Name: Lincapsulamento di trascrizione privo di cellule e macchinari traduzione in vescicole per la costruzione di Mimics cellulari (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-21T20:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 28 s
Description: Scopri come incapsulare macchinari di trascrizione e traduzione in vescicole lipidiche per costruire mimics cellulari. Questo metodo semplice ed economico consente di monitorare la produzione proteica in vitro tramite microscopia.

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Gli autori riconoscono la Fondazione Armenise-Harvard, il Marie-Curie Trentino COFUND (ACS), la Provincia Autonoma di Trento (Ecomm), e CIBIO per il finanziamento.

1. Preparazione del modello di DNA <ol><li> Purificare plasmide da un ceppo standard di laboratorio di E. coli, come E. coli DH5a o Nova blu con un kit commerciale. Alternativamente, un prodotto di PCR lineare può essere purificato in modo simile con un kit commerciale. Eluire il DNA con H 2 O solo. </li><li> Fenolo-cloroformio estrarre la soluzione di DNA 26. </li><li> Determinare la concentrazione di DNA e la purezza, ad esempio mediante assorbimento UV o altri metodi idonei. È importante utilizzare il DNA altamente puro per efficiente trascrizione-traduzione. </li></ol> 2. Preparazione del Thin Film Lipid <ol><li> Pesare la polvere secca lipidica e sciogliere in solvente. Per 1-palmitoil-2-oleoil-sn-glicero-3-fosfocolina (POPC), le soluzioni madre sono preparati in cloroformio ad una concentrazione di 40 mg / ml. Nota: Solventi organici devono essere sempre maneggiati con pipette di vetro e bottiglie. In altre parole, non deve mai essere usata plastica. Conservare ssoluzioni tac in stretto, bottiglie di vetro aria solvente resistenti ambra a -20 ° C, preferibilmente sotto argon. </li><li> Aliquota 12 micromol POPC (220 ml di 40 mg / ml di soluzione) in un pallone a fondo tondo da 5 ml. </li><li> Evaporare il solvente con un evaporatore rotante (Figura 1) per generare il sottile film lipidico. <ol><li> Montare saldamente il pallone al tubo di distillazione con un fermaglio circolare e avviare la rotazione del pallone. </li><li> Avviare la circolazione di acqua attraverso la serpentina del condensatore. Utilizzando un bagno di calore non è necessario, perché cloroformio ha un basso punto di ebollizione di 61,2 ° C a pressione atmosferica normale. </li><li> Assicurare che il sistema è aperto all&#39;atmosfera controllando che il rubinetto è aperto. Accendere la pompa del vuoto e chiudere lentamente il rubinetto di applicare il vuoto al sistema. </li><li> Un sottile film lipidico si deposita sulle pareti del pallone durante evaporazione rotante formando una pellicola opacache è visibile ad occhio. Lasciate che l&#39;evaporazione rotante proseguire per 0,5-2 ore. Per arrestare il processo, rilasciare lentamente la pressione del vuoto, fermare la rotazione, e togliere il pallone a fondo tondo. </li></ol></li></ol> 3. Lipid risospensione e Vesicle omogeneizzazione <ol><li> Aggiungere 1 ml 18,2 MW H 2 O al film lipidico sottile direttamente nel pallone a fondo tondo. Vortice vigorosamente la soluzione alla massima velocità, circa 3.200 rpm, finché il film lipidico stacca dal vetro, che è osservabile ad occhio. </li><li> Trasferire la dispersione dei lipidi in una provetta da 2 ml. </li><li> Set-up di un anello stand per tenere un omogeneizzatore con una punta di 5 mm. Posizionare un supporto sotto il microcentrifuga