Name: Doppio strato lipidico delle vescicole Generation Uso Microfluidic getto (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-21T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 35 s
Description: Scopri come generare vescicole a doppio strato lipidico con controllo preciso su asimmetria della membrana e incorporazione di proteine tramite microfluidica a getto. Questa tecnica avanzata consente la creazione di vescicole monodisperse e ripetibili per studi biologici.

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Ringraziamo Mike Vahey dal Fletcher Lab presso l&#39;Università della California, Berkeley per consigli sui parametri microjetting. Questo lavoro è stato sponsorizzato dal NIH concedere DP2 HL117748-01.

1. Infinity Camera Fabrication <ol><li> Progettare la camera infinito (chiamato per la sua forma), utilizzando un software di progettazione assistita (CAD), e salvare il file in modo che sia compatibile con un cutter laser. Per creare questa forma, distinte due cerchi del diametro di 0.183 in una distanza da centro a centro di 0.15 dentro Tagliare la camera da 1/8- 3/16 in acrilico trasparente con il taglio laser. La forma dell&#39;infinito facilita interfaccia gocciolina formazione doppio strato e stabilità. </li><li> Praticare un 1/16 nel foro attraverso il bordo della camera acrilico al pozzo a forma di sfioro. Ripetere sul lato opposto. Tagliare un piccolo rettangolo da una lastra acrilica 0,2 millimetri con le forbici o un cutter laser per servire come fondo ai pozzetti. </li><li> Applicare uno strato sottile di adesivo ma completa asciugatura rapida ad un lato della acrilico 0,2 mm di colla al fondo della camera. Tenere il acrilica 0,2 millimetri saldamente in posizione contro il fondo della camera ed erogarela colla all&#39;interfaccia per consentire la colla per creare una tenuta ma evitare che copre l&#39;area di visualizzazione. Assicurarsi di allineare l&#39;acrilico in modo che il suo bordo è a filo con il bordo della parete della camera e copre completamente il ritaglio camera di sfioro. Ciò consentirà sufficiente penetrazione del getto e di evitare perdite del pozzo. </li><li> Tagliate due piccoli pezzi di gomma naturale per coprire i fori. Applicare l&#39;adesivo ad asciugatura rapida attorno al foro. Posizionare la gomma sopra il foro e premere su tutte le aree con un paio di pinze per fissare. Ripetere l&#39;operazione per entrambi i fori. Assicurarsi che tutte le connessioni incollati guarnizioni complete in modo da evitare eventuali perdite. </li><li> Utilizzando un 23 G, 1 in ago, fare un buco nella gomma naturale su entrambi i lati della camera di facilitare l&#39;inserimento della punta a getto d&#39;inchiostro piezoelettrica. </li></ol> 2. Preparazione Sperimentale Conservare la soluzione magazzino lipidi in cloroformio in un -20 ° C freezer. Per questo studio, o 1,2-diphytanoyl-sn-glycero-3-fosfocolina (DPhPC) o 1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-fosfocolina (DOPC) è stato utilizzato. 2 ml di 25 mg / ml soluzione lipidica è tipicamente preparato in questo protocollo e durerà per due mesi se conservato a -20 ° C. <ol><li> Per risospendere il lipide n-decano, prima trasferirlo da uno stock flacone in un piccolo barattolo di vetro, e asciugare delicatamente sotto argon o azoto. Tenere il vaso in un angolo durante l&#39;asciugatura per esporre più area al gas, permettendo il lipide asciugare più velocemente. </li><li> Con il tappo del vaso solo leggermente avvitato, lasciare che la soluzione essiccata per sedersi sotto vuoto in essiccatore per 1-2 ore. Poi aggiungere n-decano a resolubilize lipide a 25 mg / ml. Vortex la soluzione brevemente lipidico e sonicare in un bagno sonicatore per 15 min. Conservare il lipide ricostituita in n-decano a -20 ° C. </li><li> Preparare una soluzione madre di saccarosio. In una provetta da 1,5 ml, aggiungere 900 ml di saccarosio mm 300 e 100 ml1% di metilcellulosa (MC). Viene aggiunta metilcellulosa per aumentare la viscosità della soluzione, che aiuta a getto. Passaggio facoltativo: Aggiungi un optional 1 ml di colore scuro colorante alimentare o perline fluorescenti per dare più contrasto o fluorescenza per immagini, rispettivamente. Questa soluzione è una soluzione di 300 mOsm saccarosio progettato per abbinare osmolarità cellulare e per fornire contrasto durante microjetting. </li><li> Aspirare la soluzione in una siringa monouso di plastica 1 ml. Tenendo la siringa con la punta rivolta verso l&#39;alto, sfogliare l&#39;albero ripetutamente per espellere eventuali bolle verso la punta, e spingere lo stantuffo per espellere l&#39;aria intrappolata. Assicurati di evacuare tutta l&#39;aria dalla siringa prima di procedere, in quanto essa possa interferire con la corretta contrazione piezoelettrico responsabile di getto. </li><li> Installare un filtro da 0,22 micron sull&#39;estremità della siringa. Per evitare che l&#39;aria venga intrappolata nel filtro, tenere la siringa verticale e spingere lo stantuffo finché si forma una gocciolina sopra la punta. Nota: A33 millimetri di diametro unità filtro a siringa ha operato meglio, ma filtri alternativi piccolo come un filtro a siringa