Name: Una pelle piena Difetto modello per valutare Vascolarizzazione di Biomateriali In Vivo (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-28T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 56 s
Description: Impara a visualizzare e quantificare la vascolarizzazione nei biomateriali ingegnerizzati utilizzando un modello di difetto cutaneo completo nei topi. Questo metodo offre un'analisi affidabile e conveniente della rete vascolare.

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Integra modello di rigenerazione dermica è stato gentilmente fornito da Integra LifeSciences Corporation. Fonti di fondi a sostegno del lavoro: Questo lavoro è stato parzialmente finanziato dal CIRM-BMBF precoce II Premio traslazionale e il Centro FONDAP per la regolazione del genoma sia per JTE (Nr 15.090.007.).

1 Preparazione di Ponteggi <ol><li> Generare campioni dei ponteggi utilizzando 12 millimetri pugni biopsia. </li><li> Per introdurre molecole bioattive o cellule nel patibolo, drenare i ponteggi da loro stringendo delicatamente con una garza sterile. Poi reidratare i ponteggi aggiungendo 160 ml di una soluzione contenente le molecole bioattive o cellule di interesse. Ricontrollare il successo di bioattivazione con cellule attraverso saggi metaboliche come MTT saggi. </li><li> Se necessario, fissare i composti o le cellule da testare all&#39;interno del ponteggio fornendo loro, ad esempio in una soluzione di fibrina-trombina o un idrogel, ancora attraverso reidratazione come descritto al punto 1.2. NOTA: Questo passaggio può essere utile quando i composti o le cellule non attribuiscono meccanicamente al materiale. Si può anche controllare le dinamiche di rilascio dei composti .. </li><li> Preparare le maglie titanized, che saranno collocati sotto ogni impalcatura in ogni gruppo di sperimentazione e di controllo, da Cutting i pezzi a forma rotonda, di circa 14 mm di diametro. NOTA: La maglia titanized funziona come un confine fisico richiesto per delimitare il tessuto rigenerato dal letto della ferita. </li></ol> 2. Animali <ol><li> Prima attuazione del modello presentato, consultare le leggi di protezione degli animali corrispondenti e ottenere il permesso da parte delle autorità locali. In questo lavoro, tutti gli esperimenti sono stati effettuati con topi, secondo l&#39;attuale atto benessere degli animali tedesca e approvati dal governo distretto dell&#39;Alta Baviera (Regierung von Oberbayern). </li><li> Scegliere con cura l&#39;animale e la tensione. Anche se il modello è stato stabilito per i topi, che può essere tradotto ad altri animali comuni, come ratti, conigli e maiali. </li><li> Nel caso in cui si sta lavorando con gli animali pelo, radere la parte posteriore degli animali prima dell&#39;impianto degli scaffold. NOTA: Questo lavoro utilizza topi di 6 a 8 settimane di età con un peso corporeo compreso tra 20 ge 25 g, ma diverse età e bpesi ody possono anche essere utilizzati. </li></ol> 3 Anestesia <ol><li> Effettuare l&#39;operazione in condizioni sterili. Al fine di mantenere la normale temperatura corporea dell&#39;animale, utilizzare un tappetino riscaldante. </li><li> Prima di inalazione anestesia gli animali ricevono buprenorfina alla dose di 0,05-0,1 mg / kg di peso corporeo, per via sottocutanea ogni 8 ore. </li><li> Posizionare l&#39;animale in anestesia per inalazione (isoflurano) oppure applicare procedure standard equivalenti. Confermare l&#39;anestesia sia premendo delicatamente le dita dei piedi dell&#39;animale o tramite un pizzico di pelle. </li><li> Per evitare essiccosi, iniettare 0,5 ml di soluzione salina fisiologica sottocute all&#39;inizio dell&#39;operazione. </li></ol> 4. escissione della pelle <ol><li> Mettere l&#39;animale in posizione prona e segnare la linea mediana della schiena del mouse con una punta fine penna permanente (Figura 1A). </li><li> Definire l&#39;area di escissione. Mettere i difetti nell&#39;area mostrata in Figuri 1C. Si noti che se i difetti siano troppo caudalmente, gli animali sono più inclini a rimuovere le medicazioni ed i ponteggi. </li><li> Crea rotondo difetti bilaterali utilizzando una biopsia del punzone 10 mm (Figura 1B). Il punzone deve essere attentamente forzato contro la pelle e non deve essere usato per tagliare completamente attraverso la pelle, ma per delineare l&#39;area di escissione (Figure 1C e 1E). </li><li> Sollevare delicatamente la pelle sensibile con una pinza e incidere lungo il cerchio marcato con le forbici chirurgiche sottili (Figura 1F). In caso di sanguinamento, comprimere delicatamente con una garza sterile. Una descrizione passo-passo della escissione è mostrato in Figura 1. NOTA: Il difetto viene creato con un punzone inferiore a quello per la generazione dei ponteggi, per compensare l&#39;allargamento del difetto dovuto alla elasticità della pelle. </li></ol> 5. Scaffold impianto <ol><li> Al fine di rendere lo spazio per il titasciuta maglia, estendere la separazione della pelle e dei tessuti sottostanti