14 ottobre 2014
Lamprede recuperare locomozione dopo una lesione completa del midollo spinale. Tuttavia, alcuni neuroni spinali-proiezione sono buoni recuperatori e altri non lo sono. Questo documento illustra le tecniche per la lampreda di mare abitazioni larve (e adulti recentemente trasformati), producendo completi transezioni midollo spinale e la preparazione di cervelli wholemount e midolli spinali per l'ibridazione in situ.
L'obiettivo generale di questa procedura è eseguire una dissezione completa del midollo spinale, una transezione e una dissezione cerebrale per lo studio della guida degli assoni dopo la lesione. Ciò si ottiene con il primo transetto, un midollo spinale di lampra a livello della quinta branca. Quindi il cervello viene sezionato e fissato alla silca.
Dopo aver fissato il cervello, può essere immagazzinato in metanolo o immediatamente utilizzato per l'ibridazione in situ che alla fine cambia l'espressione dell'assonale. I recettori guida possono essere osservati in una vertebra rigenerante dopo una lesione del midollo spinale. Il vantaggio della tecnica che dimostreremo oggi rispetto alla più convenzionale sezione in paraffina o sezionamento criostato, è che consente di vedere l'intero cervello, compresi i neuroni che proiettano verso il midollo spinale che sono grandi e identificati.
A dimostrare la procedura è la dottoressa Kathy Zang, ricercatrice nel nostro laboratorio Dai torrenti che alimentano gli affluenti del lago Michigan al fiume Delaware in Pennsylvania, o ai corsi d'acqua nel Maine. Lampione di mare larvale di tipo selvatico della specie. Sono stati ottenuti Pet mize su Marus.
Le larve di età compresa tra quattro e 7 anni sono lunghe da 10 a 14 centimetri e abbastanza grandi per la ferita e la dissezione. Mantienili in gruppi di 52, cento. In serbatoi di acqua dolce da 50 galloni a 16 gradi Celsius.
Il serbatoio richiede un substrato di ghiaia di un pollice in modo che la lampreda possa prendere in prestito Tutta l'acqua aggiunta al serbatoio deve essere condizionata con filtraggio a carbone e aerazione per almeno 48 ore prima di essere aggiunta al serbatoio. A condizione che gli animali vengano utilizzati entro un anno, non è necessario nutrirli per questa procedura. Tieni a portata di mano la soluzione di suoneria appena preparata.
Per prima cosa trasferire una lampada in una soluzione acquosa di benzocaina satura. Una volta anestetizzato, trasferirlo in una pirofila riempita a metà con sil guard. Mettere il piatto sul ghiaccio e guarnire il piatto con ghiaccio.
Suonerie fredde. Fissare l'animale con tre spilli per insetti di 0,15 diametri, uno al muso e due alla quinta branca. Quindi posizionarlo sotto uno stereomicroscopio per l'intervento chirurgico.
Inizia usando un bisturi numero 11 per praticare un'incisione longitudinale lungo la linea mediana dorsale a livello della quinta branchie. Questo rivelerà il midollo spinale mentre si esegue questa incisione. Usa due ganci ricavati da spilli di insetti per fissare le pareti del corpo usando la rivelazione di Castro numero otto, le forbici.
Praticare un taglio perpendicolare attraverso il midollo spinale esposto. Ispezionare le estremità tagliate del midollo spinale per assicurarsi che la transezione sia completa. Quindi, usando una pinza, riallineare le estremità tagliate e chiudere la ferita.
Trasferire la lava lampre su un foglio di carta da filtro imbevuto di soluzione di ringer. Spostare il preparato su un letto di ghiaccio per un'ora in modo che la ferita possa asciugarsi dopo un'ora. Trasferisci la lava nella sua piccola vasca di acqua ghiacciata.
Lascialo guarire lì per 24 ore. Dopo 24 ore, verificare la presenza di movimenti lungo la sezione. Se ci sono movimenti, la trassezione era incompleta.