da 3 mm di diametro può essere utilizzato per ridurre il volume morto. </li><li> Svitare l&#39;adattatore Luer femmina del getto di inchiostro, e premere saldamente in posizione sopra l&#39;estremità del filtro. Anche in questo caso, espellere il fluido per evitare di intrappolare aria. Avvitare la parte superiore del getto di inchiostro. Fluido deve recarsi presso la punta del getto di inchiostro dopo che è stato fissato completamente. </li></ol> 3. Preparazione dei componenti <ol><li> Utilizzando un v-clamp, montare il gruppo siringa sul palco microscopio. Collegare il filo dal getto d&#39;inchiostro al controller a getto d&#39;inchiostro. Nota: Una fase usanza è stata costruita per questo protocollo, mentre la scenografia può essere determinato dall&#39;utente, è fondamentale avere il controllo xyz indipendente della siringa e del controllo xy del supporto del campione. </li><li> Determinare l&#39;ingrandimento e la combinazione obiettivo necessario per raggiungere la rappresentazione desiderata. Qui vengono utilizzati un obiettivo 10X e 10X oculare. </li&gt; <li> Utilizzare una telecamera ad alta velocità (≥ 1.000 fps) per visualizzare il getto e la generazione di vescicole. Prima di imaging, effettuare la calibrazione fotocamera necessario. Utilizzare auto-trigger basato su immagini all&#39;interno del software della fotocamera per avviare la cattura delle immagini. </li><li> Montare la camera di sfioro sul palco microscopio. Fissare la camera con nastro adesivo in posizione sul palcoscenico. </li><li> Allineare con cura la punta a getto d&#39;inchiostro con il foro perforato in gomma naturale (cfr. figura 1b). A tale scopo, portare il getto d&#39;inchiostro vicino alla camera e regolare il posizionamento a occhio, poi effettuare regolazioni più precise attraverso la lente microscopio. Procedere con cautela, in quanto i movimenti grossolani possono danneggiare la punta a getto d&#39;inchiostro. </li><li> Una volta che l&#39;inchiostro è allineato, eseguire il montaggio siringa lontano dalla camera per evitare danni al getto di inchiostro durante il caricamento dei pozzetti. Assicurarsi che il moto del getto di inchiostro è unidirezionale in modo che rimanga allineato con il foro nella membrana. </li><li> Premere delicatamente sulla plunger del gruppo siringa fino a piccole forme gocciolina presso l&#39;ugello a getto d&#39;inchiostro. Questo fornisce alcune contropressione iniziale. </li><li> Inserire i parametri di getto. Per un&#39;onda bipolare trapezoidale, utilizzare i seguenti parametri: frequenza di 20 kHz impulso, 3 tempo msec luogo, durata 35 msec impulso, 3 msec di tempo di caduta, 65 V di tensione applicata (ampiezza di impulso), e 100 impulsi al getto di innesco (numero di impulsi) . Tuttavia, la tensione applicata (ampiezza di impulso) e numero di impulsi (impulsi jet per scatto) possono essere variate per controllare le dimensioni delle vescicole. </li></ol> 4. Vesicle Generation <ol><li> Aggiungere 25-30 ml soluzione lipidica sospesa in n-decano alla camera all&#39;infinito, che copre l&#39;intera superficie di entrambi i pozzetti. </li><li> Aggiungere 25 ml di glucosio (osmolarità della stessa come la soluzione di saccarosio) al bordo più esterno di un pozzo, pipettaggio lentamente ed uniformemente. Su deposizione, una goccia di glucosio dovrebbe costituire, perché la soluzione di glucosio e lipidi non si mescolano. Aggiungi un altro 251; l di glucosio al pozzo opposto, che farà un&#39;altra goccia e formare la membrana a doppio strato lipidico nel centro della camera entro 5-10 min. </li><li> Inserire l&#39;inchiostro attraverso la gomma naturale, e guidare con attenzione verso il doppio strato di interfaccia gocciolina. Avvicinatevi al doppio strato lentamente, come il getto d&#39;inchiostro introdotto sposti volume e può rompersi il doppio strato. </li><li> Quando l&#39;inchiostro è a ~ 200 micron, applicare il getto con le impostazioni descritte al punto 3.8. La distanza dal doppio strato può variare principalmente in funzione del numero di impulsi di tensione e, tra gli altri parametri. Questo protocollo raccomanda aumentando lentamente impostazioni (tensione e numero di impulsi) e osservando doppio strato deformazione. </li></ol> 5. Pulizia della Equipaggiamento <ol><li> Staccare il gruppo siringa dal palco microscopio, e smaltire la siringa in plastica da 1 ml e filtrare. </li><li> Per pulire il getto di inchiostro, aspirare le seguenti soluzioni in ordine immergendo la punta della solution 7-10x ciascuno: il 70% di etanolo, 2% soluzione Neutrad in acqua calda, il 70% di etanolo, e DDH 2 O. Se il getto d&#39;inchiostro non si adatta in modo sicuro sul pipetta di aspirazione, tagliare un puntale per formare un adattatore. </li><li> Asciugare la camera con il tessuto. Posizionare la camera di infinito in un bicchiere da 250 ml con il 2% v / v Neutrad in acqua calda, e sonicare per 5-10 min. Dopo sonicazione, asciugare accuratamente i pozzetti sotto aria compressa. L&#39;umidità nei pozzetti può compromettere la stabilità della membrana lipidica a due strati, per cui si raccomanda inoltre che le camere sono poste in un forno a 60 ° C per 15 min. </li></ol>