alle frontiere ferita per 2-4 mm (Figura 2A). </li><li> Posizionare il titanized maglia nel difetto direttamente sul letto della ferita e sotto i bordi della ferita (Figure 2A e B). </li><li> Luogo Ponteggi direttamente sulla maglia. </li><li> Suturare i ponteggi ai bordi della ferita adiacenti con 4 a 6 singoli nodi, lasciando i bordi leggermente sopra il patibolo (Figura 2C). NOTA: Evitare l&#39;uso di suture biodegradabili. </li><li> Suturare una ferita medicazione trasparente sopra i difetti di proteggere il ponteggio pur consentendo il monitoraggio della ferita (Figura 2D). </li></ol> 6. postoperatoria Cura <ol><li> Mantenere un mouse per gabbia per evitare la manipolazione reciproca della medicazione e ponteggi. </li><li> Valutare lo stato generale dell&#39;animale su una base quotidiana per attività osservando motore, il peso corporeo, segni di dolore, tolleranzaper la medicazione e auto-mutilazione. Monitorare anche la zona della ferita di sanguinamento, locale e segni sistemici di infezione e la posizione della medicazione. </li><li> Per ridurre al minimo il dolore dell&#39;animale, iniettare buprenorfina ogni giorno alla dose di 0,05-0,1 mg / kg di peso corporeo o farmaci analgesici equivalente. </li><li> Se il mouse rimuove o danneggia la medicazione della ferita, sostituire o ricollegare sotto anestesia. </li></ol> 7 Eutanasia e Espianto dell&#39;impalcatura <ol><li> A intervalli di tempo desiderati, sacrificare gli animali da overdose di pentobarbital (150 mg / kg). </li><li> Segnare il sito di escissione pelle con un pennarello indelebile, che dovrebbe includere i ponteggi e quanto del mouse schiena pelle possibile (Figura 3A). </li><li> Incidere la pelle lungo le linee segnate con un paio di forbici o un bisturi. Staccare tutta la pelle, compresi i ponteggi e la rete titanized, dal tessuto sottostante attraverso la preparazione smussato (Fifigura 3B). </li><li> Posizionare il tessuto espiantato sdraiati su una piastra di Petri (Figura 3C e D) </li></ol> 8 Visualizzazione e quantificazione della rete vascolare <ol><li> La transilluminazione: <ol><li> Configurare un dispositivo transilluminazione, montando una piastra di Petri di sopra di una forte sorgente di luce bianca (100 Watt lampadina standard). </li><li> Fissare una fotocamera digitale sopra il transilluminatore per ottenere immagini digitali. </li><li> Posizionare i campioni a testa in giù sulla piastra di Petri sul dispositivo transilluminazione. </li><li> Scattare foto dei ponteggi completi in modalità macro, nonché delle aree di uguali dimensioni di pelle normale. Conservare le immagini in formato TIFF per ulteriori analisi digitale. </li><li> Salvare il tessuto per ulteriori analisi biochimica o istologica. </li></ol></li><li> Segmentazione digitale e quantificazione: <ol><li> Scaricare e installare il software VesSeg-Tool, che può essere ottenuto free di carica a: <a href="http://www.isip.uni-luebeck.de/index.php?id=150&amp;L=2%255">http://www.isip.uni-luebeck.de/index.php?id=150&amp;L=2%255</a> . </li><li> Apri l&#39;immagine con il software VesSeg-Tool. </li><li> Selezionare l&#39;area dell&#39;immagine oggetto del ponteggio per l&#39;analisi digitale (Immagine → Seleziona). </li><li> Per aumentare il contrasto delle navi usare l&#39;opzione &quot;Isteresi soglia&quot; (Immagine → valorizzazione Vaso filtro → Isteresi soglia → Top-Hat trasformazione → Calcolare la valorizzazione nave). </li><li> Procedere con la segmentazione della mappa imbarcazione (confini Immagine → valorizzazione Vaso filtro → Isteresi soglia → Threshold). Selezionare la prima soglia (&quot;copertura Vessel&quot;), così ogni pixel, che è anche lontanamente nave simile, sarà etichettato come nave. Selezionare la seconda soglia (&quot;copertura Background&quot;), in modo che solo i pixel che sono particolarmente nave-come saranno etichettati come i vasi. </li><li> Controllare la proposta automatica di segmentazione manualmente per aggiungere le navi non catturati e per eliminare i falsi positivi strutture comuni, che di solito sono strutture lunghe e sottili vasi simili, come peli o suture. </li><li> Calcolare la lunghezza dei vasi e la superficie totale coperta da navi (statistiche Immagine → Immagine → statistiche immagine binaria). NOTA: Per il calcolo della nave lunghezze, navi in risultante cartina nave sono assottigliate a linee con una larghezza di un pixel 20. </li></ol></li><li> Analizzare l&#39;area pelle nativo sotto gli stessi parametri i ponteggi, assegnando un valore di 100% per il tessuto nativo e riguardano il patibolo a quel valore. Per esempio, se la percentuale di pixel bianchi è del 60% nel tessuto normale e il 30% nel ponteggio, rappresenterebbe una vascolarizzazione 50% del ponteggio. Nota: La copertura vasi bianco viene assegnato l&#39;area di un quadrato attorno al patibolo. Regolare il numero di pixel bianchi consi coperturadering che l&#39;area del cerchio è significativamente più piccolo (π x R 2) del quadrato (4 x R 2). </li></ol>