omogeneizzatore per tenere saldamente la dispersione dei lipidi. Risciacquare l&#39;elemento disperdente del omogeneizzatore immergendo la punta in 18,2 MW H 2 O e funzionante per alcuni secondi. </li><li> Posizionare l&#39;elemento disperdente direttamente nella dispersione lipidica garantendo thsulla punta non tocchi il fondo della provetta. Omogeneizzare per 1 min a livello di potenza 4 o 14.000 rpm. </li></ol> 4. Vescicola Estrusione e liofilizzazione <ol><li> Assemblare le parti della mini-estrusore (Figura 2), che consiste in un involucro esterno e un dado di bloccaggio che ospita due membrane teflon interno supporta, due O-ring, e un cuscinetto Teflon. <ol><li> Posizionare i due O-ring nelle scanalature dei supporti membrane interne. Prewet due filtri e una membrana 400 nm. I filtri saranno collocati contro il Teflon all&#39;interno degli O-ring con la membrana tra loro. </li><li> Posizionare la membrana supporta nella guaina estrusore con la membrana circondato da due filtri in fra gli O-ring. Posizionare il cuscinetto in teflon all&#39;interno del carter e fissare il dado di fermo e serrare a mano. </li></ol></li><li> Risciacquare due siringhe e riempire uno con 18,2 MW acqua. Inserire gli aghi della siringa nel piccolo holes in teflon su entrambe le estremità del gruppo estrusore. Gli aghi devono scivolare nel facile, non forzare gli aghi. Fissare l&#39;estrusore con le siringhe nel corpo estrusore e fissare. </li><li> Passare l&#39;acqua attraverso l&#39;estrusore premendo lentamente l&#39;acqua fuori una siringa e nell&#39;altro. Questo rappresenta un passaggio. Ripetere per un totale di tre passaggi di assicurare che non vi siano perdite presenti. Rimuovere la siringa di acqua e smaltire l&#39;acqua. </li><li> Riempire una siringa con il campione, allegare l&#39;estrusore, e lentamente passare la soluzione attraverso la membrana vescicola come descritto sopra nel passo 4.3. Ripetere 10 volte per un totale di 11 brani. Dell&#39;andamento del processo di estrusione, il campione diventa meno torbido e facile spingere attraverso la membrana. Una improvvisa diminuzione della resistenza, comunque, di solito indica una rottura della membrana. </li><li> Trasferire la soluzione vescicola estruso e fare 40 microlitri aliquote delle vescicole in provette da microcentrifuga.Flash congelare ciascuna aliquota in ghiaccio secco o in azoto liquido. </li><li> Lyophilize ciascuna aliquota con un evaporatore centrifugo notte a 30 ° C. Conservare le vescicole vuote liofilizzate a -20 ° C. </li></ol> 5. Incapsulando meccanismi di trascrizione-traduzione <ol><li> Miscelare i componenti della reazione di trascrizione-traduzione e aggiungere 20 unità di inibitore della RNasi. Incubare in ghiaccio. </li><li> Aggiungere il modello di DNA. Per una reazione di controllo, 250 ng di plasmide mVenus codifica una proteina fluorescente o simile dietro un promotore trascrizionale T7 e un forte E. coli sito di legame del ribosoma è raccomandato. </li><li> Portare il volume finale di 25 microlitri di acqua priva di RNasi. </li><li> Idrato una aliquota di vescicole liofilizzati (dal punto 4.6) con 10 microlitri della reazione assemblato nel passo 5.3. Brevemente vortex la miscela fino a quando le vescicole sono risospesi. Questo dovrebbe richiedere meno di 30 sec. </li><li> Incubare la reazione in ghiaccio per 30 min per permettere le vescicole a gonfiarsi. </li><li> Diluire la miscela vescicola 20 volte ad un volume totale di 30 