<ol><li>Liu, A. P., Fletcher, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biology+under+construction%3A+in+vitro+reconstitution+of+cellular+function%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Biology under construction: in vitro reconstitution of cellular function.</a> Nature reviews. Mol. Cell Biol. 10, 644-650 (2009).</li>
<li>Yeh, B. J., Lim, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+biology%3A+lessons+from+the+history+of+synthetic+organic+chemistry%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">Synthetic biology: lessons from the history of synthetic organic chemistry.</a> Nat. Chem. Biol. 3, 521-525 (2007).</li>
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<li>Teh, S. Y., Lin, R., Hung, L. H., Lee, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Droplet+Microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Droplet Microfluidics.</a> Lab Chip. 8, 198-220 (2008).</li>
<li>Stachowiak, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unilamellar+vesicle+formation+and+encapsulation+by+microfluidic+jetting%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Unilamellar vesicle formation and encapsulation by microfluidic jetting.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 4697-4702 (2008).</li>
<li>Osaki, T., Yoshizawa, S., Kawano, R., Sasaki, H., Takeuchi, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipid-coated+microdroplet+array+for+in+vitro+protein+synthesis%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Lipid-coated microdroplet array for in vitro protein synthesis.</a> Anal. Chem. 83, 3186-3191 (2011).</li>
<li>Liu, A. P., Fletcher, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Actin+polymerization+serves+as+a+membrane+domain+switch+in+model+lipid+bilayers%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Actin polymerization serves as a membrane domain switch in model lipid bilayers.</a> Biophys. J. 91, 4064-4070 (2006).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Sono state sviluppate molte tecniche per la generazione di vescicole, compresi electroformation, emulsione, e generazione gocciolina 14-16. Tuttavia, nuove tecniche sperimentali sono necessari per consentire la progettazione di sistemi biologici con crescente somiglianza ai sistemi viventi. Metodi di microfluidica, in particolare, hanno offerto un aumento del livello di controllo che regola unilamellarity membrana, monodispersity di dimensioni e contenuti interni 17,18, portando i modelli vescicole...