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Conflitto di interesse: Tutti gli autori: Nessuno Informativa finanziari: Nessuno degli autori ha un interesse finanziario in uno qualsiasi dei prodotti, dispositivi, o farmaci citati in questo manoscritto.

Vi è la necessità di stabilire approcci di successo nel migliorare la perfusione sanguigna in ingegneria tessutale costrutti, che richiede lo sviluppo di nuovi metodi affidabili per studiare i processi di vascolarizzazione all&#39;interno dei biomateriali. Metodi comuni per la preparazione di scaffold vascolarizzazione ex vivo visibile includono l&#39;uso della microscopia, che fornisce uno strumento ad alta risoluzione. Nella maggior parte dei casi, però, questo metodo è limitato all&#39;analisi di piccole are...

Negli ultimi decenni, l&#39;ingegneria dei tessuti ha aperto una nuova opzione terapeutica per sostituire difetti del tessuto con le cellule del corpo 1. Al fine di sostenere il processo fisiologico di rigenerazione tissutale, ponteggi sono progettati come una struttura biodegradabile, che fornisce uno scenario in cui le cellule dal letto della ferita possono crescere e ripristinare il difetto 2,3. Vascolarizzazione insufficiente è considerata il principale ostacolo, che trattiene la svolta clinico di scaffold bioartificiali 4. Con la ricrescita delle cellule, la domanda di sostanze nutritive e di ossigeno aumenta e vascolarizzazione del materiale diventa essenziale. Vascolarizzazione insufficiente o ritardato può quindi portare a necrosi centrale dei prodotti dell&#39;ingegneria tissutale 5. Inoltre, i vasi sanguigni forniscono le cellule immunocompetenti e rimuovere i residui metabolici nella zona rigenerante. Gli alti tassi di infezione e la bassa rigenerazione sono soloalcune delle conseguenze di una insufficiente perfusione sanguigna osservato in ingegneria dei tessuti, che mirano ad essere evitato aumentando la vascolarizzazione dei ponteggi 6,7. Diverse strategie che mirano a migliorare la vascolarizzazione attenzione sul ruolo chiave del biomateriale stesso e la microstruttura del patibolo. Ci sono sforzi di ricerca intensivi per sviluppare nuovi approcci nello spostare il processo di guarigione dalla riparazione alla rigenerazione, quindi (ri) generazione di un tessuto con le proprietà fisiologiche più vicino a quello da ristrutturare 8,9. Biomateriali che sono stati studiati e valutati con riferimento al loro potenziale rigenerativo inclusi collagene, fibrina, chitosano e alginato 10,11. Questi biomateriali possono essere utilizzati e combinati come una spina dorsale per la costruzione di nuove impalcature utilizzando diverse strategie come decellularization tessuto, auto-assemblaggio, prototipazione rapida e elettrospinning 12. Per ENHANCE propria capacità rigenerativa del corpo, ponteggi possono essere bioattivato. L&#39;incorporazione di crescita angiogenico ricombinante fattori di 13 o vettori di geni che codificano per fattori 14 ha dimostrato di migliorare la vascolarizzazione del patibolo. L&#39;uso di cellule staminali è stato ampiamente dimostrato di essere una strategia promettente per migliorare la vascolarizzazione, dove le cellule stromali mesenchimali e le cellule progenitrici endoteliali hanno guadagnato più attenzione 15,16. Altri approcci tentano di costruire costrutti che contengono le reti dei vasi prefabbricati prima del trapianto 17. Nonostante intensi sforzi nella progettazione patibolo e la loro bio-attivazione, nessuna strategia è migliorata vascolarizzazione a livello clinicamente significativo e, con l&#39;eccezione di sostituzioni dermici in massicce ustioni, la traduzione di materiali bioengineered nella routine clinica si sta solo posto esitante 18 . Una delle ragioni per cui vascolarizzazionedi costrutti di tessuto artificiale è ancora un problema irrisolto, è la difficoltà di valutare il successo delle nuove tecnologie negli approcci in vivo. Anche se gli esperimenti in vitro possono fornire importanti intuizioni del potenziale vascolarizzazione di ponteggi, modelli animali appropriati sono tenuti a studiare i parametri chiave quali la biocompatibilità del materiale, la sicurezza e l&#39;efficacia del trattamento e, di particolare importanza, la vascolarizzazione del tessuto costruire. Pertanto, strumenti affidabili per visualizzare e quantificare le reti dei vasi sanguigni in vivo sono essenziali. In questo studio presentiamo un metodo semplice e affidabile che permette la visualizzazione e la quantificazione della rete vascolare all&#39;interno ponteggi espiantati. Questo metodo si basa sulla transilluminazione tessuto e segmentazione digitale. Poiché questo metodo è non invasivo, permette ulteriori analisi molecolari e istologiche del materiale bersaglio.