microlitri con l&#39;aggiunta di 1,5 ml di vescicole in 27,0 ml di 50 mM Tris-HCl, 50 mM NaCl, pH 7,4 e 1,5 ml di 20,2 mg / ml di proteinasi K. DNasi e RNasi possono anche essere aggiunti a questo punto come alternativa alla proteinasi K a degradare materiale extravesicular. </li><li> Incubare per almeno 2,5 ore a 37 ° C. </li></ol> 6. Microscopia <ol><li> Esaminare le vescicole e il progresso della produzione di proteina fluorescente in momenti diversi. Le vescicole avranno un diametro maggiore rispetto alle 400 nm pori di dimensioni della membrana utilizzata per vescicola estrusione. <ol><li> Preparare una camera del campione mettendo un 20 x 5 mm distanziale di silicio su un vetrino da microscopio standard. Pipettare 10 ml di vescicole nell&#39;apposita camera. Posizionare un vetrino di vetro siliconato sopra la camera. </li><li> Osservare le vescicole con un 63X olio-dispersione or obiettivo analogo da campo chiaro e microscopia a fluorescenza con filtro corrispondente per la proteina fluorescente sfruttati. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Anche se la biologia sintetica privo di cellule è ancora nella sua infanzia, i progressi hanno gettato le basi da cui sempre più complessi sistemi di cellule simili possono essere fatte. La ricostituzione di meccanismi di trascrizione-traduzione da completamente definita componenti 9 all&#39;interno di vescicole 28 è stato particolarmente significativo nel facilitare gli sforzi successivi nella costruzione artificiale sensibile ambientalmente cells17, 18. Allo stesso modo, gli studi sulle cellule artificiali sono stati utilizzati per sondare i processi evolutivi 4,29,30, i dettagli meccanicistici di RNA e proteine ​​22,31, le influenze di metabolica load32, 33, e l&#39;assemblaggio delle particelle virali 34. È importante sottolineare che, abbastanza Ormai sappiamo che le funzioni cellulari di base può essere ricostituita all&#39;interno di vescicole in laboratorio seguendo questi precedenti relazioni ei protocolli descritti nel presente documento. Oltre ad essere facile, l&#39;incapsulamento descritto procedure ha diversi vantaggi. Ad esempio, molti vuoti, aliquote vescicola liofilizzati possono essere fatte in anticipo e conservati a -20 ° C per un uso successivo. Il protocollo non soggette molecole biologiche ai solventi organici, sbalzi di temperatura, o lunghi periodi di dialisi. Ci aspettiamo che la dolcezza della procedura faciliterà l&#39;integrazione di componenti aggiuntivi, se necessario. Inoltre, non abbiamo osservato effetti negativi per cambiare la composizione lipidica della membrana su incapsulamento o efficienza di trascrizione-traduzione. Pertanto, concettualmente, potrebbe essere sfruttata lipidi più suscettibili alla incorporazione di proteine ​​di membrana, morfologie specifiche, o di visualizzazione. La maggiore limitazione del metodo descritto è che le vescicole risultanti non sono omogenee in dimensioni o lamellarity. Per molte applicazioni, queste difficoltà non interferiscono con l&#39;interpretazione dei dati. Tuttavia, se necessario, ulteriori passi possono essere incorporati a stretto thdistribuzione delle dimensioni di posta e diminuire gli strati di membrane, come i cicli di estrusione dopo incapsulamento, gelo-disgelo, o dialisi 35. Saranno sviluppati metodi indubbiamente meglio che eludono questi e altri problemi. Fino ad allora, troviamo il protocollo qui descritto per essere adatto per la costruzione di mimici cellulari.

