Name: In vivo optogenetic stimolazione del sistema nervoso centrale Roditore (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 37 s
Description: Scopri la stimolazione optogenetica in vivo nel sistema nervoso centrale di roditori. Questo metodo consente il controllo in tempo reale dei neuroni durante i compiti comportamentali per studiare i circuiti neurali.

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Questi studi sono stati finanziati da sovvenzioni ricevute dal NIH (MH082876, DA023988).

! ATTENZIONE: Questo protocollo prevede l&#39;utilizzo di laser di Classe 3B e richiederà orientamenti formazione e di sicurezza adeguate da seguire. Occhiali di sicurezza devono essere indossati in ogni momento durante il funzionamento laser, con procedure di allineamento presentano un rischio particolarmente elevato. Contattare il fornitore del laser per determinare l&#39;occhiale che fornirà attenuazione massima per un dato laser. Se disponibile, iscriversi ad un corso di sicurezza di formazione laser istituzionale. Non utilizzare mai un laser senza gli occhiali di sicurezza appropriate e di formazione. 1. Apparecchiatura Laser Set-up Se del caso, passi in sezione 1 sono designati come (A) o (B) per distinguere tra sistemi laser singolo o doppio, rispettivamente. <ol><li> Attaccare e fissare laser per la basetta. Breadboards sono ottimi conduttori di calore e agire come un dissipatore di calore per evitare danni ai componenti interni del laser con l&#39;uso prolungato. </li><li> (A) Fissare la las pre-accoppiatoer a un 10 &quot;x 12&quot; tagliere (o come richiesto) con ¼-20 &quot;viti e le rondelle (Figura 2A). Se i fori breadboard non si allineano con i fori di montaggio laser, usare piccoli &quot;pinze tavola&quot; per garantire laser a basetta. </li><li> (B) Se da utilizzare i 2 laser hanno molto diverse altezze dei raggi (&gt; ~ 1 cm), utilizzare piccoli 4 &quot;x 6&quot; basette di creare una piattaforma per uno dei laser. Collegare queste schede ai principali grandi 12 &quot;x 18&quot; tagliere con ¼-20 viti &quot;con le rondelle, quindi collegare il laser per le tavole più piccole con viti o morsetti da tavolo, come mostrato in Figura 2B. Attaccare l&#39;altro laser direttamente alla basetta con viti o un morsetto da tavolo ad altezza variabile. Fase critica: Breadboards, viti, e componenti ottici possono essere acquistati come imperiali o metriche in modo da essere coerente, acquistando; l&#39;impostazione predefinita per questo protocollo è imperiale. </li><li> (A)Attaccare una spessa giacca piatto fende / contatto fisico (FC / PC) cavo di collegamento al connettore (indicato come un cavo accoppiatore; vedi Figura 3) che è fisicamente attaccato alla parte anteriore del laser (Figura 2A). </li><li> (B) Infilare il raccordo su un ¾ &quot;post ottica, quindi epossidica il giunto tra l&#39;accoppiatore e la parte superiore del montante con JB Kwik, o resina epossidica simile, per prevenire allentamento e di allineamento durante l&#39;uso. Fissare il montante alla basetta (come i buchi breadboard non sempre allineati con la posizione richiesta di componenti ottici, un post holder, adattatore trespolo, e bloccaggio della forcella sono utilizzati per fissare posto ottico del accoppiatore a posto). Collegare un cavo patch spessa giacca (cavo accoppiatore) sul retro del connettore. </li><li> (B) Inserire il primo specchio di sterzo per il laser blu nel supporto cinematico, e fissarlo alla basetta con un ¾ &quot;post ottica. Attaccare questo post per un adap di baseter e forcella di bloccaggio. Posizionare la forcella di bloccaggio e post assemblaggio direttamente di fronte al laser blu con specchio inclinato a 45 ° per guidare il laser verso lo specchio dicroico. Utilizzare il modello di griglia di fori sulla basetta come guida allineamento approssimativo. Una volta posizionata all&#39;incirca, utilizzare una vite ¼ &quot;-20 tappo per fissare la forcella di fissaggio alla basetta (vedi figure 2B, C). </li><li> (B) Inserire lo specchio dicroico in un supporto cinematico e allegarlo a un &quot;post ottica 1 e fissare direttamente alla basetta. Posizionare lo specchio dicroico verso l&#39;estrema sinistra di, e in linea con lo specchio laser blu. Angle lo specchio dicroico ad un angolo di 45 ° in modo tale che la luce blu riflessa il primo specchio si riflette nella accoppiatore, quindi stringere la vite di fissaggio del supporto cinematico al palo (vedi figure 2B, C). </li><li> (B) Fissare il primo specchio di sterzo per il laser giallo ad una ¾ &quot;post ottica. Fissare il optical post per un adattatore di base e forcella di bloccaggio. Posizionare la forcella di bloccaggio e post-insieme direttamente davanti laser gialla e l&#39;angolo lo specchio con un angolo di 45 ° in modo che la luce gialla sarà diretto verso il secondo specchio di sterzo. Fissare la forcella di bloccaggio in posizione con un ¼ &quot;-20 vite e rondella. </li><li> (B) Fissare il secondo specchio di sterzo per il laser giallo per un &quot;post ottica 1. Angle lo specchio in modo tale che il fascio di luce gialla dal primo specchio sarà riflessa attraverso il dicroico e nel manicotto (Figura 2C). Fissare il posto direttamente al tagliere e stringere la vite di fissaggio, una volta lo specchio è inclinato in modo appropriato. Regolazioni fini specchio saranno effettuati utilizzando attacco specchio cinematici in un passaggio successivo. </li><li> (B) Applicare una ruota filtro a densità neutra per un ¾ &quot;post ottica e inserire il palo in un supporto posto attaccato ad una base di montaggio. Fissare l&#39;ensemble alla basetta tra la prima e sespecchi giallo cond utilizzando un unico ¼ &quot;-20 vite. Questa ruota viene utilizzato per regolare la potenza della luce laser giallo raggiungendo l&#39;accoppiatore. Suggerimento: stringere individualmente tutti i componenti (come ad esempio le viti che fissano titolari specchio cinematiche alla parte superiore dei posti, e i fili che tengono adattatori di base alla parte inferiore di posti) prima di essere esposti alla base. Utilizzare un albero di una piccola chiave esagonale in cui, attraverso fori di messaggi ottici per ottenere una coppia sufficiente. Questo consentirà di evitare componenti allentamento durante l&#39;utilizzo, necessitano di riallineamento. </li><li> Collegare un FC / PC a / PC adattatore L-staffa FC alla basetta. </li><li> Optional: Fissare un 1 x 2 50/50 mini fibra cubo splitter direttamente alla basetta per simultanea stimolazione in vivo di due o più animali. Inoltre, le maniglie possono essere aggiunti per facilitare il movimento del gruppo basetta (come si vede nella Figura 2A). </li></ol> 2. Laser Coupling (senza contatto Style Coupling) Questa sezione riguarda la dual-laser set-up (Figura 2B). Allineare il percorso interiore laser blu prima di allineare il percorso esterno laser giallo. ! ATTENZIONE: Utilizzare un accoppiamento basso potere di luce (~ 1 mW) per garantire la sicurezza degli occhi. Indossare occhiali protettivi per accendere il laser e fino a quando l&#39;intensità della luce viene misurata e considerato sicuro. <ol><li> Impostare gli interruttori sul retro del laser a &quot;Curr&quot; (corrente) e la modalità logica transistor-transistor (TTL) + per l&#39;illuminazione costante (in contrapposizione alla modalità analogica). Assicurarsi che la manopola di alimentazione sulla parte anteriore del conducente è fissato a zero. Accendere il laser accendendo il driver e poi il tasto laser. </li><li> Lentamente regolare la manopola di accensione situato sulla parte anteriore del driver laser in modo che la luce laser ~ 1 mW viene emesso. Attendere 10 - 15 minuti (o come specificato dal costruttore) per laser per riscaldarsi. </li><li> Collegare il cavo tester fibra ottica direttamente alla free fine del cavo di connessione accoppiatore e accendere il tester cavo (Figura 3A). Regolare l&#39;angolo del raccordo in modo che il raggio rosso viaggia direttamente verso il centro dello specchio dicroico. Il percorso ottico della luce rossa emessa dal tester cavo è il percorso esatto che la luce laser ricevuta dovrà seguire per essere accoppiato nel laser. </li><li> Eseguire un allineamento grossolano: Utilizzare le manopole laterali e orizzontali sugli specchi cinematiche per orientare il fascio di luce laser in attacco. I morsetti piedistallo può essere necessario allentare per riposizionare leggermente gli specchi e l&#39;accoppiatore. I supporti cinematiche dovrebbero ancora avere qualche viaggio a disposizione per ulteriori regolazioni fini. Non interessati se nessuna luce blu è emessa dal cavo di zona accoppiatore iscritti in questo momento. </li><li> Inserire un singolo foglio di carta semi-traslucida direttamente di fronte allo specchio dicroico, tra l&#39;accoppiatore dicroico e. Ci saranno sia un blu e ared puntino su questa carta dal laser e il tester per cavi, rispettivamente. Utilizzare carta è traslucido abbastanza per vedere sia i punti rossi e blu simultaneamente dallo stesso lato della carta. </li><li> Effettuare regolazioni fini al primo specchio di sterzo (cioè quello più vicino al laser, non il dicroico) regolando attentamente le manopole laterali e orizzontali per allineare il centro del punto rosso con il punto blu. </li><li> Spostare la carta verso il copulante in modo che sia direttamente di fronte l&#39;accoppiatore