<table><tbody><tr><td>Ethilon P-3 13 mm 3/8 cerchio 5-0</td><td>Ethicon, Norderstedt, Germania</td><td>698G</td><td>Ethilon polyamid-6 sutura di taglio inverso di precisione punzoni</td></tr> per <tr><td>biopsia (10 mm)</td><td>Xiomedics, Acuderm inc., Fort Lauderdale, FL, USA</td><td>P1050</td><td></td></tr><tr><td>punzoni per biopsia (12 mm)</td><td>Xiomedics, Acuderm inc., Fort Lauderdale, FL, USA</td><td>P1250</td><td></td></tr><tr><td>Fotocamera digitale&nbsp;</td><td>Ricoh, Hannover, Germania</td><td>Cx1</td><td></td></tr><tr><td>Gazin Mullkompresse&nbsp;</td><td>Lohmann und Rauscher, Neuwied, Germania</td><td>13622</td><td>Garza sterile (10 cm x 10 cm)</td></tr><tr><td>Impalcatura a base di collagene a doppio strato (8' x 10')</td><td>Integra Life Science Corporation, Plainsboro, NJ, USA</td><td>88101</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurano, liquido-gas per anestesia inalatoria&nbsp;</td><td>Baxter, Unterschleissheim, Germania</td><td>100196040</td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital, 16 g / 100 ml</td><td>Fa. Merial, Hallbergmoos</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nuri Nu/Nu Nude mice, CrLNU-Foxn1nu</td><td>Charles River, Sulzfeld, Germania</td><td>Codice ceppo 088</td><td>Topi nudi atimici, da 6 a 8 settimane di età e con un peso corporeo compreso tra 20 e 25 g&nbsp;</td></tr><tr><td>Buprenorfina (0,3 mg/ml)</td><td>Essex Pharma GmbH, Monaco di Baviera, Germania</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rete titanizzata (15 cm x 15 cm), extralight</td><td>PFM Medical AG, K&ouml; ln, Germania</td><td>6000029</td><td></td></tr><tr><td>Tissucol Duo S Immuno 2 ml</td><td>Baxter Germany GmbH, Unterschlei&szlig; heim, Germania</td><td>B1332020110614 Soluzione di</td><td>fibrina-trombina&nbsp;</td></tr><tr><td>Telo adesivo trasparente (30,5 cm x 26 cm)</td><td>KCI Medical Products, Wimborne Dorset, Regno Unito</td><td>M6275009/10</td><td></td></tr></tbody></table>

una pelle piena difetto modello per valutare vascolarizzazione di biomateriali<em&gt; in vivo</em