<html> E &#39;diventato sempre più chiaro che la biologia delle cellule è un problema multi-scala che coinvolge integrando la nostra comprensione dalle molecole alle cellule. Di conseguenza, sapere esattamente come le molecole lavorano individualmente non è sufficiente per capire i comportamenti cellulari complesse. Ciò è in parte dovuto all&#39;esistenza di comportamenti emergenti dei sistemi a più componenti, come esemplificato dalla ricostituzione di interazione rete actina con vescicole doppio strato lipidico 4, del fuso mitotico in Xenopus estrarre 5, e le dinamiche spaziali della batteriche macchinari divisione cellulare 6. Un modo per integrare l&#39;approccio riduzionista della dissezione dei processi molecolari dei sistemi viventi è quello di prendere l&#39;approccio opposto di ricostituire comportamenti cellulari utilizzando un set minimo di componenti biologiche. Una parte importante di questo approccio comporta l&#39;incapsulamento affidabile di biomolecole in un volume confinato, una caratteristica fondamentale di una cella. e_content &quot;&gt; Esistono diverse strategie per incapsulare biomolecole per studiare sistemi biomimetici. Il sistema più biologicamente rilevante è membrane bistrato lipidico, che imitano i vincoli fisici e biochimici imposti dalla membrana plasmatica della cellula. Formazione di vescicole unilamellari giganti (GUVs) da electroformation 7, una delle tecniche più utilizzate per la generazione GUV 14, tipicamente ha una resa di incapsulamento povero a causa della sua incompatibilità con tampone di sali 8. Electroformation richiede anche grandi volumi di campione (&gt; 100 ml), che potrebbe essere un problema per lavorare con proteine ​​purificate , e incorpora inefficiente grandi molecole causa di difficoltà di diffusione tra strati lipidici ravvicinati. Sono stati sviluppati diversi approcci per la generazione microfluidici vescicole lipidiche. I metodi a doppio emulsione, che passano attraverso due componenti interfacce tra strati acqua-olio-acqua (W / O / W), si basa sul evaporazione di un volatile solvente per guidare la formazione di doppio strato lipidico 9. Altri hanno usato una linea di assemblaggio microfluidica che produce un flusso continuo di lipidi vescicole a doppio strato 10 o in due fasi indipendenti 11. Abbiamo sviluppato una tecnica alternativa basata su rapidamente applicare impulsi di fluido contro un bistrato un&#39;interfaccia gocciolina 12 per produrre GUVs di dimensione controllata, composizione e incapsulamento. Il nostro approccio, noto come getto microfluidica, offre i vantaggi combinati di diverse tecniche di generazione vescicola esistenti, fornendo un metodo per la creazione di sistemi biomolecolari funzionali per investigare una varietà di problemi biologici.

<table><tbody><tr><td>Getto d'inchiostro piezoelettrico</td><td>MicroFab Technologies</td><td>MJ-AL-01-xxx</td><td>xxx indica il diametro dell'orifizio in micron</td></tr><tr><td>Jet Drive III Controller</td><td>MicroFab Technologies</td><td>CT-M3-02</td><td></td></tr><tr><td>Telecamera ad alta velocità</td><td>Vision Research</td><td>MiroEX2</td><td></td></tr><tr><td>DPhPC lipide in cloroformio</td><td>Avanti</td><td>850356C</td><td>Ordinato in piccole aliquote in fiale</td></tr> da <tr><td>33 mm PVDF filtri, 0,2 &micro; m</td><td>Fisher Scientific</td><td>SLGV033RS</td><td></td></tr><tr><td>Siringhe da 1 ml</td><td>Fisher Scientific</td><td>14823434</td><td></td></tr><tr><td>n-Decane</td><td>Acros Organics</td><td>111871000</td><td></td></tr><tr><td>Glucosio</td><td>Acros Organics</td><td>410950010</td><td></td></tr><tr><td>Saccarosio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S7903-1KG</td><td></td></tr><tr><td>Metilcellulosa</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9084958</td><td></td></tr><tr><td>1/8 in acrilico</td><td>McMaster Carr</td><td>8560K239</td><td>I disegni CAD per la camera a forma di infinito sono disponibili su richiesta</td></tr><tr><td>0,2 mm Prodotti Astra acrilici</td><td></td><td>Clarex clear 001</td><td></td></tr><tr><td>Cemento acrilico</td><td>TAP Plastics</td><td>10693</td><td></td></tr><tr><td>Loctite 495 Supercolla</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9011323</td><td></td></tr><tr><td>Loctite 3494 Strobel adesivi di rinforzo UV</td><td> Fornitura</td><td>30765</td><td></td></tr><tr><td>Gomma naturale</td><td>McMaster Carr</td><td>85995K14</td><td></td></tr><tr><td>Fase personalizzata</td><td>fatti in casa</td><td>N / A</td><td>CAD disegni sono disponibili su richiesta</td></tr></tbody></table>