e regolare le manopole sul secondo (cioè dicroico) specchio per allineare il raggio laser con il fascio rosso. </li><li> Iterare su passi 2.6 e 2.7 fino al centro dei raggi blu / giallo e rosso sono esattamente allineati in entrambe le posizioni (cioè, fino a quando i raggi rossi e blu sono colineare). </li><li> Rimuovere il tester per cavi dal cavo connettore. La luce laser dovrebbe essere emesso dalla fine del cavo di connessione accoppiatore. </li><li> Determine efficienza di accoppiamento misurando la potenza luminosa emessa dalla punta della fibra del cavo di connessione accoppiatore utilizzando un misuratore di potenza. Utilizzare l&#39;impostazione di 500 mW sul fotodiodo del misuratore di potenza e modificare l&#39;impostazione di lunghezza d&#39;onda (λ) al blu (473 nm) o giallo chiaro (635 nm) dello spettro a seconda del laser utilizzato. </li><li> Posizionare la punta della fibra perpendicolare al fotodiodo per ottenere una lettura di potere. Confrontare la potenza luce che entra l&#39;accoppiatore per la potenza luminosa emessa dalla estremità della fibra. Una efficienza di accoppiamento del&gt; 80% è considerato molto buono. Molto piccole ulteriori regolazioni del secondo specchio sterzo a volte può migliorare un po &#39;l&#39;accoppiamento. In generale, quando il fascio di luce dalla fine della fibra di accoppiamento è un piccolo, stretto, punto centrale (senza anelli circondano), accoppiando efficienza nel nucleo della fibra è ottimale. </li><li> Ripetere i passaggi 2,1-2,11 per l&#39;accoppiamento laser giallo, l&#39;eccezione di usare i due specchi di sterzo per il laser di colore giallo (Figura 2C). Do not regolare la posizione dello specchio dicroico o allineamento del laser blu sarà persa. </li></ol> 3. In vivo optogenetic stimolazione Assicurarsi che tutte le procedure che comportano l&#39;impiego di animali siano condotte in conformità con le linee guida locali e nazionali e approvate dal corrispondente Animal Care and Use Committee Istituzionale. <ol><li> Fibra ottica set-up (vedere Figura 3B per l&#39;identificazione dei diversi tipi di patch cord di cui sotto). Per stimolare un singolo mouse, collegare il cavo di zona di accoppiamento di un cavo di collegamento di spessore in giacca con il FC / FC adattatore L-staffa direttamente collegato alla basetta (vedi Figura 4A). Per stimolare due animali da un laser, collegare il cavo di connessione accoppiatore a due patch cord di spessore in giacca con il 1 x 2 50/50 mini cubo (vedi Figura 4B). Per stimolare tre o più animali, collegare il cavo di accoppiamento di uno splitter fibra multimodale con la 1 x 2 mcube ini già attaccato alla basetta (vedi Figura 4C). </li><li> Collegare un commutatore / giunto rotante alle estremità libere della patch cavo / fibra spessa camicia splitter. Commutatori sono essenziali in quanto consentono la rotazione della fibra con il movimento del roditore, che impedisce l&#39;accumulo di coppia sul cavo patch. Troppo coppia può torcere cavi, portare alla rottura, e interferire con il movimento naturale dell&#39;animale durante i test. </li><li> Collegare il cavo di collegamento degli animali al collettore. </li><li> Attaccare un manicotto diviso collega all&#39;estremità libera ghiera metallica del cavo di connessione animale (Figura 5). Non forzare il manicotto tutta la strada fino alla ghiera; lasciano ~ 0,5 cm manicotto esposti come questo è ciò che connette alla fibra ottica impiantato apposto all&#39;animale (Figura 6). Fase critica: acquistare sempre le maniche che contengono una scissione per consentire l&#39;espansione della manica su fibra puntale impiantato durante il collegamento erimozione. Troppo stretto di una misura può causare gravi traumi per l&#39;animale se l&#39;impianto sloggia dal cranio durante il tentativo di staccare il manicotto dall&#39;impianto. Se questo si verifica, l&#39;animale deve essere rimosso dallo studio e ricevere cure immediate veterinario. Analogamente, prima di usare un nuovo manicotto per la prima volta, &#39;romperlo in&#39; da collegare e scollegare una ghiera fino disconnette con la quantità desiderata di forza. Tip: È facile da rompere una fibra mentre rimuove un manicotto che è strettamente collegato ad una ghiera. Per evitare questo, spingere il puntale inserendo una piccola asta di legno nell&#39;estremità aperta del manicotto (il manico di un tampone di cotone standard è la dimensione giusta). </li><li> Collegare il driver laser blu ad un generatore di impulsi utilizzando un cavo BNC e ruotare il generatore di impulsi su. </li><li> Mettere occhiali di protezione su. Impostare gli interruttori sul retro della modalità &quot;Curr&quot; e &quot;TTL +&quot; laser. Assicurarsi that la manopola alimentazione sulla parte anteriore del conducente è impostato a zero andturn il laser (accendere il driver e poi il tasto laser). </li><li> Regolare la manopola di alimentazione sulla parte anteriore del laser in modo che di 5 - 10 mW viene emesso dalla punta della fibra patch cord animale come misurato utilizzando un misuratore di potenza luminosa. Di 5 - 10 mW è una guida generale - l&#39;intensità potenza esatta richiesta per incidere un dato volume di tessuto deve essere calcolato prima dell&#39;inizio dell&#39;esperimento, come in Aravanis et al 3. </li><li> Accendere il laser blu per la modalità &quot;analogica&quot; per la stimolazione in vivo. Nota: i laser DPSS gialle sono gestiti in TTL + modalità per l&#39;illuminazione costante. Attendere 10-15 minuti per il laser per riscaldare. </li><li> Frenare delicatamente il mouse e collegare il split-manica sulla patch cord animali alla fibra impiantabile cronica (vedere Figura 6). Assicurarsi che le estremità di due fibre fanno contatto fisico tra loro. Utilizzare la scissione sul bocchettone comefinestra per visualizzare il contatto diretto tra i due Fase critica:. Talvolta può raccogliere detriti sulla ghiera metallica di fibra impiantabile dell&#39;animale e interferire con il collegamento appropriato. In questo caso, utilizzare un etanolo pulire per pulire delicatamente la ghiera sulla testa dell&#39;animale prima allegato. Mai forzare un bocchettone oltre il puntale come questo può causare gravi traumi all&#39;animale. Se una connessione fisica tra estremità delle fibre non può essere effettuata dopo la pulizia, rimuovere l&#39;animale dallo studio. Suggerimento: la dispersione della luce può avvenire nel punto di collegamento tra il cavo di collegamento in fibra e animale impiantato. Visualizzazione di questa luce da roditori può presentare un confondere sperimentale 10. Termorestringente può essere collegato a patch cord e scivolò oltre il punto di collegamento per ridurre al minimo luce estranea. </li><li> Lasciare il mouse per recuperare per pochi minuti prima dell&#39;inizio della prova comportamentale. Suggerimento: Depending sul test comportamentali da somministrare, è meglio abituarsi topi al processo di connessione e tethering 2 - 3 giorni prima, come la gestione necessario per collegare l&#39;animale può indurre stress e confondere test comportamentali. </li><li> Posizionare il mouse nell&#39;apparato test comportamentali garantire che il cavo connettore è privo di strappi. Non lasciare mai un animale incustodito durante la stimolazione. Anche con l&#39;impiego di commutatori, cavi patch hanno una tendenza a ruotare durante lunghi periodi di tempo e possono interferire con il test comportamentale. </li><li> Utilizzare un generatore di impulso ad impulso laser blu ad una frequenza predeterminata che attiverà opsin di scelta. Per l&#39;uso del laser di colore giallo: impulsi laser di colore giallo con persiane esterne o semplicemente bloccando il percorso del fascio con una, non riflettente, oggetto non infiammabile opaco. </li></ol> 4. post in vivo Considerazioni stimolazione Questa sezione non è inteso per essere un proto completacol ma è offerto come guida per le procedure supplementari che dovrebbero essere considerati seguente vivo stimolazione optogenetic in. <ol><li> Al termine di un esperimento, confermare istologicamente virale e fibra di posizionamento per l&#39;interpretazione accurata dei risultati comportamentali. Euthanize animale secondo le linee guida istituzionali e profumato l&#39;animale con soluzione salina ghiacciata tampone fosfato (PBS) e 4% (w / v) di paraformaldeide in PBS. </li><li> Rimuovere impiantato fibra ottica impugnando saldamente la ghiera metallica esposta con pinze o emostatiche. Tirare in un liscio, ma rapido, movimento. E &#39;importante per testare l&#39;integrità della fibra impiantato misurando l&#39;emissione luminosa alla fine di ciascun esperimento. </li><li> Post-fissare il cervello in paraformaldeide per almeno 24 - 48 ore prima di sezionare attraverso la regione di interesse. (Se si utilizza un microtomo di congelamento, incubare cervelli in una soluzione di saccarosio del 30% per diversi giorni prima di sezionamento). Eseguire immunoistochimica utilizzando standaprotocolli RD per il rilevamento delle opportune fluorofori opsin-tagged, vale a dire, la proteina verde fluorescente (GFP), maggiore fluorescente giallo proteina (EYFP) o mCherry. </li><li> Visitare il sito di espressione opsina e fibra protesi al microscopio e confermare visivamente adeguato posizionamento di iniezione di virus e di impianto sulla base di coordinate scelto. </li></ol>