Privo di cellule, in vitro le reazioni di trascrizione-traduzione e la generazione di vescicole di lipidi sintetici sono nulla di nuovo. Tuttavia, combinando i due in un cellulare imitare è significativamente più challenging1-6. E. coli estratti cellulari con o senza T7 RNA polimerasi possono essere utilizzati come fonte di meccanismi di trascrizione-traduzione 7,8. Estratti cellulari beneficio dalla presenza di componenti cellulari aggiuntivi che possono facilitare l&#39;espressione proteica e pieghevole. In alternativa, una miscela di RNA purificati individualmente e molecole proteiche, cioè il sistema PURE 9, può essere usato per mediare la sintesi proteica intravesicular 4,10-14. Il sistema PURE permette la costruzione di mimici cellulari completamente definite e non soffre l&#39;attività nucleasi trovato in estratti cellulari. In pratica, ciò significa che è necessario molto meno stampo di DNA, facilitando così i processi a bassa efficienza di incapsulamento 11 </sup&gt;. Anche se meno frequente, imita cellulari possono essere costruiti con estratti di cellule derivate da eucarioti cells15. Finora, cascate incapsulati geneticamente codificate e mima cellulari che percepiscono l&#39;ambiente sono stati segnalati 16-18. Il modo più semplice per monitorare le reazioni di trascrizione-traduzione è quello di misurare la fluorescenza o luminescenza di elementi geneticamente codificati. Tipicamente, lucciola luciferasi 19 o GFP sono utilizzati, anche se in vitro reazioni sono frequentemente misurate da radiomarcatura. Rilevazione a fluorescenza consente inoltre il monitoraggio delle popolazioni di vescicole 20,21 attraverso metodi basati citometria, offrendo così un po &#39;di comprensione della natura stocastica dei processi biologici simili. Questi metodi di controllo sono stati utilizzati per definire un piccolo insieme di regole di progettazione e di una libreria di parti da cui costruire, includendo una collezione di proteine ​​fluorescenti che sono compatibili con in vitro trascrizione-traduzione 22, l&#39;influenza di organizzazione genetica sull&#39;espressione 22, l&#39;attività dei fattori sigma 16, e l&#39;efficienza trascrizionale terminatori 23. Tuttavia, c&#39;è ancora molto che deve essere fatto per aumentare la capacità di costruire prevedibile in vitro, dispositivi geneticamente codificati. Ci sono molti metodi disponibili per fare vescicole. I metodi più comuni dipendono dalla generazione di un film lipidico sottile su una superficie di vetro seguita da risospensione in solution24 acquosa. Se la soluzione acquosa contiene meccanismi di trascrizione-traduzione, per esempio, allora una frazione delle vescicole formato dovrebbe contenere i componenti necessari per la produzione di proteine. Tuttavia, l&#39;efficienza di incapsulamento di tali metodi è bassa, il che significa che solo una piccola percentuale di vescicole sono attivi. Molti dei metodi alternativi caratterizzati da molto superiore eff incapsulamentoiciency sfruttare la conversione di goccioline di emulsione acqua-in-olio di vescicole. Mentre è probabile che tali metodi saranno all&#39;ordine in futuro, attualmente questi metodi soffrono la necessità di attrezzature specializzate e danno vescicole di membrana con composizioni alterati 25. Un vantaggio di acqua-in-olio ai metodi vescicole è il potenziale di membrana di controllare lamellarity. Il metodo qui descritto è basato sul protocollo sottile film lipidico descritto dal laboratorio Yomo 11 con lievi modifiche, compresa una fase di omogeneizzazione aggiuntiva. Questo metodo è facile, economico, e dà vescicole robusti e adatti per l&#39;incapsulamento dei meccanismi di trascrizione-traduzione.