A Full Skin Defect Model to Evaluate Vascularization of Biomaterials In Vivo

Vascolarizzazione insufficiente è considerata uno dei principali fattori limitanti il ​​successo clinico di costrutti tissutale. Al fine di valutare nuove strategie che mirano a migliorare la vascolarizzazione, metodi affidabili sono tenuti ad effettuare la in-crescita di nuovi vasi sanguigni in impalcature visibili bio-artificiale e quantificare i risultati. Negli ultimi due anni, il nostro gruppo ha introdotto un modello di difetto completo della pelle che consente la visualizzazione diretta dei vasi sanguigni da parte transilluminazione e fornisce la possibilità di quantificazione attraverso la segmentazione digitale. In questo modello, si crea chirurgicamente difetti pieni di pelle nella parte posteriore di topi e li sostituisce con il materiale testato. Molecole o cellule di interesse possono anche essere incorporati in tale materiale, per studiare il loro effetto potenziale. Dopo un periodo di osservazione di uno di propria scelta, i materiali vengono espiantati per la valutazione. Ferite bilaterali offrono la possibilità di fare confronti interni tha minimizzare gli artefatti tra individui nonché di diminuire il numero di animali necessari per lo studio. In confronto ad altri approcci, il nostro metodo offre una semplice, efficace analisi affidabile ed economica. Abbiamo implementato questo modello come strumento di routine per eseguire lo screening ad alta risoluzione durante il test vascolarizzazione di diversi biomateriali e approcci bio-attivazione.

Un difetto pelle piena bilaterale affidabile può essere creato nel topo (Figura 1) in cui la pelle può essere sostituito da un biomateriale in studio (Figura 2). Qui, senza grandi complicazioni si osservano durante o dopo la procedura operativa, né segni macroscopici di infezione o reazione da corpo estraneo. In rari casi, una impalcatura si perde quando un mouse rimuove. Contrazione della ferita non è mai stato osservato (Figura 3). Tissue transilluminazione permesso c...

Vascolarizzazione è la chiave per approcci in ingegneria dei tessuti successo. Pertanto, tecnologie affidabili sono necessari per valutare lo sviluppo di reti vascolari in tessuto-costrutti. Qui vi presentiamo un metodo semplice e conveniente per visualizzare e quantificare vascolarizzazione in vivo.

Una pelle piena Difetto modello per valutare Vascolarizzazione di Biomateriali<em&gt; In Vivo</em

Insufficient vascularization is considered to be one of the main factors limiting the clinical success of tissue-engineered constructs. In order to ...

L'obiettivo generale di questa procedura è visualizzare i vasi sanguigni in costrutti ingegnerizzati di tessuto. Questo viene ottenuto creando un difetto cutaneo completo standardizzato sul dorso dei topi. Successivamente, un campione del materiale ingegnerizzato di tessuto viene impiantato nel difetto cutaneo.Al termine del periodo di osservazione, il materiale viene impiantato e posizionato in un dispositivo di trasilluminazione. Infine, vengono acquisite foto ad alta risoluzione della rete vascolare mediante una fotocamera digitale standard. In ultima analisi, la rete vascolare viene analizzata mediante segmentazione digitale e quantificazione utilizzando il software Vest egg tool.Il vantaggio principale di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti come la microscopia, la tomografia computerizzata o la risonanza magnetica è che consente una visualizzazione e una quantificazione efficaci nel tempo e per causa dei processi vascolari all'interno dei biomateriali, concentrandosi su tutti i nuovi vasi funzionali. Questo metodo può fornire informazioni sulla vascolarizzazione dei materiali di sostituzione dermica. Può inoltre essere applicato ad altri organismi modello o per studiar

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Introduciamo un tutto-mount immunoistochimica e microscopia confocale a scansione laser con l'etichettatura per analizzare più intricata la formazione della rete vascolare nella pelle degli arti embrionali di topo.

Con tutto il supporto per l&#39;analisi immunoistochimica vasi embrionali pelle degli arti: un sistema modello per studiare morfogenesi vascolare diramazione in embrione

L'obiettivo di questo protocollo è quello di costruire un equivalente tridimensionale a tutto spessore della pelle, che assomiglia alla pelle naturale. Con un dispositivo di ferimento automatizzato appositamente costruito, è possibile generare ferite precise e riproducibili in caso di mantenimento della sterilità.