<ol><li>Zhang, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+microbial+opsin+family+of+optogenetic+tools%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The microbial opsin family of optogenetic tools.</a> Cell. 147, 1446-1457 (2011).</li>
<li>Boyden, E. S., Zhang, F., Bamberg, E., Nagel, G., Deisseroth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Millisecond-timescale+genetically+targeted+optical+control+of+neural+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Millisecond-timescale genetically targeted optical control of neural activity.</a> Nat Neurosci. 8, 1263-1268 (2005).</li>
<li>Aravanis, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+optical+neural+interface%3A+in+vivo+control+of+rodent+motor+cortex+with+integrated+fiberoptic+and+optogenetic+technology%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neural+Eng%22%5BJournal%5D)">An optical neural interface: in vivo control of rodent motor cortex with integrated fiberoptic and optogenetic technology.</a> J Neural Eng. 4, S143-156 (2007).</li>
<li>Sidor, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Psychiatry%27s+age+of+enlightenment%3A+optogenetics+and+the+discovery+of+novel+targets+for+the+treatment+of+psychiatric+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22J+Psychiatry+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Psychiatry's age of enlightenment: optogenetics and the discovery of novel targets for the treatment of psychiatric disorders.</a> J Psychiatry Neurosci. 37, 4-6 (2012).</li>
<li>Tye, K. M., Deisseroth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optogenetic+investigation+of+neural+circuits+underlying+brain+disease+in+animal+models%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Optogenetic investigation of neural circuits underlying brain disease in animal models.</a> Nat Rev Neurosci. 13, 251-266 (2012).</li>
<li>Nieh, E. H., Kim, S. Y., Namburi, P., Tye, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optogenetic+dissection+of+neural+circuits+underlying+emotional+valence+and+motivated+behaviors%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Optogenetic dissection of neural circuits underlying emotional valence and motivated behaviors.</a> Brain Res. 1511, 73-92 (2013).</li>
<li>Yizhar, O., Fenno, L. E., Davidson, T. J., Mogri, M., Deisseroth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optogenetics+in+neural+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Optogenetics in neural systems.</a> Neuron. 71, 9-34 (2011).</li>
<li>Yizhar, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neocortical+excitation%2Finhibition+balance+in+information+processing+and+social+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Neocortical excitation/inhibition balance in information processing and social dysfunction.</a> Nature. 477, 171-178 (2011).</li>
<li>Sparta, D. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Construction+of+implantable+optical+fibers+for+long-term+optogenetic+manipulation+of+neural+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Construction of implantable optical fibers for long-term optogenetic manipulation of neural circuits.</a> Nat Protoc. 7, 12-23 (2012).</li>
<li>Kravitz, A. V., Owen, S. F., Kreitzer, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optogenetic+identification+of+striatal+projection+neuron+subtypes+during+in+vivo+recordings%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Optogenetic identification of striatal projection neuron subtypes during in vivo recordings.</a> Brain Res. 1511, 21-32 (2013).</li>
<li>Mattis, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+for+applying+optogenetic+tools+derived+from+direct+comparative+analysis+of+microbial+opsins%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Principles for applying optogenetic tools derived from direct comparative analysis of microbial opsins.</a> Nat Methods. 9, 159-172 (2012).</li>
<li>Foutz, T. J., Arlow, R. L., McIntyre, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Theoretical+principles+underlying+optical+stimulation+of+a+channelrhodopsin-2+positive+pyramidal+neuron%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Theoretical principles underlying optical stimulation of a channelrhodopsin-2 positive pyramidal neuron.</a> J Neurophysiol. 107, 3235-3245 (2012).</li>
<li>Tye, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amygdala+circuitry+mediating+reversible+and+bidirectional+control+of+anxiety%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Amygdala circuitry mediating reversible and bidirectional control of anxiety.</a> Nature. 471, 358-362 (2011).</li>
<li>Cardin, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+optogenetic+stimulation+and+recording+of+neurons+in+vivo+using+cell-type-specific+expression+of+Channelrhodopsin-2%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Targeted optogenetic stimulation and recording of neurons in vivo using cell-type-specific expression of Channelrhodopsin-2.</a> Nat Protoc. 5, 247-254 (2010).</li>
<li>Chow, B. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-performance+genetically+targetable+optical+neural+silencing+by+light-driven+proton+pumps%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">High-performance genetically targetable optical neural silencing by light-driven proton pumps.</a> Nature. 463, 98-102 (2010).</li>
<li>Diester, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+optogenetic+toolbox+designed+for+primates%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">An optogenetic toolbox designed for primates.</a> Nat Neurosci. 14, 387-397 (2011).</li>
<li>Berndt, A., Yizhar, O., Gunaydin, L. A., Hegemann, P., Deisseroth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bi-stable+neural+state+switches%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Bi-stable neural state switches.</a> Nat Neurosci. 12, 229-234 (2009).</li>
<li>Ung, K., Arenkiel, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fiber-optic+implantation+for+chronic+optogenetic+stimulation+of+brain+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Fiber-optic implantation for chronic optogenetic stimulation of brain tissue.</a> J Vis Exp. , e50004(2012).</li>
<li>Gunaydin, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrafast+optogenetic+control%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Ultrafast optogenetic control.</a> Nat Neurosci. 13, 387-392 (2010).</li>
<li>Lin, J. Y., Lin, M. Z., Steinbach, P., Tsien, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+engineered+channelrhodopsin+variants+with+improved+properties+and+kinetics%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Characterization of engineered channelrhodopsin variants with improved properties and kinetics.</a> Biophys J. 96, 1803-1814 (2009).</li>
<li>Gradinaru, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+and+cellular+approaches+for+diversifying+and+extending+optogenetics%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Molecular and cellular approaches for diversifying and extending optogenetics.</a> Cell. 141, 154-165 (2010).</li>
<li>Goshen, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamics+of+retrieval+strategies+for+remote+memories%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Dynamics of retrieval strategies for remote memories.</a> Cell. 147, 678-689 (2011).</li>
<li>Han, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-light+sensitivity+optical+neural+silencer%3A+development+and+application+to+optogenetic+control+of+non-human+primate+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Syst+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A high-light sensitivity optical neural silencer: development and application to optogenetic control of non-human primate cortex.</a> Front Syst Neurosci. 5 (18), (2011).</li>
</ol>

Gli autori non hanno conflitti di interesse da segnalare.