doppio strato lipidico delle vescicole generation uso microfluidic getto

Lipid Bilayer Vesicle Generation Using Microfluidic Jetting

Bottom-up biologia sintetica presenta un nuovo approccio per lo studio e la ricostituzione di sistemi biochimici e, potenzialmente, organismi minime. Questo settore emergente coinvolge ingegneri, chimici, biologi e fisici per progettare e assemblare componenti biologiche di base nei complessi sistemi funzionanti dal basso verso l&#39;alto. Tali sistemi bottom-up potrebbe portare allo sviluppo di cellule artificiali per le indagini biologiche fondamentali e terapie innovative 1,2. Vescicole unilamellari giganti (GUVs) possono fungere da piattaforma modello per la biologia sintetica a causa della loro struttura della membrana cellulare-like e dimensioni. Getto microfluidica, o microjetting, è una tecnica che consente la generazione di GUVs di dimensione controllata, la composizione della membrana, proteine ​​transmembrana incorporazione, e l&#39;incapsulamento 3. Il principio di base di questo metodo è l&#39;uso di impulsi multipli, fluidi ad alta frequenza generati da un dispositivo a getto d&#39;inchiostro piezo-azionato per deformare un l sospesabistrato IPID in un GUV. Il processo è simile a soffiando bolle di sapone da una pellicola di sapone. Variando la composizione della soluzione idromassaggio, la composizione della soluzione comprende, e / o le componenti inclusi nel doppio strato, i ricercatori possono applicare questa tecnica per creare vescicole personalizzate. Questo documento descrive la procedura per generare vescicole semplici da un bistrato un&#39;interfaccia gocciolina da microjetting.

Abbiamo messo insieme un setup getto microfluidica su un microscopio a fluorescenza convenzionale invertito con una fase personalizzata assemblato da parti lavorate e micrometri manuali (Figura 1). Caratterizzazione del getto di inchiostro permette di comprendere meglio il processo di generazione delle vescicole. Variando la distanza tra l&#39;ugello a getto d&#39;inchiostro e doppio strato lipidico colpisce la forza applicata per causare la deformazione della membrana. Vicinanza al doppio strato concen...

Getto microfluidica contro un doppio strato lipidico interfaccia gocciolina fornisce un modo affidabile per generare vescicole con controllo sulla asimmetria membrana, incorporazione di proteine ​​transmembrana, e incapsulamento del materiale. Questa tecnica può essere applicata a studiare una varietà di sistemi biologici in cui sono determinanti biomolecole compartimenti.

Doppio strato lipidico delle vescicole Generation Uso Microfluidic getto

Bottom-up synthetic biology presents a novel approach for investigating and reconstituting biochemical systems and, potentially, minimal organisms. This ...

L'obiettivo generale di questa procedura è generare vescicole a doppio strato fosfolipidico con un maggiore controllo su membrana, unla, molarità, monodisperseità e contenuti interni. Utilizzando cad, una camera viene realizzata a partire da fogli di acrilico e gomma naturale. Un doppio strato lipidico sospeso viene prodotto caricando la camera con lipidi e soluzione.Successivamente, si prepara un getto a inchiostro contenente la soluzione da incapsulare, collegandolo all'apparato di jetting. Una volta stabiliti i parametri appropriati, gli impulsi di fluido emessi genereranno vescicole a doppio strato lipidico. In definitiva, il jetting microfluidico produce vescicole a doppio strato mono-disperse e riproducibili.Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti come l'elettroformazione, l'emulsione o la generazione di gocce è il maggiore livello di controllo sulle membrane, sulla molarità unilaterale, sulla monodisperseità e sui contenuti interni. A dimostrare la procedura sarà Johanna Harrow, studentessa laureanda di un laboratorio, assistita da Kara Patel, studentessa universitaria. Utilizzando un software CAD, disegnare una forma per la camera che possa es

lipid-bilayer-vesicle-generation-using-microfluidic-jetting

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Bioingegneria

Questo protocollo descrive un metodo di estrusione per la preparazione di vescicole lipidiche di sub-micron dimensioni con un alto grado di omogeneità. Questo metodo utilizza un sistema a pressione controllata con velocità controllate flusso di azoto per la preparazione di liposomi. La preparazione...

