20 microslices (150 microlitri di sospensione microslice) al polistirolo fondo piatto 5 ml provette usando un puntale foro molto ampio con bordi smussati (che possono essere creati da taglio ~ 2 mm dal termine di una punta P1000). Distribuire le microslices uniformemente sulla base del tubo in un unico strato, in modo che ogni microslice non è anche di pochi millimetri dal atmosfera ossigenato. </li></ol> 4. Stimolazione eccitotossica <ol><li> Incubare le microslices a 37 ° C, e continuamente passare Carbogen sulla superficie della sospensione 150 microlitri microslice, utilizzando una linea di gas che è la posizioneEd appena sopra la superficie della sospensione microslice (per evitare la rottura meccanica). </li><li> Trattare microslices sia con 150 microlitri 5 glutammato mm + 100 mM glicina in tampone Krebs (stimolo eccitotossico: concentrazione finale 2.5 mM glutammato + 50 mM glicina) o 150 microlitri di buffer Krebs solo (controllo non stimolate). Una serie di stimoli può essere utilizzato in questo passaggio (compreso, ma non limitato a, AMPA, NMDA + glicina, KCl depolarizzazione, e ossigeno / glucosio privazione). </li><li> Rimuovere la soluzione di incubazione a vari tempi dopo la stimolazione (0, 30, 60, 90, 120, e 300 sec), e sostituirla con 300 ml di ghiacciata tampone di omogeneizzazione (Tris 30 mM, pH 7,4, 1 mM glicole etilenico tetraacetico, EDTA 4 mm, 100 micron molibdato di ammonio, 5 mM pirofosfato di sodio, fluoruro di sodio 25 mm, 1 mm orthovanadate sodio, phenylmethanesulfonylfluoride 1 mm completo cocktail inibitore della proteasi). </li><li> Omogeneizzare microslices sul ghiaccio, con un vetro-teflon Dounce Omogenizzatore(20 colpi; 700 rpm). </li><li> Conservare omogenati a -80 ° C, e le varie molecole di segnalazione, le molecole di morte, ecc possono essere misurati mediante western blot. </li></ol>

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</ol>

Gli autori dichiarano di non avere alcun conflitto di interessi per quanto riguarda qualsiasi parte del lavoro svolto all&#39;interno di questo manoscritto.

Qui, una tecnica in vitro per la generazione di microslices che possono essere utilizzati per esaminare i meccanismi molecolari coinvolti nella eccitotossicità e morte cellulare mediata da ischemia in tessuto cerebrale maturo intatto è descritto. Questa tecnica produce tessuti vitali (figure 1-3), che è metabolicamente simile a grandi fette organotipiche 15. Inoltre, questo modello microslice corrisponde strettamente alla risposta osservata dopo eccitotossicità mediata da lesioni cer...

La forma più comune di ictus è ictus ischemico, che si verifica quando un vaso sanguigno cerebrale diventa occlusa. L&#39;ischemia del tessuto risultante dalla cessazione del flusso sanguigno provoca diffusa depolarizzazione delle membrane, rilascio di neurotrasmettitori eccitatori, e aumento prolungato del calcio intracellulare, che porta all&#39;attivazione di morte cellulare Percorsi di 1. Questo processo è stato definito &#39;eccitotossicità&#39;, ed è un percorso comune coinvolto nella morte neuronale prodotta da una varietà di patologie, compreso il colpo 2. Inibizione delle vie di segnalazione coinvolte nella excitotoxicity e altre cascate di morte delle cellule neuronali è un approccio interessante per limitare i danni neuronali dopo l&#39;ictus. Identificare i meccanismi molecolari precisi coinvolti nella excitotoxicity e ictus ischemico può essere difficile quando si utilizzano sistemi animali interi. Come tale, embrionale primario e &#39;neuronale-like&#39; (ad es neuroblastomacchine e linee di adenocarcinoma immortalati) sistemi di colture cellulari vengono spesso utilizzati. I principali vantaggi di questi modelli sono che sono facili da manipolare, relativamente conveniente, e morte cellulare possono essere facilmente misurati e quantificati. Tuttavia, vie di segnalazione possono essere modificati dalle condizioni di coltura utilizzate 3,4, ei neuroni immaturi e immortalati linee possono esprimere i recettori diversi e molecole di segnalazione rispetto a maturare cervello 5-8. Inoltre, neuroni in coltura consentono solo l&#39;esame di un tipo di cellula (o due, se viene usato un sistema di co-coltura), mentre il tessuto cerebrale intatto è eterogenea, contenente una varietà di tipi di cellule che interagiscono tra loro. Sistemi di coltura organotipica fetta (espianti sottili di tessuto cerebrale) sono anche utilizzati, e questi modelli permettono lo studio delle popolazioni eterogenee di cellule come si trovano in vivo. Tuttavia, solo una quantità limitata di tessuto può essere ottenuto da ciascun animale quando si utilizza questa tecnica, fette puònon essere in coltura a lungo come linee cellulari immortalizzate e medio coltura a lungo termine può provocare alterazioni in vie di segnalazione e recettori nelle fette. Mentre cervello maturo può essere utilizzato per generare fette organotipiche, fette di cervello immaturo sono più suscettibili alla cultura, e sono più comunemente utilizzati. Vi è quindi la necessità di sviluppare modelli che mimano o rappresentano intatta cervello maturo, che sono facili da usare, in cui vie di segnalazione neuronali possono essere esaminate. Qui, una tecnica in vitro che coinvolge il tessuto nervoso intatto che può essere utilizzato per chiarire i meccanismi molecolari coinvolti nella morte delle cellule dopo un insulto ischemico o eccitotossico è descritto. Questa tecnica riduce il numero di animali necessari per eseguire un esperimento, è riproducibile, e genera tessuto vitale che si comporta in modo simile a metabolicamente più grandi fette organotipiche. Inoltre, la circuiteria neuronale, interazioni cellulari, e co postsinapticompartment rimane parzialmente intatta. Il buffer fisiologico utilizzati consente alle membrane cellulari per &#39;reseal&#39;, e permette alle cellule di recuperare la loro resistenza membrana originale 9. Questo modello fetta cervello è in grado di imitare fedelmente risposte osservate a seguito di eccitotossicità mediata da lesioni cerebrali di 10, e può essere utilizzato per esaminare i meccanismi molecolari coinvolti nella corsa.