Gli attuali laser descritto set-up e le strategie tethering sono compatibili con una vasta gamma di test comportamentali roditori. Infatti, una serie di test comportamentali sono stati utilizzati in seguito, o di accompagnamento, la stimolazione optogenetic in vivo che includono le attività emotive, comportamentali condizionamento comportamentale, apprendimento e paradigmi di memoria, il sonno, l&#39;eccitazione e attività appetitive per citarne alcuni (vedi Nieh et al. 6 per una revisione completa). Optogenetics ha cambiato il modo in cui i test comportamentali tradizionali sono condotti dal fatto che gli studi più giorni può essere condensato in una sola seduta in cui il comportamento è confrontato, entro soggetti, durante epoche distinte di luce &#39;su&#39; contro &#39;off&#39; 5. Scomparti Da segnalare, apparati comportamentali che contengono porte, chiuse o altri ostacoli potrebbero dover essere modificati per accogliere il passaggio delle fibre tethered. Il descritto strategie tethering permesso siStimolazione multaneous di topi multipli da un singolo laser. Alta produttività test comportamentali optogenetic può quindi essere raggiunto attraverso l&#39;uso di più laser e apparecchiature di collaudo. Il numero di animali che possono essere stimolati simultaneamente, tuttavia, sarà limitata dalla massima potenza luminosa che può essere ottenuta ad ogni punta della fibra. Potenza massima sulla punta della fibra dipende dalla 1) potenza iniziale del laser; 2) efficienza di accoppiamento e 3) il numero di divisioni fascio. Per un laser blu 100 mW con ~ 80% efficienza di accoppiamento e fino a 4 divide fascio (come illustrato nella Figura 4C), potenza media sulla punta della fibra può variare tra 5-10 mW utilizzando 200 micron nucleo, 0,22 NA patch cord fibra (nb aspettarsi perdita di trasmissione da giunti rotanti essere &lt;15%). Misurazione emissione di luce sulla punta della fibra è essenziale per la determinazione adeguata potenza luminosa per l&#39;attivazione opsin come opsine differiscono nella loro sensibilità alla luce e quindi la densità di potenza luminosa (mW/ Mm 2) per l&#39;attivazione 11. Per esempio, il opsin passo-funzione stabile (SSFO) funge da accumulatore di fotoni e quindi richiede pochissima densità di potenza di luce per l&#39;attivazione (&lt;8 W / mm 2) 8. Confronta questo per la rodopsina canale tradizionale (ChR2), che richiede un minimo di 1 mW / mm 2 di luce per suscitare potenziali d&#39;azione 2. Tabella 1 viene fornito come riferimento rapido per noti irradianze leggeri minimi necessari per attivare le opsine più comuni attualmente in utilizzare. Infine, si deve considerare che diffonde la luce e assorbe mentre viaggia attraverso il tessuto cerebrale in modo tale che è necessaria più potenza di luce per strutture cerebrali profonde 3. Una risorsa online utile è disponibile in <a href="http://www.stanford.edu/group/dlab/cgi-bin/graph/chart.php">http://www.stanford.edu/group/dlab/cgi-bin/graph/chart.php</a> che calcola l&#39;intensità della luce a diverse profondità attraverso il tessuto cerebrale tenendoconto delle dimensioni nucleo della fibra, apertura numerica, lunghezza d&#39;onda della luce impiegata, e la potenza luminosa a partire dalla punta della fibra. Per un&#39;eccellente panoramica dei principi teorici alla base di questi calcoli, consultare Foutz et al. (2012) 12. Esempi di come applicare questi principi e calcoli al disegno sperimentale sono dimostrate in Aravanis et al. (2007) 3 e Tye et al. (2012) 13. L&#39;esecuzione di queste calcoli prima dell&#39;inizio di un esperimento è fondamentale per garantire un&#39;adeguata irradianza luce per l&#39;attivazione opsin. Alla luce di queste considerazioni, è vantaggioso acquistare laser superiore alimentati per garantire un&#39;adeguata potenza. Laser con potenza compresa fra 100-200 mW sono generalmente sufficienti a compensare le fibre centrali piccole, fibre divisione multipla, inefficienza accoppiamento e la trasmissione perde 7. Se si utilizza il laser ad alta potenza, però, bisogna fare attenzione per evitare danni neurali o calore e luce-sociod artefatti che possono verificarsi con prolungata e / o ad alta potenza di illuminazione luce 7. Un range di sicurezza per esperimenti in vivo è fino a 75 mW / mm 2. 14 Scelta del tipo di laser per acquisto può essere una questione complessa in quanto vi sono molti fattori da considerare. Per esempio, i laser a diodo diretto forniscono uscita impulsiva più stabile e ripetibile di fare a stato solido (DPSS) laser a diodo pompato, e sono più affidabili nel tempo in un ambiente di laboratorio. In alcuni casi, tuttavia, laser a diodi diretti possono emettono una luce potenza inferiore, ~ 0,1 mW, anche quando la tensione di comando è 0 V a causa di una corrente di essere inviato al diodo dall&#39;elettronica di controllo del laser costante di bias. Questa emissione &#39;spontanea&#39; ha uno spettro più ampio di quanto non emissione laser dallo stesso laser, così può essere specificamente ridotto installando un passa-banda stretta (o &#39;pulizia&#39;) filtro tra il laser e accoppiatore (vedi lista pezzi). Questo filtro sarà ancheridurre la potenza da ~ 50% quando lasing, quindi l&#39;acquisto di un laser di potenza più elevata di conseguenza. Va notato che il laser DPSS gialli sono estremamente sensibili e possono comportarsi in modo irregolare e hanno ridotto durata se rapidamente modulato da un generatore di impulsi. Regolazione della potenza del laser giallo deve essere fatto attraverso ruote portafiltri densità esterni immessi nel percorso ottico (Sezione 1.7) durante l&#39;uso del laser in TTL + modalità. In alternativa, l&#39;acquisto di un verde 532 nm DPSS laser è una conveniente alternativa che può attivare sia halorhodopsins e archaerhodopsins. L&#39;apertura numerica (NA) di una fibra è importante considerare quando si progettano e l&#39;acquisto di componenti in fibra per gruppo laser set-up. La NA di una fibra ottica determina gli angoli di raggi di luce che possono essere accettate ed emessi alla punta di una fibra. Se una fibra superiore NA è accoppiato ad una fibra inferiore NA, significativa perdita si verifica a tale interfaccia, quindi è importante essere coerenti wi<html> th fibra NA all&#39;interno di una singola installazione (o per assicurarsi che NA aumenta lungo il percorso della luce). L&#39;effetto di fibra NA sul volume del tessuto cerebrale illuminata è meno importante, poiché il tessuto cerebrale è fortemente diffondenti, e poiché la luce accoppiata da una sorgente laser tenderà a fibre &quot;Underfill &#39;alto-NA; fibre ottiche ma con un NA di 0,22 e 0,37 sono comunemente usati. Allo stesso modo, l&#39;accoppiamento di un grande-core ad una fibra più piccola-core anche comportare perdite significative, in modo da essere sempre sicuri di utilizzare sempre più o uguale diametro di base durante la progressione dalla sorgente laser per l&#39;impianto degli animali. In linea generale, le estremità della fibra devono essere sempre tappate quando non in uso per evitare che polvere e particelle accumulo. E &#39;una buona idea per regolare estremità delle fibre pulite e connettori (70% di alcool isopropilico funziona bene) per garantire la massima potenza di luce, e per testare la potenza della luce attraverso un&#39; impianto di manichino &#39;prima di iniziare gli esperimenti di ogni giorno. &quot;&gt; Durante il test comportamentali, è imperativo che vengano presi provvedimenti per controllare gli effetti delle infezioni virali, l&#39;espressione della proteina esogena, luce visibile, e possibili effetti del riscaldamento dei tessuti e manufatti sul comportamento degli animali. Pertanto, il gruppo di controllo adeguato dovrebbe essere composto di animali trasdotte con un virus di controllo (ad esempio, GFP, EYFP, mCherry), che ricevono parametri di stimolazione luce identici. Verifica sperimentale è un ultimo passo cruciale in quanto i dati utilizzati per l&#39;analisi del comportamento è del tutto dipende da un appropriato opsina e il posizionamento della fibra ottica nella regione di interesse . In particolare, negli animali cui si rileva alcun segnale immunoistochimica, o quando collocamento di segnale o fibra non è nella regione di interesse, allora i dati comportamentali per tale animale devono essere rimossi dall&#39;esperimento. Inoltre, è essenziale testare uscita luce la punta della fibra sia prima impianto chirurgico e di nuovo post mortem al fine di garantire un adeguato potere della luce per l&#39;attivazione opsin. In animals cui si è verificato perdita di luce forte attraverso la fibra dopo la sperimentazione (&gt; 30%) 9, i dati per l&#39;animale dovrebbe essere considerato per la rimozione. Criteri per la rimozione dovrebbero essere stabilite a priori. Infine, si deve considerare la frequenza degli impulsi richiesta di modulare cottura neurale, che dipende dalla struttura del cervello e neuronali sottotipi nel mirino. Esistono parametri di stimolazione della luce optogenetic Pubblicato per più sottotipi neuronali, tuttavia, la capacità di modulare la cottura neurale dovrebbe essere confermato in modo indipendente attraverso in vivo o fetta cervello registrazioni elettrofisiologiche. Come si diventa abili con l&#39;utilizzo del laser e la modifica di laser set-up, combinazioni di diverse lunghezze d&#39;onda possono essere legati a più fibre in un singolo animale o consegnate lungo la stessa fibra per optogenetics combinatoria 8. Stimolazione multi-lunghezza d&#39;onda diventerà sempre più importante dato il rapido sviluppo di red-shifted channelrhodopsins 8, la progettazione di blu-spostato iperpolarizzanti opsine 15, l&#39;uso di bistabili opsine step-funzione 8,16,17, e l&#39;elenco generale espansione di opsine con l&#39;attivazione distinti spettri 11. Questa espansione del toolbox optogenetic permetterà il controllo senza precedenti di più sottotipi neurali all&#39;interno e tra le varie regioni del cervello per determinare il loro ruolo nel governo stati comportamentali complessi.