<table><tbody><tr><td>Kit di preparazione rapida Mini Spin</td><td>Spettrometro Qiagen</td><td>27104</td><td></td></tr><tr><td></td><td>NanoDrop 1000</td><td>NDB767ND</td><td></td></tr><tr><td>POPC</td><td>Avanti Lipidi polari</td><td>770557</td><td>MW 760 g/mol Temperatura di transizione -2 &deg; C CAS# 26853-31-6</td></tr><tr><td>Etanolo</td><td>Sigma Aldrich</td><td>459836</td><td>anidro, >99,5%</td></tr> <tr><td>Alcool fenoliforme-cloroformico-isoamilico 25:24:1, per uso in biologia molecolare</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P3803-100mL</td><td>Saturo con 10 mM Tris, pH 8,0, 1 mM EDTA</td></tr><tr><td>Cloroformio</td><td>Grado biotecnologico Fluka</td><td>496189-1L</td><td>Contiene etanolo allo 0,5-1,0% v/v come stabilizzante</td></tr><tr><td>Bottiglie</td> <td>di vetro ambrato marroneVWR</td><td>89043-518</td><td>55X 48 mm</td></tr><tr><td>Evaporatore rotante</td><td>Buchi Rotovapor R-210/Sigma</td><td>Z563846EU-1EA</td><td>Con jack e bagnomaria, giunto 29/32 240 V</td></tr><tr><td>Miscelatore a vortice analogico</td><td>VWR</td><td>945300</td><td>Velocità 1.000-3.200 giri/min</td></tr><tr><td>Omogeneizzatore</td><td>IKA T10 Basic Ultra-Turbax</td><td>3420000</td><td></td></tr><tr><td>Mini-estrusore</td><td>Avanti Polar Lipids</td><td>610020</td><td></td></tr><tr><td>Filtri estrusore</td><td>Whatman</td><td>610014</td><td>disco di scarico 10 mm&nbsp;</td></tr><tr><td>Estrusore membrana in policarbonato 400 nm</td><td>Whatman</td><td>61007</td><td>policarbonato nucleoporo&nbsp;</td></tr><tr><td>Concentratore</td> di DNA <td>Labconco</td><td>7970011</td><td>Centritrap</td></tr><tr><td>a vuoto veloce Kit PURExpress New</td><td>England Biolabs</td><td>Inibitore dell'RNAsi NRM</td> #E6800S <td></td></tr><tr><td>(40.000 U/ml)</td><td>New England Biolabs</td><td>#M0307S</td><td></td></tr><tr><td>Proteinasi K (20,2 mg/ml)</td><td>Fermentas</td><td>#EO0491</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscopio</td><td>Zeiss Observer Z1 una telecamera</td><td></td><td></td>AxioCam MRm</tr><tr><td>RealTime</td><td>CFX96 Sistema di rilevamento PCR in tempo reale (Biorad)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pressa in silicone per sigillare&nbsp; &nbsp;-Molecular Probe</td><td>Life Technologies</td><td>P18174</td><td>Resistente da&nbsp; -25-30 &deg; C</td></tr><tr><td>Vetrini copricerchio in vetro siliconato</td><td>Hampton Research</td><td>HR3-231</td><td>&nbsp; &nbsp; Diametro= 22 mm</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>NIH</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

l&#39;incapsulamento di trascrizione privo di cellule e macchinari traduzione in vescicole per la costruzione di mimics cellulari

The Encapsulation of Cell-free Transcription and Translation Machinery in Vesicles for the Construction of Cellular Mimics

Come spostamenti interesse da singole molecole a sistemi di molecole, un numero crescente di laboratori hanno cercato di costruire dal basso imita cellulari che meglio rappresentano la complessità della vita cellulare. Ad oggi ci sono una serie di percorsi che potrebbero essere adottate per costruire imita compartimenti cellulari, compreso lo sfruttamento delle emulsioni acqua-in-olio, dispositivi microfluidici, e vescicole. Ognuna delle opzioni presenta vantaggi e svantaggi specifici. Ad esempio, emulsioni acqua-in-olio sono ad alto rendimento incapsulamento ma non imitano bene la barriera di permeabilità delle cellule viventi. Il vantaggio principale dei metodi qui descritti è che sono tutti facili ed economici da realizzare. Meccanismi di trascrizione-traduzione è incapsulato all&#39;interno di vescicole fosfolipidiche attraverso un processo che sfrutta strumentazione comune, come ad esempio un evaporatore centrifugo e un estrusore. Le reazioni sono monitorati mediante spettroscopia di fluorescenza. Il protocollos può essere adattato per l&#39;espressione di proteine ​​ricombinanti, la costruzione di imita cellulari, l&#39;esplorazione dei requisiti minimi per la vita cellulare, o l&#39;assemblaggio di circuiti genetici.