Costante pressione controllata metodo di estrusione per la preparazione del Nano di dimensioni vescicole lipidiche

Bistrati lipidici supportati e particelle di membrana naturali sono sistemi convenienti che può approssimare le proprietà delle membrane cellulari e di essere incorporati in una varietà di strategie analitiche. Qui mostriamo un metodo per preparare microarray composto da supportati doppio strato lipidico rivestite SiO 2 perline, vescicole di fosfolipidi di membrana o particelle naturali.

Formazione di microarray di membrana con un metodo di assemblaggio con sede a seccatoio

Descriviamo un protocollo per la preparazione di doppi strati lipidici supportati e la sua caratterizzazione utilizzando la microscopia a forza atomica e la spettroscopia a forza.

Atomic Force Microscopy Imaging e Spettroscopia Forza supportati doppi strati lipidici

Qui sono mostrati la preparazione di doppi strati lipidici planari supportati da vetro funzionalizzati con proteine, la determinazione della mobilità proteica all'interno e la misurazione delle densità proteiche. Viene delineata una tabella di marcia per la costruzione di un microscopio a riflessione interna totale a rumore ridotto, che consente di visualizzare fluorocromi residenti a doppio strato con un'elevata risoluzione spaziotemporale.

Singola molecola microscopia a fluorescenza su Planar bilayers supportati

Abbiamo dimostrato un, trasportabile sistema di formazione doppio strato lipidico memorizzabili. Una membrana a doppio strato lipidico possono essere formate entro 1 ora con tasso di successo superiore all'80% quando un precursore membrana congelato è portato a temperatura ambiente. Questo sistema consentirà di ridurre i processi laboriosi e competenze associate a canali ionici.

Formazione automatizzato doppio strato lipidico della membrana Utilizzando un Polidimetilsilossano Thin Film

Qui presentiamo un bilingue lipidico supportato nel contesto di una piattaforma microfluidica per studiare le interazioni proteine-fosfoinositide usando un metodo senza etichetta basato sulla modulazione del pH.

PIP-on-a-chip: Uno studio privo di etichette delle interazioni proteine-fosfoinositide

Questo protocollo descrive la formazione di vescicole unilipidiche e multilipidiche, doppi strati lipidici supportati e doppi strati lipidici sospesi. Questi modelli in vitro possono essere adattati per incorporare una varietà di tipi di lipidi e possono essere utilizzati per studiare varie interazioni molecolari e macromolecole.

Assemblaggio di modelli di doppio strato lipidico supportati e sospesi per lo studio delle interazioni molecolari

Qui viene presentato un protocollo per eseguire e analizzare il legame, la mobilità e l'assemblaggio di singole molecole su membrane lipidiche affollate artificiali utilizzando la microscopia a fluorescenza a riflessione interna totale a singola molecola (smTIRF).

Diffusione e assemblaggio di singole molecole su membrane lipidiche affollate di polimeri

Il presente protocollo descrive l'assemblaggio di liposomi assistiti da ottanolo (OLA), una tecnica microfluidica per generare liposomi biocompatibili. OLA produce liposomi monodispersi di dimensioni micron con un incapsulamento efficiente, consentendo una sperimentazione immediata su chip. Si prevede che questo protocollo sia particolarmente adatto per la biologia sintetica e la ricerca sulle cellule sintetiche.

Assemblaggio di liposomi assistiti da ottanolo su chip per la bioingegneria

Qui viene presentata la fabbricazione di un dispositivo a doppio strato basato su polidimetilsilossano (PDMS) per la produzione di librerie combinatorie in emulsioni acqua-in-olio (tappi). L'hardware e il software necessari per automatizzare la produzione di tappi sono dettagliati nel protocollo e viene dimostrata anche la produzione di una libreria quantitativa di tappi fluorescenti.

Dispositivo microfluidico a doppio strato per la produzione di tappi combinatori

Questo articolo presenta un metodo per la preparazione di vescicole unilamellari giganti composte (cGUV) con una struttura vescicola nella vescicola, con conducibilità elettrica personalizzata nelle regioni interne, anulari ed esterne. L'elettroformazione sintetizza semplici GUV, che vengono trasformati in stomatociti e cGUV tramite shock osmotico, fornendo un modello prezioso per lo studio della biofisica delle cellule nucleate.

Sintesi di vescicole unilamellari giganti composte: un modello biomimetico di cellule nucleate

Scopri come generare vescicole a doppio strato lipidico con controllo preciso su asimmetria della membrana e incorporazione di proteine tramite microfluidica a getto. Questa tecnica avanzata consente la creazione di vescicole monodisperse e ripetibili per studi biologici.

Doppio strato lipidico delle vescicole Generation Uso Microfluidic getto

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