Optogenetics ha rivoluzionato i sistemi a livello di neuroscienze nella sua ricerca degli elementi del circuito neurale di guida stati comportamentali normali e malattie rilevanti. La scoperta che opsine microbiche sensibili alla luce 1 possono essere espressi in modo funzionale in cellule di mammifero ha fornito la piattaforma per l&#39;utilizzo di luce per ottenere un controllo senza precedenti di attività neurale con elevata precisione spaziale e temporale 2. A differenza degli approcci tradizionali elettrofisiologiche o farmacologici alla manipolazione dell&#39;attività neurale, optogenetics permette il controllo di specifici tipi cellulari (basata sulla proiezione genetica identificare o spaziale) all&#39;interno delle popolazioni eterogenee e in tempi fisiologicamente rilevanti. La successiva introduzione di un&#39;interfaccia neurale ottica disponibile uno strumento pratico per la consegna di luce a comportarsi animali 3. Questo ha permesso per la modulazione in tempo reale dei circuiti neurali definiti nei roditori Comportarsi sveglio al fine di testare la causalmenteruolo di questi circuiti neurali nel governo degli stati comportamentali rilevanti per le malattie neurologiche e psichiatriche 4-6. Optogenetics, quindi, rappresenta un potente strumento per l&#39;introduzione in tutti i laboratori interessati a indagare il rapporto funzionale tra attività cerebrale e misure comportamentali o fisiologici in modelli animali. Design di successo e il completamento di un esperimento optogenetic coinvolge varie fasi e le considerazioni (vedi Figura 1). L&#39;obiettivo del protocollo è di fornire gli individui con gli strumenti e componenti, insieme con la conoscenza teorica e pratica, necessario per eseguire la stimolazione optogenetic nei roditori Comportarsi sveglio. Attualmente, vi sono due lunghezze d&#39;onda predominanti utilizzati per attivare canali opsin microbici: nello spettro blu (comunemente 473 nm) e spettri verde-giallo (comunemente 532 o 591 nm). Entrambi laser e diodi emettitori di luce (LED) possono essere usati come sorgenti luminose a deliver specifiche lunghezze d&#39;onda della luce al tessuto cerebrale. La luce non coerente emessa dai LED, tuttavia, rende la trasmissione efficace della difficile luce quando l&#39;accoppiamento nelle piccole fibre di base necessari per la stimolazione in vivo roditori. Definizione del gruppo laser appropriato è un passo iniziale cruciale e dipenderà dalla destinazione d&#39;uso optogenetics in laboratorio. Il protocollo attuale descrive due configurazioni di base che si differenziano per la loro facilità di montaggio e l&#39;uso: singolo laser pre-accoppiati e sistemi dual laser (vedi figura 2). Sistemi a singolo laser che sono pre-accoppiati dal produttore sono essenzialmente ready-to-go all&#39;arrivo con poco o nessun set-up richiesto, ma hanno lo svantaggio di minima personalizzazione per l&#39;utente finale. Un sistema laser duale consente consegna di due diverse lunghezze d&#39;onda lungo la stessa fibra. Questo diventerà sempre più importante con l&#39;avvento di optogenetics combinatoria cui diverse lunghezze d&#39;onda possono essere utilizzati per attivare / inibire distinzionetipi di cellule T che sono spazialmente co-localizzato. Questo è essenziale anche per l&#39;uso con bi-stabili opsine funzione step in cui sono iniziati e terminati da luce blu e giallo, rispettivamente, 7,8 fotocorrenti. Sistemi laser doppio sono anche personalizzabili come l&#39;utente può aggiungere o rimuovere i componenti (ad esempio, persiane esterne, filtri fascio, contatori di potenza in linea) dal percorso del fascio, come richiesto. Grazie alla sua versatilità, il doppio laser set-up è consigliato se optogenetics sta per essere uno strumento costante utilizzato in laboratorio. Accoppiamento dei laser, tuttavia, può presentare una sfida e così un meccanismo di accoppiamento rapido, facile e affidabile è fornito in questo protocollo. Nota, i dettagli questo protocollo l&#39;assemblaggio di componenti ottici e utilizza cavi di connessione e componenti ottimizzati per le fibre step-index multimodali con un nucleo di 200 micron e una apertura numerica (NA) di 0,22. Diverse dimensioni core e NA sono disponibili per l&#39;acquisto, ma tutti i componenti devono corrispondere idealmente in termini di nucleodimensioni e NA per evitare la perdita di luce in punti di connessione in fibra. In alternativa, in un collegamento in fibra, la luce può passare da una piccola a una dimensione più grande nucleo; e / o da un basso NA ad un superiore NA fibra senza perdita aggiuntiva. Strategie tethering sono previste che consente la stimolazione simultanea di più topi per i test comportamentali high-throughput. I protocolli previsti presuppongono l&#39;uso di fibre impiantabili croniche per i test comportamentali, ma possono essere modificati per i protocolli di stimolazione acuta. Fibre Acutely impiantati sono vantaggiose per la combinazione con la stimolazione optogenetic manipolazione farmacologica, poiché la stessa cannula può essere usato per trasportare farmaci e la punta di una fibra ottica nella stessa posizione. L&#39;uso di fibre cronicamente impiantati è, tuttavia, altamente raccomandato per la prova comportamentale più giorni poiché riduce danno tissutale associato con l&#39;inserimento e la rimozione ripetuta di fibre e aumenta la precisione in termini di posizionamento coerente di fibre perilluminazione del tessuto 3. In combinazione con le configurazioni tethering qui descritte, il comportamento può essere registrato in modo affidabile su più giorni. Mesi, infatti, la trasmissione della luce affidabile e &#39;stato segnalato dopo l&#39;impianto in fibra di 9 in modo tale che la stimolazione cronica e paradigmi comportamentali test possono, teoricamente, essere eseguite su più giorni e settimane. Note aggiuntive sui componenti hardware sono stati aggiunti al protocollo per consentire la scelta del lettore nel miglior prodotto che soddisfa le loro esigenze individuali, comprese le alternative e prodotti convenienti che possono essere fatte in casa. Sono forniti anche consigli importanti che sono utili durante l&#39;installazione e l&#39;implementazione.

<table><tbody><tr><td colspan="4">1. Configurazione laser</td></tr><tr><td>100 mW 473nm o 488nm Sistema laser a diodi, < 2% di stabilità (quantità: 1)</td><td>Omicron</td><td>Luxx/Phoxx 473/488-100</td><td>L'accessorio opzionale include un telecomando
scatola con interruttore a chiave e display a LED</td></tr><tr><td>100 mW 594nm DPSS laser (quantità: 1)</td><td>Colbolt</td><td>0594-04-01-0100-300</td><td>04-01 serie laser giallo; sensibile alla riflessione posteriore
da</td></tr><tr><td>fibre 200 mW 532 nm DPSS laser; 5% di stabilità di potenza (quantità: 1)</td><td>Shanghai Lasers</td><td>GL532T3-200</td><td>Alternativa economica al laser DPSS giallo
per l'attivazione di alorodopsine e
archaerhodopsins</td></tr><tr><td>Accoppiatore laser senza contatto per fibra multimodale (quantità: 1)</td><td>OZ Optics</td><td>HPUC-23-400/700-M-20AC-11</td><td>Per l'uso con configurazione laser doppia; Specifiche: 33 mm
OD per 400 - 700 nm; Presa FC, f = obiettivo da 20 mm
con adattatore per testa laser post mount #11</td></tr><tr><td>Breadboard in alluminio, 12" x 18" x 1/2", 1/4"-20 Filettato (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>MB1213</td><td>Per sistema laser doppio</td></tr><tr><td>Breadboard in alluminio, 10" x 12" x 1/2". 1/4"-20 Filettato (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>MB1012</td><td>Per sistema laser singolo</td></tr><tr><td>Breadboard in alluminio, 4" x 6" x 1/2", 1/4"-20 Filettato (quantità: 2)</td><td>Thorlabs</td><td>MB4</td><td>Per laser blu; sistema laser doppio</td></tr><tr><td>Morsetto compatto ad altezza variabile, 1/4"-20 Filettato (quantità: 4)</td><td>Thorlabs</td><td>CL3</td><td></td></tr><tr><td>3/4" perno in acciaio inox (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>TR075</td><td></td></tr><tr><td>1" perno in acciaio inox (quantità: 4)</td><td>Thorlabs</td><td>TR1</td><td></td></tr><tr><td>Portapalo con bloccaggio esagonale a molla Vite a testa zigrinata (quantità: 2)</td>Adattatore per base per <td>piedistallo Thorlabs</td><td>PH1</td><td></td></tr><tr><td>(quantità: 3)</td>Forcella di serraggio piccola <td>Thorlabs</td><td>BE1</td><td></td></tr><tr><td>(quantità: 3)</td><td>Thorlabs</td><td>CF1253</td><td></td></tr><tr><td>Montatura cinematica per ottica da 1" con specchio visibile di qualità laser (quantità: 3)</td><td>Thorlabs</td><td>KM100-E02</td><td></td></tr><tr><td>Ruota a densità di filtro neutro (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>NDC-50C-2M</td><td></td></tr><tr><td>Specchio dicroico passatempo da 1" 50% (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>DMLP505</td><td></td></tr><tr><td>Montatura cinematica per ottica da 1" (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>KM100</td><td>Per specchio dicroico</td></tr><tr><td>Kit chiave esagonale da 20 pezzi con supporto (quantità: 1)</td>Kit viti e bulloneria <td>Thorlabs</td><td>TC2</td><td></td></tr><tr><td>1/4"-20 (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>HW-KIT2</td><td></td></tr><tr><td>Base di montaggio 1" x 2,3" x 3/8" (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>BA1S</td><td></td></tr><tr><td>FC/PC a FC/PC Manicotto di accoppiamento della staffa a L (quantità: 2)</td><td>Thorlabs</td><td>ADAFCB1</td><td>Disponibile anche la doppia staffa a L FC/PC</td></tr><tr><td>Maniglie di sollevamento per breadboard (quantità: 3)</td><td>Thorlabs</td><td>BBH1</td><td></td></tr><tr><td>&Oslash; Filtro passa-banda da 1", CWL = 450 &plusmn; 2 nm, FWHM = 10 &plusmn; 2 nm (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>FB450-10</td><td>Per l'uso con laser a diodi che spontaneamente
emit</td></tr><tr><td colspan="4">2. Accoppiamento laser</td></tr><tr><td>! Occhiali protettivi laser (quantità: 1 per ogni utente ad ogni lunghezza d'onda)</td><td>Vari</td><td></td><td>! Consultare il fornitore del laser per garantire il corretto
selezione di occhiali che forniscano il massimo
attenuazione della luce per il laser acquistato</td></tr><tr><td>Tester per cavi in fibra ottica (quantità: 1)</td><td>Eclipse</td><td>902-186N</td><td></td></tr><tr><td>Pulitore per connettori in fibra in un solo passaggio (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>FBC1</td><td></td></tr><tr><td>Cavo patch per accoppiatore (0,75 metri) (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td></td><td>0,75 m 200 &mu; m core, 0,22 NA, connettori FC/PC fibre multimodali; per doppio sistema laser</td></tr><tr><td>Cavo patch accoppiatore (0,5 metri) (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td></td><td>0,5 m 200 &mu; m core, 0,22 NA, connettori FC/PC, multimodale; per sistema laser singolo</td></tr><tr><td>Doric mini cube (quantità: 2)</td><td>DORIC</td><td>DMC_1x2_FC-2FC</td><td></td></tr><tr><td>Console compatta per contatori di potenza ed energia (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>PM100D</td><td>Sensore di</td></tr><tr><td>potenza sottile LCD serie C da 4" 5 - 500 mW (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>S130C</td><td>Sono disponibili diversi tipi di rivelatori; check
con vendor</td></tr><tr><td colspan="4">3. In vivo Splitter in fibra multimodale per stimolazione optogenetica</td></tr><tr><td>(quantità: 2)</td><td>FONT Canada</td><td></td><td>Splitter in fibra ottica 1 x 2 a nucleo grande, rapporto 50/50, connettori FC, rinforzati. La lunghezza, la dimensione del nucleo e l'apertura numerica possono essere specificate al momento dell'ordine; conveniente
dimensioni del nucleo più piccole disponibili</td></tr><tr><td>Generatore di funzioni di forma d'onda arbitraria (2 canali) (quantità: 1)</td><td>Rigol</td><td>DG1022</td><td>Può controllare fino a 2 laser contemporaneamente</td></tr><tr><td>Giunto rotante in fibra ottica (commutatore) (quantità: 6 - 8)</td><td>DORIC*</td><td>FRJ_1X1_FC-FC*</td><td>Disponibile anche tramite Thorlabs e Prizmatix</td></tr><tr><td>Animal patch cord (cannula mono in fibra ottica personalizzata con boccole da 10 mm, connettore FC/PC) (quantità: 8)</td><td>DORIC</td><td>MFP_200/240/900-0.22_2m_FC-MF2.5</td><td>Lunghezza, dimensione del nucleo e apertura numerica possono
essere specificato al momento dell'ordine; In alternativa, questi
può essere realizzato su misura internamente (vedi
Sparta et al. 2012)9.</td></tr><tr><td>Manicotto diviso in ceramica PFP, diametro interno 2,5 mm, lunghezza 11,40 mm (25/confezione) (quantità: 1)</td> <td>Prodotti in fibra di precisione</td><td>SM-CS1140S1</td><td>Utilizzato per il fissaggio di fibre ottiche impiantate su
animale a un cavo patch in fibra che eroga luce con
estremità a forcella piatta (FC)</td></tr><tr><td>Tappi antipolvere trasparenti per &Oslash; Boccole da 2,5 mm (25/confezione) (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>CAPF</td><td></td></tr><tr><td>Cappuccio in metallo per manicotti di accoppiamento FC/PC e FC/APC (quantità: 1)</td><td>Thorlabs</td><td>CAPF1</td><td></td></tr><tr><td>Cavi patch con rivestimento spesso (ordine personalizzato) (quantità: 4)</td><td>Thorlabs</td><td></td><td>200 &mu; m core, 0,22 NA, connettori FC/PC fibre multimodali; La lunghezza, la dimensione del nucleo e l'apertura numerica possono essere specificate al momento dell'ordine</td></tr></tbody></table>

