18 giugno 2014
È stata riportata la sintesi e la fabbricazione di fibre lunghe elettrofilate coprono un'area più grande deposito tramite un collettore di nuova concezione da un polimero biodegradabile romanzo chiamato poli (glicerolo-dodecanoato) (PGD). Le fibre sono in grado di sostenere la crescita di cellule derivate da cellule staminali pluripotenti di topo.
Questa procedura produce fibre lunghe filate Electros da un nuovo polimero biodegradabile chiamato poliglicerolo Dote Cano eight. Per prima cosa impostare il collettore di nuova concezione e preparare la soluzione polimerica per l'elettrofilatura, utilizzando una siringa e una pompa, erogare la soluzione al collettore. Quindi trasferire il tappetino in fibra risultante in una piastra di coltura per la reticolazione.
Successivamente, semina cellule staminali embrionali di topo sulle fibre tagliate. In definitiva, i risultati possono dimostrare che le cellule staminali embrionali di topo possono sopravvivere e differenziarsi in cellule neurali sulle impalcature delle fibre. Nel video di oggi, vi abbiamo mostrato come preparare il biomateriale dalla fabbricazione delle cellule syn e infine utilizzare quelle fibre elettro span per la coltura cellulare.
Soprattutto quando combiniamo con la cella derivata da poli e cellula di colorazione. Potrebbero avere un'applicazione molto importante in futuro per la consegna cellulare e per la creazione di un tessuto funzionale. Tessuto invis oggi che lei dimostrerà una procedura orribile per te.
Lei è la cosa più bella nel mio laboratorio. Tagliare un foglio di alluminio in un pezzo rettangolare. Piega il pezzo rettangolare in una striscia rettangolare e attaccala perpendicolarmente a una piastra metallica piatta con del nastro adesivo.
La lunghezza della striscia dipende dalle dimensioni del tappetino in fibra necessario per la soluzione polimerica. Ha mescolato glicerolo e acido decano diico in un rapporto molare uno a uno a 120 gradi Celsius per 100 ore. Per ottenere un poliglicerolo, il polimero decanoico scioglie l'ossido di polietilene e la gelatina in etanolo al 65% con un rapporto in peso da 1,5 a tre a 95,5 in un tubo da 15 millilitri.
Chiudete il tappo e scaldate il composto in forno a 60 gradi per un'ora, mescolando ogni 15 minuti fino ad ottenere una soluzione basale omogenea. Per l'elettrofilatura, mescolare il polimero PGD e la soluzione basale. In un rapporto di peso da quattro a sei, aggiungi lo 0,1% di riboflavina alla miscela e mescola bene.
Inserire la soluzione polimerica in una siringa standard da cinque millilitri con un ago in acciaio inossidabile smussato calibro 18. Quindi inserire la siringa in una pompa a siringa. Collegare il cavo con messa a terra di un alto volumetage fonte di alimentazione alla piastra metallica e il cavo caricato positivamente all'ago.
Inoltre, regola la distanza tra l'ago e il foglio di alluminio. Striscia a 15 centimetri. Ora posiziona la pompa a siringa con un angolo di circa 15 gradi rispetto all'orizzontale per evitare l'aggregazione delle fibre nella parte anteriore della striscia.
Accendere la pompa a siringa e regolare la portata della pompa a 0,6 millilitri all'ora. Accendere la fonte di alimentazione ad alta tensione e impostare la tensione di esercizio su 14,6 kilovolt. Al termine della raccolta, esporre il tappetino in fibra alla luce UV per 60 minuti di reticolazione.
Trasferisci il tappetino in fibra dalla striscia di foglio di alluminio a una piastra di Petri da 100 millimetri. Tagliare il tappetino in fibra in pezzi rotondi della stessa dimensione con la lama chirurgica e posizionare i pezzi in una piastra a 24 pozzetti. Quindi esporre la piastra alla luce UV per altri 20 minuti di sterilizzazione per la cella prima del trattamento.
Immergere i campioni di fibre in un millilitro di soluzione salina tamponata con fosfato e incubare a 37 gradi Celsius durante la notte del giorno successivo. Aspirare il PBS con cura. Aggiungere un millilitro di terreno di differenziazione a ciascun pozzetto e incubare a 37 gradi Celsius per tre ore.
Dopo aver aspirato il mezzo di differenziazione, aggiungere con cautela 0,2 millilitri di matri gel a ciascun campione di fibra e incubare a 37 gradi Celsius per 30 minuti. Rimuovere con cura l'eccesso di gel matri da ciascuno. Risciacquare bene una volta con due millilitri di mezzo di differenziazione.