Se non ci sono, allora il transetto era buono e l'animale può essere spostato in una vasca a temperatura ambiente per il recupero mentre l'animale si riprende. Cambia l'acqua ogni due o tre giorni. Una volta che l'animale sezionato si è sufficientemente ripreso, anestetizzarlo e prepararlo per la dissezione come descritto in precedenza.
Per sezionare il cervello, inizia con un'incisione trasversale tra la narice e l'organo pineale. Poi, con il vitello Castro, le forbici tagliano il tessuto che circonda il cervello mentre fissano l'animale. Con il forcipe.
Le strutture ovali bianche su entrambi i lati del tronco encefalico sono le capsule otiche. Una volta che il cervello è esposto, usa una pinza per rimuovere il plesso coroideo. Quindi, usa i ganci a spillo modificati per allargare la testa dell'animale ed esporre i nervi cranici.
Quindi tagliare il midollo spinale trasversalmente con le forbici fissando il midollo spinale con una pinza. Taglia i nervi cranici per sezionare il cervello. Quindi trasferisci il cervello in un piccolo pezzo di silicone e fissalo lì.
Utilizzando uno spillo per insetti nel midollo spinale e uno spillo attraverso uno dei bulbi olfattivi. Quindi, utilizzando le forbici, tagliare la commessura del bulbo interolfattivo, la commessura del protettore cerebrale e l'esex del tronco encefalico lungo la linea mediana dorsale. Una volta tagliate le commessure e l'esasto, deviare lateralmente le placche A LR e fissarle in piano al silicone con un totale di sette spilli per insetti, due nei bulbi olfattivi, due nei bordi del taglio, nella commessura del protettore cerebrale, due nell'esagono esteso e uno nella linea mediana del midollo spinale.
Ora utilizzando reagenti privi di RNA, fissare il preparato in para formaldeide al 4% a temperatura ambiente per tre ore con una leggera agitazione. I cervelli possono quindi essere analizzati mediante ibridazione in situ utilizzando il metodo descritto L'espressione di neogen in trascrizioni è stata identificata nel midollo spinale, proiettando neuroni di controllo, animali e negli animali. Due settimane dopo la lesione vista qui è un controllo rappresentativo illeso.
Dopo la transezione completa del midollo spinale, ci sono stati cambiamenti nell'espressione del recettore neogen. Dopo due settimane, il recettore neogeno nel non-controllo era preferenzialmente espresso in cattivi rigeneratori come i neuroni M1 I uno I due I quattro, o MTH. Lo sviluppo di questa tecnica ha aperto la strada alla nostra capacità di esplorare l'espressione dei recettori di guida, dei recettori per il solfato di condroitina, del prozio, dei glicani e dell'attivazione delle basi fuse nello stesso cervello.
Visualizza la trascrizione completa e accedi a migliaia di video scientifici
Questo studio illustra le tecniche per eseguire sezioni complete del midollo spinale e dissezioni cerebrali nei lampredini marini. Mette in evidenza il recupero della locomozione dopo una lesione del midollo spinale e le capacità rigenerative di specifici neuroni con proiezioni spinali.
Questo protocollo consente la riduzione del rischio meccanicistico dei bersagli della rigenerazione assonale fornendo un sistema rilevante per la patologia, utile allo studio delle risposte neuronali intrinseche alla lesione del midollo spinale. La preparazione in toto permette la validazione dei bersagli mediante la visualizzazione diretta di grandi neuroni identificabili che proiettano al midollo spinale, facilitando l'analisi comparativa dell'espressione genica tra buoni e cattivi rigeneratori. Questo approccio migliora la fiducia predittiva nella fase iniziale della scoperta, collegando i fenotipi molecolari agli esiti funzionali della rigenerazione in un modello del sistema nervoso centrale di vertebrati.
Il metodo si integra nel percorso di scoperta, dalla validazione del bersaglio all'identificazione del capostazione, fornendo letture molecolari che informano le strategie di modulazione delle vie metaboliche.