in vivo optogenetic stimolazione del sistema nervoso centrale roditore

In vivo Optogenetic Stimulation of the Rodent Central Nervous System

La capacità di sondare circuiti neurali definiti in animali svegli e in movimento libero con specificità del tipo cellulare, precisione spaziale e alta risoluzione temporale è stato uno strumento a lungo cercato dai neuroscienziati nella ricerca a livello di sistema dei circuiti neurali che governano stati comportamentali complessi. L'optogenetica è uno strumento all'avanguardia che sta rivoluzionando il campo delle neuroscienze e rappresenta uno dei primi approcci sistematici per consentire test causali riguardanti la relazione tra eventi di segnalazione neurale e comportamento. Combinando approcci ottici e genetici, la segnalazione neurale può essere controllata in modo bidirezionale attraverso l'espressione di canali ionici sensibili alla luce (opsine) nelle cellule di mammifero. L'attuale protocollo descrive la somministrazione di specifiche lunghezze d'onda della luce alle cellule che esprimono opsina nelle strutture cerebrali profonde di roditori svegli e in movimento libero per la modulazione del circuito neurale. I principi teorici della trasmissione della luce come considerazione sperimentale sono discussi nel contesto dell'esecuzione della stimolazione optogenetica in vivo. Il protocollo descrive in dettaglio la progettazione e la costruzione di configurazioni laser semplici e complesse e descrive le strategie di tethering per consentire la stimolazione simultanea di più animali per test comportamentali ad alto rendimento.