Aggiungere un millilitro di tase alla piastra di coltura di cellule staminali embrionali di topo dopo 10 minuti, a 37 gradi Celsius. Quando le cellule MES sono staccate, aggiungere quattro millilitri di terreno di differenziazione. Raccogli le cellule MES galleggianti in una centrifuga in provette da 15 millilitri a 400 Gs per cinque minuti.
Risospendere le cellule pellettate in quattro millilitri di differenziazione. Medio. Trasferire 200 microlitri di sospensione cellulare in una provetta da 15 millilitri e aggiungere 10 volumi di differenziazione. Medio. Trasferire 15 microlitri della sospensione cellulare diluita in una camera dell'emocitometro.
Con un vetrino coprioggetti in posizione, contare le cellule nel quadrato centrale di un millimetro e nei quattro quadrati d'angolo dell'emocitometro. Ora scendi cinque volte 10 al quarto. Cellule ES di topo lentamente al centro dei campioni di fibre.
Aggiungere un millilitro di terreno di differenziazione a ciascun pozzetto e coltivare a 37 gradi Celsius e il 5% di anidride carbonica per l'attacco cellulare. Crescita e differenziazione. Reintegrare il millilitro di terreno di differenziazione a giorni alterni.
Per misurare la vitalità cellulare, aspirare il vecchio terreno da ciascun pozzetto e aggiungere un millilitro di un reagente di diluizione abre e fluorescenza uno su 10 in coltura. Incubare a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica per quattro ore, al riparo dalla luce diretta. Quindi trasferire campioni triplicati di 100 microlitri da ciascun pozzetto a una piastra da 96 pozzetti e misurare le immagini di microscopia elettronica a scansione di fluorescenza sono state utilizzate per valutare la morfologia delle fibre filate elettronicamente.
I diametri di queste fibre realizzate con una concentrazione del 40% di PGD sono nell'ordine dei micrometri. Le cellule staminali embrionali differenziate di topo sono state coltivate per tre giorni sulle fibre e la microscopia confocale è stata utilizzata per visualizzare la proteina fluorescente verde sovraespressa. L'aumento del numero di cellule fluorescenti verdi il sesto giorno indica che gli scaffold in fibra possono supportare sia l'adesione cellulare che la proliferazione cellulare.
Le misure di Zu e fluorescenza hanno dimostrato che il rivestimento con matrigel e laminina ha portato a una vitalità cellulare equivalente e a una proliferazione relativamente più elevata. La potenza di Flury e i marcatori delle cellule neurali sono stati quantificati mediante PCR in tempo reale al primo giorno. La maggior parte delle cellule MES coltivate su fibre esprimeva i marcatori di pluripotenza.
OCT quattro nano e SOX due. Un sottogruppo minore ha espresso i marcatori delle cellule staminali neurali PAC six e neston. Dopo due settimane di coltura, c'è stato un aumento dei livelli di espressione di alcuni marcatori di cellule neurali, come la mappa due e DCX, nonché il marcatore oligodendrocitario oligo uno e il marcatore astrocitario.
GFAP Una volta padroneggiato. Questa tecnica può essere eseguita in due o tre ore se eseguita correttamente.
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Questo studio descrive la sintesi e la fabbricazione di fibre elettrofilate lunghe mediante un nuovo polimero biodegradabile, il poli(glicerolo-dodecanoato) (PGD). Le fibre sostengono la crescita di cellule staminali pluripotenti murine, dimostrandone il potenziale per applicazioni biomediche.
Questo protocollo consente la fabbricazione di impalcature elettrofilate biodegradabili in grado di sostenere la differenziazione neurale di cellule staminali embrionali di topo, offrendo una piattaforma riproducibile per la validazione precoce di bersagli nei modelli di malattie neurodegenerative. Fornendo un mimico della matrice extracellulare regolabile con proprietà meccaniche simili a quelle del tessuto nervoso, il metodo aumenta l'affidabilità predittiva dei saggi basati su cellule staminali e riduce l'ambiguità biologica nei flussi di lavoro preclinici di riduzione del rischio.
Il metodo si integra nel percorso di scoperta, dalla derivazione delle cellule staminali allo screening del fenotipo neurale, consentendo la verifica di ipotesi e la chiarificazione di vie metaboliche prima degli sforzi di identificazione del capostazione.