Microscopia di fluorescenza che rivela la fluorescenza si osserva solo all&#39;interno delle vescicole, perché il materiale extravesicular è enzimaticamente degradata (Figura 3). Per l&#39;espressione di mVenus, intravesicular fluorescenza comincia ad essere osservata dopo 1,5 ore a 37 ° C e raggiunge l&#39;intensità di fluorescenza massima entro 6 ore. La temperatura ottimale e il tempo di incubazione può variare a seconda dei costrutti specifici utilizzati. Per esempio, le proteine ​​fluorescenti diverse maturano in modo diverso in un modo dipendente dalla temperatura. In altre parole, l&#39;osservazione della produzione di proteine ​​non è solamente dipende sintesi proteica e ripiegamento, ma anche sulla formazione cromoforo. Sintesi proteica generale può essere aumentata incorporando pori proteine ​​di membrana per permettere un afflusso di componenti impoverito necessari per la trascrizione e la traduzione 27. Si consiglia di effettuare un analogo trascrizione-traduzionizione reazione in assenza di vescicole a garantire che il costrutto genetico sfruttati è funzionale. Questa reazione di controllo è più facilmente monitorato mediante spettroscopia di fluorescenza anziché microscopia. Figura 4 mostra una reazione di trascrizione-traduzione in vitro di un costrutto mVenus codifica. Le reazioni non incapsulata danno totale intensità molto maggiore fluorescenza di reazioni intravesicular simili. Questo è dovuto alla efficienza di incapsulamento e poiché il volume totale intravesicular è molto inferiore al volume extravesicular (cioè un effetto di diluizione). <img alt="Figura 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51304/51304fig1.jpg" width="600px" /> Figura 1. L&#39;evaporatore rotante e pompa del vuoto. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51304/51304fig1highres.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere l&#39;immagine ingrandita</a> . Figura 2. L&#39;involucro e parti dell&#39;estrusore sono mostrati separatamente. Da sinistra a destra, la siringa, il dado di fermo, cuscinetto in teflon, membrana interna supporta con O-ring nero uno di fronte all&#39;altro, estrusore tubo esterno e seconda siringa. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51304/51304fig2highres.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere l&#39;immagine ingrandita</a> . <img alt="Figura 3" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51304/51304fig3.jpg" width="600px" /> Figura 3. Immagini di fluorescenza di produzione di proteine ​​mVenus in liposomi A e C:.. Immagini in campo chiaro di vescicole multilamellari dopo 1,5 ore e 2,5 ore e B &amp;# 160; D: La produzione di mVenus è visualizzato mediante fluorescenza (di colore verde), dopo 1,5 e 2,5 ore, rispettivamente. Barra di scala è di 20 micron. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51304/51304fig3highres.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere l&#39;immagine ingrandita</a> . <img alt="Figura 4" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51304/51304fig4.jpg" width="600px" /> Figura 4. Nella reazione di controllo vitro di nonencapsulated trascrizione in vitro e la traduzione di mVenus. Intensità di fluorescenza è stata misurata ogni 5 min oltre 4 ore. I dati sono stati acquisiti con uno strumento Real-Time PCR. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51304/51304fig4highres.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere l&#39;immagine ingrandita</a> .

Qui descriviamo semplici metodi per la preparazione di vescicole, l&#39;incapsulamento di trascrizione e traduzione macchinari, e il monitoraggio della produzione di proteine. La risultante sistemi cell-free possono essere utilizzati come punto di partenza da cui costruire imita cellulari sempre più complessi.

L&#39;incapsulamento di trascrizione privo di cellule e macchinari traduzione in vescicole per la costruzione di Mimics cellulari

As interest shifts from individual molecules to systems of molecules, an increasing number of laboratories have sought to build from the bottom up ...