Risultati comportamentali ottenuti con in vivo stimolazione optogenetic dipendono interamente sul circuito neurale essere presi di mira, il modello animale utilizzato, ed i parametri di modulazione. Per correnti scopo dimostrativo, neuroni dopaminergici nell&#39;area ventrale tegmentale, o VTA, di tirosina idrossilasi :: topi Cre state trasdotte con un passo-funzione stabile opsin (SSFO) 8, o Virus Control (EYFP), e un impianto di fibra era cronicamente impiantato. L&#39;uso di TH :: Cre topi transgenici assicura che opsin espressione è limitata a + cellule TH (dopamina) nel VTA. Figura 7 illustra risultati rappresentativi comportamentali ottenuti con l&#39;attuale set-up laser descritto per la stimolazione simultanea di più topi. Qui, i topi sono stati legati e stimolate contemporaneamente mediante laser separati (3 topi / laser come nella Figura 4C) e il comportamento locomotorio stato registrato per 1 ora. Stimolazione ripetuta di neuroni dopaminergici nel VTA ha determinato unfenotipo iperattivo che persiste per tutta la durata della stimolazione. Nessun cambiamento nel comportamento motorio è stato visto in EYFP topi (vedi Video 1). A seguito di test comportamentali, immunoistochimica è stata effettuata per verificare il targeting preciso virale per VTA neuroni dopaminergici e il posizionamento della fibra è stata confermata visivamente (vedi Figura 7). <img alt="Figura 1" fo:content-="" src="/files/ftp_upload/51483/51483fig1highres.jpg" /> Figura 1. fasi sperimentali per la stimolazione optogenetic in vivo. Ci sono quattro passaggi generali coinvolti durante la progettazione e l&#39;esecuzione di stimolazione optogenetic vivo. Questo protocollo dettagli in particolare i passaggi necessari per la fornitura di luce da una sorgente di luce laser di strutture cerebrali profonde nel roditore comportarsi e comprende 1) Gruppo sistema laser e l&#39;accoppiamento della luce; 2) strategie tethering per collegamen to più animali ad una fonte di luce per i test comportamentali high-throughput e 3) fornisce linee guida per confermare la strategia di targeting per la consegna di luce - un passo che è fondamentale per l&#39;interpretazione dei dati. Nota: anche se questo protocollo non è esclusiva di fibre impiantabili croniche a fini tethering, si raccomanda e presume quando si associa la stimolazione optogenetic con test comportamentali. Vedere entrambi Ung &amp; Arenkiel 2012 18 e Sparta et al., 2012 9 per in-house di produzione e l&#39;impianto di fibre ottiche croniche. Le linee continue = gradini rivestiti in questo protocollo. <img alt="Figura 2" fo:content-="" src="/files/ftp_upload/51483/51483fig2highres.jpg" /> Figura 2. Sistemi laser utilizzati per la stimolazione optogenetic in vivo. (A) sistema laser unico per la stimolazione in vivo. Questo laser è ph<html> ysically pre-accoppiati dal costruttore e richiede poco all&#39;utente finale di set-up. sistema laser Dual (B). Due laser sono accoppiati in una singola fibra attraverso l&#39;uso di specchi che agiscono per dirigere ciascun percorso ottico in un non-contatto style accoppiatore. Questo è il più versatile set-up come componenti ottici possono essere rimossi o aggiunti, se necessario, ma presenta più di una sfida in termini di accoppiamento laser efficiente. (C) Schema del doppio sistema laser mostrato in (B) indica il posizionamento del laser e specchi con il corrispondente percorso del fascio di luce laser (frecce) raffigurato. Qui, lo specchio dicroico &quot;D&quot; viene utilizzato per deviare lunghezze d&#39;onda di luce blu durante la trasmissione lunghezze d&#39;onda giallo fino alla accoppiatore &quot;C&quot; e nel cavo di collegamento accoppiatore allegata. B = laser blu; C = senza contatto stile accoppiatore; D = specchio dicroico; FW ruota = filtro; M = specchio; Y = laser giallo.ottenere = &quot;_ blank&quot;&gt; Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura. <img alt="Figura 3" fo:content-="" src="/files/ftp_upload/51483/51483fig3highres.jpg" /> Figura 3. tester (A) del cavo utilizzato nel protocollo di accoppiamento non fisico inferiore:. Tester cavo direttamente collegato a un cavo di collegamento. Inserisci raffigura punto di connessione di tester per cavi cavi (B) Patch di cui tutta protocollo da esterno a interno:.. Multimode fibra splitter, patch cord animale nero giacca con maniche bianco zirconia diviso attaccato al piatto Cleave (FC) end, patch cord spessa giacca (noto anche come &quot;cavo accoppiatore&quot;). Patch cord spessa giacca sono rivestiti con cloruro di polivinile (PVC) tubi per una maggiore protezione. Per questi cavi, industria codici colore standard vengono utilizzati per distinguere tra i diversi tipi di fibre, dove arancione = fibra multimodale. Patch cord animali sono<html> più sottile rivestito per consentire la flessibilità per il movimento degli animali durante i test comportamentali. Si noti che la polvere tappi sono posti su FC / PC termina quando i cavi non sono in uso. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51483/51483fig3large.jpg" target="_blank">Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 4" fo:content-="" src="/files/ftp_upload/51483/51483fig4highres.jpg" /> Figura 4. strategie Tethering per in vivo stimolazione optogenetic di (A) un solo animale, (B) due animali; . (C) tre o quattro animali configurazioni possibili non si limitano a quelli sopra indicato - configurazioni multiple sono possibili grazie alla combinazione unica di adattatori, splitter in fibra, e cavi di connessione ramificate che sono disponibili in commercio o per ordine personalizzato. Nota: patch cord e splitter in fibra contengono connettori / PC FC su entrambe le estremità (solo un lato è raffigurato).ww.jove.com/files/ftp_upload/51483/51483fig4large.jpg &quot;target =&quot; _ blank &quot;&gt; Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura. <img alt="Figura 5" fo:content-="" src="/files/ftp_upload/51483/51483fig5highres.jpg" /> Figura 5. Connessione corrette e non corrette (rosso x) di un cavo di collegamento di una fibra ottica impiantabile con una split-manica. (Pannello sinistro) Una zirconia split-manicotto viene utilizzato per collegare un cavo di collegamento alla ghiera di una fibra ottica impiantabile (qui non apposto un animale). Freccia punta al punto di connessione tra il cavo di collegamento e impiantabile in fibra ottica. Confronta (pannello di destra), dove esiste un divario tra il cavo di collegamento e impiantabile in fibra ottica, come visualizzato attraverso la scissione del bocchettone. Notare la perdita di luce che può verificarsi con un collegamento improprio (in basso a destra). Inserto inferiore su upper pannello di sinistra raffigura singoli componenti utilizzati. Dall&#39;alto in basso dell&#39;inserto: dorico impiantabile cannula in fibra ottica, bianco zirconia split-manica, una TV a cleeve (FC) fine di una patch cord animale bianco in giacca (cavo pieno di patch mostrato nella Figura 3B). In tutti i pannelli, si noti che il manicotto di collegamento non è a filo con l&#39;estremità FC del cavo di connessione. Lasciare ~ 0,5 centimetri di un over-appendere per il collegamento alla fibra ottica impiantabile apposta per l&#39;animale. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51483/51483fig5large.jpg" target="_blank">Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 6" fo:content-="" src="/files/ftp_upload/51483/51483fig6highres.jpg" /> Figura 6. Side (a sinistra) e frontale (a destra) vista di un mouse con una fibra ottica impiantato collegato ad un cavo di collegamento. Utilizzare la spaccatura sul manicotto di collegamento per aiutare a visualizzare il corretto collegamento del cavo di zona to la ghiera della fibra ottica impiantato. Il punto di connessione è evidenziata da una casella tratteggiata rossa e anche raffigurato nel inserto superiore. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51483/51483fig6large.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 7" fo:content-="" src="/files/ftp_upload/51483/51483fig7highres.jpg" /> Figura 7. Risultati rappresentativi. (Sinistra) lettura comportamentale di stimolazione optogenetic in vivo. Esempio di comportamento che si può ottenere con il laser descritto set-up e il protocollo tethering. Attività locomotoria è stato registrato durante la stimolazione optogenetic dell&#39;area ventrale tegmentale (VTA) in tirosina idrossilasi (TH) :: topi Cre (n = 7 - 8 / gruppo) trasdotte sia con un passo-funzione opsin (AAV5-DIO-SSFO-EYFP ) o il virus di controllo (AAV5-DIO-EYFP) nella VTA. Gruppi di tre topi sono stati contemporaneamente collegati a un singololaser come illustrato in Figura 4C e stimolati con un impulso 5 sec di 447 o 473 nm luce consegnato volta ogni 15 min. Due vie misure ripetute ANOVA ha rivelato una interazione di gruppo significativo x tempo (F = 3,39 15.27, p &lt;0,0001) e un significativo effetto principale del tempo (F 3,39 = 4.67, p = 0.007), per cui la stimolazione optogenetic aumentata attività locomotoria solo nei topi SSFO (Bonferroni post-hoc p &lt;0,0001, rispetto a t = 0 - 15 ora bin) determinando un aumento complessivo in attività locomotoria rispetto ai topi EYFP (effetto principale del gruppo: F 1,39 = 10.69, p = 0,0061; Bonferroni post-hoc p &lt;0,01 per t = i 15 - 30 e p &lt;0,001 per t = 30 - 45 e t = 45 - 60). Fibra specifiche: 200 micron di base, 0,22 NA. Luce irraggiamento = 6-66 mW / mm 2, corrispondente alla fibra distanza punta di 0,1-0,6 mm dal sito di iniezione virale con il potere della luce 5 mW emessa a punta della fibra prima di tethering. Barre di errore rappresentano errore standard della media. EYFPvs. SSFO: ** p &lt;0.01; *** P &lt;0,001; Effetto tempo: #### p &lt;0,0001 (destra) la conferma istologica del posizionamento virale e in fibra ottica.. Immagine di fluorescenza confocale acquisita su un microscopio a scansione laser SP5 Leica TCS è stato utilizzato per visualizzare il posizionamento della fibra (linea tratteggiata) e l&#39;espressione virale-mediata (verde) nel topo tegmentale ventrale seguente vivo stimolazione optogenetic in. Neuroni dopaminergici (TH +) sono visti in blu. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51483/51483fig7large.jpg" target="_blank">Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> Video 1. In stimolazione optogenetic vivo:. Iperattività durante VTA stimolazione utilizzando SSFO nei topi TH :: Cre <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51483/JOVE_video_1.mov" target="_blank">Clicca qui per vedere il video.</a> <table border="0" cellpadding="0" cellsstimolazione = &quot;0&quot;&gt; <tbody><tr><td colspan="5"> Tabella 1. irradianze luce necessaria per attivare opsine comunemente utilizzati. </td></tr><tr><td rowspan="2"> Opsin Variant </td><td rowspan="2"> λ </td><td rowspan="2"> Densità di potenza (/ mm 2) </td><td></td><td rowspan="2"> Proprietà </td></tr><tr><td> On / Off Kinetics </td></tr><tr><td colspan="5"> Eccitazione ottica: channelrhodopsins azione rapida </td></tr><tr><td> ChR2 2 </td><td> 470 </td><td> 1 - 5mW </td><td> 1.21 / 12 msec </td><td> Incendi fino a 40 Hz </td></tr><tr><td> Cheta 19 </td><td> 490 </td><td> 5 mW </td><td> 0.86 / 8.5 msec </td><td> Incendi fino a 200 Hz </td></tr><tr><td> Capo 20 </td><td> 450 </td><td> 1.65 mW </td><td> 1.62 / 12 msec </td><td> Forma non desensibilizzante di ChR2 </td></tr><tr><td rowspan="2"> C1V 18 </td><td rowspan="2"> 540-630 </td><td> 8 mW (540nm) </td><td> 5/34 msec a 540nm </td><td rowspan="2"> Red-spostato </td></tr><tr><td> 3.2 mW (630nm) </td><td> 67 msec (in) a 630nm </td></tr><tr><td colspan="5"> Eccitazione ottica: azione lenta rhodopsins canale </td></tr><tr><td> Stabile funzione gradino opsin (SFO) 8 </td><td> 470/590 </td><td> 8? W (470nm) </td><td> 20 msec / 29 min </td><td> Nuova variante OFS; Stato è più aperto. Aperto da 470 nm, chiuso da 590 nm </td></tr><tr><td colspan="4"> Inibizione Optical </td><td></td></tr><tr><td rowspan="2"> eNpHR3.0 21 </td><td rowspan="2"> 560-630 </td><td rowspan="2"> 3-5 mW </td><td rowspan="2"> 2.5 msec / &lt;10 msec </td><td> Inibizione sostenuta per 30 min 22 con luce costante * </td></tr><tr><td></td></tr><tr><td> ArchT3.0 11, 23 </td><td> 520-560 </td><td> 1-5 mW </td><td> 2 / &lt;10 msec </td><td> Più sensibile con fotocorrenti più grandi rispetto eNpHR3.0 &lt;/ Td&gt; </tr><tr><td colspan="5"> Questa tabella è fornita solo come guida; specifiche irradianze luce necessaria per la modulazione neurale dovrebbero essere confermati in modo indipendente. </td></tr><tr><td colspan="5"> Validazione sperimentale è importante verificare che il opsin, strategia di targeting, e parametri di stimolazione della luce modulano cottura neurale nel modo previsto 5. </td></tr><tr><td colspan="5"> Densità di potenza (mW / mm 2) si riferisce alla potenza della luce di illuminazione in una data area di tessuto cerebrale e non si riferisce alla potenza luminosa emessa dalla punta della fibra. </td></tr><tr><td colspan="5"> * Utilizzare sempre l&#39;intensità di luce più basso possibile, soprattutto con stimolazione luminosa prolungata. </td></tr></tbody></table> Tabella 1. irradianze luce necessaria per attivare opsine comunemente utilizzati. Abbreviazioni AAV = virus adeno-associato DPSS = stato solido pompato a diodi <br/&gt; EYFP = maggiore proteina fluorescente gialla FC / PC = fendi piatto / contatto fisico GFP = proteina fluorescente verde PBS = tampone fosfato PVC = polivinilcloruro mW = milliwatt NA = apertura numerica SSFO = stabile step-funzione opsin TH = tirosina idrossilasi TTL logica = transistor-transistor V = tensione VTA = area tegmentale ventrale

L'optogenetica è diventata un potente strumento da utilizzare negli esperimenti di neuroscienze comportamentali. Questo protocollo offre una guida passo passo alla progettazione e all'impostazione di sistemi laser e fornisce un protocollo completo per l'esecuzione di stimolazioni optogenetiche in vivo multiple e simultanee compatibili con la maggior parte dei paradigmi di test comportamentali dei roditori.