Generazione di una tridimensionale a tutto spessore della pelle Equivalent e Automated Ferimento

Ad oggi, i difetti dei tessuti spessi vengono tipicamente ricostruiti applicando lembi di tessuto autologo o tessuti ingegnerizzati. In questo protocollo, presentiamo un nuovo metodo per l'ingegnerizzazione di un lembo di tessuto vascolarizzato con un peduncolo autologo, per fungere da sostituto dei lembi autologhi.

Progettato Vascolarizzato muscolare Flap

Questa è una linea guida per la costruzione di tessuto vascolarizzato in vivo utilizzando un circuito arterovenoso microchirurgico o una configurazione peduncolare a flusso continuo all'interno di una camera di ingegneria tissutale. I tessuti vascolarizzati generati possono essere impiegati per la rigenerazione degli organi e la sostituzione di difetti tissutali, nonché per test farmacologici e modellazione della malattia.

Ingegneria dei tessuti da parte intrinseca Vascolarizzazione in un<em&gt; In Vivo</em&gt; Camera ingegneria dei tessuti

Descriviamo un approccio microchirurgico per la generazione di un loop arterovenosa (AV) come un modello di analisi vascolarizzazione in vivo in un ambiente isolato e ben caratterizzato. Questo modello non è solo utile per l'indagine di angiogenesi, ma è anche perfettamente adatto per l'ingegneria vascolarizzato assialmente e tessuti trapiantabili.

Il arterovenosa (AV) loop in un modello di Piccoli Animali per studiare Angiogenesi e ingegneria dei tessuti vascolarizzati

Questo video mostra un modello per studiare lo sviluppo dell'iperplasia miointimale dopo un intervento chirurgico di interposizione venosa nei ratti.

Vena interposizione Modello: un modello adatto per studiare Bypass Graft pervietà

Qui, presentiamo un protocollo per visualizzare formazione del vaso sanguigno in vivo e in tempo reale in 3D impalcature da microscopia multifotonica. Angiogenesi in impalcature geneticamente è stato studiato in un modello di difetto critico calvarial murino dell'osso. Più nuovi vasi sanguigni sono stati rilevati nel gruppo di trattamento rispetto ai controlli.

Visualizzando l'angiogenesi da microscopia multifotonica In Vivo in geneticamente 3D-PLGA/nHAp impalcatura per Calvarial riparazione di difetti ossei critici

Qui vengono descritti due modelli di guarigione delle ferite murine, uno progettato per valutare le risposte di guarigione della ferita cellulare e citochina e l'altro per quantificare il tasso di chiusura della ferita. Questi metodi possono essere utilizzati con modelli di malattia complessi come il diabete per determinare i meccanismi di vari aspetti della scarsa guarigione delle ferite.

Valutazione della guarigione acuta delle ferite utilizzando l'impianto di spugna alcolica sottocutaneo dorsale e modelli di ferite cutanee della coda excisionali.

Presentiamo un protocollo dettagliato per generare un modello murine xenograft di malformazione venosa. Questo modello si basa sull'iniezione sottocutanea di cellule endoteliali derivate dal paziente contenenti mutazioni genetiche TIE2 e/o PIK3CA iper-attivanti. Le lesioni dello Xenotrapianto ricapitolano da vicino le caratteristiche istopatologiche del tessuto del paziente VM.

Un modello Xenotranest derivato dal paziente per la malformazione Venosa

L'obiettivo di questo protocollo è quello di descrivere la generazione e l'analisi volumetrica di equivalenti cutanei umani vascolarizzati utilizzando tecniche accessibili e semplici per la coltura a lungo termine. Per quanto possibile, viene descritta la logica dei passaggi per consentire ai ricercatori la possibilità di personalizzare in base alle loro esigenze di ricerca.

Generazione di equivalenti di pelle umana vascolarizzata auto-assemblati

Questo protocollo descrive la tecnica chirurgica per il prelievo di un modello di lembo perforatore umano basato sul pedicolo dell'arteria epigastrica inferiore profonda, destinato alla ricerca sperimentale.

Un modello sperimentale di lembo DIEP umano per indagare strategie di conservazione per allografi compositi vascolarizzati e lembi liberi

Impara a visualizzare e quantificare la vascolarizzazione nei biomateriali ingegnerizzati utilizzando un modello di difetto cutaneo completo nei topi. Questo metodo offre un'analisi affidabile e conveniente della rete vascolare.

Una pelle piena Difetto modello per valutare Vascolarizzazione di Biomateriali

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