L'obiettivo generale di questa procedura è costruire mimici cellulari da zero attraverso l'incapsulamento di macchinari per la trascrizione e traduzione in vescicole. Questo viene realizzato preparando innanzitutto un film lipidico sottile. Successivamente, dopo aver formato le vescicole, i componenti vengono assemblati per la trascrizione e traduzione in vitro.L'ultimo passaggio consiste nel posizionare il macchinario per la trascrizione e la traduzione all'interno delle vescicole. In definitiva, l'attività del mimico cellulare può essere monitorata mediante microscopia. Il vantaggio principale di questa tecnica rispetto ad altri metodi di incapsulamento esistenti, come le emulsioni acqua-olio, i dispositivi microreticolati o il processo di conversione da emulsione acqua-olio a vescicole, è che questo metodo è semplice, economico e produce vescicole robuste con proprietà di permeabilità particolarmente adatte alla costruzione di mimici cellulari che sfruttano la funzione proteica codificata geneticamente.Questo metodo non può aiutare a esplorare settori chiave della biologia sintetica cell-free e di tipo bottom-up, come la definizione della base minima della vita e lo sviluppo di tecnologie non viventi ma simili alla vita. Per preparare un sottile film lipidico, iniziare sciogliendo POPC nel cloroformio a una concentrazione di 40 milligrammi per millilitro, quindi prelevare un'aliquote di 12 micromoli di POPC e trasferirla in un pallone rotondo da cinque millilitri. Successivamente, utilizzare una clip circolare per fissare saldamente il pallone al tubo di distillazione di un evaporatore rotante.Quindi, utilizzando l'impostazione sei, avviare una rotazione intensa e costante del pallone. Successivamente, avviare la circolazione dell'acqua attraverso la serpentina del condensatore. L'acqua non necessita di essere riscaldata poiché il cloroformio ha un punto di ebollizione basso, pari a 61,2 gradi Celsius.A un'atmosfera, assicurarsi che il sistema sia aperto all'atmosfera verificando che il rubinetto sia aperto per applicare contemporaneamente il vuoto al sistema. Accendere la pompa a vuoto mentre si chiude lentamente il rubinetto. Lasciare proseguire l'evaporazione rotativa per 0,5 fino a due ore dopo che il cloroformio non è più visibile ad occhio nudo.Per arrestare il processo, rilasciare lentamente la pressione del vuoto e fermare la rotazione. Rimuovere il pallone e si noterà un sottile film lipidico opaco visibile sulle pareti del pallone, da risospendere. Iniziare aggiungendo un millilitro di acqua deionizzata da 18,2 mega ohm al film lipidico sottile nel pallone a fondo rotondo, quindi vortexare vigorosamente la soluzione a circa 3.200 giri al minuto fino a quando il film lipidico si stacca dal vetro.Questo dovrebbe richiedere circa un minuto. Successivamente, trasferire la dispersione lipidica in una provetta microcentrifuga da due millilitri. Allestire un treppiede per sostenere un omogeneizzatore dotato di una punta da cinque millimetri e posizionare una provetta microcentrifuga.Posizionarsi sotto l'omogeneizzatore per tenere saldamente la dispersione lipidica. Quindi inserire l'elemento dispersore direttamente nella dispersione lipidica, assicurandosi che la punta non tocchi il fondo del tubo. Omogeneizzare la dispersione lipidica per un minuto.Al livello di potenza quattro, assemblare le parti del mini estrusore, che comprende un alloggiamento esterno e un dado di ritenzione che contiene due supporti interni in teflon, due anelli O-ring e un cuscinetto in teflon. Posizionare i due anelli O-ring nelle scanalature dei supporti della membrana interna. A questo punto, pre-irrorare due filtri e una membrana con cutoff di 400 nanometri e posizionare i filtri bagnati contro la superficie in teflon all'interno degli anelli O-ring. La membrana con cutoff di 400 nanometri è posizionata tra i due filtri.Posizionare i supporti della membrana nel rivestimento esterno dell'estrusore, con la membrana circondata da due filtri tra le guarnizioni ad O. Inserire il cuscinetto in teflon all'interno del rivestimento e fissarlo con un dado di ritenzione a mano. Successivamente, risciacquare due siringhe e riempirne una con acqua da 18,2 megaohm.Inserire