In vivo optogenetic stimolazione del sistema nervoso centrale Roditore

The ability to probe defined neural circuits in awake, freely-moving animals with cell-type specificity, spatial precision, and high temporal resolution ...

L'obiettivo generale di questa procedura è eseguire con successo una stimolazione optogenetica in vivo del sistema nervoso centrale di un roditore in un animale sveglio e in movimento libero. Questo risultato si ottiene innanzitutto configurando e predisponendo il sistema laser appropriato per effettuare la stimolazione optogenetica. Successivamente, si preparano delle fibre ottiche compatibili con i test comportamentali per erogare la luce laser a una fibra ottica impiantata e nella regione cerebrale di interesse esprimente opsine.Successivamente, l'animale viene fissato al sistema laser per la stimolazione optogenetica ed inserito in un apparato per test comportamentali. Infine, vengono erogati parametri di stimolazione luminosa definiti dall'operatore per attivare o disattivare i neuroni mentre l'animale esegue un compito comportamentale. In definitiva, la stimolazione optogenetica in vivo viene utilizzata per consentire un controllo in tempo reale di popolazioni definite di neuroni o circuiti neurali in animali svegli e attivi, al fine di determinarne il ruolo funzionale in un determinato comportamento di interesse.Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti è che consente il controllo in tempo reale di popolazioni di neuroni geneticamente e spazialmente definite in animali svegli e in attività, con la risoluzione temporale necessaria per correlare i modelli di attività neuronale a stati comportamentali complessi. Questo protocollo prevede l'uso di laser di classe tre B e richiede che vengano seguite adeguatamente la formazione e le linee guida di sicurezza. Gli occhiali di protezione devono essere indossati in ogni momento durante l'uso dei laser, con le procedure di allineamento che presentano un rischio particolarmente elevato. Dopo aver configurato l'apparato laser secondo il protocollo descritto, effettuare l'accoppiamento del laser blu interno in modalità senza contatto, impostando innanzitutto gli interruttori sul retro del laser su "cur" per la corrente e "TTL" per la logica transistor-transistor, in modalità di illuminazione costante sul fronte del driver; assicurarsi che la manopola della potenza sia impostata a zero.Quindi accendere il laser attivando prima l'alimentatore e poi la chiave del laser. Per garantire la sicurezza degli occhi, regolare lentamente la manopola della potenza in modo che venga emessa una potenza luminosa di circa un milliwatt. Successivamente, attendere da 10 a 15 minuti per consentire al laser di riscaldarsi.Successivamente, collegare il tester del cavo in fibra ottica direttamente all'estremità libera del cavo patch del connettore e accendere il tester del cavo. Quindi regolare l'angolo del connettore in modo che il fascio rosso viaggi direttamente verso il centro dello specchio dicromatico. Il percorso del fascio di luce rossa emesso dal tester del cavo corrisponde esattamente al percorso che la luce laser in ingresso dovrà seguire per essere accoppiata nel laser.Per eseguire un allineamento del percorso, utilizzare le manopole laterali e orizzontali degli specchi cinematici per indirizzare il fascio di luce laser nel connettore. Non preoccuparsi se in questo momento non viene emessa luce blu dal cavo di prolunga collegato al connettore. Posizionare ora un singolo foglio di carta semitraslucida direttamente davanti allo specchio dicromatico, tra lo specchio dicromatico e il connettore.Ci saranno sia un punto blu che un punto rosso sullo stesso lato di questo foglio, provenienti rispettivamente dal laser e dal tester del cavo. Eseguire regolazioni fini sul primo specchio di orientamento regolando con attenzione le manopole laterali e orizzontali per allineare il centro del punto rosso con il punto blu. Spostare il foglio indietro verso il giunto in modo che si trovi direttamente davanti ad esso, quindi regolare le manopole sul secondo specchio dicotico per allineare il fascio del laser con il fascio rosso.Continuare ad apportare regolazioni fini ai due specchi finché il centro dei fasci blu e rosso non sarà perfettamente allineato. Coline, rimuovere il tester del cavo dal cavo di accoppiamento. Ora la luce laser dovrebbe essere immessa dall'estremità del cavo patch di accoppiamento.Per determinare l'efficienza di accoppiamento, utilizzare un misuratore di potenza luminosa per confrontare la potenza luminosa in ingresso al coupler con la potenza luminosa emessa dall'estremit&agrave; della fibra. Un'efficienza di accoppiamento superiore all'80% &egrave; considerata molto buona, mantenendo al contempo la posizione dello specchio dicromatico. Utilizzare i due specchi di puntamento per il laser giallo esterno e seguire la procedura di allineamento appena illustrata per accoppiare il laser giallo e configurare una fibra ottica per stimolare un singolo topo.Iniziare utilizzando l'adattatore a morsetto F-C-F-C-L per fissarlo direttamente alla breadboard e collegare il cavo patch del connettore a un cavo patch con guaina spessa. Collegare un giunto rotante commutatore alle estremità libere del cavo patch con guaina spessa. Successivamente, collegare il cavo patch per l'animale al commutatore.Collegare un manicotto diviso di connessione all'estremità metallica libera del cordone dell'animale senza spingere completamente il manicotto verso l'alto. Lasciare esposto circa 0,5 centimetri di manicotto, poiché questa parte si collega alla fibra ottica fissata all'animale tramite un cavo BNC. Collegare il driver del laser blu al generatore di impulsi e accendere il generatore di impulsi.Ora indossare occhiali di sicurezza adeguati. Successivamente, assicurarsi che la manopola della potenza sul lato anteriore del driver sia impostata su zero, quindi accendere il laser prima attivando il driver e poi la chiave del laser con il laser impostato sulla modalità TT L positiva. Regolare lentamente la manopola sulla parte anteriore del laser e utilizzare un misuratore di potenza luminosa per impostare un'emissione di potenza luminosa compresa tra cinque e dieci milliwatt sulla punta del cordone patch per animali.Per ulteriori dettagli su questa impostazione, consultare il protocollo scritto. Passare il laser blu alla modalità analogica per la stimolazione in vivo e attendere da 10 a 15 minuti perché il laser si riscaldi. Successivamente, immobilizzare delicatamente il topo e collegare la guaina divisa del cavo di collegamento dell'animale all'impianto cronico a fibra ottica.Assicurarsi che le estremità di entrambe le fibre entrino in contatto fisico l'una con l'altra, utilizzando la fessura del manicotto di connessione come finestra per visualizzare il contatto diretto tra le due. Lasciare che il topo si riprenda per alcuni minuti prima dell'inizio del test comportamentale. Quindi posizionare l'animale nell'apparato per il test comportamentale, assicurandosi che il cavo del connettore sia privo di ostacoli.Utilizzare il generatore di impulsi per attivare un laser blu a una frequenza predeterminata che attiverà l'opzione prescelta. Al termine dell'esperimento, confermare istologicamente il posizionamento del virus e della fibra come descritto nel protocollo testuale allegato, al fine di un'interpretazione accurata dei risultati comportamentali. Al microscopio, verificare il sito di espressione dell'opsina e l'impianto della fibra, confermando visivamente il corretto posizionamento dell'iniezione virale e dell'impianto in base alle coordinate scelte.In questo esempio di risultati comportamentali ottenuti mediante stimolazione optogenetica in vivo, i neuroni dopaminergici della zona ventrale o VTA di topi transgenici per la tirosina idrossilasi sono stati trasdotti con un'opsina a funzione stabile di tipo step oppure con EYFP come virus di controllo, e un impianto in fibra è stato inserito in modo cronico. Gruppi di topi sono stati stimolati simultaneamente e il comportamento locomotorio è stato registrato per un'ora, come mostrato qui. La stimolazione ripetuta dell'opsina nei topi trasdotti, mostrati a sinistra, ha determinato un fenotipo iperattivo che si è mantenuto per tutta la durata della stimolazione.Sebbene non sia stata osservata alcuna variazione nel comportamento locomotorio nel topo di controllo a destra dopo i test comportamentali, è stata eseguita un'immunohistochimica per verificare il corretto indirizzamento virale ai neuroni dopaminergici del VTA e il posizionamento delle fibre è stato confermato visivamente come mostrato in questa figura Una volta padroneggiata. Questa tecnica può essere utilizzata per manipolare l'attività neurale in qualsiasi regione cerebrale di interesse in combinazione con una varietà di test comportamentali come lettura funzionale della modulazione dei circuiti neurali.

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