<table><tbody><tr><td>Ghigliottina</td><td></td><td></td><td>Utilizzato per decapitare animali</td></tr><tr>Attrezzature <td></td><td></td><td>chirurgiche</td><td>Pinze, forbici, pinzette, ecc., per la rimozione e la dissezione</td></tr><tr><td>del cervello Chopper McIlwain Gli elicotteri</td><td>McIlwain sono prodotti/distribuiti da una serie di aziende tra cui Mickle Engineering, Harvard Apparatus, Campden Instruments e Ted Pella.</td><td></td><td>Utilizzato per generare 100-400 &#181; m sezioni cerebrali.</td></tr><tr><td>Tubi di plastica a fondo tondo</td><td>Greiner</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bagnomaria</td><td></td><td></td><td>Per mantenere i tessuti a 37 &deg; C</td></tr><tr>Apparecchio <td></td><td></td><td>umidificatore/aeratore</td><td>Utilizzato per conservare le microfette in un ambiente umidificato e ossigenato</td></tr><tr><td>Tubi in polistirene a fondo piatto</td><td>Nunc</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dounce Omogeneizzatore</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

eccitotossica stimolazione del cervello microslices come<em&gt; in vitro</em&gt; modello di corsa

Excitotoxic Stimulation of Brain Microslices as an In vitro Model of Stroke

Esaminare i meccanismi molecolari coinvolti in condizioni neuropatologici, come l&#39;ictus ischemico, può essere difficile quando si utilizzano sistemi animali interi. Come &#39;neuronale, come i «sistemi di coltura di cellule tale, primaria o vengono comunemente utilizzati. Mentre questi sistemi sono relativamente facili da lavorare, e sono sistemi modello utile in cui diversi esiti funzionali (come la morte cellulare) può essere facilmente quantificato, i risultati esaminati e percorsi nei neuroni immaturi coltura (come vie di morte cellulare eccitotossicità mediata) non sono necessariamente uguali a quelli osservati nel cervello maturo, o in tessuto intatto. Pertanto, vi è la necessità di sviluppare modelli in cui meccanismi cellulari nel tessuto neurale maturo può essere esaminato. Abbiamo sviluppato una tecnica in vitro che può essere usato per studiare una varietà di vie molecolari nel tessuto nervoso intatto. La tecnica descritta qui utilizza tessuti di ratto corticale, ma questa tecnica può essere adattato per usare tessutoda una varietà di specie (come topo, coniglio, cavia, e pollo) o regioni cerebrali (ad esempio, ippocampo, striato, ecc). Inoltre, una varietà di stimoli / trattamenti può essere utilizzato (ad esempio, eccitotossico, somministrazione di inibitori, ecc). In conclusione, il modello fetta cervello qui descritto può essere usato per esaminare una serie di meccanismi molecolari coinvolti nel trauma cranico eccitotossicità mediata.

Microslices generati utilizzando questa procedura sono vitali, e una varietà di specie (ad esempio, ratto, topo, pollo e) possono essere utilizzati per produrre microslices. Sono state utilizzate tre misure indipendenti di redditività: il tasso di respirazione (Figura 1), i rapporti adenina nucleotide (Figura 2), e il contenuto di potassio tessuto (Figura 3). Utilizzando queste misure, è stato dimostrato che microslices rimangono vitali per almeno 2 ore post-generazione...

Abbiamo sviluppato un modello fetta cervello che può essere usato per esaminare meccanismi molecolari coinvolti nel trauma cranico eccitotossicità mediata. Questa tecnica genera tessuto cerebrale maturo vitale e riduce il numero di animali necessari per la sperimentazione, pur mantenendo la circuiteria neuronale, interazioni cellulari e compartimenti post-sinaptici in parte intatto.

Eccitotossica stimolazione del cervello Microslices come<em&gt; In vitro</em&gt; Modello di Corsa

Examining molecular mechanisms involved in neuropathological conditions, such as ischemic stroke, can be difficult when using whole animal systems. As ...

L'obiettivo generale di questa procedura è applicare una stimolazione citotossica a fette microscopiche di cervello per creare un modello in vitro di ictus. Questo viene realizzato preparando innanzitutto fette microscopiche da un cervello appena isolato. Il secondo passaggio consiste nell'equilibrare le fette microscopiche con un'agitazione delicata.Una volta raggiunto l'equilibrio, le microfette sono pronte per ricevere una varietà di manipolazioni sperimentali. I risultati dimostrano che le microfette rimangono vitali per almeno due ore dopo la preparazione. Il vantaggio principale della nostra tecnica rispetto ad altre tecniche esistenti, come le colture primarie di neuroni embrionali, è che la nostra metodica utilizza fette di tessuto cerebrale maturo, che contengono più di un tipo cellulare e sono pertanto più rappresentative del tessuto cerebrale integro.Il primo passaggio consiste nell'ottenere tessuto cerebrale fresco. Immergere il cervello in una piccola quantità di tampone di Krebs caldo. Per rimuovere eventuali residui di pelle, peli o sangue, preparare un tritacarne macle wain con due fogli di carta da filtro inumiditi con tampone di Krebs caldo.Quando pronto, posizion

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