gli aghi della siringa nei piccoli fori del teflon alle due estremità dell'insieme estrusore. Gli aghi devono scivolare facilmente. Non forzare gli aghi.Quindi fissare l'insieme all'interno della carcassa dell'estrusore. Ora far passare l'acqua attraverso l'estrusore spingendo lentamente l'acqua da una siringa all'altra. Questo rappresenta un passaggio.Eseguire tre passaggi per verificare la presenza di perdite, quindi rimuovere le siringhe. Riempire una nuova siringa con la soluzione di vescicole. Attaccarla all'estrusore e far passare lentamente la soluzione attraverso la membrana.Ripetere questo procedimento per un totale di 11 passaggi. Con il campione, gradualmente il campione diventa meno torbido e più facile da spingere attraverso la membrana. Una diminuzione improvvisa della resistenza, tuttavia, indica solitamente una rottura della membrana. Al termine, preparare aliquote da 40 microlitri della soluzione di vescicole estruse.Congelare rapidamente ogni aliquota in ghiaccio secco o azoto liquido. Una volta congelate, utilizzare un evaporatore centrifugo per liofilizzare ogni aliquota durante la notte. A 30 gradi Celsius, le vescicole vuote liofilizzate possono essere conservate a meno 20 gradi Celsius. Iniziare l'incapsulamento mescolando i componenti della reazione di trascrizione e traduzione e aggiungendo 20 unità di inibitore di RNA.Incubare i reagenti sul ghiaccio, quindi aggiungere il template di DNA come controllo, utilizzando 250 nanogrammi di un plasmide che codifica per m venus o una proteina fluorescente simile posta dietro un promotore trascrizionale T7 e un sito di legame per il ribosoma di E. coli di forte attività. Portare il volume finale delle reazioni a 25 microlitri. Con acqua libera da RNasi, idratare ora 40 microlitri di vescicole liofilizzate in 10 microlitri della miscela di reazione.Vortexare brevemente la miscela fino a quando i vescicoli non sono risospesi. Questo dovrebbe richiedere meno di 30 secondi. Incubare la reazione sul ghiaccio per 30 minuti per permettere ai vescicoli di rigonfiarsi.Successivamente, diluire la miscela di vescicole di 20 volte fino a un volume finale di 30 microlitri, mescolando 1,5 microlitri di vescicole con 27,0 microlitri di soluzione di cloruro di tris e 1,5 microlitri di soluzione madre di proteinasi K. Incubare ora la miscela di vescicole diluita per almeno due ore e mezza a 37 gradi Celsius.Preparare una camera per campioni posizionando un distanziatore in silicone di 20 per 5 millimetri su un microscopio standard. Introdurre con pipetta 10 microlitri di vescicole nella camera per campioni e coprire la camera con un cover slip in vetro silanizzato. Successivamente, osservare le vescicole mediante microscopia in campo chiaro e in fluorescenza utilizzando un obiettivo da 63 x ad immersione in olio o equivalente.Utilizzando il set di filtri appropriato per la proteina fluorescente impiegata, la microscopia a fluorescenza rivela che la fluorescenza è osservata esclusivamente all'interno delle vescicole. Il materiale extravescicolare viene degradato enzimaticamente per l'espressione di en intravescolare venoso. La fluorescenza inizia a essere osservata dopo 1,5 ore a 37 gradi Celsius.M Venus raggiunge una fluorescenza massima entro sei ore. Qui è osservata a 2,5 ore. Questa produzione proteica dipende dalla sintesi e dal ripiegamento delle proteine, nonché dalla formazione del cromoforo.Una reazione di trascrizione e traduzione in vitro analoga, che comprende un costrutto e il rivestimento di mVenere senza vescicole, viene utilizzata come controllo. Tali reazioni presentano intensità di fluorescenza più elevate a causa dell'efficienza di incapsulamento e di un effetto di diluizione. Per questo motivo, vengono monitorate mediante spettroscopia e non mediante microscopia.Questa procedura può essere utilizzata per rispondere a domande relative alla regolazione e agli effetti del carico metabolico sull'attività delle cellule artificiali. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come costruire mimici cellulari incapsulando direttamente il macchinario per la trascrizione e traduzione all'interno di vescicole sintetiche.

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